高曉林,李 瑛
(山西醫(yī)科大學(xué)第二附屬醫(yī)院口腔科,山西太原 030001)
金屬蛋白酶組織抑制劑(tissue inhibitors of metalloproteinases,TIMPs)是天然的基質(zhì)金屬蛋白酶(MMPs)抑制劑,存在于大多數(shù)組織和體液中。通過調(diào)節(jié)MMPs活性維持細(xì)胞外基質(zhì)(ECM)的內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定及組織重建[1]。目前,TIMPs已發(fā)現(xiàn)有 4 種類型:TIMP-1、TIMP-2、TIMP-3、TIMP-4[2]。 其中,TIMP-1一直是分子細(xì)胞生物學(xué)研究的重點(diǎn),隨著研究的不斷深入,發(fā)現(xiàn)TIMP-1是一種多功能蛋白,除了可以調(diào)節(jié)ECM代謝之外,TIMP-1還能調(diào)控細(xì)胞增殖分化、凋亡、遷徙、血管生成等,這些功能并非完全通過抑制MMP的途徑[3]。但TIMP-1對牙周膜成纖維細(xì)胞(periodontal ligament fibroblasts,PDLF)的生物學(xué)特性的影響報道較少。本實(shí)驗(yàn)的目的是觀察外源性TIMP-1對體外培養(yǎng)的PDLF的生長增殖和ALP活性表達(dá)的影響。
人重組金屬蛋白酶組織抑制劑-1(recombinant human TIMP-1,Peprotech,USA);DMEM(culbecco's modified eagle media)培養(yǎng)液(Gibco,USA);胎牛血清(FBS,杭州四季青生物工程材料有限公司);堿性磷酸酶試劑盒(南京建成生物工程研究所);25 ml塑料培養(yǎng)瓶、96 孔板(Orangescientific);CO2培養(yǎng)箱(AshevilleNC,USA);Unic7200分光光度計(jì)(上海尤尼柯儀器有限公司)。
將儲存在液氮中的第3代PDLF取出后迅速置于37℃水浴箱中加熱,完全溶解后移入25 ml培養(yǎng)瓶中,加入5 ml含100 ml/L滅活FBS、100 mg/L鏈霉素、100 U/L青霉素的DMEM培養(yǎng)液,混勻后置37℃、50 ml/L CO2、950 ml/L空氣的標(biāo)準(zhǔn)環(huán)境下孵育,每3天換液1次,直至細(xì)胞長滿瓶底80%左右時,用0.25%胰蛋白酶消化法進(jìn)行傳代,取5~7代細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。
1.3.1 接種細(xì)胞及分組 取第5代PDLF,用胰酶消化后制成細(xì)胞懸液,以2×105/ml的濃度接種于 96孔板內(nèi),每孔 100 μl,置入37℃、5%CO2的無菌孵箱中培養(yǎng)24 h后,棄孔內(nèi)培養(yǎng)液,PBS液洗2次,分為1個對照組和4個實(shí)驗(yàn)組,每組8孔。對照組加入10%FBS的DMEM培養(yǎng)液,實(shí)驗(yàn)組分別加入含系列濃度 TIMP-1(1 ng/ml、10 ng/ml、50 ng/ml、100 ng/ml)的DMEM培養(yǎng)液,每孔 100 μl。 培養(yǎng) 24、48和 72 h,分別測定 MTT和ALP活性。
1.3.2 噻唑藍(lán)(MTT)檢測 培養(yǎng)不同時間后,每孔加入MTT液(5 mg/ml)20 μl,37℃培養(yǎng) 4 h,棄培養(yǎng)液,每孔加入二甲基亞砜(DMSO)100 μl,混勻,酶標(biāo)儀測 OD 值,波長 490 nm。
1.3.3 堿性磷酸酶(ALP)檢測 培養(yǎng)不同時間后,每孔取50 μl加入到測定管,再分別加入0.5 ml的緩沖液和基質(zhì)液;標(biāo)準(zhǔn)管中為50 μl的0.1 mg/ml酚標(biāo)準(zhǔn)應(yīng)用液和分別加入的0.5 ml的緩沖液和基質(zhì)液;空白管中為50 μl的雙蒸水和分別加入的0.5 ml的緩沖液和基質(zhì)液,將其充分混勻,37℃水浴15 min。每管加入1.5 ml顯色劑,立即混勻,分光光度計(jì)比色,空白管調(diào)零,測各管吸光度,波長為520 nm。堿性磷酸酶(金氏單位/100 ml)=(測定管吸光度/標(biāo)準(zhǔn)管吸光度)×標(biāo)準(zhǔn)管含酚的量(0.005 mg)×(100 ml/0.005 ml)。
