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        牙髓干細(xì)胞的生物學(xué)特性及其在角膜和視網(wǎng)膜疾病治療中應(yīng)用的研究進(jìn)展

        2024-12-25 00:00:00劉翔宇張夢(mèng)迪王霽雪徐春玲

        [摘要] 牙髓干細(xì)胞(DPSCs) 是一類具有廣泛應(yīng)用潛力的間充質(zhì)干細(xì)胞。DPSCs 因其多向分化潛能和易獲取的特點(diǎn)成為眼科領(lǐng)域研究的熱點(diǎn)。近年來,DPSCs 在角膜上皮損傷和視網(wǎng)膜退行性病變的治療中表現(xiàn)出潛在的臨床應(yīng)用前景。DPSCs 可以通過分化為角膜上皮細(xì)胞和抑制M1 巨噬細(xì)胞,促進(jìn)角膜上皮再生和重建。此外,DPSCs 也可以分化為視網(wǎng)膜光感受器樣細(xì)胞和視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)樣細(xì)胞,替換原有視神經(jīng)元,分泌神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子介導(dǎo)損傷修復(fù),促進(jìn)視網(wǎng)膜的再生,改善視網(wǎng)膜原有功能。現(xiàn)系統(tǒng)地回顧近年來國(guó)內(nèi)外相關(guān)文獻(xiàn),就DPSCs 的生物學(xué)特性及其在角膜和視網(wǎng)膜疾病治療中應(yīng)用的研究進(jìn)展進(jìn)行綜述,以期為DPSCs 在轉(zhuǎn)化醫(yī)學(xué)和眼科相關(guān)疾病治療中應(yīng)用的研究提供思路及策略。

        [關(guān)鍵詞] 牙髓干細(xì)胞; 眼; 角膜; 視網(wǎng)膜; 旁分泌

        [中圖分類號(hào)] R774. 1 [文獻(xiàn)標(biāo)志碼] A

        干細(xì)胞是一類具有自我更新和多向分化潛能的原始細(xì)胞,在特定條件下能夠產(chǎn)生一種或多種特殊細(xì)胞類型[1]。根據(jù)分化潛能的不同,干細(xì)胞可以分為全能干細(xì)胞、多能干細(xì)胞和單能干細(xì)胞[2]。GRONTHOS 等[3] 首次從成人第三磨牙中分離出快速增殖的單克隆干細(xì)胞群,將其移植到免疫功能低下的小鼠背部皮下時(shí), 會(huì)產(chǎn)生一種牙本質(zhì)樣結(jié)構(gòu),內(nèi)層為成牙本質(zhì)細(xì)胞,外層包繞著牙髓樣間質(zhì)組織, 該細(xì)胞群被稱為牙髓干細(xì)胞(dental pulpstem cells,DPSCs)。與神經(jīng)干細(xì)胞和角膜緣干細(xì)胞等單能干細(xì)胞不同,DPSCs 具有多向分化能力,在不同的誘導(dǎo)條件下具有向牙本質(zhì)、神經(jīng)、骨和脂肪等譜系分化的潛能[4-9]。近年來,DPSCs 在再生醫(yī)學(xué)和轉(zhuǎn)化醫(yī)學(xué)領(lǐng)域受到廣泛的關(guān)注。DPSCs 的分化、增殖及旁分泌等特性使其可以促進(jìn)角膜和視網(wǎng)膜疾病損傷的修復(fù),但國(guó)內(nèi)外相關(guān)綜述類報(bào)道較少?,F(xiàn)對(duì)DPSCs 的生物學(xué)特性及其在角膜和視網(wǎng)膜疾病治療中的潛在應(yīng)用價(jià)值進(jìn)行綜述,為DPSCs在相關(guān)眼科疾病治療中的應(yīng)用及轉(zhuǎn)化提供科學(xué)依據(jù)。

        1 DPSCs 的培養(yǎng)和鑒別

        DPSCs 呈梭形, 具有干細(xì)胞的一般生物學(xué)特性,同時(shí)還具備來源廣泛、取材方便和低免疫原性等優(yōu)點(diǎn); 其與骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrowmesenchymal stem cells, BMSCs) 有較多相似之處。二者具有相似的免疫表型, 如CD14 (-)、CD45 (-) 和CD146 (-), 同時(shí)分泌相似的細(xì)胞因子,如生肌決定因子(myogenic determingfactor, MyoD)(-)、 神 經(jīng) 微 絲(-)、 整合素β1 (+) 和基質(zhì)細(xì)胞抗原1 (stromal cellsantigen 1, STRO-1)(+) 等[10-11]。2 種細(xì)胞分化途徑相似,DPSCs 分化的成牙質(zhì)細(xì)胞與BMSCs 分化的成骨細(xì)胞表達(dá)相似的礦化基質(zhì)蛋白, 且DPSCs 在體外培養(yǎng)時(shí)較BMSCs 表現(xiàn)出更高的增殖速率。BMSCs 在體外形成鈣化沉積物的同時(shí)還形成豐富的脂肪細(xì)胞簇, 而DPSCs 在體外形成的鈣化結(jié)節(jié)中不含脂肪細(xì)胞。DPSCs 和BMSCs 受相似的細(xì)胞因子調(diào)節(jié),具有相同的蛋白表達(dá)譜,但在體外增殖能力和發(fā)育潛力方面存在顯著差異。

