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        高效液相色譜熒光檢測(cè)法測(cè)定飲用水中微囊藻毒素-LR

        2025-04-09 00:00:00趙文晉劉沛友顧桂飛
        遼寧化工 2025年3期
        關(guān)鍵詞:質(zhì)量

        摘 """""要:首次建立了一種測(cè)定飲用水中微囊藻毒素-LR的高效液相色譜熒光檢測(cè)法。樣品經(jīng)HLB柱進(jìn)行固相萃取凈化后,以V(質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.1%三氟乙酸甲醇溶液)∶V(水)= 60∶40的混合液為流動(dòng)相,在流速1.0 mL·min-1、柱溫40 ℃、進(jìn)樣量10.0 μL條件下,使用CLC-ODS色譜柱和熒光檢測(cè)器進(jìn)行液相色譜分析。結(jié)果表明:微囊藻毒素-LR在激發(fā)波長(zhǎng)251 nm和發(fā)射波長(zhǎng)296 nm下響應(yīng)值最高;在質(zhì)量濃度為1.00~250 μg·L-1時(shí)回歸方程為y=4.066 2x+4.810 8,相關(guān)系數(shù)為0.999 9,檢出限為0.008 μg·L-1,定量限為0.028 μg·L-1;微囊藻毒素-LR在空白水樣和實(shí)際水樣中的平均加標(biāo)回收率分別為81.75%~90.08%和88.33%~95.89%,其相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差分別為3.58%~6.82%和3.10%~5.20%。該方法快速、高效、簡(jiǎn)單,具有良好的精密度和準(zhǔn)確度,適用于飲用水中微囊藻毒素-LR的檢測(cè)分析。

        關(guān) "鍵 "詞:微囊藻毒素-LR;高效液相色譜;熒光色譜法;飲用水

        中圖分類號(hào):TQ450.2+6;X830.2 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A ""文章編號(hào):1004-0935(2025)03-0528-06

        微囊藻毒素(MCs)是由藍(lán)藻(水華魚腥藻、銅綠微囊藻、顫藻等)發(fā)生水化時(shí)產(chǎn)生的一種環(huán)狀七肽毒素類化合物,其同分異構(gòu)體較多,且具有強(qiáng)致癌性和持久污染性。微囊藻毒素MC-LR(L代表亮氨酸,R代表精氨酸)是毒性最強(qiáng)、分布最廣的一種構(gòu)型[1-6]。由于MCs化學(xué)性質(zhì)穩(wěn)定,很難將其從水體中有效去除,水體中微囊藻毒素的威脅已成為國(guó)內(nèi)外普遍關(guān)注的衛(wèi)生和環(huán)境問題,世界衛(wèi)生組織和我國(guó)《生活飲用水衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn)》均規(guī)定了地表水源地、生活飲用水MCs的質(zhì)量濃度不得高于"""""1.0 μg·L-1(以MC-LR為代表)[7-11]。目前檢測(cè)水中微囊藻毒素-LR的方法主要有酶聯(lián)免疫法、高效液相色譜紫外法、氣相色譜法/質(zhì)譜聯(lián)用、超高效液相色譜法/質(zhì)譜聯(lián)用等。酶聯(lián)免疫法易出現(xiàn)假陽(yáng)性,定性定量不準(zhǔn)確,且難以區(qū)分毒素類型[12-14]。檢測(cè)微囊藻毒素-LR常采用的高效液相色譜紫外檢測(cè)法,其選擇性較差,靈敏度較低,對(duì)基質(zhì)復(fù)雜含量較低樣品的檢測(cè)結(jié)果干擾較大,甚至無(wú)法檢測(cè)[15-17]。采用氣相色譜質(zhì)譜聯(lián)用法進(jìn)行檢測(cè)雖然提高了實(shí)驗(yàn)結(jié)果的準(zhǔn)確度,但樣品前處理時(shí)需要對(duì)微囊藻毒素進(jìn)行衍生化,實(shí)驗(yàn)步驟較多,操作繁瑣,耗時(shí)耗力[18-19]。目前超高效液相色譜質(zhì)譜法憑借其較高的分離度和""靈敏度已廣泛在醫(yī)療、食品、藥品和環(huán)境等相關(guān)科研領(lǐng)域內(nèi)使用,但該方法儀器普及率低,運(yùn)行維護(hù)成本高,尚不能大規(guī)模推廣使用[20-23]。目前尚無(wú)利用高效液相色譜法配合熒光檢測(cè)器來(lái)測(cè)定水環(huán)境中微囊藻毒素-LR的報(bào)道,該研究首次通過(guò)采用HPLC熒光色譜法測(cè)定微囊藻毒素-LR,該方法具有前處理操作簡(jiǎn)便快捷、分析靈敏度高等優(yōu)點(diǎn),因此利用此方法對(duì)水中微囊藻毒素-LR含量的檢測(cè)具有重要指導(dǎo)意義。

