摘要：【目的】明確龜紋瓢蟲(chóng)（Propylea japonica）酪氨酸脫羧酶（tyrosine decarboxylase， TDC）基因的結(jié)構(gòu)特征、分子特性和表達(dá)情況，探明其作為章魚(yú)胺關(guān)鍵合成酶基因在瓢蟲(chóng)生殖發(fā)育中的調(diào)控作用。【方法】通過(guò)生物信息學(xué)軟件分析鑒定了龜紋瓢蟲(chóng)PjTDC1～4基因及其結(jié)構(gòu)特征，選擇其中PjTDC1基因，采用聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（polymerase chain reaction， PCR）、實(shí)時(shí)定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（quantitative real-time PCR， qRT-PCR）和RNA干擾（RNA interference， RNAi）技術(shù)，探索了PjTDC1基因在不同組織和不同發(fā)育時(shí)期的表達(dá)模式及其在龜紋瓢蟲(chóng)中的功能?！窘Y(jié)果】生物信息學(xué)分析表明，龜紋瓢蟲(chóng)中存在4個(gè)TDC基因，并命名為PjTDC1～4。4個(gè)龜紋瓢蟲(chóng)TDC蛋白均有PLN02880結(jié)構(gòu)域。 PjTDC1基因開(kāi)放閱讀框共1 728 bp，編碼 575 個(gè)氨基酸殘基。龜紋瓢蟲(chóng)PjTDC1蛋白與甘薯小象甲（Cylas formicarius）的TDC蛋白有最高的同源性。PjTDC1基因在龜紋瓢蟲(chóng)不同發(fā)育階段均有表達(dá)，在幼蟲(chóng)期和羽化1～7 d的雌蟲(chóng)中的表達(dá)量均逐漸降低，其中在1齡幼蟲(chóng)中表達(dá)量最高，在卵期、4齡幼蟲(chóng)及7日齡雌成蟲(chóng)中表達(dá)量較低。PjTDC1基因在不同組織中均有表達(dá)，但主要在卵巢、背部表皮和頭部中有較高的表達(dá)量。RNAi試驗(yàn)結(jié)果顯示，PjTDC1基因沉默抑制龜紋瓢蟲(chóng)卵母細(xì)胞中卵黃沉積，除此之外，在雙鏈RNA注射后的第1天和第3天，處理組初級(jí)卵母細(xì)胞寬度顯著小于對(duì)照組卵母細(xì)胞寬度，分別降低10.03%和18.60%。【結(jié)論】明確了龜紋瓢蟲(chóng)TDC基因的基本結(jié)構(gòu)特征，以及PjTDC1在龜紋瓢蟲(chóng)不同發(fā)育階段和不同組織的時(shí)空表達(dá)模式，明確了其在龜紋瓢蟲(chóng)卵母細(xì)胞的卵黃沉積過(guò)程中的正向調(diào)控作用，可為進(jìn)一步解決龜紋瓢蟲(chóng)大規(guī)模人工擴(kuò)繁難題提供理論依據(jù)。

關(guān)鍵詞：龜紋瓢蟲(chóng)；酪氨酸脫酸酶；PjTDC1；章魚(yú)胺；時(shí)空表達(dá)；生殖發(fā)育；RNA干擾

Identification and preliminary function exploration of tyrosine decarboxylase gene in vitellogenin deposits of Propylea japonica

Tang Zhijuan1， 2， Zhu Xiangzhen2， Zhang Kaixin2， Li Dongyang2， Ji Jichao2， Gao Xueke2， Luo Junyu2， Cui Jinjie2， Wang Li2*， Huangfu Ningbo2*， Chen Zhaorong1*

（1. College of Horticulture and Landscape Architecture， Tianjin Agricultural University， Tianjin 300392， China; 2. Institute of Cotton Research， Chinese Academy of Agricultural Sciences/State Key Laboratory of Cotton Bio-breeding and Integrated Utilization， Anyang， Henan 455000， China）

Abstract： [Objective] The aim of this study is to analyze the structural and molecular characteristics of Propylea japonica tyrosine decarboxylase （TDC） genes， and their expression pattern and to explore their regulatory role as a key octopamine synthetase gene in the reproductive development of ladybird beetle. [Methods] Four PjTDC genes and their basic structural characteristics were identified by bioinformatics software. PjTDC1 gene was cloned by polymerase chain reaction. The expression pattern of PjTDC1 gene in different tissues and at different developmental stages were investigated by quantitative real-time polymerase chain reaction. And the function of PjTDC1 gene in P. japonica were studied by RNA interference techniques. [Results] There were four TDC genes in the P. japonica， which were named PjTDC1-4. All the TDC proteins of P. japonica have PLN02880 domain， and PjTDC1 gene has an open reading frame of 1 728 bp， encoding 575 amino acid residues. PjTDC1 protein has the highest homology with the TDC protein of Cylas formicarius. PjTDC1 gene was expressed in P. japonica at different developmental stages， with the highest expression level in the 1st instar larvae but lower expression level in the egg stage larvae， the 4th instar larvae， and 7-day-old female adults. Generally speaking， the expression level of PjTDC1 decreased gradually at larval stages and in the adults after eclosion for 1 to 7 days. PjTDC1 gene is also expressed in different tissues， but it is mainly expressed in the ovaries， dorsal cuticula and head of the 5-day-old female adults. The results of RNA interference experiment showed that silencing of PjTDC1 gene inhibited the deposition of vitellogenin in the oocytes of P. japonica. In addition， on the 1st and 3rd day after injection of double strand RNA， the width of primary oocytes in the treatment group was significantly 10.03% and 18.60% lower than that in the control group. These results suggest that PjTDC1， as a key gene for octopamine synthesis， also plays an important regulatory role in the reproductive development of P. japonica. [Conclusion] In this study， the basic structural features of PjTDC genes and the spatial and temporal expression pattern of PjTDC1 at different developmental stages and in different tissues of P. japonica were studied， and its positive regulatory role in the process of vitellogenin deposits in the oocytes of P. japonica were clarified， which will provide theoretical basis for further solving the problem of large-scale artificial propagation of P. japonica.

