摘 要:【目的】研究低溫脅迫對(duì)不同藜麥品種幼苗生理生化特性的影響,為探索藜麥耐寒品種選育提供理論依據(jù)。
【方法】選用近幾年在新疆伊犁河谷選育出的藜麥品種,經(jīng)藜麥種子低溫發(fā)芽試驗(yàn),選出抗寒性較強(qiáng)的4個(gè)藜麥品種(系)編號(hào)分別為YN1、YN2、YN3、YN4為試驗(yàn)材料,采取營(yíng)養(yǎng)土育苗的方法,在人工模擬低溫脅迫條件下(-4℃)進(jìn)行低溫處理,設(shè)置正常自然溫度處理為對(duì)照。
【結(jié)果】(1)藜麥對(duì)連續(xù)的-4℃低溫處理具有較強(qiáng)的耐受性。經(jīng)過低溫處理的藜麥抗寒差異顯著,其中YN4的抗低溫能力最強(qiáng),YN1的耐低溫能力較強(qiáng),YN3和YN2的耐低溫能力較弱。(2)低溫脅迫可導(dǎo)致葉片凈光合速率、氣孔導(dǎo)度的顯著降低,光合速率由于氣孔的關(guān)閉導(dǎo)致生長(zhǎng)速率的降低。低溫脅迫未對(duì)藜麥的光合代謝產(chǎn)生較大的負(fù)向影響。(3)抗氧化酶是調(diào)節(jié)藜麥耐寒性的重要活性物質(zhì),品種間活性差異顯著。低溫處理可顯著提升超氧化物歧化酶SOD、過氧化物酶POD和丙二醛MDA活性,降低過氧化氫酶CAT的活性。耐寒性較強(qiáng)的品種通過提升關(guān)鍵性抗氧化酶活性抵抗低溫脅迫。(4)穩(wěn)定同位素和莖稈氮素濃度可衡量藜麥耐低溫能力。
【結(jié)論】低溫處理使藜麥顯著降低了水分和氮素代謝過程。耐低溫品種通過加速水分吸收,加速氮素代謝進(jìn)程來(lái)緩解低溫導(dǎo)致的傷害。藜麥較耐低溫脅迫,但是不同品種的耐受程度有所差異。
關(guān)鍵詞:藜麥;苗期;低溫脅迫;生理生化
中圖分類號(hào):S512.9"" 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A"" 文章編號(hào):1001-4330(2024)07-1597-08
0 引 言
【研究意義】作物苗期若遇倒春寒災(zāi)害天氣,表現(xiàn)為低溫及持續(xù)時(shí)間跨度大,致使植株生長(zhǎng)發(fā)育和產(chǎn)量形成上受到不同程度影響[1],當(dāng)前我國(guó)藜麥主要在高海拔的冷涼山區(qū)(青藏高原、云貴高原等)栽培,地處內(nèi)陸、降水較少的干旱沙地(河西走廊、伊犁河谷等)和高緯度鹽堿含量較高的鹽堿地(東北松嫩平原、華北沿海地區(qū)等)區(qū)域種植[2]。雖然藜麥適宜生長(zhǎng)在冷涼地區(qū),但是適宜的溫度是作物生長(zhǎng)的基本條件之一,在植物生長(zhǎng)至不同階段均需要與之相適應(yīng)的溫度才能繼續(xù)維持生命活動(dòng)。低溫脅迫對(duì)植物的危害根據(jù)溫度的不同可以分為2種:冰點(diǎn)以上的低溫對(duì)植物造成的危害稱為冷害,冰點(diǎn)以下的低溫對(duì)植物造成的危害稱為凍害[3]。在低溫脅迫下,植物的莖、葉暴露在空氣中,相比于地下器官,地上器官受到的影響最大,也可反映植物對(duì)低溫逆境的適應(yīng)特點(diǎn)。探索植物抗寒性機(jī)理不僅對(duì)基礎(chǔ)理論豐富化具有重要意義,在解決實(shí)際生產(chǎn)的問題也具有廣泛的應(yīng)用價(jià)值[4]?!