        1 "材料與方法

        1.1 "儀器與試劑

        美國(guó)Agilent 1260高效液相色譜儀;中國(guó)??艫utoSPE-06全自動(dòng)固相萃取儀;中國(guó)超藝達(dá)PS-60超聲波清洗機(jī);美國(guó)MilliporeMilli-Q超純水機(jī);中國(guó)天津恒奧HPD-25無(wú)油真空泵;天津津騰1 L溶劑過(guò)濾器;德國(guó)Eppendorf"20~200 μL、30~300 μL和100~1 000 μL手動(dòng)移液器;美國(guó)Waters HLB固相萃取柱;日本島津150 mm×6.0 mm,5.0 μm CLC-ODS色譜柱;中國(guó)CNW無(wú)水硫酸鈉柱;美國(guó)安捷倫0.45 μm針頭過(guò)濾器;中國(guó)新亞0.45 μm有機(jī)系、0.45 μm水系濾膜。甲醇,色譜純,美國(guó)TEDIA公司;三氟乙酸(TFA),分析純,中國(guó)成都科龍公司;純凈水,屈臣氏集團(tuán);標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)溶液(微囊藻毒素-LR),20 μg·mL-1,SB05-287-2012,農(nóng)業(yè)農(nóng)村部環(huán)境保護(hù)科研監(jiān)測(cè)所。

        1.2 "分析方法

        1.2.1 "水樣的預(yù)處理

        量取1 000 mL水樣,并通過(guò)0.45 μm的水系膜過(guò)濾。

        1.2.2 "固相萃取

        活化柱子:先用10 mL甲醇(3.0 mL·min-1)預(yù)洗HLB萃取柱,再用10 mL的純水(3.0 mL·min-1)活化HLB萃取柱。過(guò)濾后的1 000 mL水樣""""""(10 mL·min-1)通過(guò)已活化好的HLB萃取柱進(jìn)行樣品富集。用5 mL水(10 mL·min-1)淋洗HLB萃取柱后,再用20%甲醇水溶液10 mL(流速為 """"5.0 mL·min-1)淋洗萃取柱,然后以20 mL·min-1空氣(20 mL)氣推萃取柱,接著干燥萃取柱,氮吹25 min。再用質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.1%三氟乙酸的甲醇溶液作為洗脫液2 mL清洗注射泵(流速20 mL·min-1),接著用10 mL 洗脫液洗脫萃取柱(流速2.0 mL·min-1),然后氮?dú)鈿馔乒滔噍腿≈?0 mL,流速為 """"""20 mL·min-1),并過(guò)無(wú)水硫酸鈉干燥柱脫水收集。40 ℃氮吹濃縮定容至1.0 mL,用0.45 μm膜過(guò)濾,待測(cè)。

        1.2.3 "檢測(cè)條件

        色譜柱為CLC-ODS柱,SHIM PACK150 mm×6.0 mm,5.0 μm;熒光檢測(cè)器激發(fā)波長(zhǎng)(λex)"為251 nm,發(fā)射波長(zhǎng)(λem)為296 nm;流動(dòng)相為0.1%三氟乙酸甲醇溶液和水,其體積比為60∶40,現(xiàn)配現(xiàn)用,使用前過(guò)0.45 μm的有機(jī)濾膜;柱溫為(40±1) ℃;流速為1.0 mL·min-1;進(jìn)樣量為10 μL;采用外標(biāo)法定量。

