摘要 神經(jīng)酸(NA)是一種超長鏈單不飽和脂肪酸,為大腦神經(jīng)纖維髓鞘的核心成分,具有修復(fù)受損大腦神經(jīng)纖維、促進(jìn)神經(jīng)細(xì)胞再生等功能。因此,NA 受到越來越多的研究和關(guān)注。目前NA 主要依賴于從天然物種中提取,難以滿足市場需要,限制其進(jìn)一步發(fā)展和應(yīng)用。近年來,隨著基因工程以及合成生物學(xué)的發(fā)展,通過多基因策略,在現(xiàn)有物種中構(gòu)建NA 代謝路徑,可經(jīng)濟(jì)且可持續(xù)地獲得NA,以滿足營養(yǎng)、制藥和化學(xué)工業(yè)等領(lǐng)域的需求。本文綜述了NA 的生物功能、生物來源、合成途徑,并比較了基因工程生產(chǎn)NA 各底盤的優(yōu)劣,進(jìn)一步探討了十字花科油料作物底盤生產(chǎn)富含NA 種子油的影響因素,以期為將來通過轉(zhuǎn)基因技術(shù)和分子育種調(diào)控NA 的生產(chǎn),獲得可再生的NA 資源提供一定的思路和策略。
關(guān)鍵詞 神經(jīng)酸; 基因工程; 底盤; 轉(zhuǎn)基因; 分子育種; 十字花科油料作物; 種子油
中圖分類號 Q819∶S565 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼 A 文章編號 1000-2421(2024)02-0064-11
神經(jīng)酸(nervonic acid,NA)學(xué)名為15-二十四碳烯酸(C24∶1),最初在鯊魚大腦中分離得到,故又名鯊油酸[1]。其分子式為C24H46O2,相對分子質(zhì)量為366.6,純品在常溫狀態(tài)下為白色針狀固體,溶于醇,不溶于水,是一種ω-9 型長鏈單不飽和脂肪酸[2]。在人體中主要以三酰甘油(triacylglycerol,TAG)的形式儲(chǔ)存[3]。研究表明,NA 與人體多種疾病有關(guān),而人體無法合成NA,必須從食物中獲取。探究NA 及其衍生物的生理功能、來源及合成途徑等對現(xiàn)代基因工程規(guī)?;a(chǎn)NA 具有重要價(jià)值。本文對NA的生物功能、生物來源、合成途徑及基因工程生產(chǎn)NA 的研究進(jìn)展進(jìn)行綜述,以期為將來通過轉(zhuǎn)基因技術(shù)和分子育種調(diào)控NA 的生產(chǎn)、獲得可再生的NA 資源提供一定的思路和策略。
1 NA的相關(guān)功能
NA 是一種天然的生物活性脂肪酸,最早以神經(jīng)鞘脂(nervonic sphingolipids,SLs)形式被發(fā)現(xiàn)。早在1972 年,英國神經(jīng)學(xué)家就發(fā)現(xiàn)NA 具有修復(fù)鯊魚受傷腦組織的作用[4]。NA 及其衍生物存在于人體多數(shù)組織中,大腦、肝臟及腎臟中較為豐富[5]。NA 及其衍生物以自由狀態(tài)或通過酰胺鍵與鞘氨醇堿結(jié)合形成神經(jīng)酰胺、鞘脂[6]等物質(zhì)參與眾多生物過程[7-8]。Phung 等[9]系統(tǒng)總結(jié)了NA 功能及相關(guān)機(jī)制,主要包括細(xì)胞結(jié)構(gòu)、信號傳導(dǎo)、抗炎、脂質(zhì)動(dòng)員4 個(gè)相互關(guān)聯(lián)的功能。人體缺乏NA 會(huì)引起神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育異常、脫髓鞘疾病、神經(jīng)退行性疾病、心腦血管疾病、免疫缺陷疾病、腫瘤及抑郁癥等多種疾病,機(jī)體攝入NA 可以協(xié)調(diào)作用多個(gè)靶點(diǎn),共同緩解機(jī)體癥狀(表1)。
NA 及其衍生物在工業(yè)上也有廣泛應(yīng)用,作為生產(chǎn)塑料、化妝品、樹脂、尼龍、表面活性劑、生物燃料和潤滑劑等產(chǎn)品的原料[32]。相較于其他工業(yè)原料,綠色及具可持續(xù)特性的NA 及其衍生物,更具有應(yīng)用和推廣價(jià)值。
隨著社會(huì)環(huán)境的改變以及人口老齡化程度的加深,我國患心腦血管疾病、神經(jīng)退行性疾病、癌癥以及抑郁癥的人數(shù)不斷攀升。由于這類疾病無特效藥,病程極長,治療及康復(fù)過程將占用大量公共資源,成為經(jīng)濟(jì)和社會(huì)發(fā)展的阻礙。我國植物神經(jīng)酸研究起步較晚,近年來才展現(xiàn)出急起直追之勢。國內(nèi)的研究主要聚焦于工業(yè)化提?。?3]、自然資源元寶楓(Acer truncatum Bunge )籽油的工業(yè)化生產(chǎn)以及微藻品種的發(fā)掘等基礎(chǔ)研究。市場上售賣的NA 產(chǎn)品主要有國牡元寶楓籽油、漢林牌腦憶康膠囊和壽堂牌納福希膠囊等,品類少且價(jià)格貴。我國亟需開發(fā)新型NA 資源,加速深層研究,更好地服務(wù)大眾。
2 NA的生物來源
2.1 動(dòng)物來源
發(fā)達(dá)國家最早從鯊魚腦中提取NA[1],但國際組織明令禁止捕獲鯊魚。近年來,在大西洋鱈、大馬哈魚以及紅鮭等魚類中發(fā)現(xiàn)NA 及其衍生物,但由于人類過渡捕撈和海洋環(huán)境污染,這些魚類資源的可持續(xù)性和安全性受到威脅,限制其作為NA 來源進(jìn)一步開發(fā)利用[34-35]。在其他哺乳動(dòng)物的大腦中也含有神經(jīng)酸,但其經(jīng)濟(jì)產(chǎn)量較低,尚未得到大規(guī)模開發(fā)應(yīng)用(表 2)。
2.2 植物來源
一些植物的果實(shí)和種子油中含有豐富的NA。截至目前,在13 科31 個(gè)屬的38 種植物中發(fā)現(xiàn)NA[49-50],包含木本及草本兩大類,其中應(yīng)用較廣及NA 含量較高[NA 占總脂肪酸(FA)19% 及以上]植物見表 2。
木本植株較長的生長周期在很大程度上限制其利用,故只有NA 含量高的物種才具有開發(fā)利用價(jià)值。廣東和云南特有物種蒜頭果果仁中含有55.7%~67% 的NA,為國家二級保護(hù)植物,無法作為NA 的主要來源[36]。元寶楓果油中含有6% 的NA,不斷優(yōu)化的提取技術(shù)將終產(chǎn)品NA 含量提高到47% 左右[37-38]。盾葉木(Macaranga adenantha)NA含量高,但分布零散[39]。故我國特有物種元寶楓憑借其較為豐富的資源,成為目前提取NA 的主要自然植物資源[37-39]。
