廖一羲，王 搏，邱志廣，李明艷，張彩麗，田燕歌，

（1呼吸疾病中醫(yī)藥防治省部共建協(xié)同創(chuàng)新中心，河南省中醫(yī)藥防治呼吸病重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，河南 鄭州 450046；2中醫(yī)藥科學(xué)院，河南 鄭州 450046）

肺纖維化（pulmonary fibrosis，PF）是由多種因素（包括遺傳、感染和環(huán)境暴露等）引起的一種間質(zhì)性肺疾病，其主要病理表現(xiàn)為肺泡結(jié)構(gòu)破壞、肺成纖維細(xì)胞增殖和細(xì)胞外基質(zhì)沉積，導(dǎo)致廣泛瘢痕形成，臨床表現(xiàn)為進(jìn)行性呼吸困難和肺功能進(jìn)行性惡化［1-3］。隨著全球老齡化的進(jìn)展，PF發(fā)病率呈逐年上升趨勢(shì)，預(yù)后不良［4-5］。目前缺乏有效的治療手段，符合臨床病理特征的動(dòng)物模型是探討疾病發(fā)病機(jī)理、尋求有效療法的關(guān)鍵。一次性氣管內(nèi)滴注博來霉素（bleomycin，BLM）是目前研究中最為常用的PF 模型制備方法［6］。然而，目前對(duì)于此模型成模特點(diǎn)評(píng)價(jià)仍較為片面，且評(píng)價(jià)時(shí)間多為造模后28 d。因此，本研究基于此造模方法，于模型建立42 d通過檢測(cè)肺功能、肺部CT、肺組織病理、肺組織超微結(jié)構(gòu)變化等指標(biāo)，較為全面地評(píng)價(jià)模型的成模特點(diǎn)，為基礎(chǔ)研究應(yīng)用提供參考。

材 料 和 方 法

1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

清潔級(jí)6～8 周齡雄性SD 大 鼠24 只，體 質(zhì)量（200～240）g，購自斯貝福（北京）生物技術(shù)有限公司，合格證號(hào)為SCYK（京）2019-0015，動(dòng)物質(zhì)量合格證號(hào)為110324220102348616，飼養(yǎng)于河南中醫(yī)藥大學(xué)動(dòng)物中心，已通過倫理審核，倫理編號(hào)為DWLL202208003。

2 主要試劑

鹽酸博來霉素（批號(hào)：610740）購自日本化藥株式會(huì)社；蘇木素染液（批號(hào)：20220516）、伊紅染液（批號(hào)：ZH192715）、Masson 三色染色試劑盒（批號(hào)：20180708）和Gluta 固定液（批號(hào)：20221026）購自索萊寶生物科技有限公司；異氟烷（批號(hào)：031217015，河北金達(dá)福藥業(yè)有限公司）；SPI-PON 812 Epoxy Resin Monomer（批號(hào)：1260804）和SPI Chem Accelerator，DY064（批號(hào)：1260810）購自SPI。

3 主要儀器

高分辨離活一體微型CT NEMO?Micro CT（平生醫(yī)療科技有限公司）；RM2145 型自動(dòng)切片機(jī)（Leica）；TEM1400 透射電鏡（JEOL）；MCR 302e 型流變儀（Anton Paar）；EMTP 型全自動(dòng)樹脂處理機(jī)（Leica）；CK40 倒置相差顯微鏡（Olympus）；Pannoramic MIDI型掃描儀（3D HISTECH）；FinePointe?series 動(dòng)物肺功能檢測(cè)系統(tǒng)（BUXCO）。