        2 "結(jié)果與討論

        2.1 "前處理?xiàng)l件的優(yōu)化

        一般通過(guò)優(yōu)化固相萃取前處理分離條件(選擇合適的SPE柱和洗脫液以及改變洗脫時(shí)流速等),能有效降低基質(zhì)干擾,顯著提高目標(biāo)物的回收率。

        2.1.1 "SPE萃取柱的優(yōu)化

        根據(jù)微囊藻毒素MC-LR的分子特性,一般選用C18或者HLB小柱作為SPE萃取柱來(lái)富集凈化水樣中的MC-LR[24]??疾炝薈18和HLB小柱對(duì)相同空白加標(biāo)水樣中MC-LR的富集凈化情況,結(jié)果表明HLB小柱不僅吸附洗脫效果更好,而且回收率更高更穩(wěn)定。另外HLB小柱還具有較好的pH耐受""性[25],故選擇HLB柱作為固相萃取柱。

        2.1.2 "洗脫液的優(yōu)化

        微囊藻毒素MC-LR易溶于乙腈、甲醇等有機(jī)溶劑,但乙腈作為洗脫液時(shí),回收率偏低,基質(zhì)干擾大,且樣品分析成本高、毒性大;而甲醇提取效果好,并隨著洗脫液中甲醇比例的增加其回收率也越高越穩(wěn)定,雜質(zhì)干擾越小[26]。在洗脫液甲醇溶液中加入適量的三氟乙酸,能夠促進(jìn)MC-LR中多肽羧酸基團(tuán)質(zhì)子化過(guò)程,同時(shí)也減少了MC-LR基本基團(tuán)和色譜柱硅膠表面之間的相互作用,有利于洗脫[27]。考察了用10 mL甲醇、0.05%三氟乙酸的甲醇、0.1%三氟乙酸的甲醇和0.5%三氟乙酸的甲醇分別作為洗脫液的效果。結(jié)果表明,質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.1%三氟乙酸的甲醇溶液作為洗脫液時(shí),MC-LR的平均加標(biāo)回收率最高。故選用質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.1%三氟乙酸的甲醇溶液作為洗脫液。

        2.1.3 "洗脫時(shí)流速的優(yōu)化

        對(duì)比了不同流速(1.0、2.0、5.0 mL·min-1)條件下的洗脫效果(10 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.1%三氟乙酸的甲醇溶液作為洗脫液)。結(jié)果表明,洗脫液在流速為2.0 mL·min-1時(shí),MC-LR的平均加標(biāo)回收率最高。若洗脫時(shí)速度過(guò)快,在固液兩相中溶質(zhì)無(wú)法達(dá)到平衡,會(huì)降低分離度,但洗脫時(shí)速度過(guò)慢,在溶液中溶質(zhì)會(huì)擴(kuò)散,進(jìn)而導(dǎo)致分離度降低。因此,選擇"""2.0 mL·min-1作為洗脫時(shí)的流速。

        2.2 "熒光檢測(cè)條件的選擇

        采用高效液相色譜的熒光檢測(cè)器光譜掃描方法對(duì)微囊藻毒素-LR的激發(fā)光譜和發(fā)射光譜分別進(jìn)行了掃描,進(jìn)而確定了MC-LR的激發(fā)和發(fā)射波長(zhǎng),分別為λex=251 nm和λem=296 nm。在λex=238 nm時(shí)不同λem波長(zhǎng)下的響應(yīng)值如圖1所示[28],在λem=296 nm時(shí)不同λex波長(zhǎng)下的響應(yīng)值如圖 2所示,在"""""""λex"=251 nm時(shí)不同λem波長(zhǎng)下的響應(yīng)值如圖 3所示。