Keywords： Propylea japonica; tyrosine decarboxylase; PjTDC; octopamine; spatio-temporal expression pattern; reproductive development; RNA interference

龜紋瓢蟲(chóng)（Propylea japonica）是我國(guó)最重要的捕食性天敵昆蟲(chóng)之一，屬鞘翅目（Coleoptera）瓢蟲(chóng)科（Coccinellidae），廣泛分布在我國(guó)北方和南方大多數(shù)地區(qū)的農(nóng)田生態(tài)系統(tǒng)中[1-2]。龜紋瓢蟲(chóng)具有生命周期長(zhǎng)、產(chǎn)卵量大、耐高溫干旱、喜高濕等特點(diǎn)，因此在我國(guó)多數(shù)農(nóng)田農(nóng)業(yè)生態(tài)系統(tǒng)中占據(jù)絕對(duì)優(yōu)勢(shì)，并逐漸成為我國(guó)溫室瓜果、蔬菜產(chǎn)業(yè)以及景觀園林作物等高附加值農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中生物防治的重要天敵[3-5]。龜紋瓢蟲(chóng)幼蟲(chóng)和成蟲(chóng)均以蚜蟲(chóng)、葉蟬、飛虱、鱗翅目昆蟲(chóng)的卵和低齡幼蟲(chóng)為食，喜食蚜蟲(chóng)，是蚜蟲(chóng)的天然“克星”[6-8]。但目前在人工飼料飼養(yǎng)條件下，龜紋瓢蟲(chóng)存在卵巢發(fā)育慢，產(chǎn)卵前期延長(zhǎng)，產(chǎn)卵量少，卵孵化率低等問(wèn)題[9-11]。因此，了解龜紋瓢蟲(chóng)的生殖調(diào)控機(jī)理，明確影響其生殖發(fā)育的關(guān)鍵因子是解決當(dāng)前其大規(guī)模擴(kuò)繁困難的關(guān)鍵。

章魚(yú)胺（octopamine， OA）是在無(wú)脊椎動(dòng)物中廣泛存在的1種神經(jīng)遞質(zhì)，最早發(fā)現(xiàn)是在章魚(yú)（Octopus vulgaris）唾液腺中，其結(jié)構(gòu)和功能類似于脊椎動(dòng)物的去甲狀腺類激素[12-13]。在昆蟲(chóng)中，OA的生物合成主要以酪氨酸（tyrosine， Tyr）為底物，在酪氨酸脫羧酶（tyrosine decarboxylase， TDC）的催化下發(fā)生脫羧反應(yīng)生成酪胺（tyramine， TA），接著在酪胺β-羥化酶（tyramine β-hydroxylase， Tβh）的作用下發(fā)生羥化反應(yīng)而最終合成[13-14]。目前在昆蟲(chóng)中的研究表明，OA作為1種神經(jīng)遞質(zhì)分子主要參與下列生命活動(dòng)：調(diào)節(jié)昆蟲(chóng)的運(yùn)動(dòng)、記憶、取食、神經(jīng)信號(hào)的傳導(dǎo)；調(diào)節(jié)昆蟲(chóng)的脂類和碳代謝；調(diào)節(jié)昆蟲(chóng)生殖發(fā)育等多種生理功能。例如，給蜜蜂、蟑螂和蒼蠅注射OA，能夠顯著增加其伸吻反射，從而增加對(duì)蔗糖水的吸入[15-18]。近年來(lái)的研究表明，OA能夠參與調(diào)控昆蟲(chóng)交配后的卵巢發(fā)育，調(diào)節(jié)雌蟲(chóng)的交配行為，調(diào)控昆蟲(chóng)保幼激素和蛻皮激素合成與分泌，調(diào)節(jié)卵形成和卵黃的生成，進(jìn)而影響昆蟲(chóng)的生殖發(fā)育[19-22]。

TDC作為OA合成的關(guān)鍵酶，除了直接參與合成OA，在昆蟲(chóng)產(chǎn)卵行為調(diào)控中同樣起著重要的作用，然而具體的調(diào)控機(jī)理仍不明確[19]。因此，TDC的相關(guān)研究不僅可以為揭示TDC基因本身的重要調(diào)控作用提供依據(jù)，還可以為研究OA重要生理功能提供方向。本研究基于龜紋瓢蟲(chóng)基因組和轉(zhuǎn)錄組測(cè)序數(shù)據(jù)[23]，分析龜紋瓢蟲(chóng)和其他昆蟲(chóng)TDC基因的親緣關(guān)系遠(yuǎn)近，探索了PjTDC1基因在不同組織和不同發(fā)育時(shí)期的表達(dá)模式，初步研究PjTDC1基因在龜紋瓢蟲(chóng)生殖發(fā)育中的功能，為進(jìn)一步研究章魚(yú)胺合成的關(guān)鍵酶在瓢蟲(chóng)生殖發(fā)育中的調(diào)控作用奠定基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)材料

供試?yán)ハx(chóng)：本實(shí)驗(yàn)最初的龜紋瓢蟲(chóng)種群采自河南安陽(yáng)的棉田，并在中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院棉花研究所溫室連續(xù)純化飼養(yǎng)多代。龜紋瓢蟲(chóng)于紗網(wǎng)籠（30 cm×30 cm×30 cm）中飼養(yǎng)，籠中放置接有豌豆修尾蚜（Megoura crassicauda）的蠶豆苗，并定期更換生長(zhǎng)狀況良好的帶有豌豆修尾蚜的蠶豆苗。飼養(yǎng)條件為光照時(shí)間14 h/黑暗時(shí)間10 h，溫度（25±1）℃，相對(duì)濕度（60±5）%。

