亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激與疾病的關(guān)系研究進展

        2024-12-31 00:00:00張倩雯劉興會
        重慶醫(yī)科大學學報 2024年11期
        關(guān)鍵詞:內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激機制

        【摘 要】內(nèi)質(zhì)網(wǎng)(endoplasmic reticulum,ER)是真核細胞的重要細胞器,負責絕大多數(shù)蛋白質(zhì)的合成、加工及轉(zhuǎn)運。為維持正常生理功能,細胞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)對各種誘發(fā)因素極為敏感,通過激活自身應激狀態(tài)緩解內(nèi)質(zhì)網(wǎng)壓力以恢復穩(wěn)態(tài),持續(xù)或嚴重的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激(endoplasmic reticulum stress,ERS)狀態(tài)則促進細胞走向凋亡。目前發(fā)現(xiàn)ERS介導的細胞凋亡與疾病發(fā)生密切相關(guān),本文將ERS相關(guān)信號通路、ERS與疾病的關(guān)系研究進展作一綜述,為探索其參與疾病發(fā)生的機理、靶向干預ERS在疾病治療中的作用提供新思路。

        【關(guān)鍵詞】內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激;肌醇需求酶1;蛋白激酶R樣內(nèi)質(zhì)網(wǎng)激酶;轉(zhuǎn)錄激活因子6;機制

        【中圖分類號】R393 【文獻標志碼】A 【收稿日期】2023-08-28

        內(nèi)質(zhì)網(wǎng)(endoplasmic reticulum,ER)是真核細胞中蛋白質(zhì)合成、折疊、修飾、轉(zhuǎn)運及脂質(zhì)合成、囊泡運輸、胞內(nèi)鈣離子濃度調(diào)節(jié)的重要場所[1]。為確保蛋白質(zhì)的正確生成,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)自身作為感受器和質(zhì)控系統(tǒng),根據(jù)細胞環(huán)境變化動態(tài)調(diào)節(jié)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔壓力,這種適應性防御機制,即內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激(endoplas?mic reticulum stress,ERS),內(nèi)源性或外源性因素導致細胞內(nèi)錯誤折疊或未折疊蛋白過度累積,均會誘發(fā)ERS [2]。

        1 ERS的誘發(fā)因素

        正常內(nèi)質(zhì)網(wǎng)需要較高的氧化還原環(huán)境,饑餓、缺氧、氧化應激、低糖、高糖、高脂、鈣離子濃度失衡、感染或炎癥刺激等外源性因素引起細胞氧化還原狀態(tài)改變,促進錯誤折疊或未折疊蛋白增加,或機體內(nèi)源性因素產(chǎn)生的異常蛋白質(zhì)累積,都可能導致內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔壓力增加,誘發(fā)ERS[3]。此外,部分藥物可以干擾內(nèi)質(zhì)網(wǎng)處理蛋白質(zhì)的過程而誘發(fā)ERS[4-5],衣霉素(tunicamucin,TM)和2-脫氧葡萄糖(2-deoxy-D-glucose,2-DG)通過抑制蛋白質(zhì)N端糖基化修飾、導致糖蛋白類在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中異常累積;β-巰基乙醇(β-mercaptoethanol,β-ME)和二硫蘇糖醇(dithiothreitol,DTT)通過抑制蛋白質(zhì)二硫鍵的形成導致錯誤折疊蛋白增加;毒胡蘿卜素(thapsigargin,TG)通過抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜的鈣離子通道活性,導致鈣離子濃度失衡。

        2 ERS相關(guān)信號通路

        ERS 通過促進一系列信號通路去除內(nèi)質(zhì)網(wǎng)內(nèi)異常聚集的蛋白,恢復內(nèi)質(zhì)網(wǎng)自身穩(wěn)態(tài),稱為未折疊蛋白反應(unfolded protein response,UPR)。一方面,UPR可以上調(diào)分子伴侶和蛋白水解酶的活性,提高蛋白質(zhì)折疊效率,同時促進內(nèi)質(zhì)網(wǎng)相關(guān)蛋白降解和自噬,從而消除錯誤折疊或未折疊蛋白,當內(nèi)質(zhì)網(wǎng)恢復穩(wěn)態(tài)后,UPR接收到負反饋,ERS停止;另一方面,UPR通過協(xié)調(diào)下游凋亡和抗凋亡相關(guān)信號通路,根據(jù)ERS 的持續(xù)時間和嚴重程度決定細胞最終走向凋亡或存活[6]。內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜上有3種跨膜感受器:蛋白激酶R樣內(nèi)質(zhì)網(wǎng)激酶(protein kinase R-like endoplasmic reticulum kinase,PERK)、肌醇需求酶1(inositol-requiring enzyme 1,IRE1)和轉(zhuǎn)錄激活因子6(activating transcription factor 6,ATF6),內(nèi)質(zhì)網(wǎng)處于穩(wěn)態(tài)時,分子伴侶蛋白與感受器結(jié)合,使其處于失活狀態(tài),ERS時,活化后的感受器則組成UPR分支:IRE1信號通路、PERK信號通路、ATF6信號通路,3條信號通路既有各自獨立的反饋回路、又構(gòu)成交叉調(diào)控網(wǎng)絡(luò)[7]。