        2.3 "方法的線性關(guān)系和檢出限

        準(zhǔn)確量取20 μg·mL-1的微囊藻毒素-LR標(biāo)準(zhǔn)溶液1 mL于10 mL容量瓶中,用色譜純甲醇稀釋至刻度線,混勻備用,此時(shí)貯備液中微囊藻毒素-LR 的質(zhì)量濃度為2.0 μg·mL-1。將微囊藻毒素-LR的貯備液用色譜純甲醇分別稀釋至1、5、10、50、100、250 μg·L-1等6個(gè)不同質(zhì)量濃度梯度,待儀器穩(wěn)定后分別上樣測(cè)定。10 μg·L-1微囊藻毒素-LR標(biāo)準(zhǔn)色譜圖如圖4所示。

        再分別以不同微囊藻毒素-LR質(zhì)量濃度(x)作為橫坐標(biāo),以其信號(hào)響應(yīng)值色譜峰面積(y)作為縱坐標(biāo),繪制MC-LR的標(biāo)準(zhǔn)曲線,結(jié)果如圖5所示。由圖5可以看出,MC-LR質(zhì)量濃度為1~250 μg·L-1時(shí),其質(zhì)量濃度與響應(yīng)值之間的線性關(guān)系很好,線性的回歸方程為y=4.066 2x+4.810 8,其相關(guān)系數(shù)為0.999 9。該方法檢出限的測(cè)定是在樣品中通過(guò)添加工作曲線最低質(zhì)量濃度標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)并經(jīng)過(guò)前處理,然后按照該方法測(cè)定,以儀器響應(yīng)信號(hào)的3倍和10倍信噪比(S/N)分別計(jì)算方法的檢出限和定量限[29]。該方法測(cè)定的微囊藻毒素-LR的檢出限和定量限分別為0.008、0.028 μg·L-1,遠(yuǎn)低于國(guó)標(biāo)GB 3838—2002中規(guī)定的微囊藻毒素-LR控制的標(biāo)準(zhǔn)限值1 μg·L-1和國(guó)標(biāo)中規(guī)定的微囊藻毒素-LR的檢出限0.1 μg·L-1(GB/T 20466—2006)和0.06 μg·L-1(GB/T 5750.8—2023.16)。

        該方法中的微囊藻毒素-LR在遠(yuǎn)低于現(xiàn)行國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)中規(guī)定的質(zhì)量濃度范圍內(nèi),其響應(yīng)值與質(zhì)量濃度之間仍具有很好的線性關(guān)系,且方法檢出限也遠(yuǎn)低于國(guó)標(biāo)方法要求,故該方法能夠滿足飲用水中微囊藻毒素-LR的分析測(cè)定要求。

        2.4 "方法的精密度和準(zhǔn)確度

        2.4.1 "空白水樣的加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)

        分別量取實(shí)驗(yàn)室的空白水樣各1 000 mL(n=6),向空白水樣中添加適量微囊藻毒素-LR的標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),加標(biāo)后空白水樣中微囊藻毒素-LR的質(zhì)量濃度分別為0.002、0.050、0.200 μg·L-1,經(jīng)上述前處理的方法處理定容至1.0 mL后,進(jìn)行上機(jī)分析測(cè)定,結(jié)果如表1所示。由表1可以看出,微囊藻毒素-LR的平均加標(biāo)回收率為81.75%~90.08%,其相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為3.58%~6.82%,遠(yuǎn)高于現(xiàn)行國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)中微囊藻毒素-LR的加標(biāo)回收率(60%),且滿足分析檢測(cè)的相關(guān)技術(shù)要求[30]。

        2.4.2 "實(shí)際水樣的加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)