1.2 總RNA 的提取及cDNA 的合成

使用TRIzol試劑（Invitrogen，美國(guó)）并根據(jù)操作說(shuō)明，提取龜紋瓢蟲(chóng)總RNA。采用賽默飛世爾分光光度計(jì)NanoDrop 2000和1.4%（質(zhì)量分?jǐn)?shù)，下同）瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)RNA的質(zhì)量和完整性。使用翌圣生物科技（上海）股份有限公司的反轉(zhuǎn)錄試劑盒Hifair○R" V one-step RT-gDNA digestion SuperMix for qPCR以1.0 μg RNA為模板合成cDNA，并保存于－20 ℃?zhèn)溆谩?/p>

1.3 基因克隆

在已經(jīng)公開(kāi)的龜紋瓢蟲(chóng)基因組數(shù)據(jù)庫(kù)（NCBI 登錄號(hào)： SRR10076377）中通過(guò)基因組注釋文件關(guān)鍵詞檢索和同源搜索的方法篩選4個(gè)TDC基因（PjTDC1、PjTDC2、PjTDC3、PjTDC4），根據(jù)PjTDC1基因序列，利用Primer Premier 6.0軟件設(shè)計(jì)全長(zhǎng)引物（表1）用于克隆PjTDC1。以反轉(zhuǎn)錄得到的龜紋瓢蟲(chóng)的cDNA為模板利用寶日醫(yī)生物技術(shù)（北京）有限公司的Ex Taq○R" DNA Polymerase進(jìn)行聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（polymerase chain reaction， PCR），反應(yīng)體系：10×Ex Taq Buffer 2.5 μL，dNTP Mix 2.0 μL，Ex Taq 酶0.4 μL，上下游引物各1.0 μL，cDNA 3.0 μL，加入ddH2O補(bǔ)至25 μL。擴(kuò)增程序?yàn)?4 ℃ 5 min；94 ℃ 30 s，60 ℃ 30 s，72 ℃ 3 min，30個(gè)循環(huán)；72 ℃ 10 min。使用1.4%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)PCR擴(kuò)增產(chǎn)物，選取單一條帶進(jìn)行測(cè)序。引物合成和測(cè)序均由生工生物工程（上海）公司完成。

1.4 基因及其編碼產(chǎn)物的生物信息學(xué)分析

在美國(guó)國(guó)家生物技術(shù)信息中心（National Center for Biotechnology Information of USA， NCBI）的ORF finder 網(wǎng)站（https：//www.ncbi.nlm.nih.gov/orffinder/）對(duì)PjTDC1進(jìn)行開(kāi)放閱讀框（open reading frame， ORF）分析；使用Expasy在線網(wǎng)站ProtParam（http：//web.expasy.org/protparam）分析蛋白質(zhì)的理化性質(zhì)；使用在線軟件SignalP-4.1（https：//services.healthtech.dtu.dk/services/SignalP-4.1/））和TMHMM-2.0（https：//services.healthtech.dtu.dk/services/TMHMM-2.0）預(yù)測(cè)蛋白質(zhì)的信號(hào)肽并分析跨膜區(qū)；使用在線網(wǎng)站W(wǎng)oLF PSORT（https：//wolfpsort.hgc.jp/）對(duì)蛋白質(zhì)進(jìn)行亞細(xì)胞定位；使用在線軟件SOPMA（https：//npsa-pbil.ibcp.fr/cgi-bin/npsa_automat.pl？page=npsa_sopma.html）和SWISS-MODEL（https：//swissmodel.expasy.org/interactive）分析蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu)和預(yù)測(cè)蛋白三級(jí)結(jié)構(gòu)。在NCBI的CDD網(wǎng)站（https：//www.ncbi.nlm.nih.gov/Structure/cdd/wrpsb.cgi）查找基因功能結(jié)構(gòu)域；在NCBI下載29條TDC同源蛋白的氨基酸序列，利用MEGA 6 軟件中的鄰接法（neighbor joining）在自展值（bootstrap）1 000次下構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)，并通過(guò)在線工具 iTOL（https：//itol.embl.de/itol.cgi）對(duì)進(jìn)化樹(shù)進(jìn)行美化。

1.5 雙鏈RNA合成和RNA干擾實(shí)驗(yàn)

設(shè)計(jì)具有T7啟動(dòng)子序列（TAATACGACTCACTATAGGN）的引物T7-dsPjTDC1和T7-

dsGFP（表1），使用T7 RiboMAXTM Express RNAi System試劑盒（Promega，美國(guó)）合成PjTDC1的雙鏈RNA（double strand RNA， dsRNA）。RNA干擾實(shí)驗(yàn)選用羽化不超過(guò)24 h的雌成蟲(chóng)，使用微量注射器在試蟲(chóng)的第3、第4腹節(jié)間注射3 μg·μL－1 dsRNA，每頭注射0.5 μL，對(duì)照組注射相同劑量的dsGFP。試驗(yàn)設(shè)3個(gè)生物學(xué)重復(fù)，每個(gè)生物學(xué)重復(fù)12頭試蟲(chóng)。注射dsRNA后的龜紋瓢蟲(chóng)用豌豆修尾蚜正常飼養(yǎng)。在注射dsRNA后1 d、2 d和3 d，使用羅氏實(shí)時(shí)熒光定量?jī)xqRT-PCR LightCycler 480檢測(cè)干擾效率。選取注射dsRNA后 1 d、3 d、5 d、7 d的龜紋瓢蟲(chóng)，在磷酸緩沖鹽溶液（phosphate buffer saline， PBS）里進(jìn)行活體解剖，采用蔡司體式顯微鏡SteREO Discovery V8觀察卵巢形態(tài)并拍照，同時(shí)測(cè)量卵巢小管長(zhǎng)度和初級(jí)卵母細(xì)胞寬度。實(shí)驗(yàn)共設(shè)3個(gè)生物學(xué)重復(fù)，每個(gè)生物學(xué)重復(fù)共觀察12頭試蟲(chóng)卵巢，每個(gè)卵巢測(cè)量5～8個(gè)卵巢小管長(zhǎng)度和初級(jí)卵母細(xì)胞寬度。