含NA 的草本植物十字花科居多,十字花科植物較木本植物生長周期短,繁殖繼代快,具有先天的開發(fā)利用優(yōu)勢[35]。碎米薺(Cardamine graeca)NA 含量最高,但其苛刻的生長條件限制其大規(guī)模擴(kuò)繁種植[40]。智利獨(dú)有的多年生草本植物旱金蓮(Tropae?olum speciosum),其種子油NA 占總FA 的40.0%~45.4%,但種子較難獲得和繁殖[41]。銀扇草(Lunariaannua)是2年生草本油料作物,其種子油NA 含量相對較低且產(chǎn)量不穩(wěn)定,無法規(guī)?;斋@,同時(shí)其高達(dá)50% 的芥酸(erucic acid,EA)無法滿足NA 油的相關(guān)應(yīng)用要求[42]。
2.3 微生物來源
在現(xiàn)有報(bào)道中,天然微生物的NA 含量和滴度相對較低(表 2)。早在1986 年,Nichols 等[51]就在硅藻Nitzshia cylindrus 中發(fā)現(xiàn)了低含量的NA;近年來,Yuan 等[43]在華東地區(qū)發(fā)現(xiàn)綠色微藻Mychonastes af?ter HSO-3-1(M. HSO-3-1)中含NA,且具有極低的EA 含量和較高的亞麻酸(C18∶3)含量。Saadaoui等[44]在波斯灣分離得到1 株耐高溫和廣泛鹽度的Nannochloris sp.QUCCCM31,其NA 含量占總脂質(zhì)的9.97%。
除微藻外,少數(shù)真菌和細(xì)菌也具有合成NA 的能力。植物病原絲狀真菌Macrophomina phaseolina 和細(xì)菌Francisella tularensis 可產(chǎn)生較高含量的NA,但較高的感染性限制其應(yīng)用[45-46]。有學(xué)者鑒定,油絲狀真菌Mortierella capitata RD000969 和Mortierellaelongata SC-208 可分別積累占總脂肪酸6.94% 及4.9% 的NA,但經(jīng)發(fā)酵優(yōu)化后,NA 滴度只能達(dá)186.3和123.7 mg/L,達(dá)不到工業(yè)應(yīng)用程度[47-48]。
由于天然物種中動(dòng)物資源的單一性和稀缺性,植物資源的長周期性和難獲得性,微生物資源的低NA 含量,致使從自然資源中獲取NA 無法滿足市場需求,需進(jìn)一步改造和篩選新的NA 來源。
3 NA的生物合成途徑
NA 作為超長鏈脂肪酸再加上其單不飽和的特性,其生物合成主要?jiǎng)澐譃? 步[3]:在質(zhì)體脂肪酸合酶復(fù)合體作用下,乙酰-CoA 從頭延伸生成軟脂酸-ACP 或硬脂酸-ACP;去飽和形成油酸(oleic acid,C18∶1);在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)脂肪酸延伸酶復(fù)合體作用下經(jīng)縮合、還原、脫水、還原循環(huán)3 次延伸生成NA[52-54](圖 1)。該復(fù)合體包括3-酮酯酰-CoA 合酶(3-keto‐acyl-CoA synthase,KCS)、3-酮酯酰-CoA 還原酶(3-ketoacyl-CoA reductase,KCR)、3-羥酯酰-CoA 脫水酶(3-hydroxyacyl-CoA dehydrase,HCD)和羥酯酰-CoA還原酶(enoyl-CoA reductase,ECR),其中KCS 是碳鏈延伸過程的限速酶,結(jié)合囊的性狀和大小賦予嚴(yán)格的底物及組織特異性,決定最終產(chǎn)物的碳鏈長度[55]。
合成的NA 經(jīng)?;D(zhuǎn)移酶作用以甘油三酯(triglycerides,TAGs)的形式儲(chǔ)存[54-56](圖1)。值得注意的是,NA 在哺乳動(dòng)物母乳中主要結(jié)合于三磷酸甘油(G3P)的sn-2 位,而在植物中主要結(jié)合sn-1 和sn-3 位[57]。
4 基因工程生產(chǎn)NA現(xiàn)狀及前景
有學(xué)者利用順-13-二十二碳烯基甲酯化學(xué)合成NA,但存在產(chǎn)率較低、副產(chǎn)物較多、制備過程資源消耗高,污染嚴(yán)重等問題[58];隨著基因工程以及合成生物學(xué)技術(shù)的蓬勃發(fā)展、NA 合成和組裝相關(guān)基因的確定,基因工程生產(chǎn)NA 憑借其規(guī)模大、耗時(shí)短、資源浪費(fèi)少,吸引了各國科學(xué)家的加入。
4.1 底盤選擇
由于微生物具有增殖周期短、產(chǎn)量高、條件限制少、遺傳轉(zhuǎn)化便捷等特點(diǎn),科學(xué)家最早開發(fā)微生物底盤來生產(chǎn)NA。微藻和酵母在改造項(xiàng)目中占據(jù)高位[59-60]。有學(xué)者在酵母中異源表達(dá)菌株Mychonas?tes HSO-3-1 的KCS 基因[61]以及Lunaria annua 的KCS 基因(LaKCS)[62],轉(zhuǎn)基因品系中產(chǎn)生 NA。夏俊杰[63]利用釀酒酵母構(gòu)建了高產(chǎn)NA 工程菌,使得NA 產(chǎn)量高達(dá)到1.37%。Zhang 等[64]在Saccharomy?ces cerevisiae 中共表達(dá)Crambe hispanica 的ChFAE1和Lunaria annua 的 LaKCS,使得轉(zhuǎn)基因株系產(chǎn)生5% 的NA。Wang 等[65]在產(chǎn)油酵母Yarrowia lipo?lytica 中構(gòu)建出植物與非植物相結(jié)合的NA 合成通路:增加C18∶0 作為非植物途徑前體的供應(yīng),同時(shí)刪除了β-氧化途徑;利用 NA 特異性Malania oleifera的MoLpaat 替換其內(nèi)源LPAAT,并增加了輔助因子的供應(yīng),最終獲得NA 含量為23.44% 菌株。
科學(xué)家在利用植物底盤生成NA 的嘗試主要集中在十字花科。Huai 等[52]利用擬南芥(Arabidopsisthaliana)中單拷貝的AtKCR、AtHCD 和AtECR 組合LaKCS,輔助種子特異性啟動(dòng)子,在亞麻薺(Cam?elina sativa)中異源表達(dá),研究了所有延長酶組分的組合效應(yīng)。在AtKCR、AtHCD 以及AtECR 單獨(dú)結(jié)合LaKCS 構(gòu)成的3 個(gè)雙基因共表達(dá)系,以及AtK?CR、AtHCD 和LaKCS 結(jié)合的三基因共表達(dá)系中,NA 均沒有進(jìn)一步增加,再次證明KCS 基因在NA 延長過程中限速酶的重要地位。Guo 等[62]將LaKCS基因轉(zhuǎn)移至擬南芥以及高EA 埃塞俄比亞芥(Brassi?ca carinata)中表達(dá),結(jié)果顯示轉(zhuǎn)基因系NA 含量較野生型分別增加30 和10 倍,轉(zhuǎn)基因埃塞俄比亞芥中NA 含量更是高達(dá)30%。Taylor 等[66]在埃塞俄比亞芥中表達(dá)Cardamine graeca 的 KCS 基因(CgKCS),使得NA 比例增加到42.2%。高的NA 比例、較高的種子油含量(38%)和田間種子產(chǎn)量(167~200 kg/667 m2)使其成為目前所有NA 種子源中表現(xiàn)最好的品種[35]。
