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        谷胱甘肽響應(yīng)型姜黃素?zé)晒馓结樀臉?gòu)建及細胞成像

        2025-07-01 00:00:00楊皓宇周心怡陳鑫戴宏芳覃艷

        [關(guān)鍵詞]谷胱甘肽;熒光探針;姜黃素;線粒體;活性氧;細胞成像 [中圖分類號]R284;R285.5 [文獻標志碼]A [文章編號]doi:10.3969/j.issn.1674-070X.2025.06.006

        Construction and cell imaging of GSH-responsive curcumin probe

        YANG Haoyu, ZHOU Xinyi, CHEN Xin, DAI Hongfang, QIN Yan* School ofPharmacy,Hunan University of Chinese Medicine, Changsha,Hunan 4lO2O8,China

        [Abstract]ObjectiveTosynthesize a glutathione (GSH)-responsivecurcumin-based fluorescent probe (CPB)andapply it forhepatocellarcarcinomacellimaging,investigatingitscytotoxcitymitochondria-argetingcapability,andabilitytoinduce reactiveoxygen species (ROS)generation Methods A GSH-responsive fluorescent probe (CPB)was synthesized using curcuminasa fluorescentmoietyanditsstructurewascharacterizedbyliquidchromatographyassspectrometry(C-MS)anduclearmagnetic resonance (NMR).Ultraviolet (UV)spectroscopywasused toanalyzeitsresponsetoGSHandtimedependentchanges.Thecytotoxicity ofCPBwasaessdbsaynditsgetielodioiaonicellagingdhodalcalatio experiment.Results Theresultsof NMRcarbon spectraandLC-MSconfirmed thesuccesful synthesisof CPB.UVspectra showedthattheresponsesignalofCPBitself wasconcentration-dependent,whilethatofCPBtoGSHwastime-dependent.MTT assay showed that CPB of 20-30μmol/mL significantly inhibited the proliferation of HepG2 cells,and CPB of 40μmol/mL (20 inhibitedtheproliferationofBEL7402/DPcells,whileshowingalmostnotoxicitytoAML-12cels,indicatinglowcytotoxicity.ROS assay showed that CPBinducedROS generationin HepG2andBEL7402/DDPcelsinaconcentration-dependent manner. Comparedwiththecontrol group,thecellimaging experiment demonstrated that thefluorescence intensityof CPBenhancedat concentrationsof10\~3Oμmol/Landitsfluorescencesignalslargelyoverlappedwiththoseofcommercialmitochondrialprobes. Conclusion Inthispaper,CPB,aGSH-responsivecurcumin-basedfluorescentprobe,wasdesignedandsynthesized.Itexhibits goodGSHresponsesensitivitylowcytotoxicity,andmitochondrialtargeting,whichcanbeappliedasasafeandreliable GSH detection probe for tumor cell imaging.

        [Keywords] glutathione; fluorescent probe; curcumin; mitochondria; reactive oxygen; cell imaging

        肝癌作為一種全球范圍內(nèi)常見且極具侵襲性的疾病,嚴重威脅著人類的生命健康[1-2]。對于大多數(shù)肝癌患者而言,早期診斷和手術(shù)治療是最有效的治療方法,能夠顯著提高生存率[3-4。但由于常規(guī)腫瘤切除的范圍主要依賴于輔助設(shè)備的檢查和外科醫(yī)生的經(jīng)驗,外科醫(yī)生在進行目視檢查和觸診時,往往難以檢測和準確切除轉(zhuǎn)移性腫瘤,對微小腫瘤的識別也存在不足[5-。因此,區(qū)分癌細胞/組織與正常細胞/組織對肝癌的早期診斷和治療具有重要意義。但當前仍缺乏能夠精準區(qū)分正常組織和腫瘤組織邊界的有效方法。

        在正常細胞內(nèi),氧化與抗氧化系統(tǒng)保持相對平衡狀態(tài),促氧化水平的升高或者抗氧化能力的減弱都會導(dǎo)致體內(nèi)活性氧(reactiveoxygen,ROS)含量的增加,從而引發(fā)一系列生物學(xué)變化[7-8]。谷胱甘肽(glu-tathtione,GSH)作為一種重要的抗氧化劑,在正常生理條件下參與多種細胞信號傳導(dǎo)過程。腫瘤細胞內(nèi)的GSH水平通常高于正常細胞,這一特性使GSH成為腫瘤標志物,有助于腫瘤的早期診斷和預(yù)后評估。然而,在腫瘤細胞中,由于代謝異常,GSH的產(chǎn)生和清除失衡,導(dǎo)致其在腫瘤微環(huán)境中積累[,11-12]。熒光分子探針檢測方法具有選擇性高、靈敏度高、肉眼可見、操作簡單和成本低等特點,已成為檢測GSH的重要手段之一[3]。因此,開發(fā)定量檢測GSH水平的熒光探針具有重要意義。