        2.1 IRE1信號通路

        1993年,研究者們在酵母細胞中首次發(fā)現(xiàn)IRE1蛋白,它作為內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜上的I型跨膜蛋白,N端位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔,C端位于細胞質(zhì),該端含有1個激酶結(jié)構(gòu)域和1個RNA酶結(jié)構(gòu)域[8]。內(nèi)質(zhì)網(wǎng)穩(wěn)態(tài)條件下,分子伴侶蛋白GRP78(glucose-regulatedprotein 78)與IRE1的N端結(jié)合,使其處于靜默狀態(tài),ERS時,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中錯誤或未折疊蛋白可以競爭性結(jié)合GRP78,導致IRE1磷酸化或二聚化,活化后的IRE1通過自身的激酶活性和RNA酶活性介導下游XBP1、ASK1-JNK信號通路[9]:①活化的IRE1可以剪切X-框結(jié)合蛋白1(X-box binding protein1,XBP1)mRNA的一段堿基,改變其開放性閱讀框,翻譯生成新蛋白剪切型XBP1(spliced XBP1,sXBP1),sXBP1作為轉(zhuǎn)錄因子直接促進UPR相關(guān)基因的表達,抑制新生肽鏈的生成速度、加快蛋白質(zhì)的折疊、修飾、轉(zhuǎn)運、分泌;②IRE1還可以特異性識別和剪切部分mRNA、核糖體RNA(ribosomalRNA,rRNA)及微小RNA(microRNA,miRNA)的特異性序列,通過調(diào)控這些RNA 的表達促進內(nèi)質(zhì)網(wǎng)錯誤蛋白的降解,這個過程被稱為IRE1 調(diào)控依賴的降解(regulated IRE1dependent decay,RIDD);③IRE1激活的未剪切型蛋白XBP1u(unspliced XBP1,XBP1u)則根據(jù)細胞狀態(tài)調(diào)整其活性,在ERS持續(xù)期間,正反饋促進IRE1對XBP1的剪切,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)穩(wěn)態(tài)恢復時,XBP1u與sXBP1形成復合體,負反饋抑制UPR相關(guān)基因的表達,包括同源蛋白(C/EBP homologous protein,CHOP),促進細胞生存。持續(xù)或嚴重的ERS無法恢復時,一方面,XBP1u正反饋促進CHOP 表達上調(diào),CHOP 通過抑制Bcl-2 促進線粒體途徑的細胞凋亡,并促進內(nèi)質(zhì)網(wǎng)氧化酶ERO-1α的表達,激活內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜的鈣離子通道IP3R1,誘導活性氧ROS產(chǎn)生,促進細胞凋亡;另一方面,二聚化的IRE1可以招募TNF受體相關(guān)因子2(TNF receptor associated factor 2,TRAF2)和激活凋亡信號調(diào)節(jié)激酶1(apoptosis signal regμlatingkinase 1,ASK1),形成IRE1-TRAF2-ASK1復合體直接激活JNK通路介導的凋亡[10]。

        2.2 PERK信號通路

        1999年,Harding HP等[11]發(fā)現(xiàn)了定位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜的蛋白PERK,其N端和IRE1結(jié)構(gòu)相同,位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔,C端位于細胞質(zhì),因結(jié)構(gòu)類似蛋白激酶R(protein kinase R,PKR)故而得名。ERS狀態(tài)下,GRP78與PERK-N端解離活化PERK,進一步激活底物真核起始因子2α(eukaryotic initiation factor 2α,eIF2α),磷酸化的eIF2α可以直接抑制蛋白質(zhì)的翻譯起始,還能通過上調(diào)活化轉(zhuǎn)錄因子4(activating transcription factor4,ATF4)的表達,促進UPR相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄,緩解內(nèi)質(zhì)網(wǎng)壓力[12]。ATF4 的活性同樣可以根據(jù)細胞狀態(tài)進行調(diào)整,當ERS持續(xù)時,它正反饋促進eIF2α的表達;當內(nèi)質(zhì)網(wǎng)穩(wěn)態(tài)恢復時,它通過上調(diào)蛋白磷酸酶1(protein phosphatase1,PP1)的亞基DNA 誘導損傷蛋白(growth arrest and DNA damageinduciblegene 34,GADD34),促進PP1-GADD34蛋白復合體對eIF2α的去磷酸化作用;持續(xù)或嚴重的ERS無法緩解時,ATF4則促進CHOP介導的細胞凋亡[13]。

