蘭艷艷,楊 婷,黃秋玲,龐莉娜,陳小梅,王志福,俞向梅
(1.福建中醫(yī)藥大學附屬康復醫(yī)院,福建 福州 350003;2.福建中醫(yī)藥大學康復醫(yī)學院,福建 福州 350122;3.重慶市中醫(yī)院,重慶 400021;4.福建中醫(yī)藥大學中西醫(yī)結合學院,福建 福州 350122)
糖尿病周圍神經病變是糖尿病常見的嚴重微血管并發(fā)癥,總體患病率約為26%,其中近1/3 患者出現糖尿病周圍神經痛(diabetic neuropathic pain,DNP),臨床主要表現為肢體遠端感覺功能障礙,包括麻木、灼燒或刺痛,嚴重影響患者生活質量[1-3]。2018 年糖尿病周圍神經病理性疼痛診療專家共識及2019年《Nature Reviews Disease Primers》報道明確指出,DNP 誘導的氧化應激發(fā)生是驅動脊髓背角痛覺敏化的關鍵機制[4-5]。
核因子E2 相關因子2(NF-E2 related factor 2,Nrf2)作為一種重要的轉錄因子,參與調控多種抗氧化基因的轉錄過程[6]。在慢性疼痛過程中,胞質Nrf2 從Keap1 釋放進入細胞核,進而促進抗氧化應激基因(如HO-1、NQO1、SOD 和GCL 等)的轉錄[7-8]。研究表明,在DNP 發(fā)生時,脊髓背角Nrf2 表達顯著降低,而通過應用白藜蘆醇、筋骨草素二萜-1(ajugarin-1)等干預可顯著提高DNP 脊髓背角Nrf2 表達,減輕氧化應激。綜上所述,Nrf2的鎮(zhèn)痛作用可通過減少脊髓背角氧化應激而發(fā)揮作用[9-10]。DNP 屬中醫(yī)學“消渴”“痹證”范疇。臨床研究顯示,電針足三里、腎俞等可顯著降低糖尿病周圍神經痛[11-14]。本項目組前期研究證實,電針能夠顯著抑制DNP脊髓背角氧化應激[15],但是否與調控Nrf2 及相關基因表達,目前暫不清楚。
1.1實驗動物 SPF 級SD 雄性大鼠共28 只,體質量(220±30)g,均由福建中醫(yī)藥大學實驗動物中心[許可證號:SYXK(閩)2019-0007]購入,并飼養(yǎng)于SPF 級動物實驗室,予以自由飲水和進食,保持適宜的溫度、適度,并提供光照明暗交替以形成正常的晝夜節(jié)律。本研究通過福建中醫(yī)藥大學實驗倫理委員會審批(審批號:FJTCM2019-006),動物實驗嚴格遵循我國相關實驗動物規(guī)定及本校實驗動物中心的管理制度。
1.2主要試劑與耗材 鏈脲佐菌素(STZ,批號:S8050)、pH 4.5 0.1 mol/L檸檬酸緩沖液(批號:C1013)均購于北京索萊寶科技有限公司;Neun 抗體(批號:66836-1-Ig)購買于武漢三鷹生物技術有限公司;RNAs 提取試劑盒(批號:R223-01)購買于南京諾唯贊生物科技股份有限公司。PL-200 熱刺痛儀購買于成都泰盟軟件有限公司。0.25 mm×13 mm一次性無菌毫針、電子針療儀(型號:SDZ-Ⅱ)均購買于蘇州醫(yī)療用品有限公司。
2.1實驗分組 28 只SPF 級SD 雄性大鼠按照隨機數字法分別為對照組、模型組、電針組、Nrf2 干擾組,每組7 只。
2.2動物造模 參考文獻[16]的模型復制方法,具體操作如下:造模前1 d,大鼠禁食8 h。腹腔注射STZ(溶解于pH 4.5 的0.1 mol/L檸檬酸緩沖液),劑量為60 mg/kg。注射后第1 周、第2 周,通過葡萄糖試紙測量大鼠尾靜脈的空腹血糖水平,僅當大鼠連續(xù)2 次測量的空腹血糖值均>16.7 mmol/L 時,認定糖尿病模型復制成功。結合前期研究,糖尿病大鼠的熱痛潛伏期顯著低于對照組的1/2,則將其納入糖尿病周圍神經痛模型進行實驗[15]。
2.3脊髓鞘內注射 Nrf2 干擾組于造模前2 周鞘內注射Nrf2 病毒干擾劑[rAAV-U6-shRNA(rNfe22)-C),購買于購于布林凱斯(深圳)生物技術有限公司]。鞘內注射方法參考團隊前期研究[17],具體步驟如下:異氟烷快速麻醉,并使大鼠俯臥于操作臺上,充分暴露L4~L5椎間隙腰椎。確定注射位置并消毒后,使用27G 微量注射器垂直脊柱,緩慢傾斜45°并滑入關節(jié)間隙。感知落空感后固定針柄,以2 μL/min 速度緩慢注射,總注入20 μL/只,緩慢拔出注射器。