4 實(shí)驗(yàn)方法

4.1 PF 模型建立 24 只動(dòng)物按照隨機(jī)數(shù)字表法隨機(jī)分為2 組，包括對(duì)照（control）組和模型（model）組，每組12 只。采用1%戊巴比妥鈉50 mg/kg 進(jìn)行大鼠麻醉，使麻醉后的大鼠平躺在動(dòng)物操作臺(tái)上，在咽喉部冷光源照射下，使用氣管導(dǎo)管經(jīng)聲門裂進(jìn)行氣管插管，模型組滴入3 mg/kg BLM 后，即令大鼠懸垂并旋轉(zhuǎn)，以便藥物在肺內(nèi)均勻分布，對(duì)照組注入等量的生理鹽水。造模完成后觀察大鼠狀態(tài)，待大鼠完全清醒后歸籠。密切觀察大鼠生存狀態(tài)，記錄大鼠死亡時(shí)點(diǎn)，進(jìn)行生存曲線繪制。造模方案及試劑劑量均參照本實(shí)驗(yàn)室有關(guān)前期研究［7-8］，造模后42 d 進(jìn)行模型評(píng)價(jià)。

4.2 肺部CT 大鼠造模第42 天，采用異氟烷吸入麻醉法，氣體流量調(diào)節(jié)為500～700 mL/min，誘導(dǎo)濃度調(diào)節(jié)為3%～4%，待麻醉劑充滿誘導(dǎo)盒，約1 min 后，將動(dòng)物放入誘導(dǎo)盒，隨即關(guān)閉，等待動(dòng)物完全麻醉。此時(shí)維持濃度調(diào)節(jié)為2%～2.5%，從誘導(dǎo)盒取出動(dòng)物，使其俯臥于高分辨離活一體微型CT 的專用板上，持續(xù)吸入麻醉，調(diào)節(jié)各項(xiàng)參數(shù)后進(jìn)行肺部CT 掃描。掃描結(jié)束后采用Recon 軟件的迭代算法進(jìn)行肺部CT 重構(gòu)。將重構(gòu)后的CT 圖像導(dǎo)入Mimics Research 21.0 進(jìn)行圖片采集。參數(shù)：管電壓60 KV，管電流0.15 mA。

4.3 肺功能 采用1%戊巴比妥鈉按照50 mg/kg 的劑量麻醉后，大鼠行氣管插管后，用FinePointe?series 動(dòng)物肺功能檢測(cè)系統(tǒng)檢測(cè)大鼠的用力肺活量（forced vital capacity，F(xiàn)VC）及動(dòng)態(tài)肺順應(yīng)性（dynamic lung compliance，Cdyn）等指標(biāo)［9］。

4.4 肺組織硬度測(cè)試 使用流變儀 MCR 302e測(cè)量小鼠肺組織的儲(chǔ)能模量（G'）和損耗模量（G''），進(jìn)而獲得其楊氏模量（Young's modulus）［10］。相應(yīng)的楊氏模量使用以下公式計(jì)算：E = 2G（1 + υ）；G = G'2 +G''2。公式中：E：楊氏模量，υ：材料的泊松比（肺組織為0.4），G：剪切模量，G'：儲(chǔ)能模量，G''：損耗模量。

4.5 肺組織病理檢測(cè) 肺組織用甲醛固定，梯度脫水，石蠟包埋。

4.5.1 HE 染色 石蠟切片逐級(jí)脫蠟至水；蘇木素染色4 min，1%鹽酸乙醇分化，流水沖洗；伊紅染液中染色4 min，流水沖洗；切片依次逐級(jí)放入濃度更高的乙醇及二甲苯中透明，晾干后，中性樹膠封片。采用Pannoramic MIDI 掃描儀進(jìn)行掃描，用slide-viewer軟件進(jìn)行圖片采集，采用Szapiel 評(píng)分系統(tǒng)［11］進(jìn)行肺泡炎評(píng)分，見表1。

表1 Szapiel評(píng)分系統(tǒng)Table 1. Szapiel score system

4.5.2 Masson染色 與HE切片的脫蠟方法相同；切片放入重鉻酸鉀浸泡過夜；放入蘇木素染液浸染，流水沖洗后，1%鹽酸乙醇分化；切片放入麗春紅酸性品紅浸染，流水沖洗；分別于磷鉬酸水溶液浸染后于苯胺藍(lán)染液染；1%冰醋酸分化后，無水乙醇脫水。切片透明、封片以及圖片采集與HE 染色方法相同。采用Ashcroft 半定量評(píng)分系統(tǒng)［12］進(jìn)行肺部纖維化評(píng)分，見表2。