1.6 龜紋瓢蟲(chóng)PjTDC1時(shí)空表達(dá)模式分析

選取龜紋瓢蟲(chóng)卵，1齡、2齡、3齡、4齡幼蟲(chóng)，蛹，羽化第1天、第2天、第3天、第4天、第5天、第7天和第9天的雌性成蟲(chóng)，進(jìn)行時(shí)間表達(dá)模式分析。選取羽化第5天的龜紋瓢蟲(chóng)雌成蟲(chóng)頭、胸部、腸道、鞘翅、背部表皮和卵巢進(jìn)行空間表達(dá)模式分析。通過(guò)Primer Premier 6.0軟件設(shè)計(jì)引物q-PjTDC1（表1）用于實(shí)時(shí)定量PCR（quantitative real-time PCR， qRT-PCR），使用RPS18作為內(nèi)參基因[24]，并采用2－△△Ct法計(jì)算靶標(biāo)基因的表達(dá)水平[25]，均設(shè)3個(gè)生物學(xué)重復(fù)，4個(gè)技術(shù)重復(fù)。其中：用于時(shí)間表達(dá)的卵及1齡、2 齡、3 齡幼蟲(chóng)，每個(gè)生物學(xué)重復(fù)樣本量均為20頭，4齡幼蟲(chóng)、蛹、成蟲(chóng)的樣本量為5頭；用于組織表達(dá)的樣品，每個(gè)重復(fù)為5頭。qRT-PCR混合反應(yīng)體系：模板cDNA 2.0 μL，上下游引物各0.4 μL，2× TransStart○R" Top Green qPCR SuperMix（＋Dye Ⅰ）5.0 μL，用超純水補(bǔ)足至 10 μL。反應(yīng)條件為94 ℃預(yù)變性30 s；94 ℃ 5 s、55 ℃ 15 s、72 ℃ 10 s，40個(gè)循環(huán)。qRT-PCR試劑購(gòu)于北京全式金生物技術(shù)有限公司。

1.7 數(shù)據(jù)分析

實(shí)驗(yàn)結(jié)果采用平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示。采用 t 檢驗(yàn)法分析2組樣本均值的差異顯著性；采用單因素方差分析，采用鄧肯氏新復(fù)極差法進(jìn)行多重比較。數(shù)據(jù)分析和作圖采用SPSS 26.0和Graphpad Prism 6軟件。圖片處理采用 Photoshop 2022和Adobe Illustrator 2020軟件。

2 結(jié)果與分析

2.1 PjTDC1蛋白的理化性質(zhì)以及蛋白結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)分析

基于龜紋瓢蟲(chóng)的基因組和轉(zhuǎn)錄組測(cè)序數(shù)據(jù)，共鑒定到4個(gè)龜紋瓢蟲(chóng)TDC基因，并根據(jù)氨基酸序列長(zhǎng)短依次命名為PjTDC1、PjTDC2、PjTDC3和PjTDC4。這4個(gè)PjTDC基因分別編碼Pjao029185.1、Pjao027134.1、Pjao029478.1、Pjao-

027327.1，分別包含575、215、205和106個(gè)氨基酸殘基，均含有與TDC相關(guān)的PLN02880結(jié)構(gòu)域，PLN02880結(jié)構(gòu)域分別位于PjTDC1～4蛋白第1～475、9～69、56～203和1～106個(gè)氨基酸（圖1A）。PLN02880結(jié)構(gòu)域?qū)儆诹姿徇炼呷╬yridoxal phosphate， PLP）依賴性酶中的天冬氨酸轉(zhuǎn)氨酶（aspartate aminotransferase， AAT）超家族成員的典型結(jié)構(gòu)域。

PjTDC1基因的ORF長(zhǎng)度為1 728 bp，預(yù)測(cè)PjTDC1蛋白分子量和理論等電點(diǎn)（isoelectirc point， pI）分別為65 074.79 Da和6.17。PjTDC1蛋白的親水性平均系數(shù)為－0.220，是親水性蛋白。對(duì)PjTDC1蛋白進(jìn)行分析，未發(fā)現(xiàn)明顯的信號(hào)肽切割位點(diǎn)，推測(cè)為非分泌蛋白。預(yù)測(cè)顯示，PjTDC1蛋白無(wú)跨膜區(qū)。亞細(xì)胞定位結(jié)果顯示，PjTDC1蛋白被定位在細(xì)胞質(zhì)中。通過(guò)二級(jí)結(jié)構(gòu)分析，發(fā)現(xiàn)PjTDC1蛋白由α-螺旋、延伸鏈、β-轉(zhuǎn)角和無(wú)規(guī)則卷曲結(jié)構(gòu)組成，占比分別為46.96%、14.26%、5.39%、33.39%（圖1B）。以白蠟窄吉?。ˋgrilus planipennis）的TDC蛋白三級(jí)結(jié)構(gòu)為模板（A0A1W4XJ75.1.A）通過(guò)同源建模構(gòu)建龜紋瓢蟲(chóng)PjTDC1蛋白三級(jí)結(jié)構(gòu)，PjTDC1蛋白構(gòu)建三級(jí)結(jié)構(gòu)的序列與模板蛋白序列的覆蓋度為0.86，序列相似度為73.69%（圖1C）。PjTDC1蛋白的三級(jí)結(jié)構(gòu)主要由α-螺旋組成，與二級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)結(jié)果一致。

2.2 TDC基因的系統(tǒng)進(jìn)化分析

根據(jù)龜紋瓢蟲(chóng)與其他物種的TDC蛋白序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)，結(jié)果（圖 2）顯示，龜紋瓢蟲(chóng)PjTDC1蛋白與甘薯小象甲（Cylas formicarius）的XP_060529679.1聚在同一分支，同源性最高；龜紋瓢蟲(chóng)PjTDC2與米象（Sitophilus oryzae）XP_030761693.1親緣關(guān)系最近；PjTDC3與牛犀金龜（Onthophagus taurus）XP_022920893.1親緣關(guān)系最近，有最高的同源性；PjTDC4與白蠟窄吉丁XP_018332420.1親緣關(guān)系最近。4個(gè)PjTDC蛋白與馬鈴薯甲蟲(chóng)（Leptinotarsa decemlineata）XP_023025865.1和小蜂窩甲蟲(chóng)（Aethina tumida）XP _019873389.1親緣關(guān)系較遠(yuǎn)。