厩叭搜芯窟M(jìn)展】Jacobsen等[5]利用秘魯高原藜麥品種和安第斯谷地品種作對(duì)比,發(fā)現(xiàn)秘魯高原品種能在-8℃存活4 h,抗凍性明顯優(yōu)于安第斯谷地品種。Geerts等[6]對(duì)于藜麥的抗性機(jī)理的研究顯示,藜麥對(duì)低溫的應(yīng)激反應(yīng)主要是積累碳水化合物以及酶的改變。沈菊等[7]通過人工模擬環(huán)境試驗(yàn)和自然環(huán)境試驗(yàn)相結(jié)合,分析青藜1號(hào)在-10℃,且低于0℃以下14 h藜麥進(jìn)入休眠期,在-14℃且低于0℃以下15 h藜麥幼苗枯萎。沈忱[8]利用不同苜蓿品種對(duì)其種子進(jìn)行低溫脅迫,通過比較其種子萌發(fā)期耐寒性篩選出耐寒性強(qiáng)的苜蓿品種。溫日宇等[3]以紅藜、白藜、黑藜3種不同藜麥為材料,對(duì)藜麥幼苗進(jìn)行人工模擬低溫(4℃)脅迫,脯氨酸含量越高的品種抗逆性越強(qiáng),POD、SOD活性越強(qiáng),藜麥抗寒性越強(qiáng)。【本研究切入點(diǎn)】雖然藜麥?zhǔn)且环N相對(duì)較耐寒的作物,但幼苗受到低溫脅迫后,細(xì)胞膜受損,透性增大,外滲量增加,相對(duì)電導(dǎo)度增大。而抗寒性強(qiáng)的品種電導(dǎo)率增長(zhǎng)幅度較小。低溫刺激使可溶性糖的含量增加,可提高細(xì)胞液的濃度,對(duì)原生質(zhì)體起一定的保護(hù)作用。在植株受到低溫脅迫時(shí),脯氨酸含量增加,有助于細(xì)胞或組織保水,是酶和細(xì)胞結(jié)構(gòu)的保護(hù)劑[9]。不同藜麥品種在低溫條件脅迫下生理生化反應(yīng)不同,不同品種各個(gè)指標(biāo)表現(xiàn)不盡一致,需明確不同藜麥品種的抗寒性強(qiáng)弱?!緮M解決的關(guān)鍵問題】選取在藜麥低溫發(fā)芽試驗(yàn)中已篩選出的4個(gè)藜麥品種(系),在溫室條件下育苗后,取單株進(jìn)行-4℃的低溫脅迫,取樣測(cè)定多項(xiàng)生理生化指標(biāo)。從膜系統(tǒng)穩(wěn)定性、活性氧酶促防御體系、光合生理、葉綠素特性、滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)等,闡述在低溫脅迫溫度下不同品種藜麥的生理指標(biāo)變化特征,分析藜麥幼苗對(duì)低溫脅迫的生理生化響應(yīng)機(jī)制,篩選出苗期抗寒性好的藜麥品種。
1 材料與方法
1.1 材 料
材料采用新疆伊犁哈薩克自治州農(nóng)業(yè)科學(xué)研究所選育的藜麥品種(系),經(jīng)低溫發(fā)芽試驗(yàn),選出抗寒性較強(qiáng)的4個(gè)品種(系)編號(hào)分別為YN1、YN2、YN3和YN4。
1.2 方 法
1.2.1 試驗(yàn)設(shè)計(jì)
采用育苗缽育苗,基質(zhì)為草炭和沙土混合物,進(jìn)行催芽,露白生根之后選取單株栽入塑料花盆中,下墊2/3高度土壤,上覆2 cm土層;育苗缽置于托盤放至室外進(jìn)行自然光照,給予合理水肥。
當(dāng)試驗(yàn)植株4葉期時(shí),每個(gè)材料選取3株進(jìn)行低溫處理,將藜麥苗放入-4℃恒溫冷藏室內(nèi)12 h(每個(gè)品種放3株),時(shí)間設(shè)定為18:00至凌晨06:00,日間拿出置于日光下,相同處理連續(xù)開展3 d。同時(shí),每個(gè)品種選取相同長(zhǎng)勢(shì)的藜麥苗3株,夜間置于室溫條件下,作為對(duì)照(CK)處理。