        2 DPSCs 的生物學(xué)特性

        2. 1 DPSCs的免疫學(xué)特性

        聶姍姍等[12] 發(fā)現(xiàn):在正常狀態(tài)下,DPSCs 表達(dá)組織相容性復(fù)合體(major histocompatibilitycomplex, MHC)- Ⅰ 類分子, 體外培養(yǎng)的第2 代DPSCs中未見MHC-Ⅱ類分子明顯表達(dá)。使用γ干擾素( interferon-γ,IFN-γ)刺激DPSCs后,MHC-Ⅱ類分子表達(dá)明顯上調(diào),但淋巴細(xì)胞未見明顯增殖,提示DPSCs 可能具有免疫調(diào)節(jié)功能。采用DPSCs 刺激異體淋巴細(xì)胞,異體淋巴細(xì)胞不產(chǎn)生增殖反應(yīng),表明DPSCs 具有較低的抗原反應(yīng)性。DING 等[13]發(fā)現(xiàn):DPSCs 不能刺激同種異體T 淋巴細(xì)胞增殖,且在與混合淋巴細(xì)胞的反應(yīng)中抑制T 淋巴細(xì)胞和B 淋巴細(xì)胞增殖。此外, DPSCs 上調(diào)白細(xì)胞介素(interleukin, IL)-10, 下調(diào)IL-2 和IL-17, 并阻礙IFN-γ 的產(chǎn)生。提示轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β1 (transforminggrowth factor- β1, TGF- β1) 單克隆抗體可以恢復(fù)DPSCs 抑制的T 淋巴細(xì)胞增殖,TGF-β1 可能參與了DPSCs 抑制淋巴細(xì)胞增殖的過程。同時(shí), 將DPSCs與人外周血單核細(xì)胞共培養(yǎng),調(diào)節(jié)性T 淋巴細(xì)胞的數(shù)量明顯增加,輔助性T 淋巴細(xì)胞17 (T helpercell 17,Th17) 細(xì)胞明顯減少。

        巨噬細(xì)胞由經(jīng)典激活的M1 巨噬細(xì)胞和選擇性激活的M2 巨噬細(xì)胞2 種表型組成。M1 巨噬細(xì)胞分泌腫瘤壞死因子α (tumor necrosis factor-α,TNF-α)等促炎細(xì)胞因子,具有促炎作用;相反,M2 巨噬細(xì)胞分泌IL-10 等抗炎細(xì)胞因子,具有抗炎作用。

        DPSCs 具有抗炎作用。核因子κB (nuclearfactor kappa-B,NF-κB) 是調(diào)節(jié)免疫和炎癥反應(yīng)過程中的經(jīng)典信號(hào)通路,DPSCs 可以部分阻斷NF-κBP65 亞基的表達(dá),下調(diào)NF-κB 和P38 絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase, MAPK)信號(hào)傳導(dǎo)的激活,導(dǎo)致M1 巨噬細(xì)胞分泌TNF-α 減少[14-15]。DPSCs 與巨噬細(xì)胞共培養(yǎng)時(shí), DPSCs 通過抑制M1 巨噬細(xì)胞分泌TNF-α,對(duì)M1 巨噬細(xì)胞產(chǎn)生免疫抑制作用。將DPSCs 移植到糖尿病大鼠后肢骨骼肌后, 坐骨神經(jīng)中M2 巨噬細(xì)胞明顯增加,M1 巨噬細(xì)胞明顯減少,改善了坐骨神經(jīng)血供和軸突形態(tài),神經(jīng)傳導(dǎo)速度得以恢復(fù)[16]。

        研究[17-18] 顯示: 干細(xì)胞來源的外泌體在調(diào)節(jié)巨噬細(xì)胞極化中發(fā)揮重要作用。SHEN 等[14] 發(fā)現(xiàn):DPSCs 外泌體中的微小RNA(microRNA,miR)-1246表達(dá)水平較高,且可以促進(jìn)巨噬細(xì)胞從促炎表型轉(zhuǎn)化為抗炎表型介導(dǎo)免疫調(diào)節(jié)。