外源基因的轉(zhuǎn)入可使微生物產(chǎn)生NA,但難免會(huì)遇到大型生物發(fā)酵設(shè)備持續(xù)的資金投入問題;相較微生物,選擇繁殖快、產(chǎn)量高的十字花科植物生產(chǎn)NA,除前期開發(fā)株系需一定資本投入外,后期應(yīng)用只需根據(jù)需求調(diào)整種植面積即可。
4.2 可利用基因資源
NA 天然物種蒜頭果[54,67]、文冠果[68]、元寶楓[69]基因組測序的完成及KCS 基因家族的鑒定和分類,為基因的選擇提供了保障。目前鑒定出的擬南芥、蒜頭果、文冠果、元寶楓KCS 基因家族成員分別有FAE-like、KCS-like、FDH-like 和CER 等4 個(gè)亞族。元寶楓線粒體[70]、葉綠體[71]基因組測序的完成,進(jìn)一步拓寬了可利用基因的范圍。有學(xué)者將產(chǎn)油酵母、擬南芥、碎米芥和蒜頭果的?;D(zhuǎn)移酶序列進(jìn)行比對,并對?;D(zhuǎn)移酶編碼基因進(jìn)行了鑒定[54]。異源?;D(zhuǎn)移酶在植物中表達(dá)可提高超長鏈脂肪酸(very long-chain fatty acids, VLCFA)在TAG 中的組裝效率以及含油量[72-74]??衫没蛸Y源的不斷豐富,促進(jìn)基因工程生產(chǎn)NA 的進(jìn)一步發(fā)展。
4.3 生產(chǎn)NA的植物代謝工程前景
前人已驗(yàn)證在植物中異源表達(dá)重組KCS 能夠顯著改變十字花科VLCFA 的含量。利用植物代謝工程生產(chǎn)NA 的研究思路還可進(jìn)一步拓展,包括:提高某種超長鏈脂肪酸底物含量、提高脂肪酸組裝效率以及含油量等[75]。同時(shí)綜合考慮最終NA 產(chǎn)品所需的便捷性、經(jīng)濟(jì)性和可持續(xù)性,可優(yōu)選產(chǎn)量大、可持續(xù)、易應(yīng)用的植物種子油為NA 載體。借助前人改造十字花科生產(chǎn)NA 的經(jīng)驗(yàn),采取將KCS 基因以及TAGs 生物合成相關(guān)基因相結(jié)合的多基因策略,進(jìn)一步開發(fā)十字花科油料作物生產(chǎn)NA 種子油有望實(shí)現(xiàn)既得利益最大化。以下探討影響十字花科油料作物種子油中NA 含量的主要因素。
1)KCS 基因的選擇 。KCS 作為NA 生物合成過程中的限速酶,具有嚴(yán)格的底物以及組織特異性,決定轉(zhuǎn)基因作物中NA 的最終含量。元寶楓Chr4.2307.KCS、Chr4.2308.KCS、Chr4.2311.KCS 在NA 生成關(guān)鍵時(shí)期顯著上調(diào)[76];蒜頭果MoKCS11對二十碳烯具有顯著底物偏好性[77],F(xiàn)AE-like 基因Maole004215.T1在野生酵母中表達(dá)產(chǎn)生C22∶0/C22∶1和C24∶0/C24∶1 等4 種新的脂肪酸[78]。
將不同的KCS 進(jìn)行組合,構(gòu)成代謝鏈,調(diào)動(dòng)不同底物轉(zhuǎn)化成NA;或選擇底物充足的轉(zhuǎn)化底盤,提高底物轉(zhuǎn)化率,以突破單基因調(diào)控NA 含量增加的有限性。值得注意的是,目前普遍認(rèn)為攝入EA 過多,會(huì)引起心臟疾?。?9-80]。轉(zhuǎn)基因植物種子中EA 含量與該品種的利用價(jià)值呈負(fù)相關(guān),增加NA 的同時(shí)降低EA 的含量,也是未來改造的目標(biāo)之一。
2)提高NA 的存儲(chǔ)能力。不同十字花科油料作物含油量及NA 比例均有所不同,只有含油量超過10% 且NA 比例高的油料作物才具有開發(fā)利用價(jià)值[35]。故在未來改造過程中不僅要提高NA 含量還要兼顧作物含油量的提高。TAG 是種子油中的主要成分,將KCS 基因與提高TAG 含量的相關(guān)基因共表達(dá),有助于培育高價(jià)值新品種。
①促進(jìn)NA 積累。在經(jīng)典的肯尼迪途徑(Kennedypathway)中,GPAT、LPAAT 和DGAT 催化G3P主鏈上連續(xù)的酰化反應(yīng)生成TAG[81-82]。在煙草以及馬鈴薯塊莖中,利用強(qiáng)組成型病毒啟動(dòng)子CaMV-35S 表達(dá)DGAT1,導(dǎo)致TAG 增加,并且對植物生長沒有顯著的負(fù)面影響[83-84]。植物內(nèi)源性酰基轉(zhuǎn)移酶只能將NA 并入且不能同時(shí)并入TAG 的sn-1 或sn-3位,sn-2 位通常由16C 和18C 脂肪酸占據(jù)[50,61],限制了NA 在植物中的含量。Zou 等[72]在高EA 油菜中表達(dá)酵母的LPAAT 基因SLC1-1,將TAG sn-2 位置上的芥酸酰比例提高到41%[73]。由此推斷,TAGsn-2 位結(jié)合NA 的能力和偏好也可以通過異源表達(dá)相關(guān)的基因來調(diào)節(jié)。Wang 等[69]將來自Malania"oleifera 的MoLPAAT 在Yarrowia lipolytica 中進(jìn)行表達(dá),發(fā)現(xiàn)其可替換內(nèi)源LPAAT 發(fā)揮功能,并表現(xiàn)出對包括NA 在內(nèi)的超長鏈單不飽和脂肪酸的偏好性,使得轉(zhuǎn)基因菌株NA 含量增加到17.10%。此外,Ma 等[75]通過元寶楓的加權(quán)基因共表達(dá)網(wǎng)絡(luò)分析驗(yàn)證了轉(zhuǎn)錄因子MYB 以及bZIP 在NA 合成過程中的調(diào)控作用。
篩選DGAT 基因增加TAGs 含量,同時(shí)應(yīng)用對NA 具有偏好性的內(nèi)源或外源LPAAT 提高TAGsn-1、sn-2 以及sn-3 位點(diǎn)結(jié)合NA 的能力,輔助轉(zhuǎn)錄因子對NA 合成的調(diào)控,進(jìn)一步設(shè)計(jì)NA 代謝路徑,能夠最大限度地增加NA 積累量。