采用SPSS 13.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,對各組8個標(biāo)本測定數(shù)值的均值進(jìn)行單因素方差分析,并比較各實(shí)驗(yàn)組與對照組之間的差異,顯著性水準(zhǔn)α=0.05。
與對照組比較,1 ng/ml的 TIMP-1在 24、48、72 h時對PDLC有顯著的促增殖作用(P<0.05),10 ng/ml的 TIMP-1 在48、72 h對PDLC有顯著的促增殖作用(P<0.05),而100 ng/ml的TIMP-1則對PDLC有抑制作用。
與對照組相比,1 ng/ml的TIMP-1在24、48和72 h對PDLC有顯著增強(qiáng)ALP活性的作用(P<0.05),10 ng/ml的TIMP-1在48 h對PDLC有顯著增強(qiáng)ALP活性的作用(P<0.05),而50 ng/ml的 TIMP-1在 72 h時及 100 ng/ml TIMP-1在24、48和 72 h時對PDLC有抑制作用。
表1 TIMP-1對人牙周膜細(xì)胞的增殖和ALP活性的影響(,ng/ml)
表1 TIMP-1對人牙周膜細(xì)胞的增殖和ALP活性的影響(,ng/ml)
與對照組比較,*P<0.05
檢測 時間TIMP-1實(shí)驗(yàn)組方法 (h) 對照組 110 50100 MTT240.282±0.0110.307±0.015*0.299±0.0180.280±0.0090.250±0.013*480.301±0.0220.344±0.023*0.348±0.027*0.326±0.0190.263±0.012*720.327±0.0320.390±0.035*0.387±0.015*0.366±0.0410.281±0.031*ALP242.857±0.2103.273±0.278*3.015±0.2272.554±0.2892.265±0.392*484.439±0.2565.043±0.298*4.949±0.310*4.275±0.3743.231±0.313*724.623±0.3745.271±0.373*4.850±0.4484.089±0.310*3.344±0.428*
牙周病是引起牙周組織缺損最終導(dǎo)致牙齒缺失的常見病因。PDLF是牙周組織內(nèi)的主要細(xì)胞成分,在牙周組織再生與修復(fù)中發(fā)揮重要作用。其中多種生物活性因子構(gòu)成的因子網(wǎng)絡(luò)可影響其修復(fù)和再生,因此,充分開發(fā)和運(yùn)用生物活性因子,促進(jìn)牙周再生能力和潛力成為當(dāng)前研究領(lǐng)域的重點(diǎn)之一。PDLF與其他成纖維細(xì)胞不同,除具有形成及維持牙周膜的特殊功能外,還對鄰近的牙槽骨和牙骨質(zhì)具有修復(fù)、改建和再生的作用。
TIMP-1是一個包括184個氨基酸長度的單鏈多肽,它包含由12個半胱氨酸殘基形成的6個二硫鍵,將TIMP-1分子分隔為2個單獨(dú)的區(qū)域[4-5]。它是一個伴有糖基化和非糖基化形式的高糖基化分子,具有的表觀分子量分別為20.0和28.5 kDa。人類的TIMP-1基因位于X染色體,Xp11.1[5]。TIMP-1可由成纖維細(xì)胞、上皮和內(nèi)皮細(xì)胞等多種細(xì)胞表達(dá),并可誘導(dǎo)包括角質(zhì)化細(xì)胞、軟骨細(xì)胞、成纖維細(xì)胞、上皮和內(nèi)皮細(xì)胞等多種正常細(xì)胞的生長[1]。據(jù)報道,TIMP-1蛋白可在人牙齦成纖維細(xì)胞(Gin-1 cells)的胞核中積聚,在細(xì)胞周期的S期達(dá)到最大量[6]。
堿性磷酸酶是機(jī)體內(nèi)的一種重要的酶類,廣泛分布于體內(nèi)幾乎所有的器官。通過水解磷酸酯破壞礦化抑制物及通過作為鈣結(jié)合蛋白和磷酸基轉(zhuǎn)運(yùn)因子而促進(jìn)礦化,其活性可反映相應(yīng)細(xì)胞向成骨方向轉(zhuǎn)化的趨勢。因此,ALP活性已成為觀察牙周膜成纖維細(xì)胞分化功能的一項(xiàng)重要指標(biāo)[7]。