2.3 PjTDC1時(shí)空表達(dá)模式分析

通過(guò)qRT-PCR對(duì)PjTDC1基因在龜紋瓢蟲(chóng)不同發(fā)育時(shí)期（卵、1～4齡幼蟲(chóng)、蛹、雌蟲(chóng)羽化第1、2、3、4、5、7和9天）和雌蟲(chóng)羽化第5天的不同組織（頭、胸部、腸道、卵巢、鞘翅、背面表皮）的時(shí)空表達(dá)模式進(jìn)行分析，結(jié)果顯示，PjTDC1在1齡幼蟲(chóng)中的表達(dá)水平最高，在卵中的表達(dá)量?jī)H為1齡幼蟲(chóng)中表達(dá)量的34％，PjTDC1表達(dá)水平隨著幼蟲(chóng)的發(fā)育進(jìn)程呈現(xiàn)降低的趨勢(shì)，在4齡幼蟲(chóng)達(dá)到最低（圖3A）。從4齡幼蟲(chóng)到羽化第1天的雌蟲(chóng)，PjTDC1的表達(dá)水平急速上升，且在羽化第1天達(dá)到成蟲(chóng)期的峰值。在羽化第1～7天的雌蟲(chóng)中，PjTDC1的表達(dá)水平呈現(xiàn)下降趨勢(shì)，然而在成蟲(chóng)羽化的第9天再次升高（圖3A）。從組織表達(dá)特異性來(lái)看，PjTDC1基因在羽化第5天的雌蟲(chóng)卵巢、背部表皮和頭部中的表達(dá)量較高，在胸部的表達(dá)量相對(duì)較低（圖3B）。

2.4 PjTDC1基因沉默對(duì)生殖發(fā)育的影響

為了進(jìn)一步探索PjTDC1基因的功能，通過(guò)RNAi技術(shù)對(duì)龜紋瓢蟲(chóng)PjTDC1基因進(jìn)行敲低。qRT-PCR結(jié)果顯示，PjTDC1基因的表達(dá)水平在注射dsRNA后第1 天與dsGFP對(duì)照組相比顯著下降31.98%，第2 天顯著下降62.04%，第3 天顯著下降39.32%（圖4A）。進(jìn)一步評(píng)估PjTDC1基因敲低對(duì)龜紋瓢蟲(chóng)生殖發(fā)育的影響，注射后第3 天，dsGFP對(duì)照組初級(jí)卵母細(xì)胞逐步膨大，開(kāi)始沉積卵黃，卵母細(xì)胞呈現(xiàn)淺黃色；然而dsPjTDC1處理組卵母細(xì)胞較小，卵黃沉積少。注射后第5天，相比dsGFP對(duì)照組，dsPjTDC1處理組的卵母細(xì)胞發(fā)育遲緩，多數(shù)卵母細(xì)胞沒(méi)有完成卵黃沉積。注射后第7天，dsGFP對(duì)照組大量卵母細(xì)胞完成卵黃沉積發(fā)育成熟，而dsPjTDC1處理組僅有個(gè)別卵母細(xì)胞發(fā)育成熟（圖4B）。初步推測(cè)，PjTDC1基因的敲低主要影響卵母細(xì)胞中卵黃沉積過(guò)程。

觀察和檢測(cè)PjTDC1基因敲低對(duì)卵巢管長(zhǎng)度和卵母細(xì)胞寬度發(fā)育的影響（圖5），dsPjTDC1處理組和dsGFP對(duì)照組的卵巢管長(zhǎng)度無(wú)顯著差異；但注射后第1天和第3天dsPjTDC1處理組的初級(jí)卵母細(xì)胞寬度比對(duì)照組顯著降低10.03%和18.60%，處理組初級(jí)卵母細(xì)胞的寬度分別為162.71 μm和290.63 μm，對(duì)照組則分別為180.84 μm和357.06 μm。進(jìn)一步驗(yàn)證PjTDC1基因的敲低影響卵母細(xì)胞卵黃沉積。

3 討論

TDC作為OA合成的關(guān)鍵酶，在生殖發(fā)育中扮演重要角色。本研究克隆了龜紋瓢蟲(chóng)PjTDC1基因，分析了PjTDC1～4基因的基本結(jié)構(gòu)和分子特征，探索了PjTDC1基因在不同組織和不同發(fā)育時(shí)期的表達(dá)模式，初步驗(yàn)證了PjTDC1基因在龜紋瓢蟲(chóng)中的功能。本研究發(fā)現(xiàn)龜紋瓢蟲(chóng)中存在4個(gè)TDC同源基因，并且4個(gè)TDC蛋白均含有與酪氨酸脫羧酶相關(guān)的結(jié)構(gòu)域PLN02880。系統(tǒng)發(fā)育分析結(jié)果顯示，PjTDC1與甘薯小象甲XP_060529679.1有最高同源性，PjTDC2與米象XP_030761693.1親緣關(guān)系最近，PjTDC3與牛犀金龜XP_022920893.1親緣關(guān)系最近，PjTDC4與白蠟窄吉丁XP_018332420.1有較高同源性。結(jié)果表明TDC基因具有很高的進(jìn)化保守性。