        2.3 ATF6信號通路

        1998年,Haze K 等[14]發(fā)現(xiàn)了能特異性結(jié)合內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激元件的ATF6,它屬于Ⅱ型跨膜糖蛋白,與IRE1、PERK不同,ATF6的N端位于細胞質(zhì),C端位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔。內(nèi)質(zhì)網(wǎng)穩(wěn)態(tài)條件下,GRP78結(jié)合ATF6的C端使其失活,ERS時,GRP78解離、ATF6依靠C端的信號肽定向轉(zhuǎn)移至高爾基體,先后被高爾基體膜上的位點1蛋白酶(site-1 protease,S1p)和位點2蛋白酶(site-2 protease,S2p)切割,釋放出N端結(jié)構(gòu)域,形成有活性的ATF6(ATF6 p50),轉(zhuǎn)錄因子ATF6p50可以直接進入細胞核促進UPR相關(guān)基因的表達,還能與XBP1構(gòu)成復合體,共同參與到IRE1信號通路的調(diào)控之中[15]。

        3 ERS與人類疾病

        細胞環(huán)境改變時,ERS這種適應性調(diào)節(jié)可以維持細胞存活,而ERS狀態(tài)無法逆轉(zhuǎn)的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)功能紊亂則會通過促凋亡機制造成機體損傷[16]。

        3.1 ERS與感染性疾病

        作為蛋白質(zhì)、脂質(zhì)等多種營養(yǎng)物質(zhì)合成豐富的細胞器,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔成為了細菌、病毒等病原體的理想潛伏地。布魯氏菌的相關(guān)研究最多,它刺激機體炎癥反應分泌出效應蛋白VceC,該蛋白通過分子伴侶GRP78的協(xié)助,依靠VceC-N端結(jié)構(gòu)域定位至內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜,導致內(nèi)質(zhì)網(wǎng)結(jié)構(gòu)重排,為菌體形成囊泡創(chuàng)造條件;布魯氏菌自身結(jié)構(gòu)域還存在蛋白TcpB,能協(xié)同上調(diào)UPR相關(guān)基因GRP78、XBP1、CHOP等的轉(zhuǎn)錄[17]。李斯特菌、幽門螺桿菌依靠自身的特異性蛋白結(jié)構(gòu),作為“成孔毒素”干擾內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜鈣通道、促進內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣離子外流、介導細胞凋亡[18]。此外,霍亂弧菌及桿菌產(chǎn)生的霍亂毒素、大腸桿菌產(chǎn)生的志賀毒素,通過結(jié)合分子伴侶干擾蛋白質(zhì)的折疊,引發(fā)ERS介導的細胞凋亡而損傷宿主[19]。病毒與ERS的關(guān)系密切,它們感染宿主細胞后進行復制需消耗大量蛋白質(zhì),從而誘發(fā)ERS,但未折疊蛋白反應會抑制蛋白質(zhì)生成速率,因此,病毒又通過調(diào)控未折疊蛋白反應保障自身的需求[20]。以丙型肝炎病毒(hepatitis C virus,HCV)為例,HCV 通過多途徑抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激eIF2α 磷酸化,①調(diào)控E2 蛋白充當PERK的底物;②上調(diào)P58的轉(zhuǎn)錄,促進P58對PERK的抑制作用;③上調(diào)磷酸酶亞基GADD34蛋白的表達,促進GADD34對eIF2α的去磷酸化;即便eIF2α被高度磷酸化,HCV仍然能夠利用自身結(jié)構(gòu)的進入內(nèi)部核糖體位點,直接啟動蛋白質(zhì)的翻譯[21]。

        3.2 ERS與代謝性疾病

        研究表明,ERS誘發(fā)的肝臟胰島β細胞凋亡是2型糖尿病發(fā)病的重要原因,由于自身存在胰島素抵抗,胰島β細胞的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)高負荷運轉(zhuǎn)產(chǎn)生胰島素以補償處理糖原,誘發(fā)ERS持續(xù)狀態(tài),同時,機體高血糖、高血脂的細胞環(huán)境加重ERS,形成惡性循環(huán),導致胰島β細胞進行性減少[22]。有研究在肝臟疾病相關(guān)的動物模型中發(fā)現(xiàn),蛋白二硫鍵異構(gòu)酶可以調(diào)控IRE1通路的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)相關(guān)蛋白降解過程,以維持胰島素分泌;水楊醛胺類MCK-3946、STF-083010可以通過抑制IRE1的RNA 剪切酶活性,減少sXBP1的生成,緩解肝細胞凋亡[23]。動脈粥樣硬化疾病中,巨噬細胞吞噬的游離膽固醇、血清高半胱氨酸同樣會誘發(fā)細胞ERS,導致巨噬細胞凋亡和內(nèi)皮細胞損傷[24]。利用膽固醇干預血管平滑肌細胞,發(fā)現(xiàn)細胞內(nèi)鈣離子濃度失衡、ERS關(guān)鍵信號通路蛋白表達明顯增加,平滑肌細胞凋亡增多,而抑制IRE1通路可以顯著緩解平滑肌細胞凋亡[25]。