        姜黃(Curcuma longaL.)屬于姜科姜黃屬,是一種多年生草本植物。其中,姜黃素是其最具代表性的活性成分之一,具有抗氧化[14-15]護肝[1及抗腫瘤[17-19]等多種生物活性。作為一種天然安全的熒光染料,姜黃素非常適用于生物醫(yī)學(xué)領(lǐng)域中的熒光成像、藥物控釋等研究[20]。姜黃素可以用于細胞內(nèi)環(huán)境的熒光成像,通過熒光信號的強度和位置信息,研究細胞內(nèi)分子的運動和相互作用2。此外,姜黃素還可以用于藥物控釋系統(tǒng),通過監(jiān)測熒光信號的變化來跟蹤藥物的釋放情況22]。作為一種有機熒光團,姜黃素在有機溶劑中表現(xiàn)出較強的熒光峰 460~560nm ,且在紫外燈下呈現(xiàn)黃綠色熒光,可用于構(gòu)建熒光探針[23]。在本研究中,利用姜黃素與頻哪醇硼烷合成了一種GSH響應(yīng)型的姜黃素類探針(curcumin-based probe,CPB),在過氧化氫參與下,CPB結(jié)構(gòu)裂解,釋放出姜黃素?zé)晒饣鶊F及頻哪醇硼烷2。隨后,姜黃素?zé)晒饣鶊F與腫瘤組織/細胞內(nèi)大量GSH發(fā)生邁克爾加成反應(yīng)(GSH作為最有效的生物親核試劑之一,對 αα,β- 不飽和酮發(fā)生的加成反應(yīng)),形成 Cur-SG 加合物[25],導(dǎo)致熒光信號減弱。CPB導(dǎo)致腫瘤組織熒光信號發(fā)生變化,并同時起到GSH消耗作用。此外,該探針還具有低細胞毒性和線粒體靶向性等特點,有望開發(fā)為一種安全可靠的GSH檢測試劑,應(yīng)用于腫瘤細胞成像。

        1材料

        1.1 細胞來源

        人肝癌細胞HepG2細胞(批號:FH0076)購自上海富衡生物科技有限公司。小鼠肝正常細胞AML12細胞(批號:CL-0602)購自武漢普諾賽生命科技有限公司。人順鉑耐藥肝癌細胞BEL7402/DDP細胞(批號:2023K08)購自上海美軒生物科技有限公司。

        1.2實驗試劑

        GSH(美國 Sigma-Aldrich公司,批號:LRAD3913);姜黃素(山東科源生化有限公司,批號:C16517579);頻哪醇硼烷(上海麥克林生化科技股份有限公司,批號:C16180837);乙腈(批號:20230119)乙酸乙酯(批號:20230203)、二甲基亞砜(批號:20230218)均購自國藥集團化學(xué)試劑有限公司;胎牛血清(批號:SA240815)、DMEM高糖培養(yǎng)基(批號:WH0024D221)、青霉素-鏈霉素(雙抗, 100× )(批號:WH0622G181)均購自武漢普諾賽生命科技有限公司;PBS(批號:20231101)、胰蛋白酶(批號:20240501)均購自北京賽文創(chuàng)新科技有限公司。

        1.3 實驗儀器

        紫外分光光度計(日本島津公司,型號:UV-1800);NMR光譜(德國Brucker公司,型號:Bruker 600MHz );微孔板檢測儀(美國PerkinElmer公司,型號:Epire);倒置熒光顯微鏡(德國卡爾蔡司公司:型號:AxioVert.A1);細胞 CO2 培養(yǎng)箱、高速冷凍離心機(美國賽默飛公司,型號:HERA CELL150i、ST8R)。

        2方法

        2.1探針的合成和表征

        氮氣保護下,在 15mL 圓底燒瓶中將姜黃素( 100mg 溶于乙睛( 3mL 中,再加入 87μL 頻哪醇硼烷,在 37°C 下反應(yīng) 16h 。將混合物蒸發(fā),然后加入大量乙酸乙酯,靜置直到析出固體,過濾,最后得到產(chǎn)物探針CPB(紅色固體, 58mg,53.3%) 。為驗證CPB是否成功合成,采用低分辨液相色譜-質(zhì)譜及核磁共振碳譜對分子量和結(jié)構(gòu)進行測定。