在時(shí)空表達(dá)模式分析中發(fā)現(xiàn)，PjTDC1在龜紋瓢蟲(chóng)不同發(fā)育階段和不同組織中均有表達(dá)，這表明PjTDC1在龜紋瓢蟲(chóng)的不同發(fā)育時(shí)期和不同組織中均發(fā)揮著重要的調(diào)控功能[26]。PjTDC1在龜紋瓢蟲(chóng)1齡幼蟲(chóng)中表達(dá)水平最高，在幼蟲(chóng)期整體呈現(xiàn)逐漸下降的表達(dá)趨勢(shì)。PjTDC1在龜紋瓢蟲(chóng)1齡幼蟲(chóng)中的高表達(dá)與鞘翅目模式昆蟲(chóng)赤擬谷盜（T. castaneum）OA受體基因OctβR3和褐飛虱（Nilaparvata lugens）OA家族受體基因NIOA3的表達(dá)模式類似[27-28]。因此，推測(cè)PjTDC1在龜紋瓢蟲(chóng)幼蟲(chóng)發(fā)育早期的高表達(dá)可能預(yù)示PjTDC1基因與赤擬谷盜OctβR3和褐飛虱NIOA3具有相似的功能。結(jié)合這些研究結(jié)果推測(cè)，在幼蟲(chóng)的發(fā)育過(guò)程中，昆蟲(chóng)對(duì)OA合成的需求逐漸降低，OA在幼蟲(chóng)的早期發(fā)育中發(fā)揮更關(guān)鍵的功能。當(dāng)龜紋瓢蟲(chóng)從蛹期羽化為成蟲(chóng)時(shí)，PjTDC1基因的表達(dá)水平顯著升高；然而，隨著成蟲(chóng)日齡的增加，PjTDC1的表達(dá)水平持續(xù)下降。這一表達(dá)趨勢(shì)與家蠶（Bombyx mori）、亞洲玉米螟（Ostrinia furnacalis）中與卵巢發(fā)育、卵子成熟相關(guān)的卵巢絲氨酸蛋白酶編碼基因BmOsp和OfOsp1的情況一致[29-30]。推測(cè)PjTDC1基因在蛹期羽化為成蟲(chóng)時(shí)的上調(diào)表達(dá)與龜紋瓢蟲(chóng)羽化以及羽化后成蟲(chóng)卵巢快速發(fā)育和卵子成熟相關(guān)。這一結(jié)果與PjTDC1在卵巢中的高表達(dá)一致，暗示PjTDC1基因參與龜紋瓢蟲(chóng)成蟲(chóng)期卵巢的發(fā)育和卵形成調(diào)控過(guò)程。

為驗(yàn)證上述推論，進(jìn)行了RNAi實(shí)驗(yàn)，結(jié)果表明，PjTDC1基因的沉默影響卵母細(xì)胞的卵黃沉積過(guò)程。dsRNA注射后第3天，dsPjTDC1處理組卵母細(xì)胞較小，卵黃沉積少。在第5天和第7天，dsPjTDC1處理組僅有個(gè)別卵母細(xì)胞發(fā)育成熟，而dsGFP對(duì)照組大量卵母細(xì)胞完成卵黃沉積發(fā)育成熟。這與褐飛虱中OA合成酶基因NlTβH在卵巢發(fā)育中的功能研究結(jié)果一致[31]。褐飛虱中NlTβH的敲低抑制OA合成水平，阻礙環(huán)腺苷酸/蛋白激酶A信號(hào)通路和保幼激素合成相關(guān)信號(hào)通路關(guān)鍵基因的表達(dá)[31]，導(dǎo)致卵黃原蛋白水平顯著降低，卵黃沉積受到抑制。OA通過(guò)特異性結(jié)合G-蛋白偶聯(lián)受體進(jìn)而調(diào)控第二信使環(huán)腺苷酸，從而實(shí)現(xiàn)調(diào)控昆蟲(chóng)的產(chǎn)卵、排卵、精子釋放和覓食等多種行為[13]。除此之外，研究表明OA還能間接作用于咽側(cè)體和前胸腺，調(diào)節(jié)保幼激素和蛻皮激素的合成和分泌，進(jìn)而通過(guò)影響卵黃生成和卵母細(xì)胞的成熟影響生殖[21， 31]。在果蠅中發(fā)現(xiàn)，OA合成酶基因的敲除造成雌性生殖缺陷，主要通過(guò)影響輸卵管肌肉和排卵過(guò)程實(shí)現(xiàn)[32-33]。本研究發(fā)現(xiàn)PjTDC1基因正調(diào)控龜紋瓢蟲(chóng)卵巢卵黃沉積和初級(jí)卵母細(xì)胞寬度，推測(cè)這種調(diào)控作用很可能是通過(guò)對(duì)保幼激素和蛻皮激素的調(diào)控而實(shí)現(xiàn)的，但具體的分子機(jī)理還有待研究。

4 結(jié)論

本研究明確了龜紋瓢蟲(chóng)PjTDC1基因的基本結(jié)構(gòu)特征以及在不同發(fā)育階段和不同組織中的時(shí)空表達(dá)模式，探明了PjTDC1基因表達(dá)量隨著幼蟲(chóng)齡期、成蟲(chóng)日齡的增長(zhǎng)而逐漸降低，并在羽化第5天的雌性成蟲(chóng)卵巢、背部表皮和頭部中有較高水平的表達(dá)。除此之外，通過(guò)RNA干擾實(shí)驗(yàn)證實(shí)了PjTDC1基因?qū)敿y瓢蟲(chóng)卵黃沉積和卵形成的正調(diào)控作用。

參考文獻(xiàn)：

[1] Zhao C C， Wu L K， Luo J Y， et al. Bt， not a threat to Propylea japonica[J/OL]. Frontiers in Physiology， 2020， 11： 758[2024-04-

01]. https：//doi.org/10.3389/fphys.2020.00758.

[2] 張世澤， 仵均祥， 張強(qiáng)， 等. 龜紋瓢蟲(chóng)生物生態(tài)學(xué)特性及飼養(yǎng)利用研究進(jìn)展[J]. 干旱地區(qū)農(nóng)業(yè)研究， 2004， 22（4）： 206-210.

Zhang Shize， Wu Junxiang， Zhang Qiang， et al. Research advances of Propylaea japonica （Thunberg） in biology， ecology and utilization[J]. Agricultural Research in the Arid Areas， 2004， 22（4）： 206-210.