②減少NA 降解。在植物中合成的脂肪酸主要通過過氧化物酶體的β-氧化途徑分解代謝。Goepfert等[85]在利用擬南芥探究脂肪酸降解β-氧化途徑時(shí),發(fā)現(xiàn)β-氧化阻斷突變體表現(xiàn)為TAG 分解的減少和長鏈?;鵆oA 的積累。Xue 等[86]在利用Y. lipo?lytica 生產(chǎn)二十碳五烯酸(EPA)時(shí)發(fā)現(xiàn),PEX10 基因突變會(huì)損傷過氧化物酶體的形態(tài)和完整性,原菌株β-氧化途徑缺陷,導(dǎo)致酶體對VLCFAs 的降解能力減弱,EPA 滴度較原菌株提高2 倍。Wang 等[65]將該菌株P(guān)EX10 敲除,截?cái)嘀舅幡?氧化降解途徑,最終NA 積累量達(dá)到親本菌株的29 倍。另有學(xué)者發(fā)現(xiàn)刪除β-氧化途徑可顯著增加總脂質(zhì)含量[87]。參考和拓展脂肪酸降解途徑刪除或截?cái)嗖呗裕梢宰畲蟪潭鹊販p少NA 的降解。
增加NA 積累,減少NA 氧化降解,提高NA 結(jié)合效率,逐級遞進(jìn)式增加植物轉(zhuǎn)基因品系中NA 的含量。
3)基因表達(dá)情況。
①特異性啟動(dòng)子應(yīng)用。特異性啟動(dòng)子表達(dá)目的基因,實(shí)現(xiàn)目的基因在目標(biāo)組織中的高活性而在其他組織中低活性,以減少潛在的負(fù)面影響。利用種子特異性啟動(dòng)子表達(dá)具有底物特異性的KCS 相關(guān)基因是生產(chǎn)NA 種子油的一個(gè)有效策略。種子特異性napin 啟動(dòng)子、種子特異性大豆glycinin-1 啟動(dòng)子以及大豆優(yōu)速啟動(dòng)子均被驗(yàn)證能驅(qū)動(dòng)KCS 基因在相應(yīng)受體內(nèi)表達(dá),并增加NA 的含量[52,62,78]。
②基因拷貝數(shù)。除依托某特異性或強(qiáng)啟動(dòng)子提高基因轉(zhuǎn)錄表達(dá)水平外,還需考慮基因在物種內(nèi)的拷貝數(shù)。Guo 等[62]發(fā)現(xiàn)在轉(zhuǎn)入LaKCS 的轉(zhuǎn)基因品系中,NA 含量與LaKCS 的拷貝數(shù)呈正相關(guān),多拷貝株系中轉(zhuǎn)錄物強(qiáng)度更高。因此在選定基因基礎(chǔ)上增加拷貝數(shù),或許可以最大化提高終產(chǎn)物含量。
③最優(yōu)基因組合。在選定目標(biāo)基因的基礎(chǔ)上,還需要考慮基因間的相互作用:相關(guān)基因結(jié)合構(gòu)成的代謝鏈?zhǔn)欠駮?huì)產(chǎn)生不必要的中間產(chǎn)物,該產(chǎn)物是否對終產(chǎn)物的合成有負(fù)面影響,在終產(chǎn)物提取及利用過程中是否需要花費(fèi)大量人力物力來去除,以及相關(guān)基因的表達(dá)是否影響作物自身正常生長發(fā)育。在先前的研究中,就有在擬南芥中表達(dá)LaKCS 基因,產(chǎn)生7.6%NA 的同時(shí)產(chǎn)生13.8% 的EA,而目前認(rèn)為較高的EA 含量可能對人體具有負(fù)面作用,例如可能引發(fā)心臟問題[79-80] 。因此,在后續(xù)的研究中應(yīng)該斟酌該基因的使用或結(jié)合新的KCS 基因?qū)A 進(jìn)一步利用轉(zhuǎn)化為NA。
因此,未來在轉(zhuǎn)基因改造過程中,要盡可能規(guī)避以上風(fēng)險(xiǎn)問題,并最大化利用特異啟動(dòng)子及基因自身特性,尋找最適配基因組合,增加基因拷貝數(shù),構(gòu)成NA 代謝鏈,縮減時(shí)間及資金成本。
4)受體選擇。NA 最終的得率除由NA 比例和種子的含油量決定外,還由底盤品種的產(chǎn)量和抗逆性等綜合指標(biāo)共同決定。目前的研究主要關(guān)注提高NA 比例,甚少考慮受體自身性狀對NA 獲得的影響。
①受體農(nóng)藝特性。NA 的最終產(chǎn)量由作物產(chǎn)量、含油量以及NA 比例共同決定。我國主要的油料作物有大豆、油菜、花生、葵花籽等,NA 在這些主要栽培油料作物中含量極低或無。其中油菜是我國第一大油料作物,屬于十字花科蕓苔屬,年播種面積700hm2 以上,年產(chǎn)油達(dá)520 萬t,占國產(chǎn)植物油總量的47%,且年產(chǎn)量與消費(fèi)量逐年增長[88]。油菜品種的多樣性、較高的含油量、較短生長周期以及高產(chǎn)抗逆的農(nóng)藝性狀,再加上成熟的遺傳轉(zhuǎn)化體系可為植物代謝工程生產(chǎn)NA 提供最基礎(chǔ)、穩(wěn)妥的保障[35]。
②受體底物含量。富含 NA 的油通常混有大量EA,考慮到 EA 對健康的影響,市場急需高 NA 低EA 的油。EA 作為NA 的直接前體物質(zhì),以高EA 油菜品種為受體,有望提高合成NA 的效率并降低EA含量,平衡營養(yǎng)和安全。但目前如何將盡可能多的EA 轉(zhuǎn)化成NA 缺乏豐富的分子機(jī)理研究以及實(shí)驗(yàn)證據(jù)支持。有學(xué)者曾嘗試在高EA 甘藍(lán)型油菜表達(dá)Cg?KCS,但產(chǎn)量不容樂觀,僅為1 500 kg/hm2[78]。另有學(xué)者在產(chǎn)油酵母Y. lipolytica 中構(gòu)建NA 合成雙通路:在植物途徑的基礎(chǔ)上,增加C18∶0 作為非植物途徑的NA 前體[68]。今后的研究應(yīng)汲取已有經(jīng)驗(yàn),發(fā)揮不同油菜品種的潛在價(jià)值,促進(jìn)不同脂肪酸底物轉(zhuǎn)化為NA,實(shí)現(xiàn)營養(yǎng)、安全雙平衡。
5)生長環(huán)境與人工選擇的影響。生物體的性狀受到基因以及環(huán)境的共同作用。種植的時(shí)間、地理位置、水文條件等影響種子的出苗情況;生長過程中的施肥狀況、人為活動(dòng)、水源灌溉周期、病蟲害等影響作物的生長狀況[35];收獲時(shí)期的收種方式、收種時(shí)間、收種后的儲(chǔ)存方法等影響種系的實(shí)際收獲率,最終綜合影響作物的產(chǎn)量、含油量以及脂肪酸的含量。
在保持適宜且一致的種植模式和收種方法的同時(shí),輔之準(zhǔn)確的人工選擇,對含有優(yōu)良目標(biāo)性狀的種系進(jìn)行選擇歸類,逐步優(yōu)化作物的目標(biāo)性狀。在Guo等[62]的研究中,表達(dá)LaKCS 的轉(zhuǎn)基因埃塞俄比亞芥經(jīng)過2 代篩選后,最佳NA 含量達(dá)到30%,達(dá)T1代轉(zhuǎn)基因株系NA 含量的2 倍。逐代選擇含油量及NA 含量高且EA 含量低、產(chǎn)量和抗逆性與野生型沒有顯著差異的目標(biāo)植株,可使NA 最終產(chǎn)量最大化。
