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        依托咪酯通過(guò)促進(jìn)miR-142-3p表達(dá)減輕缺氧誘導(dǎo)的PC12細(xì)胞神經(jīng)炎癥反應(yīng)和細(xì)胞凋亡的分子機(jī)制研究①

        2023-12-28 10:23:14李明霞周軍格長(zhǎng)江航運(yùn)總醫(yī)院麻醉科武漢430000
        中國(guó)免疫學(xué)雜志 2023年12期
        關(guān)鍵詞:影響

        沈 磊 李明霞 彭 湃 周軍格 楊 軍 (長(zhǎng)江航運(yùn)總醫(yī)院麻醉科,武漢 430000)

        腦缺氧缺血可引起廣泛的生物反應(yīng),包括去極化、興奮性毒性、氧化應(yīng)激、炎癥和細(xì)胞凋亡,并導(dǎo)致神經(jīng)變性[1]。依托咪酯是一種常用的靜脈麻醉劑,可在麻醉期間保持良好的血流動(dòng)力學(xué)穩(wěn)定性。據(jù)報(bào)道,依托咪酯在非小細(xì)胞肺癌等癌癥中發(fā)揮腫瘤抑制作用[2]。最近有報(bào)道稱,依托咪酯具有神經(jīng)保護(hù)作用。依托咪酯通過(guò)抗凋亡、抗氧化作用改善過(guò)氧化氫刺激的PC12細(xì)胞損傷,或減少細(xì)胞死亡對(duì)抗神經(jīng)元缺氧損傷[3-4]。然而,依托咪酯是否會(huì)對(duì)缺氧誘導(dǎo)的PC12 細(xì)胞產(chǎn)生有益作用仍有待闡明。依托咪酯麻醉會(huì)在心血管中誘導(dǎo)不同的微小RNA(microRNA,miRNA)表達(dá),如miR-129-5p、miR-105、miR-324-3p 等[5]。研究顯示,miR-142-3p 對(duì)腦缺血/再灌注損傷發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用[6]。然而miR-142-3p對(duì)缺氧誘導(dǎo)的PC12 細(xì)胞損傷及依托咪酯能否通過(guò)調(diào)控miR-142-3p 減輕缺氧誘導(dǎo)的PC12 細(xì)胞損傷尚不明確。本研究旨在探究依托咪酯對(duì)缺氧誘導(dǎo)的PC12 細(xì)胞凋亡和炎癥損傷的保護(hù)作用,并以miR-142-3p為切入點(diǎn),闡明其潛在機(jī)制。

        1 材料與方法

        1.1 材料 PC12 細(xì)胞(中國(guó)科學(xué)院上海細(xì)胞庫(kù));依托咪酯(>98%)、CCK-8試劑(美國(guó)Sigma-Aldrich);Lipofectamine 3000、TRIzol 試劑、TaqMan MicroRNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(美國(guó)Invitrogen);miR-con、miR-142-3p 模擬物、anti-miR-con、miR-142-3p 抑制物(antimiR-142-3p)(上海吉瑪);抗細(xì)胞周期蛋白D1(CyclinD1)一抗、抗活化的含半胱氨酸的天冬氨酸蛋白水解酶-3(Cleaved-caspase-3)一抗、TNF-α、IL-1β、IL-6 ELISA 試劑盒(美國(guó)Abcam);細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒、RIPA 緩沖液、BCA 蛋白定量試劑盒、ECL Plus試劑盒(上海碧云天);SYBR Green Universal qPCR Master Mix(美國(guó)Bio-Rad)。

        1.2 方法

        1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng)與缺氧損傷 采用含10%胎牛血清、37 ℃、含5%CO2、95%空氣的DMEM 培養(yǎng)基培養(yǎng)PC12 細(xì)胞。缺氧損傷時(shí),將PC12 細(xì)胞置于37 ℃、95%N2、5%CO2的缺氧培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h[7]。

        1.2.2 實(shí)驗(yàn)分組 將PC12 細(xì)胞分為對(duì)照組(正常培養(yǎng))、缺氧組(缺氧處理24 h)、缺氧+不同劑量(2、6、12 μmol/L)依托咪酯組(2、6、12 μmol/L 依托咪酯干預(yù)24 h 后,行缺氧處理)、miR-con+缺氧組(轉(zhuǎn)染miR-con 后,行缺氧處理24 h)、miR-142-3p+缺氧組(轉(zhuǎn)染miR-142-3p模擬物后,行缺氧處理24 h)、antimiR-con+缺氧+12 μmol/L 依托咪酯組(轉(zhuǎn)染antimiR-con 后,12 μmol/L 依托咪酯干預(yù)24 h,再行缺氧處理24 h)、anti-miR-142-3p+缺氧+12 μmol/L 依托咪酯組(轉(zhuǎn)染anti-miR-142-3p后,12 μmol/L依托咪酯干預(yù)24 h,再行缺氧處理24 h)。

        1.2.3 CCK-8 法檢測(cè)細(xì)胞活性 于96 孔板(2.5×104個(gè)/孔)培養(yǎng)細(xì)胞4 h,按照1.2.2 分組處理后,加入CCK-8(10 μl/孔)孵育2 h,酶標(biāo)儀測(cè)450 nm 處吸光度(A)值。