        2. 2 DPSCs和血管重建

        功能性血管的形成需要內(nèi)皮細(xì)胞、巨噬細(xì)胞和周細(xì)胞等不同類型細(xì)胞之間相互作用, DPSCs 參與并促進(jìn)血管生成。DPSCs 不但能夠分化為內(nèi)皮細(xì)胞和周細(xì)胞,還可分泌促血管生成因子,如血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)[19-21]。DPSCs 還通過旁分泌途徑分泌VEGF、堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(basicfibroblast growth factor,bFGF) 和血小板衍生生長(zhǎng)因子(platelet-derived growth factor,PDGF) 等神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子,以旁分泌方式誘導(dǎo)血管生成[22]。

        3 DPSCs 眼科臨床應(yīng)用

        3. 1 角膜損傷

        角膜緣干細(xì)胞 (limbal stem cells,LSCs) 可以阻止結(jié)膜上皮侵入角膜, 保持角膜組織的透明性, 維持角膜上皮的動(dòng)態(tài)穩(wěn)定[23]。燒傷、化學(xué)損傷、感染和慢性炎癥可導(dǎo)致LSCs 損失或角膜緣生態(tài)破壞, 致使角膜緣干細(xì)胞缺陷(limbal stem celldeficiency, LSCD)[24-27]。LSCD 可導(dǎo)致持續(xù)性上皮缺損、角膜結(jié)膜化、新生血管形成、角膜瘢痕和慢性炎癥[28]。傳統(tǒng)的藥物治療可以控制炎癥, 改善淚膜,逐步恢復(fù)角膜緣微環(huán)境,促進(jìn)健康角膜上皮細(xì)胞的分化。但若LSCD 未改善,則需進(jìn)行羊膜移植手術(shù), 但單純的羊膜移植手術(shù)不能修復(fù)嚴(yán)重LSCD 丟失的LSCs, LSCD 對(duì)角膜的損害仍會(huì)持續(xù)加重[29-30]。

        3. 1. 1 DPSCs 向角膜上皮細(xì)胞的分化 KUSHNEREV 等[31] 刮除人供體角膜的上皮層后, 將DPSCs 轉(zhuǎn)移至角膜接觸鏡(contact lens,CL) 的角膜接觸面,發(fā)現(xiàn)大部分DPSCs 附著在角膜表面,且陽性表達(dá)角蛋白(keratin,KRT) 3 和角膜上皮細(xì)胞標(biāo)志物KRT12, 并限制結(jié)膜細(xì)胞標(biāo)志物KRT19 陽性細(xì)胞向角膜中心遷移。由此可見,DPSCs 可以分化為角膜上皮細(xì)胞, 并且能夠限制結(jié)膜上皮細(xì)胞的侵入,阻止角膜結(jié)膜化[32]。

        GOMES 等[33] 將組織工程DPSCs 片移植至輕度化學(xué)灼傷(mild chemical burn,MCB) 和重度化學(xué)灼傷(severe chemical burn, SCB) 動(dòng)物模型的角膜床, 結(jié)果顯示: 未接受DPSCs 移植的對(duì)照組兔角膜完全結(jié)膜化和混濁, 接受DPSCs 移植的兔眼角膜透明度有所改善,MCB 組較SCB 組兔的角膜更清晰,新生血管形成也較少。SPILLER 等[34]發(fā)現(xiàn):VEGF 主要由M1 巨噬細(xì)胞產(chǎn)生,炎癥反應(yīng)是血管形成的主要調(diào)節(jié)因素。DPSCs 既具有直接促進(jìn)血管重建的作用,又有抑制M1 巨噬細(xì)胞延緩新生血管形成的作用。

        研究[33] 發(fā)現(xiàn):MCB 組重建角膜細(xì)胞中KRT3和角膜上皮細(xì)胞標(biāo)志物KRT18 染色呈強(qiáng)陽性,表明有角膜上皮細(xì)胞生成。ATP 結(jié)合家族亞家族G 亞型成員2 (ATP binding cassette subfamily G member 2,ABCG2)、腫瘤蛋白P63和抗人LSCs抗體β1-integrin在角膜上皮基底細(xì)胞層陽性表達(dá),證實(shí)DPSCs可以向LSCs分化[35]。然而,由于SCB 組重建角膜的化學(xué)損傷嚴(yán)重,局部微環(huán)境的變化較大,KRT3 和P63表達(dá)呈陰性。組織工程DPSCs 片的成功移植為L(zhǎng)SCD 的治療提供了新的視角, 具有重要的臨床意義。

