摘要:為了解鵝星狀病毒(GAstV)capsid蛋白對細(xì)胞因子的影響,試驗(yàn)將構(gòu)建的pCMV-capsid真核質(zhì)粒轉(zhuǎn)染293細(xì)胞,并于轉(zhuǎn)染后12、24、36 h收集細(xì)胞,提取核酸檢測細(xì)胞內(nèi)CCL2、CCL5、IL-1β、TNF-α、IFITM1和IFITM2的轉(zhuǎn)錄水平。結(jié)果顯示,capsid蛋白于12、36 h顯著抑制CCL2轉(zhuǎn)錄,12 h顯著促進(jìn)CCL5表達(dá),24 h顯著抑制CCL5表達(dá);capsid蛋白于24、36 h顯著促進(jìn)IL-1β的轉(zhuǎn)錄;capsid蛋白于24、36 h顯著抑制IFN-α的轉(zhuǎn)錄;capsid蛋白于36 h顯著促進(jìn)TNF-α的轉(zhuǎn)錄;capsid蛋白于24 h顯著抑制IFITM1的轉(zhuǎn)錄,于36 h顯著促進(jìn)IFITM1和IFITM2的轉(zhuǎn)錄。結(jié)果表明,GAstV capsid蛋白過表達(dá)能夠誘導(dǎo)IL-1β、TNF-α和IFITM的轉(zhuǎn)錄,抑制CCL2和IFN-α的轉(zhuǎn)錄;對于CCL5,capsid蛋白早期促進(jìn)CCL5的轉(zhuǎn)錄,后期抑制CCL5的轉(zhuǎn)錄;對于IFITM1,capsid蛋白早期抑制IFITM1轉(zhuǎn)錄,后期促進(jìn)IFITM1轉(zhuǎn)錄。
關(guān)鍵詞:鵝星狀病毒;細(xì)胞因子;轉(zhuǎn)錄;RdRp蛋白
中圖分類號:S852.65+7" 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A
文章編號:1002-1302(2024)04-0193-04
收稿日期:2023-04-21
基金項(xiàng)目:信陽農(nóng)林學(xué)院青年教師基金(編號:QN2021010);河南省重點(diǎn)研發(fā)與推廣專項(xiàng)(科技攻關(guān))(編號:232102111043);河南省高等學(xué)校青年骨干教師培養(yǎng)計(jì)劃;信陽農(nóng)林學(xué)院家禽重大疫病防控科技創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)資助項(xiàng)目(編號:2022CXTD06)。
作者簡介:饒 丹(1988—),女,江西南昌人,碩士,講師,從事動(dòng)物病毒學(xué)研究。E-mail:raodan2007@126.com。
通信作者:董建國,博士,副教授,從事動(dòng)物病毒學(xué)研究。E-mail:dongjianguo213@163.com。
近幾年,由鵝星狀病毒(GAstV)引起的鵝痛風(fēng)癥狀較為常見。該病毒主要侵害雛鵝,鵝感染后臨床癥狀表現(xiàn)出動(dòng)作緩慢、頻繁縮頸、糞便發(fā)白并外有尿酸鹽包裹。在痛風(fēng)發(fā)病早期,患病雛鵝精神沉郁、食欲不振、體溫升高,經(jīng)常臥地不起,行走不穩(wěn);在痛風(fēng)發(fā)病中期,患病雛鵝出現(xiàn)輕度跛行,雙腿肘部紅腫,采食量大幅度下降[1]。剖檢雛鵝臟器有白色尿酸鹽沉積,呈大理石樣外觀,腎臟最為明顯[2]。
GAstV基因組全長7 175 bp,共有3個(gè)開放閱讀框:ORF1a、ORF1b和ORF2。其中,ORF1a(3 255 bp)編碼多聚蛋白,ORF1b編碼RdRp蛋白,ORF2編碼capsid蛋白[3]。為研制有效的疫苗進(jìn)行鵝痛風(fēng)的防控,Sellers等表達(dá)了雞星狀病毒的capsid蛋白,雞群免疫后產(chǎn)生高水平的抗體[4]。榮雪路等采用制備的重組GAstV capsid蛋白免疫鵝,能夠100%保護(hù)鵝免受病毒攻擊[5]。這些結(jié)果表明,capsid蛋白具有重要免疫原性,在抵抗疫病入侵中發(fā)揮重要作用。而目前針對GAstV capsid蛋白參與免疫調(diào)控的研究較少。有研究表明,哺乳動(dòng)物急性痛風(fēng)炎性反應(yīng)發(fā)生過程中,細(xì)胞因子發(fā)揮重要作用[6]。為探索capsid蛋白在免疫調(diào)控中的作用,本研究初步探討GAstV capsid蛋白對細(xì)胞因子的影響。