1.2.2 指標(biāo)測(cè)定
1.2.2.1 光合作用參數(shù)
使用Licor6400測(cè)定處理前后葉片的光合指標(biāo):凈光合速率(Pn)、氣孔導(dǎo)度(GS)、蒸騰速率(Tr)、胞間CO2濃度(Ci)、水分利用率(WUEI)。藜麥植株達(dá)到測(cè)試標(biāo)準(zhǔn)后,取長(zhǎng)勢(shì)一致的植株作為材料。處理前取部分植株測(cè)定第1片真葉的相關(guān)光合、熒光指標(biāo),作為對(duì)照數(shù)據(jù)。第3 d處理完后09:00測(cè)量光合指標(biāo)。
1.2.2.2 葉綠素含量
低溫處理前后使用SPAD520測(cè)量葉片葉綠素含量。
1.2.2.3 抗氧化酶活性
稱取300 mg鮮樣,加入預(yù)冷的50 mM pH7.5 的Tris-HCl緩沖液,冰浴研磨,以10 000 r/min冷凍離心15 min,取上清液待測(cè)。
1.2.2.4 丙二醛(MDA)含量
采用TBA-MDA顯色法[10]。
MDA濃度(nmol/mL)=6.45×(A532-A600)-0.56×A450。
MDA含量(nmol/g)=[MDA濃度×V總/0.01]/W。
V總:反應(yīng)體系總體積,0.5 mL;W:樣本質(zhì)量,g;A450、A532、A600分別為MDA顯色反應(yīng)液在450、532和600 nm處吸光值。
1.2.2.5 超氧化物歧化酶(SOD)
采用NBT光化還原法[11]。
SOD活性=(ODc-ODs)×VODc×0.5×Vs×t×m.
ODc:照光對(duì)照管反應(yīng)混合液的吸光度;ODs:樣品管反應(yīng)混合液的吸光度;V:樣品提取液總體積,5 mL;Vs:測(cè)定時(shí)所取樣品提取液體積,0.5" mL;t:光照反應(yīng)時(shí)間(15 min);m:樣品質(zhì)量,0.2 g。
1.2.2.6 過氧化物酶(POD)
采用愈創(chuàng)木酚法[12]。按照下列公式計(jì)算POD含量:以每分鐘內(nèi)OD470值變化1.0表示1個(gè)酶活性單位。
POD活性[U/(g·FW·min)]=ΔA470/min×VVs×m" .
式中,ΔA470/min:每分鐘酶液吸光度變化值;V:提取酶液總體積,10 mL;Vs:測(cè)定時(shí)取用酶液體積,0.5 mL;m:樣品質(zhì)量,0.1 g。
1.2.2.7 過氧化氫酶(CAT)
采用愈創(chuàng)木酚法[13]。CAT的活性單位以每分鐘OD值減少0.1表示一個(gè)酶活力單位。
ΔOD240=OD0-(OD1+OD2+OD3+OD4)4.
CAT活性(U/(g·FW·min))=ΔOD240×V0.1×Vs×m×t .
式中,OD0:加入煮死酶液的對(duì)照管OD值;V:酶提取液總體積,5 mL;OD1、OD2、OD3、OD4:每分鐘記錄樣品管OD值;Vs:測(cè)定時(shí)取用酶液體積,0.1mL;m:樣品質(zhì)量,0.1 g;t:測(cè)定時(shí)間,4 min。
1.2.2.8 碳氮同位素
將300 mg 藜麥葉片,置于烘箱內(nèi) 65℃ 下烘干 72 h 至恒重。所有樣品用球磨機(jī)粉碎,粉碎后的樣品采用同位素質(zhì)譜儀(MAT253,F(xiàn)innigan MAT,Bremen,Germany) 測(cè)定藜麥葉片δ13C、δ15。
δA = (R樣品 /R標(biāo)準(zhǔn) - 1) × 1 000‰.