        3.3 ERS與神經(jīng)退行性疾病

        阿爾茨海默?。ˋlzheimer’s disease,AD)和帕金森病(Parkinson’s disease,PD)是最常見的神經(jīng)退行性疾病,它們的典型病變是神經(jīng)元中沉積大量錯誤折疊蛋白,導致神經(jīng)元生理功能廣泛受損[26]。內(nèi)質(zhì)網(wǎng)功能穩(wěn)定狀態(tài)下,對錯誤折疊蛋白高度敏感的神經(jīng)元通過啟動ERS動態(tài)清除,當持續(xù)ERS狀態(tài)仍無法處理過量的錯誤蛋白,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)介導的細胞凋亡機制啟動,導致神經(jīng)元退化、消失[27]。AD患者神經(jīng)元內(nèi)沉積的主要是細胞外β-淀粉樣蛋白(amyloid β,Aβ),由γ-分泌酶對淀粉樣前體蛋白(amyloid precursor protein,APP)的異常剪切產(chǎn)生,Aβ蛋白誘發(fā)ERS本可以促進其降解,但是,Aβ蛋白可以直接干擾內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣離子通道、促進鈣離子外流,而且γ-分泌酶的催化亞基突變直接抑制未折疊蛋白反應的降解,導致內(nèi)質(zhì)網(wǎng)功能紊亂[28]。PD患者神經(jīng)元內(nèi)沉積的是突變的α突觸核蛋白(α-synuclein,α-Syn),過度累積的α-Syn通過干擾內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中蛋白質(zhì)的囊泡轉(zhuǎn)運過程引發(fā)ERS,并持續(xù)激活內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激PERK-eIF2α-ATF4通路介導的凋亡,導致多巴胺神經(jīng)元退化、消失[29]。

        3.4 ERS與腫瘤疾病

        卵巢癌、宮頸癌、乳腺癌、胃癌、結(jié)直腸癌、肝癌、皮膚癌及腎癌等發(fā)生發(fā)展機制與腫瘤細胞ERS相關(guān)。一方面,腫瘤發(fā)生時,受致癌基因調(diào)控的蛋白質(zhì)需要大量合成,直接促進ERS以滿足腫瘤細胞的過度增殖;另一方面,在低氧、低營養(yǎng)、放療、化療等環(huán)境條件下,腫瘤細胞為提高其生存、轉(zhuǎn)移能力,可以通過UPR促進所需蛋白質(zhì)的生成,包括上調(diào)促血管生長因子和下調(diào)抗血管生成因子的表達,同時抑制ERS介導的凋亡機制[30]。血管內(nèi)皮生長因子A(vascular endothelialgrowth factor A,VEGFA)是調(diào)控血管生成的關(guān)鍵因子,腫瘤細胞通過ERS信號通路的轉(zhuǎn)錄因子sXBP1、ATF6、ATF4直接結(jié)合VEGFA的啟動區(qū),上調(diào)VEGFA的表達,促進血管新生,拮抗腫瘤細胞的ERS可以明顯抑制腫瘤血管生成[31]。有研究者還發(fā)現(xiàn),與正常細胞不同,持續(xù)或嚴重的ERS主要抑制其RIDD降解功能,且不介導腫瘤細胞走向凋亡,腫瘤細胞還可以利用磷酸化eIF2α,抑制部分蛋白質(zhì)的多肽鏈生成,提高自身的免疫逃逸能力[32-33]。

        ERS還通過多種途徑參與腫瘤細胞轉(zhuǎn)移及化療耐藥。有研究者發(fā)現(xiàn),血管緊張素Ⅱ能直接調(diào)節(jié)卵巢癌細胞中的GRP78、CHOP和p-PERK、促進卵巢癌細胞在小鼠腹腔內(nèi)定植和轉(zhuǎn)移,利用血管緊張素拮抗劑則減少其腹腔內(nèi)種植[34]。腫瘤抑制候選基因3表達下降能促進卵巢癌細胞增殖及遷移,在TR170和SKOV-3細胞中下調(diào)該基因表達,能促進細胞內(nèi)ERS相關(guān)信號通路的凋亡,從而減少E-鈣黏蛋白表達、抑制細胞黏附及遷移能力[35]?;熕幬锬苤苯訉е挛凑郫B和錯誤折疊的蛋白質(zhì)在卵巢癌細胞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔內(nèi)積聚,誘發(fā)ERS,去泛素酶USP11能通過抑制GRP78的穩(wěn)定性進而增強卵巢癌細胞的化學抵抗力,誘導其對順鉑類藥物產(chǎn)生耐藥[36-37]。有研究者發(fā)現(xiàn)氧固醇結(jié)合蛋白相關(guān)蛋白5(oxys?terol binding protein related protein 5,ORP5)在體內(nèi)、體外均能促進宮頸癌細胞的侵襲及轉(zhuǎn)移,其機制是促進膽固醇調(diào)節(jié)元件結(jié)合蛋白1(sterol-regulatory element binding protein 1,SREBP1)的泛素化、抑制細胞內(nèi)ERS,進而促進宮頸癌進展[38]。He CX等[39]利用不同濃度的槲皮素處理宮頸HeLa細胞,對比檢測GRP78、CHOP、IRE1及Bcl-2等變化、發(fā)現(xiàn)槲皮素通過誘導ERS通路促進HeLa細胞凋亡。ERS在腫瘤治療中的靶點干預作用逐漸顯現(xiàn),針對IRE1-XBP1、PERK-eIF2α、ATF6p50 設(shè)計出多種特異性抑制劑,如特異性抑制IRE1的RNA 酶活性的STF083010,PERK 抑制劑GSK2656157、ATF6p50的特異性抑制劑Ceapein,已證實能有效抑制實體瘤的生長[38]。此外,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中分子伴侶GRP78是觸發(fā)ERS的關(guān)鍵蛋白,靶向干預GRP78達到緩解ERS正是腫瘤治療研究的新方向[39]。