4.6 透射電鏡觀察 肺組織切成1 mm×1 mm×1 mm 后于2.5%戊二醛電鏡固定液中固定4 h，PBS 洗后以1%鋨酸固定液固定1.5 h，梯度乙醇逐級(jí)脫水，丙酮脫水，812 環(huán)氧樹脂包埋過夜，聚合后行超薄切片，飽和醋酸雙氧鈾水溶液染色10 min，檸檬酸鉛溶液染色8 min 后烘干。采用日本電子TEM1400 透射電鏡觀察以下超微結(jié)構(gòu)：膠原纖維；II 型肺泡上皮細(xì)胞（alveolar type II epithelial cells，AEC II）中的板層小體（lamellar bodies，LBs）、線粒體（mitochondrion，Mi）和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)（endoplasmic reticulum，ER）；巨噬細(xì)胞；呼吸膜形態(tài)變化（并測(cè)量呼吸膜厚度）。該實(shí)驗(yàn)委托河南中醫(yī)藥大學(xué)中醫(yī)藥科學(xué)院電鏡中心完成。

5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

采用SPSS 25.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析，采用GraphPad Prism 8 軟件進(jìn)行繪圖。計(jì)量數(shù)據(jù)用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差（mean±SD）表示。組間均數(shù)比較采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)。以P＜0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

結(jié) 果

1 生存曲線

模型組大鼠的生存曲線如圖1所示。結(jié)果顯示，造模第2天死亡1只，解剖見肺淤血較嚴(yán)重，可能為造模不耐受死亡；第14～28 天死亡2 只，解剖均見雙肺肺門部有大片白色斑片出現(xiàn)，可能為肺部病變較重死亡；至42 d，模型組有9只存活，存活率為75%。

2 肺部CT

對(duì)照組雙肺支氣管走行光滑規(guī)則、血管分布均勻，肺紋理清晰；模型組以肺門部病變較嚴(yán)重，可見牽張性支氣管擴(kuò)張/細(xì)支氣管擴(kuò)張，雙肺可見蜂窩影及網(wǎng)狀密度增高影，部分可見肺不張現(xiàn)象，見圖2。

Figure 2. CT images of rat lungs in control group （A） and model group （B）. Atelectasis in the left lung with honeycomb and lattice shadows in the hilar region of both lungs （solid arrows）.圖2 大鼠肺CT圖像

3 大鼠肺功能及肺組織硬度變化

與對(duì)照組比較，模型組大鼠用力肺活量（forced vital capacity，F(xiàn)VC）和動(dòng)態(tài)肺順應(yīng)性（dynamic lung compliance，Cdyn）均顯著降低（P＜0.05），見圖3A；與對(duì)照組比較，模型組大鼠肺組織硬度顯著升高（P＜0.05），見圖3B。

4 大鼠肺外觀及肺組織病理

4.1 肺外觀 造模42 d，解剖可見對(duì)照組大鼠肺臟呈淡紅色，顏色均勻，質(zhì)地柔軟且均一；模型組大鼠肺顏色較暗淡，肺組織較腫脹，肺上可見散在暗紅色出血點(diǎn)及白色斑塊狀病變，顏色及質(zhì)地不均勻，質(zhì)地較對(duì)照組偏硬，見圖4A。

4.2 肺組織病理的變化 HE 染色分析可見，與對(duì)照組相比，模型組可見肺泡結(jié)構(gòu)被破壞，炎癥反應(yīng)細(xì)胞浸潤，肺泡壁增厚，纖維條索出現(xiàn)，見圖4A。病理評(píng)分顯示，模型組肺泡炎較為嚴(yán)重，與對(duì)照組相比具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P＜0.01），見圖4B。Masson 染色分析可見，與對(duì)照組相比，模型組在在肺泡及細(xì)支氣管壁出現(xiàn)纖維增生，且肺泡結(jié)構(gòu)破壞，肺組織中可見大量膠原纖維成片狀生成，見圖4A。病理評(píng)分顯示，模型組纖維化較為嚴(yán)重，與對(duì)照組相比具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P＜0.01），見圖4C。