        2.2探針的可行性和特異性實驗

        為了驗證CPB探針對GSH的響應(yīng)性能,在水溶液中研究了CPB與GSH反應(yīng)后的紫外光譜特性。用去離子水制備 GSH(10mmol/mL) 的儲存溶液,并稀釋至不同濃度。探針儲備液用DMSO/超純水 (1/9,v/v) 制備,并將儲備液用去離子水稀釋至終濃度為 20μmol/mL ,得到光譜測定溶液。用紫外可見吸收分光光度計記錄不同分析物的紫外吸收光譜。

        2.3 MTT實驗

        HepG2細胞、BEL7402/DDP細胞和AML-12細胞( 1×104 個/孔)接種于96孔板中( 100μL DMEM完全培養(yǎng)基)培養(yǎng)過夜,待細胞密度達到 80%~90% 時,棄掉培養(yǎng)基,將含不同濃度CPB的培養(yǎng)基( 10% 胎牛血清)加入96孔板中進一步孵育 48h CPB孵育結(jié)束后棄去含藥培養(yǎng)基,將含稀釋10倍的MTT溶液( 0.5mg/mL 的 100μL DMEM完全培養(yǎng)基加至每孔中,置于培養(yǎng)箱中孵育 2~4hc 。孵育結(jié)束后,棄掉含MTT溶液的培養(yǎng)基,每孔加入 100μL DM-SO,并于黑暗中搖床上低速搖動 15min 溶解底部結(jié)晶,在微孔板檢測儀上檢測 490nm 處的吸光值。

        2.4 ROS檢測實驗

        HepG2細胞和BEL7402/DDP細胞( 2×105 個孔)接種于鋪有爬片的12孔板上,用 1mL 含 10% 胎牛血清的DMEM完全培養(yǎng)基培養(yǎng)過夜,待細胞密度達到 80%~90% 后,用恢復(fù)至室溫的PBS洗一遍,用不同濃度的 CPB(10,20,30μmol/mL) 孵育 6h 后,用PBS洗3遍,每孔加入 1mL 稀釋過的DCFH-DA工作液(不含胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基稀釋)于培養(yǎng)箱中孵育 20min ,孵育結(jié)束后用PBS洗3遍,充分去除未進入細胞的DCFH-DA,最后用倒置熒光顯微鏡觀察細胞并進行熒光圖像采集。

        2.5 細胞成像

        HepG2細胞和BEL7402/DDP細胞( 2×105 個孔)接種于鋪有爬片的12孔板上,用 1mL 含 10% 胎牛血清的DMEM完全培養(yǎng)基培養(yǎng)過夜,待細胞密度達到 80%~90% 后,用恢復(fù)至室溫的PBS洗1遍,按“2.3”中的分組方法培養(yǎng) 30min 后,用PBS洗3遍,最后用倒置熒光顯微鏡觀察細胞并進行熒光圖像采集。

        2.6 線粒體共定位實驗

        HepG2細胞和BEL7402/DDP細胞( 2×105 個孔)接種于鋪有爬片的12孔板上,用 1mL 含 10% 胎牛血清的DMEM完全培養(yǎng)基培養(yǎng)過夜,待細胞密度達到 80%~90% 后,用恢復(fù)至室溫的PBS洗一遍,用不同濃度的 CPB(10,20,30μmol/mL) 與Mito-Tracker紅色染料( 共同孵育 30min 后,最后用倒置熒光顯微鏡觀察細胞并進行熒光圖像采集。

        2.7 統(tǒng)計學(xué)分析

        數(shù)據(jù)用GraphPadPrism8.4.0軟件分析,計量資料以 x±s \"表示,均符合正態(tài)性及方差齊性,多組間差異比較采用One-wayANOVA分析,以 Plt;0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        3結(jié)果

        3.1 CPB的表征

        CPB的分子式為 C33H42B2O10 ,HPLC -MS: m/z 621.35[M+H]+ (理論值:621.31)。同時,采用核磁共振碳譜進一步確證CPB的化學(xué)結(jié)構(gòu)。 13C NMR( 150MHz ,氘代甲醇)核磁數(shù)據(jù)表明,該探針含有11個碳原子,分別為 δc :183.9,149.6,148.6,123.6, 121.8、116.1、111.0、75.5、56.3、49.7、24.8,表明CPB合成成功。