        3. 1. 2 DPSCs 向角膜基質(zhì)細(xì)胞的分化 研究[36-37]發(fā)現(xiàn): 誘導(dǎo)DPSCs 向角膜基質(zhì)細(xì)胞分化后醛脫氫酶3 家族成員A1 (aldehyde dehydrogenase 3 familymember A1,ALDH3A1)、碳水化合物磺基轉(zhuǎn)移酶6(carbohydrate sulfotransferase 6, CHST6) 和角膜基質(zhì)細(xì)胞特征性基因前列腺素D2 合酶(prostaglandin D2 synthase, PTGDS) 表達(dá)上調(diào),4 周后觀察到DPSCs 產(chǎn)生排列整齊的膠原,并誘導(dǎo)出透明的角膜基質(zhì)樣結(jié)構(gòu); 將DPSCs 注射到小鼠的角膜基質(zhì)中,使用光學(xué)相干斷層掃描(opticalcoherence tomogrophy, OCT) 評(píng)估小鼠角膜的光散射和基質(zhì)水腫程度,結(jié)果與陰性對(duì)照組小鼠無明顯差異, 提示DPSCs 移植并不影響角膜透明度,也不誘導(dǎo)免疫排斥反應(yīng)。由此證實(shí)DPSCs 可以向角膜基質(zhì)細(xì)胞進(jìn)行分化,且在角膜盲的個(gè)性化臨床治療中具有巨大的應(yīng)用潛力。

        3. 1. 3 DPSCs 向角膜內(nèi)皮樣細(xì)胞的分化 WAGONER 等[38] 先將誘導(dǎo)性多能干細(xì)胞(induced pluripotent stem cells, IPSCs) 分化為神經(jīng)嵴細(xì)胞,再誘導(dǎo)神經(jīng)嵴細(xì)胞分化為角膜內(nèi)皮樣細(xì)胞。BOSCH 等[39] 據(jù)此提出了DPSCs 兩步誘導(dǎo)方案, 先誘導(dǎo)DPSCs 分化為神經(jīng)嵴干細(xì)胞, 再誘導(dǎo)其分化為閉鎖小帶蛋白1 (zonula occludens-1,ZO-1)、Na+/K+ATP 酶α1 亞基(ATPase Na+/K+transporting α1 polypetide,ATP1A1)、Ⅳ型膠原蛋白α2 (collagen type Ⅳ alpha2,COL4A2) 和角膜內(nèi)皮細(xì)胞特異性蛋白Ⅷ 型膠原A2 (collagen type Ⅷalpha2,COL8A2) 上調(diào)的角膜內(nèi)皮樣細(xì)胞,該細(xì)胞具有與角膜內(nèi)皮細(xì)胞相同的特征性六邊形結(jié)構(gòu),證實(shí)DPSCs 可以分化為角膜內(nèi)皮樣細(xì)胞, 為角膜內(nèi)皮損傷治療提供了新的思路。

        DPSCs 可以分化為角膜內(nèi)皮樣細(xì)胞、角膜基質(zhì)細(xì)胞、角膜上皮細(xì)胞和LSCs 等。移植的DPSCs可恢復(fù)受損角膜組織的透明性, 將DPSCs 應(yīng)用于角膜重建具有一定的可行性,但其具體機(jī)制尚未完全闡明。DPSCs 可能分化為單一種類的角膜細(xì)胞或同時(shí)分化為幾種角膜細(xì)胞參與角膜重建,并可通過DPSCs 抑制M1 巨噬細(xì)胞促進(jìn)角膜上皮再生。DPSCs 減少輕度化學(xué)灼傷眼新生血管形成的機(jī)制和利用DPSCs 分化的角膜細(xì)胞制作有功能性的全層角膜方法也是需要探索的問題。

        3. 2 視網(wǎng)膜退行性疾病

        視網(wǎng)膜退行性疾病主要包括青光眼、年齡相關(guān)性黃斑變性、糖尿病性視網(wǎng)膜病變和視網(wǎng)膜色素變性[40-44]。目前針對(duì)以上幾種視網(wǎng)膜退行性疾病的治療方法主要是對(duì)癥治療,從而緩解視網(wǎng)膜細(xì)胞變性及凋亡的進(jìn)展,尚缺乏有效的促進(jìn)視網(wǎng)膜細(xì)胞再生的方法。

        3. 2. 1 DPSCs 向視網(wǎng)膜光感受器樣細(xì)胞的分化 DPSCs 與小鼠視網(wǎng)膜Müller 細(xì)胞在條件培養(yǎng)基共培養(yǎng)后,神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)志物膠質(zhì)纖維酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein, GFAP) 和神經(jīng)前體細(xì)胞標(biāo)志物多聚唾液酸神經(jīng)細(xì)胞黏附分子( polysialicacid neural cell adhesion molecule, PSA-NCAM)雙陽性的細(xì)胞數(shù)量增加,約44% 的DPSCs 視紫紅質(zhì)編碼基因視錐-視桿細(xì)胞同源異形框基因(conerodhomeobox containing gene, CRX) 上調(diào)且陽性表達(dá)視紫紅質(zhì)和神經(jīng)視網(wǎng)膜亮氨酸拉鏈(neuralretina leucine zipper, NRL) 蛋白, 腦源性神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子(brain-derived neurotrophic factor, BDNF)表達(dá)明顯增加。提示DPSCs 能夠?qū)Σ煌囊暰W(wǎng)膜條件培養(yǎng)液作出反應(yīng), 誘導(dǎo)出神經(jīng)膠質(zhì)樣細(xì)胞和視網(wǎng)膜光感受器樣細(xì)胞, 且具有分泌BDNF 的能力[45]。