5 結(jié)語與展望
NA 及其衍生物在人體內(nèi)廣泛分布。作為神經(jīng)纖維髓鞘的核心成分,NA 具有修復(fù)受損大腦神經(jīng)纖維、促進(jìn)神經(jīng)細(xì)胞再生的功能;作為膜結(jié)構(gòu)的重要成分,NA 能夠調(diào)節(jié)膽固醇分布,維持體內(nèi)膜平衡;作為儲(chǔ)存脂質(zhì),NA 可優(yōu)先分解氧化,提供能量,支持人體生命活動(dòng)。缺乏NA 會(huì)導(dǎo)致多種疾病。NA 及其衍生物的酯化形式可作為藥物成分和膳食補(bǔ)充劑的原料,以生物遞質(zhì)、前藥、奶粉、食用油、飲料、口服乳劑和膠囊等形式應(yīng)用于日常生活和醫(yī)療保健。
我國NA 目前主要有2 種來源。一種是通過蒜頭果、元寶楓等植物直接提取,但可利用植物生長周期長、繁殖速度慢、采集收種困難。另一種是通過基因工程改造現(xiàn)有物種合成NA,但以微生物為底盤生產(chǎn)NA,難以避免大量養(yǎng)殖微藻所帶來的環(huán)境污染,且提純設(shè)備和工藝復(fù)雜,需要持續(xù)的資金支持;而以植物為底盤生產(chǎn)NA,目前已表現(xiàn)出較為理想的NA產(chǎn)量,且在生產(chǎn)體系成熟后,種植面積為唯一限制因素。相較而言,植物基因工程生產(chǎn)NA 具有更高的應(yīng)用潛力。
在先前的研究中主要聚焦脂肪酸延長步驟中限速酶基因KCS 的表達(dá)調(diào)控,忽略了NA 在內(nèi)的油脂合成是一個(gè)多基因協(xié)同作用的復(fù)雜的代謝過程,NA 的最終得率由作物本身產(chǎn)量、含油量和NA 比例等多因素共同決定。本文對已有研究進(jìn)展進(jìn)行分析比較,將植物基因工程生產(chǎn)NA 的改造重點(diǎn)放在十字花科油料作物油菜上,希望借助其成熟的研究體系,以及高產(chǎn)抗逆,高含油量、易遺傳轉(zhuǎn)化等優(yōu)質(zhì)農(nóng)藝性狀,在保障產(chǎn)量的基礎(chǔ)上再根據(jù)VLCFA 合成規(guī)律,采取多基因策略,組合包括調(diào)動(dòng)EA 在內(nèi)的各底物轉(zhuǎn)化為NA 的KCS 基因,負(fù)責(zé)提高含油量和將NA 組裝到TAG 各個(gè)位置上的相關(guān)基因;同時(shí)借助種子特異性啟動(dòng)子,將易應(yīng)用的種子油作為最終的NA 載體。以期為將來通過轉(zhuǎn)基因技術(shù)和分子育種調(diào)控NA 的生產(chǎn),獲得可再生的NA 資源提供一定的思路和策略,讓NA 更好地惠及大眾、造福人類。
參考文獻(xiàn)References
[1] TSUJIMOTO M.On new fatty acids in shark liver oil[J].The
journal of the Society of Chemical Industry, Japan, 1925, 28
(8):835-842.
[2] MERRILL A H,SCHMELZ E M,WANG E,et al. Importance
of sphingolipids and inhibitors of sphingolipid metabolism
as components of animal diets[J]. The journal of nutrition,
1997,127(5):830-833.
[3] BATES P D,DURRETT T P,OHLROGGE J B,et al.Analysis
of acyl fluxes through multiple pathways of triacylglycerol
synthesis in developing soybean embryos[J].Plant physiology,
2009,150(1):55-72.
[4] SINCLAIR A J,CRAWFORD M A.The incorporation of linolenic
acid and docosahexaenoic acid into liver and brain lipids
of developing rats[J].FEBS letters,1972,26(1/2):127-129.
[5] MARTíNEZ M,MOUGAN I. Fatty acid composition of human
brain phospholipids during normal development[J].Journal
of neurochemistry,1998,71(6):2528-2533.
[6] SASSA T,KIHARA A.Metabolism of very long-chain fatty
acids:genes and pathophysiology[J]. Biomolecules amp; therapeutics,
2014,22(2):83-92.
[7] POULOS A. Very long chain fatty acids in higher animals:a
review[J].Lipids,1995,30(1):1-14.
[8] KIKAS P,CHALIKIAS G,TZIAKAS D.Cardiovascular implications
of sphingomyelin presence in biological membranes
[J].European cardiology,2018,13(1):42-45.
[9] PHUNG N V,RONG F,XIA W Y,et al.Nervonic acid and
its sphingolipids:biological functions and potential food applications
[J/OL].Critical reviews in food science and nutrition,
2023,4:2203753[2023-10-10]. https://doi. org/10.1080/
10408398.2023.2203753.
[10] GROTHEER M,ROSENKE M,WU H,et al.White matter
myelination during early infancy is linked to spatial gradients
and myelin content at birth[J/OL]. Nat Commun, 2022,13
(1):997[2023-10-10]. https://doi. org/10.1038/s41467-
022-28326-4.