        3.2 CPB對GSH響應(yīng)的可行性

        CPB探針的紫外吸收峰在 435nm 處達到峰值,且吸收光譜強度對CPB有濃度依賴性(圖1A)。CPB與 1mmol/mL 半胱氨酸 [L(+) -cysteine, Cys]和1mmol/mL 同半胱氨酸(homocysteine,Hcy)反應(yīng)后的紫外吸收峰值變化不大,而與1mmolmLGSH反應(yīng)后吸收峰顯著下降,表明CPB對GSH響應(yīng)具有特異性(圖1B)。當探針的溶液中加入 20μmol/mL GSH時,混合溶液的紫外吸收峰和單獨探針吸收峰位置相同,但吸收光譜強度顯著降低,而單獨GSH溶液幾乎沒有紫外吸收(圖1C)。探針溶液中加入 20μmol/mL GSH在37 C 孵育不同時間,吸收光譜強度隨著時間的延長而下降,說明CPB對GSH的吸收光譜強度具有時間依賴性(圖1D)。

        3.3CPB的穩(wěn)定性

        不同溫度下,CPB吸收峰保持穩(wěn)定(圖2A)。在pH5.5~6.5 時CPB保持穩(wěn)定,而在 pH7.4 時出現(xiàn)峰型改變及強度降低,其pH響應(yīng)特性( pH6.5 響應(yīng)強度顯著高于7.4)與腫瘤微環(huán)境( ΦpH6.0~7.0AA) 相匹配(圖2B)。在不同離子環(huán)境下,CPB吸收峰保持穩(wěn)定(圖2C)。

        3.4CPB細胞毒性實驗

        三株細胞分別用不同濃度的CPB孵育 48h 后。在HepG2細胞中(圖3A),與Control組相比,20μmol/mL 的CPB顯著降低了細胞活力 (Plt;0.05) ,達到了半數(shù)抑制濃度( ΔIC50? ,并具有濃度依賴性。如圖3B所示,在BEL7402/DDP細胞中,與Control組相比, 30μmol/mL 和 40μmol/mL 的CPB顯著降低了細胞活力 (Plt;0.05,Plt;0.01) ,對BEL7402/DDP細胞增殖有一定抑制作用。此外,在AML-12細胞中(圖3C),CPB僅在 60μmol/mL 時表現(xiàn)出輕度細胞毒性 (Plt;0.05) 。

        3.5 ROS生成能力檢測

        HepG2細胞中,與Control組相比,各濃度CPB均促進ROS的生成 30μmol/mL 的CPB顯著促進ROS的生成 (Plt;0.01) 。在BEL7402/DDP 細胞中,與Control組相比,各濃度CPB均促進了ROS的生成( Plt; 0.05)。 30μmol/mL CPB在BEL7402/DDP細胞中生成的ROS比HepG2細胞少。詳見圖4。

        3.6 CPB細胞成像

        與Control組相比,不同細胞各濃度CPB綠色熒光強度增強 (Plt;0.01),10μmol/mL CPB綠色熒光較弱,隨著CPB濃度提高,綠色熒光強度逐漸增強詳見圖5。

        3.7線粒體共定位實驗

        Control組僅有紅色熒光,排除非特異性信號干擾(圖6A);在CPB組中,CPB綠色熒光與Mito-TrackerRed紅色熒光幾乎完全重疊,而線粒體共定位定量分析也印證了這一點(圖6B),CPB熒光強度峰型與Mito-trackerRed完全相同,表明CPB可以靶向至線粒體。