1 材料與方法
1.1 細(xì)胞和質(zhì)粒
293細(xì)胞由信陽農(nóng)林學(xué)院動(dòng)物科技學(xué)院免疫病理實(shí)驗(yàn)室凍存;表達(dá)GAstV capsid蛋白的真核質(zhì)粒pCMV-capsid由信陽農(nóng)林學(xué)院動(dòng)物科技學(xué)院免疫病理實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建保存,本試驗(yàn)于2022年12月在信陽農(nóng)林學(xué)院動(dòng)物科技學(xué)院免疫病理實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行。
1.2 試劑
核酸提取試劑DNA/RNA Extraction Kit FT(Prepackaged)、反轉(zhuǎn)錄試劑盒(1st Strand cDNA Synthesis Kit,+gDNA wiper)、熒光定量試劑AceQ qPCR SYBR Green Master Mix(High ROX Premixed),購自南京諾唯贊生物科技有限公司;細(xì)胞因子CCL2、CCL5、IL-1β、TNF-α、IFNα和抗病毒蛋白IFITM基因定量檢測引物,由金唯智生物科技有限公司合成。
1.3 細(xì)胞培養(yǎng)
從液氮中復(fù)蘇293細(xì)胞,于5% CO2培養(yǎng)箱和含有10%胎牛血清和雙抗的DMEM培養(yǎng)基中培養(yǎng),并鋪入12孔板中,待細(xì)胞密度達(dá)90%時(shí)進(jìn)行轉(zhuǎn)染。
1.4 質(zhì)粒轉(zhuǎn)染
每孔細(xì)胞,使用50 μL無血清培養(yǎng)基稀釋 0.6 μg 真核質(zhì)粒pCMV-capsid-HA。同時(shí),1.2 μL Lipofectamine 2000試劑加入50 μL無血清培養(yǎng)基。隨后將兩者混合,室溫靜置20 min,隨后將混合物加入細(xì)胞培養(yǎng)孔中,分別于轉(zhuǎn)染后12、24、 36 h 收集細(xì)胞,于-80 ℃?zhèn)溆谩?/p>
1.5 核酸的提取
使用FastPure Cell Total RNA Isolation Kit 提取細(xì)胞中總RNA,具體操作如下:將細(xì)胞加入Buffer RL,漩渦振蕩,轉(zhuǎn)移到收集管中,至無明顯細(xì)胞團(tuán),12 000 r/min離心2 min。收集上清液,加入Buffer RL2(已加入無水乙醇),輕柔混勻,轉(zhuǎn)移至RNA Pure Columns中(RNAPure Columns已放入收集管中),12 000 r/min離心1 min,棄廢液。將剩余的液體全部加入吸附柱中,12 000 r/min離心1 min,棄廢液,重復(fù)1次。向RNA Pure Columns中加入Buffer RW2(已加入無水乙醇),12 000 r/min離心 1 min,棄廢液,12 000 r/min離心2 min。向吸附柱中央部位懸空滴加100 μL的RNase-free ddH2O。室溫放置2 min,12 000 r/min離心1 min洗脫RNA。提取的RNA放于-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.6 細(xì)胞因子檢測