        3. 2. 2 DPSCs 向視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)樣細(xì)胞的分化 ROOZAFZOON 等[46] 將DPSCs 分化的視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)樣細(xì)胞置于3D 支架中培養(yǎng),結(jié)果顯示:與常規(guī)二維細(xì)胞培養(yǎng)比較, 配對(duì)盒轉(zhuǎn)錄因子6 (pairedbox 6, Pax6)、無調(diào)性bHLH 轉(zhuǎn)錄因子7 (atonalbHLH transcription factor 7,Atoh7) 和視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞特異性標(biāo)記基因大腦特異性同源盒/POU 結(jié)構(gòu)域3B (brain specific homeobox/POU domainprotein 3B,Brn3B) 在3D 結(jié)構(gòu)中的表達(dá)分別增加了2. 307 倍、1. 624 倍和3. 140 倍,提示3D 纖維蛋白支架更有利于DPSCs 向視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)樣細(xì)胞分化,更接近自然的組織特性,為視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞的體外培養(yǎng)和利用提供了參考。

        3. 2. 3 DPSCs 在視網(wǎng)膜退行性疾病動(dòng)物模型中的應(yīng)用 DPSCs 移植到視神經(jīng)鉗夾模型大鼠玻璃體后,可旁分泌腦源性神經(jīng)因子、神經(jīng)生長(zhǎng)因子和神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子3 等細(xì)胞因子,促進(jìn)視神經(jīng)損傷后神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子介導(dǎo)的視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞(retinalganglion cells, RGCs) 修復(fù)和軸突再生[47-49] 。MEAD 等[50] 將DPSCs 移植至RGCs 損傷大鼠玻璃體中,5 周后RGCs 存活率為95%,而對(duì)照組存活率為67%,證實(shí)DPSCs 可以保護(hù)RGCs 及其軸突,維持RGCs 功能, 提示應(yīng)用DPSCs 可以成為治療青光眼的新途徑。

        ALSAEEDI 等[51] 將DPSCs 注射至視網(wǎng)膜變性大鼠的玻璃體內(nèi),結(jié)果顯示:與對(duì)照組比較,注射DPSCs 組大鼠b 波振幅減小程度較輕, 表明DPSCs 在視網(wǎng)膜中起保護(hù)作用,可以減輕碘酸鈉對(duì)視網(wǎng)膜組織的毒性, 但其保護(hù)作用是由于DPSCs分化細(xì)胞的替代作用或由分泌的神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用尚需進(jìn)一步探討。

        DPSCs 在治療視網(wǎng)膜退行性疾病方面同樣具有巨大潛力,目前對(duì)其可能的作用機(jī)制有以下幾種觀點(diǎn):①DPSCs 通過分化為視網(wǎng)膜光感受器樣細(xì)胞和視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)樣細(xì)胞以替代病變部位的細(xì)胞[46];② DPSCs 通過旁分泌途徑分泌營(yíng)養(yǎng)因子, 保護(hù)神經(jīng)元存活, 促進(jìn)軸突再生和視網(wǎng)膜功能恢復(fù)[47];③ 細(xì)胞分化和營(yíng)養(yǎng)因子同時(shí)作用, DPSCs 分化的神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞可以作為支持細(xì)胞并分泌營(yíng)養(yǎng)因子,進(jìn)而改善原有功能[52]。

        神經(jīng)干細(xì)胞在視網(wǎng)膜退行性疾病方面的作用機(jī)制包括替換原有視神經(jīng)元及分泌神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子介導(dǎo)損傷修復(fù),與DPSCs 的作用機(jī)制相似[53]。DPSCs是否先分化為神經(jīng)干細(xì)胞,再對(duì)視網(wǎng)膜退行性疾病進(jìn)行修復(fù), 尚需進(jìn)一步研究。同時(shí), DPSCs 分化后的細(xì)胞在替代病變部位的光感受器細(xì)胞和視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞后是否具有正常的細(xì)胞功能且如何安全地利用細(xì)胞分化或旁分泌途徑分泌神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子也需進(jìn)一步探討。