式中,δA 為植物葉片δ13C、δ15N ;R樣品是植物葉片13C / 12C、15N / 14N 值;R標(biāo)準(zhǔn)是標(biāo)樣13C / 12C、15N / 14N 值,碳、氮同位素的標(biāo)樣分別為國(guó)際通用標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì) V-PDB 和空氣中 N2。
1.3 數(shù)據(jù)處理
試驗(yàn)數(shù)據(jù)均為3次重復(fù),用SPSS 22軟件進(jìn)行差異顯著性分析,用Excel 2019軟件作表。
2 結(jié)果與分析
2.1 低溫對(duì)光合作用參數(shù)的影響
研究表明,凈光合速率在不同品種間差異顯著性,其中YN4的凈光合速率顯著低于其他品種,但是經(jīng)過低溫脅迫以后,YN1和YN4 的凈光合速率顯著高于YN2、YN3,YN4 、YN1耐低溫性較強(qiáng)。低溫處理會(huì)顯著降低葉片的氣孔導(dǎo)度,正常條件下YN4氣孔導(dǎo)度要顯著低于其他3個(gè)品種,而YN3經(jīng)低溫處理后氣孔導(dǎo)度較高,此種狀態(tài)下極易水分散失。胞間CO2濃度變化趨勢(shì)與凈光合速率相同,YN4的胞間CO2濃度在對(duì)照的情況下最低;經(jīng)過低溫處理后YN3的胞間CO2濃度較高,呈顯著升高的狀態(tài),該品種的耐寒能力較低。經(jīng)過低溫處理的藜麥葉片YN4顯著高于其他品種,具有較高的水分利用能力。低溫可以顯著降低水分利用效率。表1
2.2 低溫對(duì)葉綠素和碳水化合物的影響
研究表明,不同藜麥材料在苗期的葉綠素含量具有顯著差異,從高到低依次為YN4、YN1、YN3、YN2;經(jīng)過低溫處理后,葉綠素含量也顯著降低。YN1和YN4顯著高于YN2和YN3,經(jīng)過低溫處理后對(duì)YN1和YN4葉片的葉綠素含量影響較小。低溫處理前,試驗(yàn)品種間葉片的碳水化合物含量無(wú)顯著差異。經(jīng)過低溫處理后,品種間的碳水化合物差異顯著,其中YN4和YN1顯著高于其他2品種。表2
2.3 低溫對(duì)藜麥抗氧化酶活性的影響
研究表明,不同藜麥品種間的SOD活性差異顯著,其中YN1和YN4顯著高于其他品種。經(jīng)過低溫脅迫后,葉片中SOD活性顯著升高。經(jīng)過低溫處理的植株SOD活性呈YN1<YN2<YN3<YN4的排列順序,藜麥可以通過提升SOD活性來(lái)獲得抗低溫的能力,但是不同品種的抗性差異顯著。葉片POD活性在不同品種間無(wú)顯著差異,但是經(jīng)過低溫處理后POD活性顯著提升。低溫處理后,品種間的POD活性變化趨勢(shì)基本與SOD相同。各品種的CAT活性具有顯著性差異,經(jīng)過低溫處理后活性開始降低,但是耐低溫品種呈現(xiàn)出顯更高的活性,以YN1和YN4 表現(xiàn)更好。對(duì)照處理下的品種MDA活性具有顯著性差異,經(jīng)過低溫處理后葉片MDA具有升高的趨勢(shì),其中YN3和YN4顯著高于其他2個(gè)品種。表3
2.4 低溫對(duì)藜麥碳氮元素及其同位素的影響
研究表明,品種間的δ15N值具有顯著的差異,呈YN2>YN3>YN4>YN1的排列順序,在藜麥品種遭受低溫脅迫前,已經(jīng)體現(xiàn)出植株的耐低溫能力(負(fù)向)。經(jīng)過低溫處理后,較耐寒品種YN4呈現(xiàn)較高的δ15N值,較耐寒的品種在遭受低溫脅迫后,仍能維持自身氮素代謝相關(guān)蛋白的活性而呈現(xiàn)較強(qiáng)的代謝能力。經(jīng)過低溫處理的藜麥呈現(xiàn)δ13C值的提升,品種間的δ13C值呈YN4>YN1>YN2>YN3的排列順序,低溫降低了藜麥水分利用能力,YN4在試驗(yàn)品種中的抗寒性最好。表4
3 討 論
3.1
植物體內(nèi)產(chǎn)生較高的碳水化合物有利于抵抗低溫脅迫,在小麥、苜蓿等作物中已發(fā)現(xiàn)[14]。超氧化物歧化酶(SOD)是生物體內(nèi)存在的一種抗氧化金屬酶,它能夠催化超氧陰離子自由基歧化生成氧和過氧化氫,在機(jī)體氧化與抗氧化平衡中起到至關(guān)重要的作用[15]。
研究利用低溫發(fā)芽試驗(yàn)中篩選出的4個(gè)在低溫條件下萌發(fā)較好的藜麥品種,從幼苗葉片光合特性、葉綠素及碳水化合物、抗氧化活性酶、碳氮元素及其同位素等方面進(jìn)行研究分析,篩選出苗期抗寒性較好的藜麥品種。