[3] 胡昌雄， 劉增虎， 楊偉克， 等. 龜紋瓢蟲(chóng)對(duì)桑薊馬的捕食作用及兩者在桑樹(shù)上的分布[J/OL]. 植物保護(hù)， 2023， 49（6）： 147-154[2024-04-01]. https：//doi.org/10.16688/j.zwbh.2022474.

Hu Changxiong， Liu Zenghu， Yang Weike， et al. Predation of Pseudodendrothrips mori by Propylea japonica and their distribution on mulberry trees[J/OL]. Plant Protection， 2023， 49（6）： 147-154[2024-04-01]. https：//doi.org/10.16688/j.zwbh.2022474.

[4] 何清華， 李桂花. 枸杞蚜蟲(chóng)及其優(yōu)勢(shì)天敵捕食模型建立及性態(tài)分析[J/OL]. 石河子大學(xué)學(xué)報(bào)（自然科學(xué)版）， 2023， 41（5）： 655-

660[2024-04-01]. https：//doi.org/10.13880/j.cnki.65-1174/n.

2023.23.016.

He Qinghua， Li Guihua. Establishment and behavior analysis of the model considering wolfberry aphids and their dominant predators[J/OL]. Journal of Shihezi University （Natural Science）， 2023， 41（5）： 655-660[2024-04-01]. https：//doi.org/10.13880/j.cnki.65-1174/n.2023.23.016.

[5] 皇甫寧博. 保幼激素調(diào)控龜紋瓢蟲(chóng)卵子發(fā)生和卵黃生成的機(jī)制研究[D]. 北京： 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院， 2021.

Huangfu Ningbo. Study on the mechanisms of juvenile hormone regulating ogenesis and vitellogenesis in Propylea japonica[D]. Beijing： Chinese Academy of Agricultural Sciences， 2021.

[6] Zhang S， Luo J Y， Jiang W L， et al. Response of the bacterial community of Propylea japonica （Thunberg） to Cry2Ab protein[J/OL]. Environmental Pollution， 2019， 254： 113063[2024-04-

01]. https：//doi.org/10.1016/j.envpol.2019.113063.

[7] 宋慧英， 吳力游， 陳國(guó)發(fā)， 等. 龜紋瓢蟲(chóng)生物學(xué)特性的研究[J]. 昆蟲(chóng)天敵， 1988， 10（1）： 22-33.

Song Huiying， Wu Liyou， Chen Guofa， et al. Biological characteristics of ladybird beetle， Propylea japonica[J]. Natural Enemies of Insects， 1998， 10（1）： 22-33.

[8] 張春玲， 岳鳳榮. 龜紋瓢蟲(chóng)對(duì)3種果樹(shù)害蟲(chóng)的捕食作用研究[J]. 山東農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)， 1996， 27（4）： 425-430.

Zhang Chunling， Yue Fengrong. Functional responses of Propylaea japonica （Thunbery） to three fruit tree pests[J]. Journal of Shandong Agricultural University， 1996， 27（4）： 425-430.

[9] 沈志成， 胡萃， 龔和. 取食雄蜂蛹粉對(duì)龜紋瓢蟲(chóng)和異色瓢蟲(chóng)卵黃發(fā)生的影響[J]. 昆蟲(chóng)學(xué)報(bào)， 1992， 35（3）： 273-278.

Shen Zhicheng， Hu Cui， Gong He. Effect of feeding artificial diet on vitellogenesis of Propylaea japonica and Harmonia axyridis[J]. Acta Entomologica Sinica， 1992， 35（3）： 273-278.

[10] Intazar A， Zhang S， Luo J Y， et al. Artificial diet development and its effect on the reproductive performances of Propylea japonica and Harmonia axyridis[J/OL]. Journal of Asia-Pacific Entomology， 2016， 19（2）： 289-293[2024-04-01]. https：//doi.org/10.1016/j.aspen.2016.03.005.

[11] 張麗莉， 李愷， 張?zhí)熹?等. 人工飼料對(duì)龜紋瓢蟲(chóng)生長(zhǎng)和繁殖的影響[J]. 昆蟲(chóng)知識(shí)， 2007， 44（6）： 871-876.

Zhang Lili， Li Kai， Zhang Tianshu， et al. The effect of the artificial diets on Propylea japonica growth and fecundity[J]. Chinese Journal of Applied Entomology， 2007， 44（6）： 871-876.

[12] Erspamer V， Boretti G. Identification and characterization， by paper chromatography， of enteramine， octopamine， tyramine， histamine and allied substances in extracts of posterior salivary glands of octopoda and in other tissue extracts of vertebrates and invertebrates[J]. Archives Internationales de Pharmacodynamie et de Therapie， 1951， 88（3）： 296-332.

[13] Roeder T. Tyramine and octopamine： ruling behavior and metabolism[J/OL]. Annual Review of Entomology， 2005， 50（1）： 447-477[2024-04-01]. https：//doi.org/10.1146/annurev.ento.50.071803.130404.

[14] Lange A B. Tyramine： from octopamine precursor to neuroactive chemical in insects[J/OL]. General and Comparative Endocrinology， 2009， 162（1）： 18-26[2024-04-01]. https：//doi.org/

10.1016/j.ygcen.2008.05.021.

[15] Menzel R， Wittstock S， Sugawa M， et al. Chemical codes of learning and memory in honey bees[C]// The Biology of Memory： Symposium Bernried， Stuttgart， Germany： F. K. Schattauer Verlag， 1990： 335-359.

[16] Long T F， Murdock L L. Stimulation of blowfly feeding be-

havior by octopaminergic drugs[J/OL]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America， 1983， 80（13）： 4159-4163[2024-04-01]. https：//doi.org/10.1073/

pnas.80.13.4159.

[17] Angioy A M， Barbarossa I T， Crnjar R， et al. Effects of octopaminergic substances on the labellar lobe spreading response in the blowfly Protophormia terraenovae[J/OL]. Neuroscience Letters， 1989， 103（1）： 103-107[2024-04-01]. https：//

doi.org/10.1016/0304-3940（89）90493-x.