將提取的RNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,反轉(zhuǎn)錄體系如下:5×gDNA wiper Mix 2 μL,RNA 8 μL,5×RT Mix 2 μL,HiScript Ⅲ Enzyme Mix 2 μL,Random hexamers" 1 μL,RNase-free ddH2O 5 μL。反應(yīng)程序:37 ℃ 15 min,85 ℃ 5 s。隨后采用染料法對細(xì)胞中的CCL2、CCL5、IL-1β、TNF-α和IFITM的轉(zhuǎn)錄水平進(jìn)行定量檢測。定量檢測引物如下:CCL2F:5′-GCCTCCAGCATGAAAGTCTC-3′,CCL2R:5′-AGGTGACTGGGGCATTGAT-3′;CCL5F:5′-CTGCCTCCCCATATTCCTCG-3′,CCL5R:5′-CACACTTGGCGGTTCTTTCG-3′;IL-1βF:5′-AGGCACAAGGCACAACAGGCT-3′,IL-1βR:5′-AACAACTGACGCGGCCTGCC-3′;TNF-αF:5′-CCCTCTGGCCCAGGCAGTCA-3′,TNF-αR:5′-ATGGGTGGAGGGGCAGCCTT-3′;IFITM1F:5′-TCAGGTCAAGGATAGTCTGGAG-3′,IFITM1R:5′-AGGTTGTGTATTCCCACACTGTA-3′,IFITM2F:5′-GGAGGGAGAAAACTCCTTGGA-3′,IFITM2R:5′-GGCCAGTAGGTTGCACATTGT-3′。反應(yīng)程序:95 ℃ 30 s;95 ℃ 15 s,60 ℃ 15 s,40個(gè)循環(huán)。
2 結(jié)果與分析
2.1 GAstV capsid蛋白影響趨化因子轉(zhuǎn)錄
293細(xì)胞轉(zhuǎn)染pCMV-capsid-HA真核質(zhì)粒,轉(zhuǎn)染后12、24、36 h收集細(xì)胞,檢測細(xì)胞中CCL2和CCL5的轉(zhuǎn)錄水平。由圖1可知,capsid蛋白于12、36 h顯著抑制CCL2轉(zhuǎn)錄,12 h顯著促進(jìn)CCL5表達(dá),24 h顯著抑制CCL5表達(dá)。
2.2 GAstV capsid蛋白促進(jìn)IL-1β的轉(zhuǎn)錄
293細(xì)胞轉(zhuǎn)染pCMV-capsid真核質(zhì)粒,轉(zhuǎn)染后12、24、36 h收集細(xì)胞,檢測細(xì)胞中IL-1β的轉(zhuǎn)錄水平,由圖2可知,capsid蛋白于24、36 h顯著促進(jìn)IL-1β的轉(zhuǎn)錄。
2.3 GAstV capsid蛋白抑制IFN-α的轉(zhuǎn)錄
293細(xì)胞轉(zhuǎn)染pCMV-capsid真核質(zhì)粒,轉(zhuǎn)染后12、24、36 h收集細(xì)胞,檢測細(xì)胞中IFN-α的轉(zhuǎn)錄水平。由圖3可知,capsid蛋白于24、36 h顯著抑制IFN-α的轉(zhuǎn)錄。
2.4 GAstV capsid蛋白對TNF-α轉(zhuǎn)錄的影響
293細(xì)胞轉(zhuǎn)染pCMV-capsid真核質(zhì)粒,轉(zhuǎn)染后12、24、36 h收集細(xì)胞,檢測細(xì)胞中IFN-α的轉(zhuǎn)錄水平,由圖4可知,capsid蛋白于36 h顯著促進(jìn) TNF- α的轉(zhuǎn)錄。
2.5 GAstV capsid蛋白對IFITM轉(zhuǎn)錄的影響
293細(xì)胞轉(zhuǎn)染pCMV-capsid真核質(zhì)粒,轉(zhuǎn)染后12、24、36 h收集細(xì)胞,檢測細(xì)胞中IFITM1和IFITM2的轉(zhuǎn)錄水平,由圖5可知,capsid蛋白于24 h顯著抑制IFITM1的轉(zhuǎn)錄,于36 h顯著促進(jìn)IFITM1和IFITM2的轉(zhuǎn)錄。
3 討論與結(jié)論
近幾年,鵝痛風(fēng)在我國江蘇、安徽、山東、廣東等養(yǎng)鵝地區(qū)頻繁發(fā)生,發(fā)病率高達(dá)80%,致使50%的病鵝死亡,嚴(yán)重影響鵝產(chǎn)業(yè)[7-8]。痛風(fēng)主要引起鵝各個(gè)內(nèi)臟器官表面尿酸鹽沉積,病毒有廣泛組織嗜性,主要侵害腎臟[2]。