        3.5 ERS與缺血再灌注疾病

        細胞ERS對于缺血再灌注損傷的器官代償性功能維持十分重要,隨著損傷的持續(xù),ERS則從保護性防御轉(zhuǎn)為促凋亡效應,導致器官功能逐漸衰竭[40]。在高血壓、冠心病、心肌梗死等缺血性心臟病中,由于心肌細胞缺血再灌注,產(chǎn)生大量氧自由基、鈣離子超載等,誘發(fā)ERS,上調(diào)UPR相關(guān)基因的表達,以維持心肌細胞的功能,促進細胞重塑、心肌肥大,同時,持續(xù)ERS介導的心肌細胞凋亡促進心力衰竭[41]。在腎小球腎炎及腎缺血再灌注損傷中,低氧、低營養(yǎng)、鈣離子失衡等因素直接誘發(fā)細胞ERS,以維持腎小球代償功能,同時,持續(xù)ERS的凋亡機制導致腎小球血管內(nèi)皮細胞損傷、間質(zhì)化,促進慢性腎功能不全[42]。4-苯基丁酸(4-phenylbutyric acid,4-PBA)是一種化學分子伴侶,可以促進錯誤蛋白質(zhì)的正確折疊,有研究者發(fā)現(xiàn),在慢性腎病(chronic kidney disease,CKD)的動物模型中,大量蛋白尿?qū)е骡}離子釋放,持續(xù)ERS信號通路的轉(zhuǎn)錄因子ATF4促進脂質(zhì)運載蛋白-2(lipocalin2,LCN2)的過度表達,損傷腎小管內(nèi)皮細胞,而4-PBA可以通過抑制該途徑緩解腎小管細胞凋亡和腎損傷,推測4-PBA可能有延緩CKD進展的療效[43]。

        3.6 ERS與妊娠期疾病

        胎盤功能正常是妊娠維持的關(guān)鍵,而胎盤滋養(yǎng)細胞ERS持續(xù)狀態(tài)介導的凋亡增加,可能參與妊娠期疾病發(fā)生。XuTT等[46]發(fā)現(xiàn)早發(fā)型妊娠期肝內(nèi)膽汁淤積癥(intrahepatic cho?lestasis of pregnancy,ICP)患者的血液中Wolframin蛋白質(zhì)表達水平升高,在體內(nèi)實驗中證實胎盤內(nèi)的WFS1 基因在轉(zhuǎn)錄水平即異常高表達,其編碼的Wolframin蛋白持續(xù)激活ERS、滋養(yǎng)細胞凋亡增加,導致胎盤缺氧。Lorenzon AR等[47]用葡萄糖處理BeWo細胞,發(fā)現(xiàn)與非胰島素干預的BeWo細胞相比,胰島素處理后的細胞中基質(zhì)細胞衍生因子2(stromalcell-derived factor 2,SDF2)、ERS關(guān)鍵信號通路表達明顯緩解,而胰島素干預良好的GDM患者胎盤內(nèi)同樣出現(xiàn)類似結(jié)果,表明滋養(yǎng)細胞的ERS與GDM密切相關(guān)。Du L等[48]發(fā)現(xiàn)ERS 信號通路蛋白標記物在子癇前期(preeclampsia,PE)胎盤中表達升高,與缺氧相關(guān)的一氧化氮合酶(nitric oxidesynthase,NOS)上調(diào)趨勢一致,同時,PE胎盤滋養(yǎng)細胞的凋亡增加,推測嚴重的ERS促進胎盤滋養(yǎng)細胞凋亡可能參與PE的發(fā)病。關(guān)于ERS與妊娠期疾病的關(guān)系研究尚少,值得進一步探索。