本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,TIMP-1可以促進(jìn)PDLF的增殖和分化,進(jìn)而促進(jìn)PDLF對牙根附著和向成骨細(xì)胞分化,使之有利于牙周組織修復(fù)和牙槽骨重建,這一研究也為牙周病的治療提供了重要的理論依據(jù)。
TIMP-1可通過酪氨酸磷酸化及之后的有絲分裂原激活蛋白激酶(MAPK)的活化,促進(jìn)人骨肉瘤細(xì)胞株的增殖[8]。Akahame等[9]研究表明,TIMP-1通過細(xì)胞外信號調(diào)節(jié)激酶(ERK)和磷脂酰肌醇-3激酶(PI3K)信號途徑,促進(jìn)主動脈平滑肌細(xì)胞(AoSMC)細(xì)胞周期進(jìn)行。TIMP-1促進(jìn)成纖維細(xì)胞增殖的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路有待進(jìn)一步研究。
[1]Lambert E,Dasse E,Haye B,et al.TIMPs as multifacial proteins[J].Crit Rev Oncol Hematol,2004,49(3):187-198.
[2]Brew K,Dinakarpandian D,Nagase H.Tissue inhibitors of metalloproteinases:evolution,structure and function[J].Biochim Biophys Acta,2000,1477:267-283.
[3]Baker AH,Edwards DR,Murphy G.Metalloproteinase inhibitors:biological actions and therapeutic opportunities[J].J Cell Sci,2002,115(19):3719-3727.
[4]Gomez DE,Alonso DF,Yoshiji H,et al.Tissue inhibitors of metalloproteinases:structure,regulation and biological functions[J].Eur J Cell Biol,1997,74(2):111-122.
[5]Carmichael DF,Sommer A,Thompson RC,et al.Primary structure and cDNA cloning of human fibroblast collagenase inhibitor[J].Proc Natl A-cad Sci USA,1986,83(8):2407-2411.
[6]Zhao WQ,Li H,Yamashita K,et al.Cell cycle-associated accumulation of tissue inhibitor of metalloproteinases-1(TIMP-1)in the nuclei of human gingival fibroblasts[J].J Cell Sci,1998,111(9):1147-1153.
[7]吉建新,廖偉嬌,邱志輝,等.PDGF和EGF對牙周膜細(xì)胞增殖、纖維結(jié)合蛋白和堿性磷酸酶活性的影響[J].熱帶醫(yī)學(xué)雜志,2005,5(3):267-270.
[8]Hornebeck W.Down-regulation of tissue inhibitor of matrix metalloprotease-1(TIMP-1)in aged human skin contributes to matrix degradation and impaired cell growth and survival[J].Pathologie Biolog,2003,51(10):569-573.
[9]Akahane T,Akahane M,Shah A,et al.TIMP-1 stimulates proliferation of human aortic smooth muscle cells and Ras effector pathways[J].Biochem Biophys Res Commun,2004,324(1):440-445.