        按照上述前處理方法和色譜條件對(duì)畢節(jié)市倒天河水庫(kù)和利民水庫(kù)的水樣分別進(jìn)行了分析測(cè)定,所測(cè)樣品均未檢出微囊藻毒素-LR;再分別取利民水庫(kù)的水樣各1 000 mL(n=6),添加適量微囊藻毒""素-LR的標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),加標(biāo)后實(shí)際水樣中微囊藻毒""素-LR的質(zhì)量濃度分別為0.002、0.050、0.200 μg·L-1,經(jīng)上述前處理的方法處理定容至1.0 mL后,進(jìn)行上機(jī)分析測(cè)定,結(jié)果如表2所示。由表2可以看出,微囊藻毒素-LR平均加標(biāo)回收率為88.33%~95.89%,其相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為3.10%~5.20%。該方法的實(shí)際水樣加標(biāo)回收率較高,優(yōu)于國(guó)標(biāo),具有很強(qiáng)的實(shí)踐可操作性,適用于對(duì)飲用水中痕量微囊藻毒素-LR的測(cè)定。

        3 "結(jié)"論

        首次建立了一種測(cè)定飲用水中微囊藻毒素-LR的熒光檢測(cè)高效液相色譜法。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,微囊藻毒素-LR的激發(fā)和發(fā)射波長(zhǎng)分別為λex=251 nm和λem=296 nm。該方法條件下微囊藻毒素-LR在遠(yuǎn)低于現(xiàn)行國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)中規(guī)定的質(zhì)量濃度范圍內(nèi),其響應(yīng)值與質(zhì)量濃度之間仍具有很好的線性關(guān)系,其檢出限為0.008 μg·L-1,定量限為0.028 μg·L-1,遠(yuǎn)低于現(xiàn)行國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)。微囊藻毒素-LR在空白水樣和實(shí)際水樣中的平均加標(biāo)回收率分別為81.75%~90.08%和88.33%~95.89%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差分別為3.58%~6.82%和3.10%~5.20%,加標(biāo)回收率較高,均優(yōu)于國(guó)標(biāo)。該方法對(duì)飲用水中微囊藻毒素-LR的測(cè)定具有準(zhǔn)確度和靈敏度高、樣品前處理快捷簡(jiǎn)便、基質(zhì)干擾小等優(yōu)點(diǎn),能夠滿足飲用水中微囊藻毒素-LR的分析監(jiān)測(cè)要求,可以適用于測(cè)定飲用水中微囊藻毒""""素-LR的質(zhì)量濃度,具有重要的實(shí)際指導(dǎo)意義。

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        Determination of Microcystin-LR in Drinking Water by HPLC Fluorescence Chromatography

        ZHAO Wenjin1, LIU Peiyou1, GU Guifei"2

        (1. Ecological Environment Monitoring Center of Bijie, Bijie Guizhou 551700,"China;

        2. Zhouyi Tea Plantation of Bijie, Bijie Guizhou 551700,"China)

        Abstract:"A high performance liquid chromatography (HPLC) method for the determination of microcystin-LR in drinking water was developed for the first time. Samples were extracted and purified by HLB solid phase extraction column. The SHIM PACK CLC-ODS column was used as chromatography column, and the mobile phase was a mixture of methanol (0.1%TFA)-water (volume ratio 60∶40) at a flow rate of 1.0 mL·min-1. The column temperature kept 40 ℃, injection volume was 10.0 μL and the fluorescence detector was used to detect the sample. The results showed that MC-LR had the highest response when the wavelength stayed at λex=251 nm/λem=296 nm. The regression equation of MC-LR was y=4.066 2x+4.810 8 when the linear range was 1.00–250 μg·L-1, and the linear correlation coefficient of MC-LR was 0.999 9. The limit of quantitation of MC-LR was 0.028 μg·L-1, and the detection limit was 0.008 μg·L-1"in water. The average recoveries"of MC-LR in blank water samples"and actual water samples"were"""81.75%–90.08%"and 88.33%–95.89%, and their relative standard deviations"(RSD) were"3.58%–6.82%"and 3.10%–5.20%. The method is fast, efficient, simple, has good accuracy and precision, and is suitable for the detection and analysis of microcystin-LR in drinking water.

        Key words:"Microcystin -LR; HPLC; Fluorescence chromatography; Drinking water

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