        4 小結(jié)與展望

        DPSCs 具有分化為角膜內(nèi)皮樣細(xì)胞、角膜基質(zhì)細(xì)胞和角膜上皮細(xì)胞等能力,移植后可恢復(fù)角膜透明性, 具備角膜重建的潛力。此外, DPSCs 可能通過細(xì)胞替代或分泌營(yíng)養(yǎng)因子在治療視網(wǎng)膜退行性疾病方面展現(xiàn)出潛在的臨床前景。盡管研究人員已經(jīng)取得了部分研究進(jìn)展,但仍然需要更多的實(shí)驗(yàn)和臨床研究來進(jìn)一步驗(yàn)證和探索牙髓干細(xì)胞在眼科相關(guān)疾病治療方面的機(jī)制、療效及安全性。

        利益沖突聲明:所有作者聲明不存在利益沖突。

        作者貢獻(xiàn)聲明:劉翔宇參與論文選題、文獻(xiàn)整理和論文撰寫,張夢(mèng)迪參與論文審校,王霽雪參與論文審校和論文撰寫指導(dǎo),徐春玲參與論文選題和論文撰寫指導(dǎo)。

        [參考文獻(xiàn)]

        [1] LU H J, LI J, YANG G D, et al. Circular RNAs in

        stem cells: from basic research to clinical

        implications[J]. Biosci Rep, 2022, 42(1): BSR20212510.

        [2] ZAKRZEWSKI W, DOBRZY?SKI M,

        SZYMONOWICZ M, et al. Stem cells: past, present,

        and future[J]. Stem Cell Res Ther, 2019, 10(1): 68.

        [3] GRONTHOS S, BRAHIM J, LI W, et al. Stem cell

        properties of human dental pulp stem cells[J]. J Dent

        Res, 2002, 81(8): 531-535.

        [4] DELLE MONACHE S, PULCINI F, SANTILLI F,

        et al. Hypoxia induces DPSC differentiation versus a

        neurogenic phenotype by the paracrine mechanism[J].

        Biomedicines, 2022, 10(5): 1056.

        [5] IRFAN M, KIM J H, MARZBAN H, et al. The role

        of complement C5a receptor in DPSC odontoblastic

        differentiation and in vivo reparative dentin formation[J].

        Int J Oral Sci, 2022, 14(1): 7.

        [6] MAITY J, BARTHELS D, SARKAR J, et al.

        Ferutinin induces osteoblast differentiation of DPSCs via

        induction of KLF2 and autophagy/mitophagy[J]. Cell

        Death Dis, 2022, 13(5): 452.

        [7] PATIL S , ALAMOUDI A , ZIDANE B , et al.

        Dose-dependent effects of melatonin on the viability,

        proliferation, and differentiation of dental pulp stem

        cells( DPSCs)[J]. J Pers Med, 2022, 12(10): 1620.

        [8] LOTT K, COLLIER P, RINGOR M, et al.

        Administration of epidermal growth factor (EGF) and

        basic fibroblast growth factor (bFGF) to induce neural

        differentiation of dental pulp stem cells (DPSC)

        isolates[J]. Biomedicines, 2023, 11(2): 255.

        [9] KUMAR A, RAIK S, SHARMA P, et al. Primary

        culture of dental pulp stem cells[J]. J Vis Exp,

        2023(195): 1-16.

        [10]LABEDZ-MASLOWSKA A, BRYNIARSKA N,

        KUBIAK A, et al. Multilineage differentiation potential

        of human dental pulp stem cells-impact of 3D and

        hypoxic environment on osteogenesis in vitro[J]. Int J

        Mol Sci, 2020, 21(17): 6172.

        [11]GRONTHOS S, MANKANI M, BRAHIM J, et al.

        Postnatal human dental pulp stem cells (DPSCs) in

        vitro and in vivo[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2000,

        97(25): 13625-13630.

        [12]聶姍姍, 劉 佳, 張瑞涵, 等. 牙髓干細(xì)胞MHC 分子

        表達(dá)與體外混合淋巴細(xì)胞的增殖[J]. 中國(guó)組織工程

        研究, 2014, 18(50): 8162-8167.

        [13]DING G, NIU J Y, LIU Y. Dental pulp stem cells

        suppress the proliferation of lymphocytes via

        transforming growth factor- β1[J]. Hum Cell, 2015,

        28(2): 81-90.

        [14]SHEN Z S, KUANG S H, ZHANG Y, et al. Chitosan

        hydrogel incorporated with dental pulp stem cell-derived

        exosomes alleviates periodontitis in mice via a

        macrophage-dependent mechanism[J]. Bioact Mater,

        2020, 5(4): 1113-1126.

        [15]LEE S, ZHANG Q Z, KARABUCAK B, et al.

        DPSCs from inflamed pulp modulate macrophage

        function via the TNF-α/IDO axis[J]. J Dent Res, 2016,

        95(11): 1274-1281.

        [16]OMI M, HATA M, NAKAMURA N, et al.