5 超微結(jié)構(gòu)

5.1 膠原沉積情況 對(duì)照組大鼠肺組織膠原纖維沉積較少，在動(dòng)脈中膜及內(nèi)皮下層可見少量膠原纖維；模型組大鼠肺組織中可見大片膠原纖維沉積，肺泡上皮細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞周圍可見大量膠原纖維，且排列紊亂，部分成束狀定向排列，纖維直徑較均一，見圖5。

5.2 AEC II 電鏡下對(duì)照組AEC II 結(jié)構(gòu)清晰，包膜完整，細(xì)胞未見腫脹，細(xì)胞表面可見較多排列整齊的微絨毛，細(xì)胞核居中，染色質(zhì)均勻；胞質(zhì)豐富，ER、LBs 等細(xì)胞器結(jié)構(gòu)未見明顯異常；Mi 膜清晰，嵴排列均勻，未見明顯腫脹。模型組可見細(xì)胞包膜破壞，胞內(nèi)基質(zhì)局部溶解，細(xì)胞分界不清，細(xì)胞表面的微絨毛減少且排列不齊；細(xì)胞核成不規(guī)則多邊形，較皺縮，核染色質(zhì)凝集粗塊狀，異染色質(zhì)較多；胞質(zhì)中細(xì)胞器結(jié)構(gòu)破壞；Mi 腫脹，嵴斷裂及空泡化。模型組Mi 顯著減少（P＜0.05）；ER 擴(kuò)張，出現(xiàn)脫顆?，F(xiàn)象；LBs 數(shù)量顯著減少（P＜0.05），呈現(xiàn)空泡化。見圖6。

5.3 巨噬細(xì)胞 對(duì)照組巨噬細(xì)胞呈卵圓形，表面出現(xiàn)長度不一的扁平狀胞質(zhì)突起；細(xì)胞核大而圓，染色質(zhì)細(xì)密，異染色質(zhì)多集中于核周邊；細(xì)胞質(zhì)內(nèi)含有較多的溶酶體，初級(jí)溶酶體較多。模型組間質(zhì)巨噬細(xì)胞及肺泡腔內(nèi)巨噬細(xì)胞數(shù)量顯著增多，細(xì)胞體積較大，胞質(zhì)內(nèi)溶酶體豐富，次級(jí)溶酶體及殘?bào)w較多。與對(duì)照組相比，模型組大鼠肺間質(zhì)巨噬細(xì)胞數(shù)量顯著增多（P＜0.01）。見圖7。

Figure 7. Ultrastructure of macrophages. A： ultrastructure of macrophages in control and model groups （scale bar=10 μm for original electron microscopic images； scale bar=2 μm for detail electron microscopic image in control group； scale bar=5 μm for detailed electron microscopic image in model group）； B： macrophage counts. Mean±SD. n=6. **P＜0.01 vs control group.圖7 巨噬細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)

5.4 呼吸膜 對(duì)照組呼吸膜厚薄均勻、質(zhì)地平滑、層次清晰；模型組呼吸膜結(jié)構(gòu)破壞，可見斷裂現(xiàn)象，顯著增厚（P＜0.01），且厚度不均勻，部分呈凸起狀，以肺泡上皮基膜增厚與毛細(xì)血管基膜間隙增寬為主，見圖8。

Figure 8. Ultrastructure of respiratory membrane. A： ultrastructure of respiratory membrane in control and model groups （scale bar=1 μm）； B： analysis of respiratory membrane thickness in control and model groups. Mean±SD. n=9. **P＜0.01 vs control group.圖8 呼吸膜超微結(jié)構(gòu)