2.4干預方法 電針組、Nrf2 干擾組在造模2 周后開始進行干預,隔日電針1次,每周3次,共電針4周。具體操作如下:將大鼠固定在專用固定架上,參照《實用腕踝針療法》[18]選取大鼠雙側“足三里”與“腎俞”穴,0.25 mm×13 mm一次性無菌毫針以5 mm的深度刺入,電針參數為10 Hz 頻率、0.5 mA 電流,連續(xù)波,每次30 min[19-20]。對照組和模型組進行相同的固定操作,但不進行電針干預。干預結束后,將所有大鼠放回各自的籠內飼養(yǎng)。
2.5標本取材及制備 樣本分為新鮮蛋白組織和多聚甲醛固定病理切片2 類。末次熱痛潛伏期測量后,各組隨機抽取4 只大鼠,斷頭處死大鼠,低溫快速取出大鼠脊髓背角新鮮組織,液氮速凍后及時存放于-80 ℃冰箱中;各組取3 只大鼠經心灌注固定,選取大鼠脊髓進行多聚甲醛固定制作冰凍切片。
2.6觀察指標及檢測方法
2.6.1足底熱痛潛伏期 采用PL-200 熱刺痛儀測量,操作參考文獻[21]具體如下:將大鼠放入15 cm×15 cm×15 cm 的有機玻璃箱中適應15 min。然后,將儀器的光源對準大鼠足掌,光源強度設定為30%。設定自動切斷時間為30 s,按下開關后,記錄大鼠抬足或舔足的時間。每只大鼠分別在造模前、造模后2 周、造模后6 周進行測量,每次間隔至少5 min。為避免足底受傷,保持檢測時間段一致,減少晝夜節(jié)律對疼痛閾值的影響。
2.6.2免疫熒光法檢測4 組大鼠脊髓背角Nrf2 與Neun 共定位情況 4 組大鼠脊髓背角冰凍切片,通過蛋白酶K 消化后添加Nrf2 原位雜交探針進行過夜雜交,利用SSC 溶液洗滌去除非特異性結合,接著進行免疫熒光,先后孵育一抗和二抗以標記Neun,使用DAPI 進行核染色,最后在熒光顯微鏡下觀察。
2.6.3qPCR 檢測4 組大鼠Nrf2 及其相關基因mRNA 和調控基因miRNA 的相對表達水平 取出4 組脊髓背角新鮮組織勻漿離心,每管加入1 mL RNA Isolator,提取RNA 樣本根據試劑盒逆轉錄合成cDNA。根據mRNA、miRNA 序列,按照相應的種屬選取GAPDH、U6 作為內參基因;采用qPCR 技術以及2-ΔΔCT法計算上述基因相對表達水平。引物序列見表1。
表1 引物序列
2.7統(tǒng)計學方法 采用SPSS 22.0 統(tǒng)計學軟件分析。計量資料符合正態(tài)分布采用(±s)表示,組間比較采用方差分析,進一步兩兩比較采用LSD-t法,重復測量數據采用重復測量方差分析。以P<0.05表示差異具有統(tǒng)計學意義。
3.14 組大鼠足底熱痛潛伏期比較 見表2。
表2 4 組大鼠足底熱痛潛伏期比較(±s)s
表2 4 組大鼠足底熱痛潛伏期比較(±s)s
注:與對照組比較,1) P<0.05;與模型組比較,2) P<0.05;與電針組比較,3) P<0.05。
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3.24 組大鼠脊髓背角Nrf2 與神經元標記物NeuN共定位比較 對照組大鼠脊髓背角Nrf2 與神經元標記物NeuN 存在大量共表達,提示Nrf2 大量表達在脊髓背角神經元上;模型組大鼠脊髓背角提示神經元上Nrf2 顯著降低;電針組大鼠經腎俞、足三里電針干預后神經元上Nrf2 表達顯著升高;Nrf2 干擾組大鼠經電針后,Nrf2仍處于低水平表達。見圖1。
圖1 4 組脊髓背角Nrf2 在神經元上的表達情況
3.34 組大鼠脊髓背角Nrf2、Keap1、NQO1、HO-1、Catalase mRNA 相對表達水平比較 見表3。
表3 4 組脊髓背角Nrf2、Keap1、NQO1、HO-1、Catalase mRNA 相對表達水平比較(±s)
表3 4 組脊髓背角Nrf2、Keap1、NQO1、HO-1、Catalase mRNA 相對表達水平比較(±s)
注:與對照組比較,1) P<0.05;與模型組比較,2) P<0.05;與電針組比較,3) P<0.05。