        Transplantation of dental pulp stem cells suppressed

        inflammation in sciatic nerves by promoting macrophage

        polarization towards anti-inflammation phenotypes and

        ameliorated diabetic polyneuropathy [J]. J Diabetes

        Investig, 2016, 7(4): 485-496.

        [17]CAI G F, CAI G L, ZHOU H C, et al. Mesenchymal

        stem cell-derived exosome miR-542-3p suppresses

        inflammation and prevents cerebral infarction[J]. Stem

        Cell Res Ther, 2021, 12(1): 2.

        [18]LIU C, HU F Q, JIAO G L, et al. Dental pulp stem

        cell-derived exosomes suppress M1 macrophage

        polarization through the ROS-MAPK-NFκB P65

        signaling pathway after spinal cord injury[J].

        J Nanobiotechnol, 2022, 20(1): 65.

        [19]SASAKI J I, ZHANG Z, OH M, et al. VE-cadherin

        and anastomosis of blood vessels formed by dental stem

        cells[J]. J Dent Res, 2020, 99(4): 437-445.

        [20]ZOU T, JIANG S, DISSANAYAKA W L, et al.

        Sema4D/PlexinB1 promotes endothelial differentiation

        of dental pulp stem cells via activation of AKT and

        ERK1/2 signaling[J]. J Cell Biochem, 2019, 120(8):

        13614-13624.

        [21]DELLE MONACHE S, MARTELLUCCI S,

        CLEMENTI L, et al. In vitro conditioning determines

        the capacity of dental pulp stem cells to function as

        pericyte-like cells[J]. Stem Cells Dev, 2019, 28(10):

        695-706.

        [22]ZHOU Y, GU K, SUN F Y, et al. Comparison of the

        angiogenic ability between SHED and DPSC in a mice

        model with critical limb ischemic[J]. Tissue Eng Regen

        Med, 2022, 19(4): 861-870.

        [23]KUMAR A, YUN H M, FUNDERBURGH M L,

        et al. Regenerative therapy for the Cornea[J]. Prog Retin

        Eye Res, 2022, 87: 101011.

        [24]SAGHIZADEH M, KRAMEROV A A, SVENDSEN C N,

        et al. Concise review: stem cells for corneal wound

        healing[J]. Stem Cells, 2017, 35(10): 2105-2114.

        [25]SANGWAN V S, SHARP J A H. Simple limbal

        epithelial transplantation[J]. Curr Opin Ophthalmol,

        2017, 28(4): 382-386.

        [26]LIANG L Y, LUO X H, ZHANG J, et al. Safety and

        feasibility of subconjunctival injection of mesenchymal

        stem cells for acute severe ocular burns: a single-arm

        study[J]. Ocul Surf, 2021, 22: 103-109.

        [27]NIETO-NICOLAU N, MARTíNEZ-CONESA E M,

        VELASCO-GARCíA A M, et al. Xenofree generation

        of limbal stem cells for ocular surface advanced cell

        therapy[J]. Stem Cell Res Ther, 2019, 10(1): 374.

        [28]WANG Y H, HU X D, YANG K, et al. Clinical

        outcomes of modified simple limbal epithelial

        transplantation for limbal stem cell deficiency in Chinese

        population: a retrospective case series[J]. Stem Cell Res

        Ther, 2021, 12(1): 259.

        [29]SABATER A L, PEREZ V L. Amniotic membrane

        use for management of corneal limbal stem cell

        deficiency[J]. Curr Opin Ophthalmol, 2017, 28(4):

        363-369.

        [30]TSENG S C, PRABHASAWAT P, BARTON K,

        et al. Amniotic membrane transplantation with or without

        limbal allografts for corneal surface reconstruction in

        patients with limbal stem cell deficiency [J]. Arch

        Ophthalmol, 1998, 116(4): 431-441.

        [31]KUSHNEREV E, SHAWCROSS S G,

        SOTHIRACHAGAN S, et al. Regeneration of corneal

        epithelium with dental pulp stem cells using a contact

        lens delivery system[J]. Invest Ophthalmol Vis Sci,

        2016, 57(13): 5192-5199.

        [32]TAKáCS L, TóTH E, BERTA A, et al. Stem cells

        of the adult cornea: from cytometric markers to

        therapeutic applications[J]. Cytometry A, 2009, 75(1):

        54-66.

        [33]GOMES J A, GERALDES MONTEIRO B, MELO G B,

        et al. Corneal reconstruction with tissue-engineered cell

        sheets composed of human immature dental pulp stem

        cells [J]. Invest Ophthalmol Vis Sci, 2010, 51(3):

        1408-1414.

        [34]SPILLER K L, ANFANG R R, SPILLER K J, et al.

        The role of macrophage phenotype in vascularization

        of tissue engineering scaffolds[J]. Biomaterials, 2014,

        35(15): 4477-4488.