在痛風(fēng)發(fā)生過程中,炎癥反應(yīng)發(fā)揮重要作用。病毒感染宿主后,往往通過自身蛋白調(diào)節(jié)細(xì)胞因子的表達(dá),促進(jìn)自身增殖。趨化因子是白細(xì)胞(包括:單核細(xì)胞、T細(xì)胞和自然殺傷細(xì)胞)的趨化劑。人巨細(xì)胞病毒感染誘導(dǎo)人胚胎肺成纖維細(xì)胞中CCL2 mRNA的表達(dá)水平,同時(shí)誘導(dǎo)CCL2的特異性配體CCR2的表達(dá)水平,干擾CCL2表達(dá),抑制病毒復(fù)制[9]。艾滋病病毒Nef蛋白誘導(dǎo)CCL2的表達(dá),有利于病毒入侵腦,導(dǎo)致神經(jīng)元功能障礙[10]。CCL2能夠降低IFN-α的表達(dá),并通過上調(diào)表面C-X-C基序趨化因子受體4的表達(dá)促進(jìn)艾滋病病毒的復(fù)制[11]。CCL5通過上調(diào)SAMHD1水平抑制甲型流感病毒的復(fù)制[12]。本研究顯示,GAstV capsid蛋白過表達(dá)能夠抑制CCL2的表達(dá),而對于CCL5,capsid蛋白過表達(dá)后早期抑制CCL5表達(dá),后期促進(jìn)CCL5表達(dá)。同時(shí),GAstV capsid蛋白過表達(dá)能夠降低 IFN-α,后期促進(jìn)抗病毒蛋白IFITM1和IFITM2的轉(zhuǎn)錄。趨化因子在病毒廣泛擴(kuò)散中發(fā)揮重要作用,而IFN和抗病毒蛋白具有重要的抗病毒特性。這些因子的改變是否會(huì)導(dǎo)致GAstV的廣泛組織嗜性,利于病毒增殖,有待于進(jìn)一步研究。
研究顯示,許多病毒感染會(huì)導(dǎo)致炎癥反應(yīng)劇烈發(fā)生,進(jìn)而影響病毒自身增殖。流感病毒H1N1感染后,促進(jìn)人類單核細(xì)胞中IL-1β和TNF-α的轉(zhuǎn)錄水平[13]。登革病毒通過誘導(dǎo)TNF-α分泌降低IRS-1,參與胰島素抵抗作用[14]。犬流感病毒感染巨噬細(xì)胞后,誘導(dǎo)TNF-α的分泌和細(xì)胞死亡[15]。豬繁殖與呼吸綜合征病毒感染巨噬細(xì)胞后誘導(dǎo) TNF-α 的分泌,進(jìn)而抑制豬瘟病毒的復(fù)制,致使臨床上出現(xiàn)豬繁殖與呼吸綜合征感染導(dǎo)致豬瘟疫苗免疫失?。?6]。貓傳染性腹膜炎病毒感染巨噬細(xì)胞,誘導(dǎo)TNF-α的分泌,上調(diào)Ⅱ型貓傳染性腹膜炎病毒受體貓氨基肽酶N在貓巨噬細(xì)胞中的表達(dá),利于病毒感染[17]。新型冠狀病毒感染會(huì)強(qiáng)烈、快速地刺激先天免疫反應(yīng),激活炎性小體,釋放IL-1β,導(dǎo)致過度的炎癥反應(yīng)和肺部的損傷[18-19]。在尿酸鹽形成過程中,尿酸鹽結(jié)晶與巨噬細(xì)胞相互作用,導(dǎo)致NLRP3激活,進(jìn)而活化 Caspase1,產(chǎn)生成熟的IL-1β,導(dǎo)致機(jī)體出現(xiàn)急性炎癥反應(yīng)[20]。對感染GAstV雛鵝的腎臟中炎性因子的表達(dá)水平進(jìn)行研究,結(jié)果顯示腎臟中IL-1β和 TNF-α 的表達(dá)水平顯著升高,導(dǎo)致雛鵝腎臟出現(xiàn)嚴(yán)重的炎性損傷[21]。本研究結(jié)果顯示,GAstV capsid蛋白顯著誘導(dǎo)IL-1β和TNF-α的轉(zhuǎn)錄水平。這些結(jié)果表明GAstV capsid蛋白可能通過誘導(dǎo)IL-1β和TNF-α,進(jìn)而導(dǎo)致腎臟的損傷和尿酸鹽沉積,具體機(jī)制有待進(jìn)一步深入研究。
綜述所述,本研究顯示GAstV capsid蛋白過表達(dá)能夠誘導(dǎo)CCL2、CCL5、IL-1β、TNF-α和IFITM的轉(zhuǎn)錄,抑制IFN-α的轉(zhuǎn)錄。
參考文獻(xiàn):
[1]姜曉寧,田家軍,楊 晶,等. 導(dǎo)致雛鵝痛風(fēng)新型鵝星狀病毒的分離鑒定[J]. 中國獸醫(yī)學(xué)報(bào),2018,38(5):871-877,894.