        4 總結(jié)與展望

        ERS的本質(zhì)是細胞受刺激時內(nèi)質(zhì)網(wǎng)作出的適應性調(diào)節(jié)機制,目的在于恢復內(nèi)質(zhì)網(wǎng)穩(wěn)態(tài),保證各種蛋白質(zhì)、脂類分子的正常生成,以維持細胞的生存,當持續(xù)或嚴重的ERS仍無法消除內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中的錯誤/未折疊蛋白時,細胞凋亡增加導致機體損傷。越來越多的研究證實ERS 廣泛參與著人類疾病,深入理解細胞ERS在病理生理中的調(diào)控機制,一方面,通過消除ERS 的誘發(fā)因素,另一方面,靶向干預ERS 信號通路的關(guān)鍵節(jié)點,有助于探索ERS相關(guān)疾病的臨床診療新方向[49]。

        參考文獻

        [1] Lee JE,Cathey PI,Wu HX,et al. Endoplasmic reticulum contact

        sites regulate the dynamics of membraneless organelles[J]. Science,

        2020,367(6477):507-508.

        [2] Wang M,Kaufman RJ. Protein misfolding in the endoplasmic re?

        ticulum as a conduit to human disease[J]. Nature,2016,529(7586):

        326-335.

        [3] Liu Q,K?rner H,Wu HX,et al. Endoplasmic reticulum stress in

        autoimmune diseases[J]. Immunobiology,2020,225(2):151881.

        [4] Keestra-Gounder AM,Byndloss MX,Seyffert N,et al. NOD1 and

        NOD2 signalling links ER stress with inflammation[J]. Nature,2016,

        532(7599):394-397.

        [5] Wu LL,Huang XM,Kuang YQ,et al. Thapsigargin induces apopto?

        sis in adrenocortical carcinoma by activating endoplasmic reticulum

        stress and the JNK signaling pathway:an in vitro and in vivo study[J].

        Drug Des Devel Ther,2019,13:2787-2798.

        [6] Berner N,Reutter KR,Wolf DH. Protein quality control of the en?

        doplasmic reticulum and ubiquitin-proteasome-triggered degradation of

        aberrant proteins:yeast pioneers the path[J]. Annu Rev Biochem,2018,

        87:751-782.

        [7] Hwang J,Qi L. Quality Control in the Endoplasmic Reticulum:

        Crosstalk between ERAD and UPR pathways[J].Trends Biochem Sci,

        2018,43(8):593-605.

        [8] Cox JS,Walter P. A novel mechanism for regulating activity of a

        transcription factor that controls the unfolded protein response[J]. Cell,

        1996,87(3):391-404.

        [9] Urano F,Wang X,Bertolotti A,et al. Coupling of stress in the ER

        to activation of JNK protein kinases by transmembrane protein kinase

        IRE1[J]. Science,2000,287(5453):664-666.

        [10] Tam AB,Koong AC,Niwa M. Ire1 has distinct catalytic mecha?

        nisms for XBP1/HAC1 splicing and RIDD[J]. Cell Rep,2014,9(3):

        850-858.

        [11] Harding HP,Zhang Y,Ron D. Protein translation and folding are

        coupled by an endoplasmic-reticulum-resident kinase[J]. Nature,1999,

        397(6716):271-274.

        [12] Harding HP,Zhang YH,Scheuner D,et al. Ppp1r15 gene knock?

        out reveals an essential role for translation initiation factor 2 alpha

        (eIF2alpha) dephosphorylation in mammalian development[J]. Proc

        Natl Acad Sci USA,2009,106(6):1832-1837.

        [13] Jiang YN,Chen XY,F(xiàn)an MY,et al. TRAIL facilitates cytokine ex?

        pression and macrophage migration during hypoxia/reoxygenation via

        ER stress-dependent NF-κB pathway[J]. Mol Immunol,2017,82:123-

        136.

        [14] Haze K,Yoshida H,Yanagi H,et al. Mammalian transcription

        factor ATF6 is synthesized as a transmembrane protein and activated by

        proteolysis in response to endoplasmic reticulum stress[J]. Mol Biol

        Cell,1999,10(11):3787-3799.

        [15] Han J,Kaufman RJ. Physiological/pathological ramifications of

        transcription factors in the unfolded protein response[J]. Genes Dev,

        2017,31(14):1417-1438.

        [16] Iurlaro R,Mu?oz-Pinedo C. Cell death induced by endoplasmic

        reticulum stress[J]. FEBS J,2016,283(14):2640-2652.

        [17] Hu H,Tian MX,Ding C,et al. The C/EBP homologous protein

        (CHOP) transcription factor functions in endoplasmic reticulum stressinduced

        apoptosis and microbial infection[J]. Front Immunol,2018,9:

        3083-3096.

        [18] Choi JA,Song CH. Insights into the role of endoplasmic reticulum

        stress in infectious diseases[J]. Front Immunol,2020,10:3147-3154.

        [19] Banerjee T,Grabon A,Taylor M,et al. cAMP-independent activa?

        tion of the unfolded protein response by cholera toxin[J]. Infect Immun,

        2021,89(2):420-447.