討 論

PF 是一種慢性、進(jìn)行性的間質(zhì)性肺疾?。?3］。目前PF 的發(fā)病機(jī)制尚未完全明確，普遍認(rèn)為是肺泡上皮細(xì)胞反復(fù)損傷及異常修復(fù)后，大量細(xì)胞因子及生長因子的釋放，導(dǎo)致膠原過度沉積等病理改變［14-15］。患者出現(xiàn)進(jìn)行性肺功能下降、呼吸困難甚至呼吸衰竭死亡，嚴(yán)重危害患者的心理健康和生存質(zhì)量，給社會(huì)造成巨大的經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)［16-17］。

動(dòng)物模型是研究肺纖維化病理變化及新藥研究的主要工具。BLM 誘導(dǎo)的肺纖維化模型以其良好的可重復(fù)性和易于誘導(dǎo)性，且能夠重現(xiàn)PF 的許多表征，成為目前使用廣泛的動(dòng)物模型［18-20］。因此，基于文獻(xiàn)及前期研究，本研究選擇SD 大鼠，采用經(jīng)口咽部無創(chuàng)一次性氣管內(nèi)滴注BLM（3 mg/kg）的方法誘導(dǎo)PF 模型［8］，以造模后42 d 作為模型評(píng)價(jià)的時(shí)點(diǎn)，以評(píng)價(jià)模型的特點(diǎn)及穩(wěn)定性。

本組研究資料顯示，BLM 誘導(dǎo)42 d 大鼠出現(xiàn)肺組織中肺泡結(jié)構(gòu)破壞，纖維條索形成，肺功能下降。肺組織超微結(jié)構(gòu)顯示，肺泡上皮、內(nèi)皮細(xì)胞周圍大量膠原纖維沉積，AEC II 表面微絨毛減少，Mi 腫脹，ER擴(kuò)張，LBs 空泡化。在PF 發(fā)生發(fā)展中，AEC II 一方面通過上皮間質(zhì)化獲得間充質(zhì)表型，分化為肌成纖維細(xì)胞產(chǎn)生大量細(xì)胞外基質(zhì)（extracellular matrix，ECM），導(dǎo)致PF；另一方面AEC II 的上皮間質(zhì)化導(dǎo)致肺泡上皮的修復(fù)能力降低并加速PF 的發(fā)展［21］。Mi功能障礙在PF 中出現(xiàn)較早且是上皮細(xì)胞損傷的標(biāo)志之一，可導(dǎo)致AEC II 對(duì)應(yīng)激不耐受［22-23］。同時(shí)AEC II 通過表面活性劑的產(chǎn)生和分泌維持有效的氣體交換，表面活性劑儲(chǔ)存于LBs 中，發(fā)揮保持表面張力、維持肺泡正?？臻g結(jié)構(gòu)的作用［24］，故LBs 是鑒別AEC II 分泌功能是否正常的最直接方法［25］。因此，本研究顯示的PF 大鼠AEC II 周圍大量膠原沉積，可能與上皮間質(zhì)化有關(guān)；Mi作為細(xì)胞的能量中心，其數(shù)量減少及腫脹表明AEC II 的增殖及修復(fù)功能下降；LBs 減少及空泡化表明AEC II 對(duì)于表面活性劑的分泌功能降低，難以維持肺泡正常結(jié)構(gòu)而致其塌陷或不張，與本研究CT表征一致。

電鏡觀察到PF 大鼠肺泡巨噬細(xì)胞數(shù)量增多，聚集在肺泡腔中，表明機(jī)體仍處于炎癥狀態(tài)，肺損傷較嚴(yán)重，巨噬細(xì)胞募集以驅(qū)動(dòng)組織修復(fù)。巨噬細(xì)胞分泌巨噬細(xì)胞集落刺激因子進(jìn)行自我維持，并產(chǎn)生血小板衍生生長因子亞基A、精氨酸酶1、基質(zhì)金屬蛋白肽酶13 等，同時(shí)大量表達(dá)促纖維化趨化因子，募集纖維細(xì)胞，促進(jìn)纖維化形成。在巨噬細(xì)胞組織修復(fù)過程中，產(chǎn)生白細(xì)胞介素4等，促進(jìn)巨噬細(xì)胞向M2極化［26］。