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3.44 組大鼠脊髓背角miRNA 相對表達水平比較 見表4。
表4 4 組小鼠脊髓背角miR-144-3p、miR-155-5p、miR-17-5p、miR-497-5P 相對表達水平比較(±s)
表4 4 組小鼠脊髓背角miR-144-3p、miR-155-5p、miR-17-5p、miR-497-5P 相對表達水平比較(±s)
注:與對照組比較,1) P<0.05;與模型組比較,2) P<0.05;與電針組比較,3) P<0.05。
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糖尿病周圍神經痛(DNP)是糖尿病最常見的并發(fā)癥之一,臨床表現為肢體刺痛,屬中醫(yī)學“痹證”范疇。根據痹癥所在部位,取相應臟腑的腧穴或合穴治療作為針灸治療痹證的康復原則,取穴主要有腎俞、足三里等。足三里為足陽明經之要穴,具有活血通絡、除痹止痛的功效,可有效改善DNP癥候。晉代·皇甫謐《針灸甲乙經》載:“消渴身熱……陰氣不足,熱中消谷善饑……足三里主之?!薄鹅`樞》載:“著痹不去,久寒不已,卒取其三里骨為干”,可治下肢痿痹不遂[22]。腎俞穴為腎中經氣輸注的部位,具有滋補腎陰作用,可有效控制血糖水平,調節(jié)血脂,并調整微血管病變[23]。《千金方》言:“消渴小便數……又灸背上脾俞下四十、腎俞兩處?!毖芯孔C實,電針足三里、腎俞等穴可明顯改善DPN痛覺過敏,如減輕脊髓背角氧化應激,改善周圍神經感覺和運動傳導速度(SNCV、MNCV)[24-26]。
DNP 中樞敏化與脊髓背角氧化應激密切相關,Nrf2 作為一種重要的轉錄因子,參與調控多種抗氧化基因轉錄過程。研究證實,在DNP 發(fā)生時,脊髓背角Nrf2 表達顯著降低,應用中藥及有效成分可顯著提高DNP 脊髓背角Nrf2 表達,調控氧化應激基因轉錄,降低痛敏反應[9-10]。本實驗研究表明,電針治療可顯著提高脊髓背角Nrf2 表達,降低Keap1 釋放,提高如NQO1、HO-1、Catalase mRNA 相對表達水平,提示電針可能通過解除Nrf2 與Keap1 結合,促進Nrf2 核內轉錄,從而促進抗氧化應激相關因子如NQO1、HO-1、Catalase 的表達,減輕疼痛反應。通過鞘內注射Nrf2 表達干擾病毒,可逆轉電針的鎮(zhèn)痛效果,進一步驗證電針可能通過脊髓背角Nrf2/Keap1 抗氧化應激途徑,減輕DNP 熱痛覺過敏反應,深層的機制有待今后進一步研究。
miRNA 是一類非編碼RNA,參與轉錄后基因調控,研究其功能及表達有助于更好地了解疾病發(fā)生與干預的分子作用機制。研究表明,miRNA 在糖尿病及其相關并發(fā)癥中扮演著關鍵角色。miR-497 通過抑制USP15,參與調控糖尿病神經性疼痛的進程,顯示出潛在的治療作用[27]。同時,環(huán)境內分泌干擾物DEHP 誘導的胰島素抵抗中,miR-17 和miR-200a 通過影響胰島素信號傳遞的關鍵環(huán)節(jié),展現了調控胰島素抵抗的復雜機制[28]。此外,鋅暴露與2 型糖尿病(T2DM)的發(fā)展密切相關,其中miR-144-3p 通過影響Nrf2 和抗氧化酶表達,參與鋅誘導的胰島素抵抗,進一步揭示了miRNA 在糖尿病發(fā)展中的多重作用機制[29]。本研究實驗結果表明,DPN 發(fā)生時脊髓背角miR-144-3p 顯著上調,電針可顯著逆轉miR-144-3p 過表達,而鞘內注射Nrf2 受體病毒干擾降低電針效應。但miR-155-5p、miR-17-5p 和miR-497-5P 在電針干預DPN 模型中沒有顯示出顯著差異。
綜上所述,電針足三里、腎俞可能通過調節(jié)脊髓背角Nrf2/Keap1 氧化應激重要通路,提高Nrf2 表達,降低Keap1 含量,升高NQO1、HO-1、Catalase 基因相對表達水平,并減少Nrf2 密切相關基因miR-144-3p 表達,從而提高糖尿病神經痛大鼠熱痛潛伏期,減輕痛敏反應。