        [20] Alshareef MH,Hartland EL,McCaffrey K. Effectors targeting the

        unfolded protein response during intracellular bacterial infection[J].

        Microorganisms,2021,9(4):705-717.

        [21] Smith JA. Regulation of cytokine production by the unfolded pro?

        tein response:implications for infection and autoimmunity[J]. Front Im?

        munol,2018,9:422-443.

        [22] Eletto D,Eletto D,Boyle S,et al. PDIA6 regulates insulin secre?

        tion by selectively inhibiting the RIDD activity of IRE1[J]. FASEB J,

        2016,30(2):653-665.

        [23] Sanches M,Duffy NM,Talukdar M,et al. Structure and mecha?

        nism of action of the hydroxy-aryl-aldehyde class of IRE1 endoribo?

        nuclease inhibitors[J].Nat Commun,2014,5:4202-4236.

        [24] Dickhout JG,Colgan SM,Lhoták S,et al. Increased endoplasmic

        reticulum stress in atherosclerotic plaques associated with acute coro?

        nary syndrome:a balancing act between plaque stability and rupture[J].

        Circulation,2007,116(11):1214-1216.

        [25] Hong J,Park E,Lee J,et al. Exercise training mitigates ER stress

        and UCP2 deficiency-associated coronary vascular dysfunction in ath?

        erosclerosis[J]. Sci Rep,2021,11(1):15449-15459.

        [26] Kurtishi A,Rosen B,Patil KS,et al. Cellular proteostasis in neu?

        rodegeneration[J]. Mol Neurobiol,2019,56(5):3676-3689.

        [27] Krishnadas N,Villemagne VL,Doré V,et al. Advances in brain

        amyloid imaging[J]. Semin Nucl Med,2021,51(3):241-252.

        [28] Benilova I,Karran E,De Strooper B. The toxic Aβ oligomer and

        Alzheimer’s disease:an emperor in need of clothes[J]. Nat Neurosci,

        2012,15(3):349-357.

        [29] Cooper AA,Gitler AD,Cashikar A,et al. Alpha-synuclein blocks

        ER-Golgi traffic and Rab1 rescues neuron loss in Parkinson’s models

        [J].Science,2006,313(5785):324-328.

        [30] Pommier A,Anaparthy N,Memos N,et al. Unresolved endoplas?

        mic reticulum stress engenders immune-resistant,latent pancreatic can?

        cer metastases[J]. Science,2018,360(6394):4908-4934.

        [31] Coleman OI,Lobner EM,Bierwirth S,et al. Activated ATF6 in?

        duces intestinal dysbiosis and innate immune response to promote

        colorectal tumorigenesis[J]. Gastroenterology,2018,155(5):1539-1552.

        [32] Mu?oz-Guardiola P,Casas J,Megías-Roda E,et al. The anticancer

        drug ABTL0812 induces ER stress-mediated cytotoxic au?

        tophagy by increasing dihydroceramide levels in cancer cells[J]. Au?

        tophagy,2021,17(6):1349-1366.

        [33] Markouli M,Strepkos D,Papavassiliou AG,et al. Targeting of en?

        doplasmic reticulum(ER) stress in gliomas[J]. Pharmacol Res,2020,

        157:104823.

        [34] Zhang QY,Yu S,Lam MMT,et al. Angiotensin Ⅱ promotes ovar?

        ian cancer spheroid formation and metastasis by upregulation of lipid de?

        saturation and suppression of endoplasmic reticulum stress[J]. J Exp

        Clin Cancer Res,2019,38(1):116-134.

        [35] El-Kott AF,Shati AA,Al-Kahtani MA,et al. Kaempferol in?

        duces cell death in A2780 ovarian cancer cells and increases their sensi?

        tivity to cisplatin by activation of cytotoxic endoplasmic reticulummediated

        autophagy and inhibition of protein kinase B[J]. Folia Biol,

        2020,66(1):36-46.

        [36] Hou XJ,Jiang JH,Tian ZQ,et al. Autophagy and tumour chemo?

        therapy[J]. Adv Exp Med Biol,2020,1207:351-374.

        [37] Zhu XL,Zhang YP,Luo QY,et al. The deubiquitinase USP11 pro?

        motes ovarian cancer chemoresistance by stabilizing BIP[J]. Signal

        Transduct Target Ther,2021,6(1):264-267.

        [38] Wu Y,Min LY,Zhang P,et al. ORP5 promotes migration and in?

        vasion of cervical cancer cells by inhibiting endoplasmic reticulum

        stress[J]. Cell Stress Chaperones,2023,28(4):395-407.

        [39] He CX,Lu XH,Li J,et al. The effect of quercetin on cervical can?

        cer cells as determined by inducing tumor endoplasmic reticulum stress

        and apoptosis and its mechanism of action[J]. Am J Transl Res,2021,13

        (5):5240-5247.