低溫環(huán)境中,作物利用光能的能力不斷下降,幾乎對(duì)作物光合作用的所有環(huán)節(jié)造成影響[16],楊猛等[17]通過研究發(fā)現(xiàn),低溫脅迫下,玉米葉片光合速率、氣孔導(dǎo)度、蒸騰速率及PSⅡ光能轉(zhuǎn)化率均呈下降趨勢(shì),植株可以通過調(diào)節(jié)氣孔導(dǎo)度、蒸騰速率、胞間CO2濃度、水分利用率進(jìn)行自我調(diào)控。試驗(yàn)表明,低溫脅迫條件下導(dǎo)致4個(gè)藜麥品種葉片凈光合速率、氣孔導(dǎo)度的顯著降低,光合速率由于氣孔的關(guān)閉導(dǎo)致生長(zhǎng)速率的降低。而胞間CO2、蒸騰速率及水分利用率雖有降低,但是降低幅度較小,說明低溫脅迫未對(duì)藜麥的光合代謝產(chǎn)生較大的負(fù)向影響,為藜麥的抗寒提供了保障。
3.2
當(dāng)作物受到低溫脅迫時(shí),打破了細(xì)胞內(nèi)自由基的平衡,大量積累的活性氧阻礙了葉綠素的合成,導(dǎo)致葉綠素的破壞降解[18],試驗(yàn)4個(gè)藜麥品種的葉綠素含量均有不同程度的下降,這與高麗慧等[19]研究結(jié)果一致,所以當(dāng)4個(gè)藜麥品種經(jīng)過低溫處理后,葉片均有不同程度的發(fā)紅,這是由于幼苗葉片葉綠體中的葉綠素下降,類胡蘿卜素顯色的原因。YN1和YN4的葉綠素含量及碳水化合物含量要顯著高于其他2個(gè)品種,說明耐寒性較強(qiáng)的材料具有較高的葉綠素含量,使其在受到脅迫時(shí)維持正常的光合作用,為其生長(zhǎng)提供能量[20,21]。
3.3
低溫冷害會(huì)使植物體內(nèi)膜脂過氧化,而丙二醛(MDA)是膜脂過氧化的最終產(chǎn)物,其含量是作為評(píng)價(jià)膜系統(tǒng)受傷害程度的重要標(biāo)記[22],植物抗氧化保護(hù)方面起主要作用的是酶促防御體系[23],其中超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)、過氧化氫酶(CAT)是保護(hù)膜系統(tǒng)的主要酶[24],試驗(yàn)表明,4個(gè)藜麥品種間具有顯著的活性差異;低溫處理可顯著提升SOD、POD和MDA活性,降低CAT的活性,耐寒性較強(qiáng)的品種(系)會(huì)通過提升關(guān)鍵性抗氧化酶活性來(lái)抵抗低溫脅迫。
3.4
作物葉片δ13C可以反映在一段時(shí)間內(nèi)作物水分散失和碳收獲之間的相對(duì)關(guān)系,整合了作物葉片的光合作用,常被用來(lái)指示作物的長(zhǎng)期水分利用率[25],降水量與溫度等環(huán)境梯度的變化往往影響作物葉片的δ13C值,研究結(jié)果與王國(guó)安等[26]研究一致,4個(gè)藜麥品種葉片δ13C值與溫度呈負(fù)相關(guān)。氮元素是影響和限制植物生長(zhǎng)最重要的營(yíng)養(yǎng)元素,δ15N值在很大程度上受到周邊生長(zhǎng)環(huán)境及氣候因素的影響[27],溫度作為影響δ15N值的重要?dú)夂蛞蜃?,溫度與δ15N值呈正相關(guān)[28],但也有研究發(fā)現(xiàn)于此不一致的結(jié)論,試驗(yàn)研究結(jié)果表明,4個(gè)藜麥品種δ15N值隨著溫度的降低出現(xiàn)不同程度的升高,與劉衛(wèi)國(guó)等[29]研究一致。穩(wěn)定同位素(δ13C值)和莖稈氮素濃度(δ15N值)是衡量藜麥耐低溫能力的重要依據(jù)。低溫處理使藜麥顯著降低了水分和氮素代謝過程。耐低溫品種通過加速水分吸收,加速氮素代謝進(jìn)程來(lái)緩解低溫導(dǎo)致的傷害。
4 結(jié) 論
藜麥對(duì)連續(xù)的-4℃低溫處理具有較強(qiáng)的耐受性。經(jīng)過低溫處理的藜麥品種表現(xiàn)出顯著的抗寒差異,其中YN4的耐低溫能力最強(qiáng),YN1的耐低溫能力次之,YN3和YN2的低溫能力較弱,表型生長(zhǎng)狀態(tài)不佳。
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Physiological responses of different quinoa varieties during
seedling stage under low temperature stress
YAO Qing, WANG Jiehua,Xiernayi Abudula,Dilimulati Tulahong,CUI Hongliang
(Institute of Agricultural Science of Yili Prefecture,Ining Xinjiang 835000,China)
Abstract:【Objective】 To explore the effects of low temperature stress on physiological and biochemical characteristics of quinoa seedlings, and to provide theoretical basis for exploring the cold tolerance mechanism and breeding of quinoa varieties.