[18] Cohen R W， Mahoney D A， Can H D. Possible regulation of feeding behavior in Cockroach Nymphs by the neurotransmitter octopamine[J/OL]. Journal of Insect Behavior， 2002， 15（1）： 37-50[2024-04-01]. https：//doi.org/10.1023/A：1014428011892.

[19] Rezával C， Nojima T， Neville M C， et al. Sexually dimorphic octopaminergic neurons modulate female postmating behaviors in Drosophila[J/OL]. Current Biology， 2014， 24（7）： 725-730[2024-04-01]. https：//doi.org/10.1016/j.cub.2013.12.051.

[20] Heifetz Y， Lindner M， Garini Y， et al. Mating regulates neuromodulator ensembles at nerve termini innervating the Drosophila reproductive tract[J/OL]. Current Biology， 2014， 24（7）： 731-

737[2024-04-01]. https：//doi.org/10.1016/j.cub.2014.02.042.

[21] Gruntenko N E， Karpova E K， Alekseev A A， et al. Effects of octopamine on reproduction， juvenile hormone metabolism， dopamine， and 20-hydroxyecdysone contents in Drosophila[J/OL]. Archives of Insect Biochemistry and Physiology， 2007， 65（2）： 85-94[2024-04-01]. https：//doi.org/10.1002/arch.20187.

[22] Hannes K， Stefan E， Sabine K. Stimulatory effect of octopamine on juvenile hormone biosynthesis in honey bees （Apis mellifera）： physiological and immunocytochemical evidence[J/OL]. Journal of Insect Physiology， 1994， 40（10）： 865-872[2024-04-01]. https：//doi.org/10.1016/0022-1910（94）90020-5.

[23] Zhang L J， Song L， Luo J Y， et al. Chromosome‐level genome assembly of the predator Propylea japonica to understand its tolerance to insecticides and high temperatures[J/OL]. Molecular Ecology Resources， 2019， 20（1）： 292-307[2024-04-01]. https：//doi.org/10.1111/1755-0998.13100.

[24] Lü J， Chen S M， Guo M J， et al. Selection of appropriate reference genes for RT-qPCR analysis in Propylea japonica （Coleoptera： Coccinellidae）[J/OL]. PLoS One， 2018， 13（11）： e0208027[2024-04-01]. https：//doi.org/doi：10.1371/journal.pone.0208027.

[25] Kenneth J， Thomas D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-ΔΔCt method[J/OL]. Methods， 2001， 25（4）： 402-408[2024-04-01]. https：//doi.org/10.1006/meth.2001.1262.

[26] Wu S F， Yao Y， Huang J， et al. Characterization of a β-adrenergic-

like octopamine receptor from the rice stem borer （Chilo suppressalis）[J/OL]. The Journal of Experimental Biology， 2012， 215（15）： 2646-2652[2024-04-01]. https：//doi.org/10.1242/jeb.

068932.

[27] 劉小強(qiáng)， 蔣紅波， 李慧敏， 等. 赤擬谷盜章魚(yú)胺受體3（TcOctβR3）cDNA克隆、表達(dá)及功能[J/OL]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)， 2018， 51（7）： 1315-1324[2024-04-01]. https：//doi.org/10.3864/j.issn.0578-1752.2018.07.009.

Liu Xiaoqiang， Jiang Hongbo， Li Huimin， et al. The cDNA cloning， expression profiling and functional characterization of octopamine receptor 3 （TcOctβR3） in Tribolium castaneum[J/OL]. Scientia Agricultura Sinica， 2018， 51（7）： 1315-1324[2024-04-01]. https：//doi.org/10.3864/j.issn.0578-1752.2018.07.

009.

[28] 居曉敏. 褐飛虱章魚(yú)胺家族受體基因分析及藥理學(xué)和生理功能研究[D]. 南京： 南京農(nóng)業(yè)大學(xué)， 2019.

Ju Xiaomin. Genetic analysis， pharmacology and physiological functions of octopamine receptors family in brown planthopper， Nilaparvata lugens[D]. Nanjing： Nanjing Agricultural University， 2019.

[29] 徐霞. 家蠶絲氨酸蛋白酶Ser2和Osp參與生殖調(diào)控的研究[D]. 上海： 華東師范大學(xué)， 2020.

Xu Xia. Function study of serine protease Ser2 and Osp in the regulation of reproduction in Bombyx mori[D]. Shanghai： East China Normal University， 2020.

[30] 張珀瑞. 亞洲玉米螟（Ostrinia furnacalis）卵巢絲氨酸蛋白酶基因的鑒定及功能研究[D]. 沈陽(yáng)： 沈陽(yáng)農(nóng)業(yè)大學(xué)， 2023.

Zhang Porui. Identification and functional characterization of Ovarian Serine Protease （Osp） in Ostrinia furnacalis[D]. Shenyang： Shenyang Agricultural University， 2023.

[31] 顧浩天. 章魚(yú)胺在褐飛虱生殖中的調(diào)控作用及其機(jī)理研究[D]. 揚(yáng)州： 揚(yáng)州大學(xué)， 2020.

Gu Haotian. Function and regulatory mechanism of octopamine in fecundity of Nilaparvata lugens （St■l） （Hemiptera： Delphacidae）[D]. Yangzhou： Yangzhou University， 2020.

[32] Monastirioti M. Distinct octopamine cell population residing in the CNS abdominal ganglion controls ovulation in Drosophila melanogaster[J/OL]. Developmental Biology， 2003， 264（1）： 38-

49[2024-04-01]. https：//doi.org/10.1016/j.ydbio.2003.07.019.

[33] Monastirioti M， Linn C E J， White K. Characterization of Drosophila tyramine beta-hydroxylase gene and isolation of mutant flies lacking octopamine[J/OL]. The Journal of Neuroscience， 1996， 16（12）： 3900-3911[2024-04-01]. https：//doi.org/

10.1523/jneurosci.16-12-03900.1996.

（責(zé)任編輯：王國(guó)鑫" " 責(zé)任校對(duì)：王小璐）