        [40] Gopal U,Mowery Y,Young K,et al. Targeting cell surface

        GRP78 enhances pancreatic cancer radiosensitivity through YAP/TAZ

        protein signaling[J]. J Biol Chem,2019,294(38):13939-13952.

        [41] Bailly C,Waring MJ. Pharmacological effectors of GRP78 chaper?

        one in cancers[J]. Biochem Pharmacol,2019,163:269-278.

        [42] Zhao HH,Han QX,Ding XN,et al. Critical hubs of renal

        ischemia-reperfusion injury:endoplasmic reticulum-mitochondria teth?

        ering complexes[J]. Chin Med J,2020,133(21):2599-2609.

        [43] Zhou GX,Peng YC,Guo MY,et al. Esomeprazole inhibits endo?

        plasmic reticulum stress and ameliorates myocardial ischemiareperfusion

        injury[J]. Biochem Biophys Res Commun,2022,627:84-90.

        [44] Yang YF,Wang H,Song N,et al. Dexmedetomidine attenuates

        ischemia/reperfusion-induced myocardial inflammation and apoptosis

        through inhibiting endoplasmic reticulum stress signaling[J]. J Inflamm

        Res,2021,14:1217-1233.

        [45] El Karoui K,Viau A,Dellis O,et al. Endoplasmic reticulum

        stress drives proteinuria-induced kidney lesions via Lipocalin 2[J].

        Nat Commun,2016,7:10330-10343.

        [46] Xu TT,Zhou ZY,Liu N,et al. Disrupted compensatory response

        mediated by Wolfram syndrome 1 protein and corticotrophin-releasing

        hormone family peptides in early-onset intrahepatic cholestasis preg?

        nancy[J]. Placenta,2019,83:63-71.

        [47] Lorenzon AR,Moreli JB,de Macedo Melo R,et al. Stromal cellderived

        factor(SDF) 2 and the endoplasmic reticulum stress response of

        trophoblast cells in gestational diabetes mellitus and in vitro hypergly?

        caemic condition[J]. Curr Vasc Pharmacol,2021,19(2):201-209.

        [48] Du L,He F,Kuang L,et al. eNOS/iNOS and endoplasmic reticu?

        lum stress-induced apoptosis in the placentas of patients with pre?

        eclampsia[J]. J Hum Hypertens,2017,31(1):49-55.

        [49] Marciniak SJ,Chambers JE,Ron D. Pharmacological targeting of

        endoplasmic reticulum stress in disease[J]. Nat Rev Drug Discov,2022,

        21(2):115-140.

        (責任編輯:周一青)

        猜你喜歡
        內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激機制
        構(gòu)建“不敢腐、不能腐、不想腐”機制的思考
        自制力是一種很好的篩選機制
        文苑(2018年21期)2018-11-09 01:23:06
        白蘆藜醇對糖尿病小鼠腎臟內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激的影響
        蚯蚓活性組分對四氯化碳誘導小鼠內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激所致急性肝損傷的保護作用
        原花青素通過內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應對H9C2心肌細胞缺氧/復氧損傷的作用
        內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激在腎臟缺血再灌注和環(huán)孢素A損傷中的作用及研究進展
        定向培養(yǎng) 還需完善安置機制
        破除舊機制要分步推進
        丹蛭降糖膠囊對肥胖大鼠骨骼肌IRE1α—JNK信號通路的干預效應
        注重機制的相互配合
        亚洲素人av在线观看| 日韩av精品国产av精品| 日韩精品一区二区三区在线观看| 国产成人精品日本亚洲直播| 亚洲一区二区三区在线高清中文 | 91久久精品色伊人6882| 无码人妻久久一区二区三区免费| 国产精品美女| 日韩精品成人一区二区三区久久久 | 青青草成人原视频在线播放视频| 一边摸一边做爽的视频17国产| 精品亚洲一区二区三区在线观看| 草莓视频一区二区精品| 亚洲一区二区三区久久久| 亚洲人不卡另类日韩精品| 成年免费视频黄网站zxgk| 亚洲国产欧美日韩一区二区| av在线网站一区二区| 亚洲精品无码av人在线观看国产| 草草久久久无码国产专区| 久久精品国产亚洲5555| 国产在线视频一区二区三| 欧美肥妇毛多水多bbxx水蜜桃| 精品国内自产拍在线观看| 亚洲国产成人Av毛片大全| 国产性色av一区二区| 精品久久人妻av中文字幕| 免费一区二区三区久久| 国内色精品视频在线网址| 亚洲色图在线免费观看视频| 国产精品9999久久久久| 亚洲国产精品线观看不卡| 亚洲成人av一区二区| 欧美精品videosse精子| 狠狠爱无码一区二区三区| 日本福利视频免费久久久| 黄片视频免费在线观看国产| 蜜桃视频一区二区三区在线观看| 中文字幕日产人妻久久| 中国亚洲av第一精品| 亚洲精品久久|