        4討論

        癌癥是一種高發(fā)病率和死亡率的復(fù)雜疾病,嚴重威脅人類生命安全2。肝癌是癌癥相關(guān)死亡的主要原因,具有起病隱匿、早期診斷率低、轉(zhuǎn)移率和復(fù)發(fā)率高的特點[27-28],其中,早期診斷困難是導(dǎo)致其死亡率不斷升高的重要原因[29]。GSH是一種有效的內(nèi)源性抗氧化劑,其異常水平與多種潛在疾病密切相關(guān),研究表明,在多種腫瘤組織中,GSH的水平顯著升高,可通過消除 ROS[30]"、解毒藥物或參與DNA修復(fù)過程[32等機制促進腫瘤細胞耐藥。姜黃素具有良好的熒光性質(zhì),在紫外光照射下能夠吸收紫外線并轉(zhuǎn)變?yōu)榧ぐl(fā)態(tài),隨后通過熒光發(fā)射的方式釋放能量,其中激發(fā)波長范圍 400~500nm ,具有較高的熒光量子產(chǎn)率。姜黃素的熒光發(fā)射機制主要與其分子結(jié)構(gòu)密切相關(guān)。姜黃素分子中含有苯環(huán)及 αα,β"不飽和酮結(jié)構(gòu)所形成的共軛結(jié)構(gòu)能有效地促進分子的熒光發(fā)射[33。本實驗以姜黃素為熒光團,設(shè)計了一種基于姜黃素類熒光探針,利用姜黃素分子結(jié)構(gòu)雙側(cè)末端反應(yīng)性功能化位點,以芳基硼酸酯作為連接基團,構(gòu)建了GSH響應(yīng)的CPB探針。CPB結(jié)構(gòu)中含有硼酸酯和 ∝ β -不飽和酮兩種特殊結(jié)構(gòu),可對GSH產(chǎn)生特異性響應(yīng),并驗證了該探針在肝癌細胞成像中的有效性及對GSH的響應(yīng)性。本研究通過液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用及核磁共振碳譜表征確認CPB合成成功。紫外-可見光譜分析證實其對GSH的特異性響應(yīng)及消耗能力,并顯示良好的生理穩(wěn)定性。細胞毒性實驗表明,CPB顯著抑制肝癌細胞及順鉑耐藥細胞的增殖,而對正常肝細胞無顯著毒性,提示其良好的生物安全性?;罴毎麩晒獬上窦熬€粒體共定位證實CPB可高選擇性成像肝癌細胞并靶向線粒體。這些結(jié)果表明,CPB作為一種GSH響應(yīng)型探針,兼具生物相容性與成像性能,在肝癌診療及耐藥性研究中具有潛在應(yīng)用價值。但本研究僅在細胞水平進行探討,尚未在動物模型中驗證其GSH響應(yīng)性、成像效果及靶向性。因此,為驗證GSH響應(yīng)型探針的體內(nèi)性能,今后工作將深入體內(nèi)研究,以荷瘤裸鼠為模型,探索該探針在體內(nèi)生物分布和成像情況。此外,拓展研究至其他GSH高表達的腫瘤類型,如肺癌、乳腺癌和胰腺癌等,探討其靶向特異性和適用范圍,為探針的廣泛應(yīng)用提供重要依據(jù)。

        圖2CPB穩(wěn)定性紫外光譜Fig.2UV spectra of CPB stability

        注:A.在不同溫度下CPB的紫外可見光譜圖;B.在不同 pH 環(huán)境下CPB的紫外可見光譜圖;C.在不同離子環(huán)境下CPB的紫外可見光譜圖。

        圖3CPB對不同細胞的細胞毒性

        注:A.HepG2細胞經(jīng)不同濃度CPB處理 48h 后的細胞存活率;B.BEL7402/DDP細胞經(jīng)不同濃度CPB處理48h后的細胞存活率;C.AML-12細胞經(jīng)不同濃度CPB處理 48h 后的細胞存活率;D.不同細胞經(jīng)不同濃度的CPB處理 48h 后的圖像。與Control組相比, *Plt;0.05 **Plt;0.01 □

        圖4不同濃度CPB處理各細胞后ROS的生成( ×20 0Fig.4Generation of ROS of each cell after treatment with diffrent concentrations of CPB (×20) 注:A.HepG2細胞經(jīng)不同濃度CPB處理 6h 后的ROS熒光強度; B.HepG2 細胞ROS熒光定量圖;C.BEL7402/DDP細胞經(jīng)不同濃度CPB處理 6h 后的ROS熒光強度;D.BEL7402/DDP細胞ROS熒光定量圖。與Control組相比, *Plt;0.05 **Plt;0.01 。

        注:A.BEL7402/DDP細胞經(jīng)CPB與 200nmol/mL 的線粒體紅色探針共同孵育 30min 后的熒光成像圖;B.線粒體熒光共定位分析。

        圖5不同濃度CPB處理各細胞后的熒光強度( ×20 0
        圖6線粒體共定位實驗 (×20 )Fig.6Mitochondrial co-localization experiment

        綜上所述,CPB作為一種安全可靠的GSH響應(yīng)型探針,有望作為一種通用型GSH特異性識別探針應(yīng)用于腫瘤微環(huán)境中GSH水平的有效監(jiān)測。

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        (本文編輯蘇維)

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