        [35]徐麗娜, 何宇茜, 張 妍, 等. 角膜緣干細(xì)胞標(biāo)志物的

        研究進(jìn)展[J]. 國(guó)際眼科雜志, 2020, 20(12): 2064-2069.

        [36]SYED-PICARD F N, DU Y Q, LATHROP K L,

        et al. Dental pulp stem cells: a new cellular resource for

        corneal stromal regeneration [J]. Stem Cells Transl

        Med, 2015, 4(3): 276-285.

        [37]DU Y Q, SUNDARRAJ N, FUNDERBURGH M L,

        et al. Secretion and organization of a cornea-like tissue in

        vitro by stem cells from human corneal stroma[J]. Invest

        Ophthalmol Vis Sci, 2007, 48(11): 5038-5045.

        [38]WAGONER M D, BOHRER L R, ALDRICH B T,

        et al. Feeder-free differentiation of cells exhibiting

        characteristics of corneal endothelium from human

        induced pluripotent stem cells [J]. Biol Open,

        2018, 7(5): bio032102.

        [39]BOSCH B M, SALERO E, Nú?EZ-TOLDRà R,

        et al. Discovering the potential of dental pulp stem

        cells for corneal endothelial cell production: a proof of

        concept[J]. Front Bioeng Biotechnol, 2021, 9: 617724.

        [40]KAARNIRANTA K, BLASIAK J, LITON P, et al.

        Autophagy in age-related macular degeneration [J].

        Autophagy, 2023, 19(2): 388-400.

        [41]KAUR G, SINGH N K. Inflammation and retinal

        degenerative diseases[J]. Neural Regen Res, 2023,

        18(3): 513-518.

        [42]MIAO Y Y, ZHAO G L, CHENG S, et al. Activation

        of retinal glial cells contributes to the degeneration of

        ganglion cells in experimental glaucoma[J]. Prog Retin

        Eye Res, 2023, 93: 101169.

        [43]TAN T N, WONG T Y. Diabetic retinopathy: looking

        forward to 2030 [J]. Front Endocrinol, 2023, 13:

        1077669.

        [44]JU W K, PERKINS G A, KIM K Y, et al.

        Glaucomatous optic neuropathy: Mitochondrial

        dynamics, dysfunction and protection in retinal ganglion

        cells[J]. Prog Retin Eye Res, 2023, 95: 101136.

        [45]BRAY A F, CEVALLOS R R, GAZARIAN K, et al.

        Human dental pulp stem cells respond to cues from the

        rat retina and differentiate to express the retinal neuronal

        marker rhodopsin [J]. Neuroscience, 2014, 280:

        142-155.

        [46]ROOZAFZOON R, LASHAY A, VASEI M, et al.

        Dental pulp stem cells differentiation into retinal

        ganglion-like cells in a three dimensional network[J].

        Biochem Biophys Res Commun, 2015, 457(2): 154-160.

        [47]MEAD B, LOGAN A, BERRY M, et al. Intravitreally

        transplanted dental pulp stem cells promote

        neuroprotection and axon regeneration of retinal ganglion

        cells after optic nerve injury[J]. Invest Ophthalmol Vis

        Sci, 2013, 54(12): 7544-7556.

        [48]SAKAI K, YAMAMOTO A, MATSUBARA K, et al.

        Human dental pulp-derived stem cells promote

        locomotor recovery after complete transection of the

        rat spinal cord by multiple neuro-regenerative

        mechanisms[J]. J Clin Invest, 2012, 122(1): 80-90.

        [49]NOSRAT I V, WIDENFALK J, OLSON L, et al.

        Dental pulp cells produce neurotrophic factors, interact

        with trigeminal neurons in vitro, and rescue

        motoneurons after spinal cord injury[J]. Dev Biol,

        2001, 238(1): 120-132.

        [50]MEAD B, HILL L J, BLANCH R J, et al.

        Mesenchymal stromal cell-mediated neuroprotection and

        functional preservation of retinal ganglion cells in a

        rodent model of glaucoma[J]. Cytotherapy, 2016,

        18(4): 487-496.

        [51]ALSAEEDI H A, KOH A E H, LAM C, et al. Dental

        pulp stem cells therapy overcome photoreceptor cell

        death and protects the retina in a rat model of sodium

        iodate-induced retinal degeneration [J]. J Photochem

        Photobiol B, 2019, 198: 111561.

        [52]MEAD B, LOGAN A, BERRY M, et al. Concise

        review: dental pulp stem cells: a novel cell therapy for

        retinal and central nervous system repair[J]. Stem Cells,

        2017, 35(1): 61-67.

        [53]MEAD B, BERRY M, LOGAN A, et al. Stem cell

        treatment of degenerative eye disease[J]. Stem Cell

        Res, 2015, 14(3): 243-257.

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