呼吸膜由肺表面活性物質(zhì)的液體層、肺泡上皮細(xì)胞層、上皮基底膜、肺泡上皮與毛細(xì)血管膜之間的間隙、毛細(xì)血管基膜、毛細(xì)血管內(nèi)皮細(xì)胞層構(gòu)成，是維持正常氣體交換的主要結(jié)構(gòu)［27］，PF 大鼠呼吸膜層次不清，邊緣模糊，可能與肺泡上皮和內(nèi)皮細(xì)胞結(jié)構(gòu)破壞有關(guān)，呼吸膜增厚導(dǎo)致有效氣體交換面積減少，因而出現(xiàn)肺功能下降。臨床上表現(xiàn)為肺彌散功能下降可能與此有關(guān)。

可見，BLM 導(dǎo)致AEC II結(jié)構(gòu)和功能受損，修復(fù)能力有限，合成和分泌的肺泡表面活性物質(zhì)減少，肺泡結(jié)構(gòu)塌陷。呼吸膜增厚，有效氣體交換面積減少，影響肺通氣功能，故出現(xiàn)肺功能下降。炎癥細(xì)胞浸潤，膠原纖維及細(xì)胞外基質(zhì)沉積，片狀纖維斑片出現(xiàn)，纖維條索形成，使肺組織硬度增加。

然而，PF大鼠CT影像表現(xiàn)與尋常型間質(zhì)性肺炎（usual interstitial pueumonia，UIP）患者在基底及胸膜下出現(xiàn)纖維化的CT 表現(xiàn)稍有出入，可能與氣管內(nèi)滴注的誘導(dǎo)方式具有一定關(guān)系，并且部分PF 大鼠可見肺不張現(xiàn)象，可能因大量纖維沉積導(dǎo)致肺實(shí)變出現(xiàn)，進(jìn)而出現(xiàn)肺痿廢不用［28-31］。

總之，一次性氣管內(nèi)滴注3 mg/kg BLM 可成功誘導(dǎo)PF 模型。因BLM 的肺毒性導(dǎo)致的蜂窩樣改變是間質(zhì)性肺疾病的特征表現(xiàn)，亦出現(xiàn)特征性斑片狀實(shí)質(zhì)炎癥、反應(yīng)性上皮增生以及上皮-間充質(zhì)轉(zhuǎn)化、ECM 沉積等表現(xiàn)，與特發(fā)性肺纖維化（idiopathic pulmoanry fibrosis，IPF）的表現(xiàn)相似。因此，該模型可用于建立IPF模型［32］。然而，盡管該模型已被證實(shí)與臨床纖維化發(fā)生的許多細(xì)胞及分子機(jī)制具有一致性，但仍存在許多局限性。從纖維化分布來看，臨床UIP多以下肺近胸膜部為主［3］，而誘導(dǎo)的PF 模型纖維化區(qū)域多集中在支氣管周圍，以肺門部較為嚴(yán)重；從疾病進(jìn)程來看，誘導(dǎo)的PF 模型在誘導(dǎo)的前7 d 為初始炎癥期，炎癥消退后的纖維化期才與臨床PF 表現(xiàn)相似［33］；從可逆性來看，臨床PF 為慢性、不可逆性疾病，而誘導(dǎo)的PF 模型通常具有自限性及可逆性［27］；另外，臨床PF 好發(fā)于中老年人群，衰老因素對(duì)疾病的影響較大，由于實(shí)驗(yàn)時(shí)間及條件的限制，誘導(dǎo)老年動(dòng)物PF 模型的研究較少［34］。因此，進(jìn)一步研究將致力于構(gòu)建更為接近人類病理特征的PF動(dòng)物模型。