【Methods】" The top 4 varieties YN1, YN2, YN3 and YN4 with strong cold resistance were selected as experimental materials through low temperature germination test of quinoa seeds selected in Yili Valley in recent years, and the seedlings were raised in nutrient soil and treated at low temperature under artificial simulated low temperature stress environment (-4℃). Normal natural temperature treatment was set as control.
【Results】 (1) Quinoa had strong tolerance to continuous low temperature treatment of -4℃. When treated with low temperature it showed significant differences in cold resistance, among which variety YN4 had the strongest low temperature resistance, variety YN1 had the stronger low temperature resistance, and variety YN3 and variety YN2 had the weaker low temperature resistance. (2) Low temperature stress could significantly reduce the net photosynthetic rate and stomatal conductance of leaves, and the photosynthetic rate decreased the growth rate due to stomatal closure. Low temperature stress had no negative effect on photosynthetic metabolism of quinoa. (3) The active substances of antioxidant enzymes were important substances to regulate the cold tolerance of quinoa, and there were significant differences in activity among varieties. The activities of SOD, POD and MDA were significantly increased by low temperature treatment, while the activities of CAT were decreased. Strains with strong cold tolerance would have low resistance to low temperature stress by increasing the activity of key antioxidant enzymes. (4) Stable isotope and stem nitrogen concentration were important criteria for measuring the low temperature tolerance of quinoa. Low temperature treatment significantly reduced water and nitrogen metabolism of quinoa.
【Conclusion】 Low temperature resistant varieties could alleviate the damage caused by low temperature by accelerating water absorption and nitrogen metabolism." The results showed that quinoa was more tolerant to low temperature stress, but the tolerance degree of different varieties was different.
Key words:quinoa; seedling stage; low temperature stress; physiology and biochemistry
Fund projects:Major R amp; D Program Project of Xinjiang Uygur Autonomous Region \"Xinjiang Quinoa Green Production Key Technology R amp; D Project\" (2022B02010-3);Project of Natural Science Foundation of Xinjiang \"Physiological Response of Cold Stress and Adaptability of Quinoa Plant Stage \" (2020D01B54)
Correspondence author:CUI Hongliang(1981-), male, from Yuzhou,Henan,associate professor, research direction: crop cultivation and physiology research,(E-mail)chl8129@126.com
收稿日期(Received):
2023-12-27
基金項(xiàng)目:
新疆維吾爾自治區(qū)重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃項(xiàng)目“新疆藜麥綠色生產(chǎn)關(guān)鍵技術(shù)研發(fā)”課題三“藜麥病蟲草害綠色防控技術(shù)的研究”(2022B02010-3);新疆維吾爾自治區(qū)自然科學(xué)基金項(xiàng)目“藜麥苗期低溫脅迫的生理響應(yīng)及旱作冷涼區(qū)適應(yīng)性研究”(2020D01B54)
作者簡(jiǎn)介:
姚慶(1986-),男,甘肅張掖人,助理研究員,研究方向?yàn)樽魑镉N與栽培,(E-mail)452760959@qq.com
通訊作者:
崔宏亮(1981-),男,河南禹州人,副研究員,研究方向?yàn)樽魑镌耘嗉吧恚‥-mail)chl8129@126.com