[11] YU J H,YUAN T L,ZHANG X H,et al. Quantification of
nervonic acid in human milk in the first 30 days of lactation:influence
of lactation stages and comparison with infant formulae
[J/OL].Nutrients,2019,11(8):1892[2023-10-10].https://
doi.org/10.3390/nu11081892.
[12] BATHELT J,SCERIF G,NOBRE A C,et al. Whole-brain
white matter organization,intelligence,and educational attainment
[J]. Trends in neuroscience and education,2019,15:
38-47.
[13] RUBINOV M,SPORNS O. Complex network measures of
brain connectivity:uses and interpretations[J]. NeuroImage,
2010,52(3):1059-1069.
[14] COUPLAND K,LANGLEY N A. Use of nervonic acid and
long chain fatty acids for the treatment of demyelinating disorders:
US5194448[P].1993-03-16.
[15] MANNI M M,SOT J,ARRETXE E,et al.The fatty acids of
sphingomyelins and ceramides in mammalian tissues and cultured
cells:Biophysical and physiological implications[J].
Chemistry and physics of lipids,2018,217:29-34.
[16] LEWKOWICZ N,PI?TEK P,NAMIECI?SKA M,et al.
Naturally occurring nervonic acid ester improves myelin synthesis
by human oligodendrocytes[J/OL].Cells,2019,8(8):
786[2023-10-10].https://doi.org/10.3390/cells8080786.
[17] KAGEYAMA Y,DEGUCHI Y,HATTORI K,et al.Nervonic
acid level in cerebrospinal fluid is a candidate biomarker for
depressive and manic symptoms:a pilot study[J/OL]. Brain
and behavior,2021,11(4):e02075[2023-10-10].https://doi.
org/10.1002/brb3.2075.
[18] KAGEYAMA Y,KASAHARA T,NAKAMURA T,et al.
Plasma nervonic acid is a potential biomarker for major depressive
disorder:a pilot study[J]. International journal of neuropsychopharmacology,
2018,21(3):207-215.
[19] BLANCHARD J W,AKAY L A,DAVILA-VELDERRAIN
J,et al.APOE4 impairs myelination via cholesterol dysregulation
in oligodendrocytes[J]. Nature,2022,611(7937):
769-779.
[20] HUYNH K,LIM W L F,GILES C,et al.Concordant peripheral
lipidome signatures in two large clinical studies of Alzheimer’s
disease[J/OL].Nature communications,2020,11:
5698 [2023-10-10]. https://doi. org/10.1038/s41467-020-
19473-7.
[21] 胡丹東,崔玉娟,張繼. 神經(jīng)酸對帕金森病小鼠運(yùn)動(dòng)障礙的改
善及保護(hù)作用[J]. 中國藥理學(xué)通報(bào),2021,37(11):1524-
1529.HU D D,CUI Y J,ZHANG J.Amelioration and protection
of nervonic acid on motor disorder in mice with Parkinson’s
disease[J]. Chinese pharmacological bulletin,2021,37(11):
1524-1529( in Chinese with English abstract).
[22] GULBINS E.Regulation of death receptor signaling and apoptosis
by ceramide[J].Pharmacological research,2003,47(5):
393-399.
[23] SISKIND L J. Mitochondrial ceramide and the induction of
apoptosis[J]. Journal of bioenergetics and biomembranes,
2005,37(3):143-153.
[24] YAMANE M,MORIYA S,KOKUBA H.Visualization of ceramide
channels in lysosomes following endogenous palmitoylceramide
accumulation as an initial step in the induction of necrosis
[J]. Biochemistry and biophysics reports,2017,11:
174-181.
[25] ZHANG X W,SAKAMOTO W,CANALS D,et al. Ceramide
synthase 2-C24:1-ceramide axis limits the metastatic
potential of ovarian cancer cells[J/OL].FASEB journal:official
publication of the Federation of American Societies for Experimental
Biology,2021,35(2):e21287[2023-10-10].
https://doi.org/10.1096/fj.202001504RR.
[26] WANG X Q,LIANG T Y,MAO Y,et al. Nervonic acid improves
liver inflammation in a mouse model of Parkinson’s disease
by inhibiting proinflammatory signaling pathways and regulating
metabolic pathways[J/OL]. Phytomedicine,2023,117:
154911 [2023-10-10]. https://doi. org/10.1016/j. phymed.
2023.154911.
[27] KASAI N,MIZUSHINA Y,SUGAWARA F,et al.Three-dimensional
structural model analysis of the binding site of an inhibitor,
nervonic acid,of both DNA polymerase beta and HIV-
1 reverse transcriptase[J]. Journal of biochemistry,2002,132
(5):819-828.
[28] LIVINGSTONE K M,LOVEGROVE J A,GIVENS D I.
The impact of substituting SFA in dairy products with MUFA
or PUFA on CVD risk:evidence from human intervention
studies[J].Nutrition research reviews,2012,25(2):193-206.
[29] CONSOLE L,SCALISE M,GIANGREGORIO N,et al.
The link between the mitochondrial fatty acid oxidation derangement
and kidney injury[J/OL].Frontiers in physiology,
2020, 11: 794 [2023-10-10]. https://doi. org/10.3389/
fphys.2020.00794.
[30] KHAWAJA Y,SCRANO L A,BUFO S,et al. A new equation
for calculating the number of ATP molecules generated
from fatty acids[J]. World journal of pharmaceutical sciences,
2015,4(7):175-185.
[31] LEONARDINI A,LAVIOLA L,PERRINI S,et al. Crosstalk
between PPAR gamma and insulin signaling and modulation
of insulin sensitivity[J/OL].PPAR research,2009,2009:
818945[2023-10-10].https://doi.org/10.1155/2009/818945.
staner and Tephrosia vogelii hook. f. seed oils[J]. European
journal of medicinal plants,2014,4(7):844-853.
[35] LIU F,WANG P D,XIONG X J,et al.A review of nervonic
acid production in plants:prospects for the genetic engineering
of high nervonic acid cultivars plants[J/OL].Frontiers in plant
science,2021,12:626625[2023-10-10]. https://doi. org/
10.3389/fpls.2021.626625.
[36] 歐乞鍼. 一個(gè)重要脂肪酸cis-tetracos-15-enoic 的新存在:蒜
頭果油[J]. 云南植物研究,1981,3(2):181-184.OU Q Z.A
new presence of important fatty acid (cis-tetracos-15-enoic)
-oil of malania olefera Chun et Lee[J].Acta botanica Yunnanica,
1981,3(2):181-184( in Chinese with English abstract).
[37] 王性炎,樊金栓,王姝清. 中國含神經(jīng)酸植物開發(fā)利用研究
[J]. 中國油脂,2006,31(3):69-71.WANG X Y,F(xiàn)AN J S,
WANG S Q. Development situation and outlook of nervonic
acid plants in China[J].China oils and fats,2006,31(3):69-71
(in Chinese with English abstract).