[2]Zhang X Y,Ren D,Li T F,et al. An emerging novel goose astrovirus associated with gosling gout disease,China[J]. Emerging Microbes amp; Infections,2018,7(1):152.
[3]Zhang Q S,Cao Y X,Wang J,et al. Isolation and characterization of an astrovirus causing fatal visceral gout in domestic goslings[J]. Emerging Microbes amp; Infections,2018,7(1):1-11.
[4]Sellers H,Linneman E,Icard A H,et al. A purified recombinant baculovirus expressed capsid protein of a new astrovirus provides partial protection to runting-stunting syndrome in chickens[J]. Vaccine,2010,28(5):1253-1263.
[5]榮雪路,魏榮榮,王鉅華,等. 鵝星狀病毒重組Capsid蛋白亞單位疫苗的免疫效果[J]. 國外畜牧學(xué)(豬與禽),2020,40(10):22-26.
[6]Dalbeth N,Merriman T R,Stamp L K. Gout[J]. The Lancet,2016,388(10055):2039-2052.
[7]Jin M L,Wang X Y,Ning K,et al. Genetic characterization of a new astrovirus in goslings suffering from gout[J]. Archives of Virology,2018,163(10):2865-2869.
[8]Niu X Y,Tian J J,Yang J,et al. Novel goose astrovirus associated gout in gosling,China[J]. Veterinary Microbiology,2018,220:53-56.
[9]Tsugiya M,Marie K,Takaki M,et al. Human cytomegalovirus replication supported by virus-induced activation of CCL2-CCR2 interactions[J]. Biochem Biophys Res Commun,2014,453(3):321-325.
[10]Lehmann Michael H,Lehmann Jonas M,Volker E. Nef-induced CCL2 expression contributes to HIV/SIV brain invasion and neuronal dysfunction[J]. Frontiers in Immunology,2019,10:2447.
[11]Williams D W,Askew L C,Jones E,et al. CCR2 signaling selectively regulates IFN-alpha:role of beta-arrestin 2 in IFNAR1 internalization[J]. J Immunol,2019,202:105-18.
[12]Silva T,Temerozo J R,do Vale G,et al. The chemokine CCL5 inhibits the replication of influenza A virus through SAMHD1 modulation[J]. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology,2021,11:549020.
[13]Guo Y,Hu K,Li Y X,et al. Targeting TNF-α for COVID-19:recent advanced and controversies[J]. Frontiers in Public Health,2022,10:833967.
[14]Liu X L,Liang Z X,Duan H W,et al. Dengue virus is involved in insulin resistance via the downregulation of IRS-1 by inducing TNF-α secretion[J]. Biochimica et Biophysica Acta-Molecular Basis of Disease,2022,1868(10):166472.
[15]Powe J R,Castleman W L. Canine influenza virus replicates in alveolar macrophages and induces TNF-?。跩]. Veterinary Pathology,2009,46(6):1187-1196.
[16]Chen D J,Liu X W,Xu S K,et al. TNF-α induced by porcine reproductive and respiratory syndrome virus inhibits the replication of classical swine fever virus C-strain[J]. Veterinary Microbiology,2019,234:25-33.
[17]Takano T,Hohdatsu T,Toda A,et al. TNF-alpha,produced by feline infectious peritonitis virus (FIPV)-infected macrophages,upregulates expression of type Ⅱ FIPV receptor feline aminopeptidase N in feline macrophages[J]. Virology,2007,364(1):64-72.
[18]Kaivola J,Nyman T A,Matikainen S. Inflammasomes and SARS-CoV-2 infection[J]. Viruses,2021,13(12):2513.
[19]Freeman T L,Swartz T H. Targeting the NLRP3 inflammasome in severe COVID-19[J]. Frontiers in Immunology,2020,11:1518.
[20]Martinon F,Pétrilli V,Mayor A,et al. Gout-associated uric acid crystals activate the NALP3 inflammasome[J]. Nature,2006,440(7081):237-241.
[21]Xi Y M,Yan J S,Li M Y,et al. Gut microbiota dysbiosis increases the risk of visceral gout in goslings through translocation of gut-derived lipopolysaccharide[J]. Poultry Science,2019,98(11):5361-5373.