[38] 史宣明,陳燕,張?bào)P,等. 從元寶楓油中提取神經(jīng)酸并制備生
物柴油的技術(shù)研究[J]. 中國油脂,2013,38(2):61-65.SHI X
M,CHEN Y,ZHANG L,et al. Preparation of nervonic acid
and biodiesel from Acer truncatum Bunge seed oil[J]. China
oils and fats,2013,38(2):61-65 (in Chinese with English abstract).
[39] 馬柏林,梁淑芳,趙德義,等. 含神經(jīng)酸植物的研究[J]. 西北
植物學(xué)報(bào),2004,24(12):2362-2365.MA B L,LIANG S F,
ZHAO D Y,et al.Study on plants containing nervonic acid[J].
Acta botanica boreali-occidentalia sinica,2004,24(12):2362-
2365( in Chinese with English abstract).
[40] JART A. The fatty acid composition of various cruciferous
seeds[J]. Journal of the American Oil Chemists’ Society,
1978,55(12):873-875.
[41] LITCHFIELD C. Tropaeolum speciosum seed fat:a rich
source of cis-15-tetracosenoic andcis-17-hexacosenoic acids
[J].Lipids,1970,5(1):144-146.
[42] MASTEBROEK H D,MARVIN H J P. Breeding prospects
of Lunaria annua L[J].Industrial crops and products,2000,11
(2/3):139-143.
[43] YUAN C,LIU J H,F(xiàn)AN Y,et al.Mychonastes afer HSO-3-1
as a potential new source of biodiesel[J/OL]. Biotechnology
for biofuels,2011,4(1):47[2023-10-10]. https://doi. org/
10.1186/1754-6834-4-47.
[44] SAADAOUI I,AL GHAZAL G,BOUNNIT T,et al. Evidence
of thermo and halotolerant Nannochloris isolate suitable
for biodiesel production in Qatar Culture Collection of Cyanobacteria
and Microalgae[J].Algal research,2016,14:39-47.
[45] WASSEF M K,AMMON V,WYLLIE T D.Polar lipids of‐
Macrophomina phaseolina[J].Lipids,1975,10(3):185-190.
[46] JANTZEN E,BERDAL B P,OMLAND T.Cellular fatty acid
composition of Francisella tularensis[J]. Journal of clinical
microbiology,1979,10(6):928-930.
[47] UMEMOTO H,SAWADA K,KURATA A,et al.Fermentative
production of nervonic acid by Mortierella capitata
RD000969[J].Journal of oleo science,2014,63(7):671-679.
[48] CHAUDHURI S,GHOSH S,BHATTACHARYYA D K,
et al. Effect of mustard meal on the production of arachidonic
acid by Mortierella elongata SC-208[J].Journal of the American
oil chemists’ society,1998,75(8):1053-1055.
[49] FAN Y,MENG H M,HU G R,et al.Biosynthesis of nervonic
acid and perspectives for its production by microalgae and other
microorganisms[J]. Applied microbiology and biotechnology,
2018,102(7):3027-3035.
[50] MA B,LIANG S,ZHAO D,et al.Study on plants containing
nervonic acid[J]. Agricultural and food sciences,environmental
science,2004,24:2362-2365.
[51] NICHOLS P D,PALMISANO A C,SMITH G A,et al.Lipids
of the Antarctic Sea ice diatom Nitzschia cylindrus[J].Phytochemistry,
1986,25(7):1649-1653.
[52] HUAI D X,ZHANG Y Y,ZHANG C Y,et al.Combinatorial effects
of fatty acid elongase enzymes on nervonic acid production
in Camelina sativa[J/OL]. PLoS One,2015,10(6):e0131755
[2023-10-10].https://doi.org/10.1371/journal.pone.0131755.
[53] YANG T Q,YU Q,XU W,et al.Transcriptome analysis reveals
crucial genes involved in the biosynthesis of nervonic acid
in woody Malania oleifera oilseeds[J/OL].BMC plant biology,
2018,18 (1) :247 [2023-10-10]. https://doi. org/
10.1186/s12870-018-1463-6.
[54] FAN Y,GAO G,XUE Y,et al.Research progress on plant nervonic
acid[J].Current biotechnology,2022,12(5):664-672.
[55] JOUBèS J,RAFFAELE S,BOURDENX B,et al.The VLCFA
elongase gene family in Arabidopsis thaliana:phylogenetic
analysis,3D modelling and expression profiling[J].Plant
molecular biology,2008,67(5):547-566.
[56] KENNEDY E P,WEISS S B.The function of cytidine coenzymes
in the biosynthesis of phospholipides[J].The journal of
biological chemistry,1956,222(1):193-214.
[57] SCARTH R,TANG J H. Modification of Brassica oil using
conventional and transgenic approaches[J].Crop science,2006,
46(3):1225-1236.
[58] 雷澤,付正啟,溫曉江,等. 一種神經(jīng)酸的化學(xué)合成方法:
CN103396304A[P].2013-11-20.LEI Z,F(xiàn)U Z Q,WEN X J,
et al. Nervonic acid chemosynthesis method:CN103396304A
[P].2013-11-20(in Chinese).
[59] MICHALAK I,CHOJNACKA K. Algae as production systems
of bioactive compounds[J].Engineering in life sciences,
2015,15(2):160-176.
[60] YUAN C,ZHENG Y L,ZHANG W L,et al.Lipid accumulation
and anti-rotifer robustness of microalgal strains isolated
from Eastern China[J].Journal of applied phycology,2017,29
(6):2789-2800.
[61] FAN Y,YUAN C,JIN Y,et al.Characterization of 3-ketoac‐
yl-coA synthase in a nervonic acid producing oleaginous microalgae
Mychonastes afer[J].Algal research,2018,31:225-231.
[62] GUO Y M,MIETKIEWSKA E,F(xiàn)RANCIS T,et al.Increase
in nervonic acid content in transformed yeast and transgenic
plants by introduction of a Lunaria annua L. 3-ketoacyl-CoA
synthase(KCS) gene[J]. Plant molecular biology,2009,69
(5):565-575.
[63] 夏俊杰. 高產(chǎn)神經(jīng)酸工程菌的構(gòu)建及發(fā)酵條件的優(yōu)化[D]. 北
京:北京化工大學(xué),2020.XIA J J.Construction and optimization
of fermentation conditions for high-yielding engineered
nervonic acid bacteria[D].Beijing:Beijing University of Chemical
Technology,2020( in Chinese with English abstract).
[64] ZHANG Y,YANG C,XIA J J,et al.Overproducing nervonic
acid by synergism of fatty acid elongases in engineered Saccha?
romyces cerevisiae [J]. Process biochemistry,2022,122:
341-346.
[65] WANG K F,LIN L,WEI P,et al.Combining orthogonal plant and
non-plant fatty acid biosynthesis pathways for efficient production
of microbial oil enriched in nervonic acid in Yarrowia lipolyt?
ica[J/OL].Bioresource technology,2023,378:129012[2023-10-
10].https://doi.org/10.1016/j.biortech.2023.129012.
[66] TAYLOR D C,F(xiàn)RANCIS T,GUO Y M,et al. Molecular
cloning and characterization of a KCS gene from Cardamine
graeca and its heterologous expression in Brassica oilseeds to
engineer high nervonic acid oils for potential medical and industrial
use[J].Plant biotechnology journal,2009,7(9):925-938.
[67] YANG T Q,ZHANG R G,TIAN X L,et al. The chromosome-
level genome assembly and genes involved in biosynthesis
of nervonic acid of Malania oleifera[J/OL].Scientific data,
2023,10:298[2023-10-10].https://doi.org/10.1038/s41597-
023-02218-8.
[68] LIANG Q,LIU J N,F(xiàn)ANG H C,et al.Genomic and transcriptomic
analyses provide insights into valuable fatty acid biosynthesis
and environmental adaptation of yellowhorn[J/OL].
Frontiers in plant science,2022,13:991197[2023-10-10].
https://doi.org/10.3389/fpls.2022.991197.
[69] WANG R K,LIU P,F(xiàn)AN J S,et al. Comparative transcriptome
analysis two genotypes of Acer truncatum Bunge seeds
reveals candidate genes that influences seed VLCFAs accumulation
[J/OL].Scientific reports,2018,8:15504[2023-10-10].
https://doi.org/10.1038/s41598-018-33999-3.
[70] MA Q Y,WANG Y X,LI S S,et al.Assembly and comparative
analysis of the first complete mitochondrial genome of Ac?
er truncatum Bunge:a woody oil-tree species producing nervonic
acid[J/OL].BMC plant biology,2022,22(1):29[2023-
10-10].https://doi.org/10.1186/s12870-021-03416-5.
[71] MA Q Y,WANG Y N,ZHU L,et al.Characterization of the complete
chloroplast genome of Acer truncatum bunge( Sapindales:
Aceraceae):a new woody oil tree species producing nervonic acid
[J/OL]. BioMed research international,2019,2019:7417239
[2023-10-10].https://doi.org/10.1155/2019/7417239.
[72] ZOU J,KATAVIC V,GIBLIN E M,et al. Modification of
seed oil content and acyl composition in the Brassicaceae by
expression of a yeast Sn-2 acyltransferase gene[J].The plant
cell,1997,9(6):909-923.
[73] KATAVIC V,F(xiàn)RIESEN W,BARTON D L,et al.Improving
erucic acid content in rapeseed through biotechnology:what
can the Arabidopsis FAE1 and the yeast SLC1-1 genes contribute
[J].Crop science,2001,41(3):739-747.
[74] TAYLOR D C,KATAVIC V,ZOU J T,et al.Field testing
of transgenic rapeseed cv.Hero transformed with a yeast Sn-2
acyltransferase results in increased oil content,erucic acid content
and seed yield[J]. Molecular breeding,2002,8(4):
317-322.
[75] TAYLOR D C,SMITH M A,F(xiàn)OBERT P,et al.Metabolic
engineering of higher plants to produce bio-industrial oils
[M]//Comprehensive Biotechnology. Amsterdam:Elsevier,
2011:67-85.
[76] MA Q Y,SUN T L,LI S S,et al. The Acer truncatum genome
provides insights into nervonic acid biosynthesis[J].The
Plant journal,2020,104(3):662-678.
[77] LI Z W,MA S J,SONG H,et al.A 3-ketoacyl-CoA synthase
11 (KCS11) homolog from Malania oleifera synthesizes nervonic
acid in plants rich in 11Z-eicosenoic acid[J].Tree physiology,
2021,41(2):331-342.
[78] DAI H,ZHANG Y Y,JIN P,et al.Identification of KCS gene
family and functional analysis of FAE-like genes from Malan?
ia oleifera[J].Oil crop science,2021,6(1):35-40.
[79] HEIJENSKJ?LD L,ERNSTER L.Studies of the mode of action
of erucic acid on heart metabolism[J].Acta medica scandinavica.
supplementum,1975,585:75-83.
[80] DAS S,ROSCOE T J,DELSENY M,et al.Cloning and molecular
characterization of the fatty acid elongase 1 (FAE 1)
gene from high and low erucic acid lines of Brassica campestris
and Brassica oleracea[J]. Plant science,2002,162(2):
245-250.
[81] WESELAKE R J,TAYLOR D C,RAHMAN M H,et al.Increasing
the flow of carbon into seed oil[J].Biotechnology advances,
2009,27(6):866-878.
[82] KENNEDY E P.Biosynthesis of complex lipids[J].J Clin Invest,
1961,40(6):925-932.
[83] VANHERCKE T,EL TAHCHY A,LIU Q,et al.Metabolic
engineering of biomass for high energy density:oilseed-like triacylglycerol
yields from plant leaves[J]. Plant biotechnology
journal,2014,12(2):231-239.
[84] LIU Q,GUO Q G,AKBAR S,et al.Genetic enhancement of
oil content in potato tuber( Solanum tuberosum L.) through an
integrated metabolic engineering strategy[J].Plant biotechnology
journal,2017,15(1):56-67.
[85] GOEPFERT S,POIRIER Y.β-Oxidation in fatty acid degra‐
dation and beyond[J].Current opinion in plant biology,2007,
10(3):245-251.
[86] XUE Z X,SHARPE P L,HONG S P,et al. Production of
omega-3 eicosapentaenoic acid by metabolic engineering of
Yarrowia lipolytica[J]. Nature biotechnology,2013,31(8):
734-740.
[87] WANG K F,SHI T Q,WANG J P,et al.Engineering the lipid
and fatty acid metabolism in Yarrowia lipolytica for sustainable
production of high oleic oils[J]. ACS synthetic biology,
2022,11(4):1542-1554.
[88] 何平,王會(huì),羅莉霞,等. 油菜品種登記現(xiàn)狀分析[J]. 中國種
業(yè),2021(8):26-29.HE P,WANG H,LUO L X,et al.Analysis
on current situation of oilseed rape variety registration[J].
China seed industry,2021(8):26-29( in Chinese)
[32] DODOS G S,KARONIS D,ZANNIKOS F,et al.Renewable
fuels and lubricants from Lunaria annua l[J].Industrial crops
and products,2015,75:43-50.
[33] 候鏡德,袁曉悟,胡偉,等. 金屬鹽沉淀法分離神經(jīng)酸[J]. 生
物技術(shù),1996,6(1):39-41.HOU J D,YUAN X W,HU W,et
al.Separation of nervonic acid by metal salt precipitation method
[J].Biotechnology,1996,6(1):39-41(in Chinese).
[34] BAVHURE B. Fatty acid composition of Lebrunia bushiae
(責(zé)任編輯:張志鈺)