        1.2.4 流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞凋亡 于6孔板(1.0×105個(gè)/孔)培養(yǎng)細(xì)胞4 h,按照1.2.2 分組處理后收集各組細(xì)胞,利用Annexin-V-FITC/PI 試劑盒,流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞凋亡率。

        1.2.5 Western blot 檢測(cè)CyclinD1、Cleaved-caspase-3蛋白表達(dá) 于6 孔板(1.0×105個(gè)/孔)培養(yǎng)細(xì)胞4 h,按照1.2.2 分組處理后,收集各組細(xì)胞。RIPA 試劑提取細(xì)胞中總蛋白,BCA 法測(cè)定蛋白濃度后,10%SDS-PAGE 分離總蛋白,并轉(zhuǎn)膜、封閉。分別于CyclinD1(1∶1 000)、Cleaved-caspase-3(1∶1 000)、β-actin(1∶2 000)一抗中4 ℃孵育12 h,洗膜,再于二抗中37 ℃孵育2 h。顯影,曝光,Image J軟件進(jìn)行蛋白灰度值分析。

        1.2.6 ELISA 檢 測(cè)TNF-α、IL-1β、IL-6 水 平 于6孔板(1.0×105個(gè)/孔)培養(yǎng)細(xì)胞4 h,按照1.2.2分組處理后,收集各組細(xì)胞培養(yǎng)上清液,350 g 離心10 min。取上清液,ELISA 試劑盒測(cè)定上清液中TNF-α、IL-1β、IL-6水平。

        1.2.7 RT-qPCR 檢測(cè)miR-142-3p 表達(dá) 于6 孔板(1.0×105個(gè)/孔)培養(yǎng)細(xì)胞4 h,按照1.2.2 分組處理后,收集各組細(xì)胞。TRIzol試劑提取細(xì)胞總RNA,逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,行PCR 擴(kuò)增。miR-142-3p 正向引物:5'-GCTCGACAAGGCTCGTTATGAA-3',反向引物:5'-CCTTTGATTTTTGGGGCGGTA-3';U6(對(duì)照)正向引物:5'-AGGTCGGTGTGAACGGATTTG-3',反向引物:5'-GGGGTCGTTGATGGCAACA-3'。2-ΔΔCt法計(jì)算miR-142-3p相對(duì)表達(dá)。

        1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS22.0 軟件分析數(shù)據(jù)。以±s表示計(jì)量資料。采用單因素方差分析比較多組間數(shù)據(jù),SNK-q檢驗(yàn)行組內(nèi)比較;獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)分析兩組間數(shù)據(jù)差異性。P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 依托咪酯對(duì)缺氧處理的PC12細(xì)胞活性及凋亡的影響 與對(duì)照組比較,缺氧組PC12 細(xì)胞活性降低,凋亡率升高(P<0.05)。與缺氧組比較,缺氧+不同劑量(2、6、12 μmol/L)依托咪酯組PC12 細(xì)胞活性呈增強(qiáng)趨勢(shì),細(xì)胞凋亡率呈降低趨勢(shì)(P<0.05,圖1、表1)。

        表1 依托咪酯對(duì)缺氧處理的PC12 細(xì)胞活性及凋亡的影響(±s,n=9)Tab.1 Effects of etomidate on activity and apoptosis of PC12 cells under hypoxia (±s,n=9)

        表1 依托咪酯對(duì)缺氧處理的PC12 細(xì)胞活性及凋亡的影響(±s,n=9)Tab.1 Effects of etomidate on activity and apoptosis of PC12 cells under hypoxia (±s,n=9)

        Note:Compared with control group, 1)P<0.05; compared with hypoxia group, 2)P<0.05.

        A value 1.056±0.10 0.513±0.051)0.679±0.062)0.825±0.082)0.902±0.092)63.768 0.000 Groups Control Hypoxia Hypoxia+2 μmol/L etomidate Hypoxia+6 μmol/L etomidate Hypoxia+12 μmol/L etomidate FP Apoptosis rate/%4.32±0.38 24.53±2.041)20.35±1.912)12.38±1.272)6.68±0.612)340.142 0.000

        圖1 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞凋亡Fig.1 Detection of apoptosis by flow cytometry

        2.2 依托咪酯對(duì)缺氧處理的PC12細(xì)胞中有關(guān)蛋白表達(dá)的影響 與對(duì)照組比較,缺氧組CyclinD1 蛋白表達(dá)量降低,Cleaved-caspase-3 蛋白表達(dá)量增加(P<0.05)。與缺氧組比較,缺氧+不同劑量(2、6、12 μmol/L)依托咪酯組CyclinD1 蛋白表達(dá)呈升高趨勢(shì),Cleaved-caspase-3 蛋白表達(dá)量呈降低趨勢(shì)(P<0.05,圖2、表2)。

        表2 依托咪酯對(duì)缺氧處理的PC12 細(xì)胞中CyclinD1、Cleaved-caspase-3蛋白表達(dá)的影響(±s,n=9)Tab.2 Effect of etomidate on expressions of CyclinD1 and Cleaved-caspase-3 protein in hypoxia-treated PC12 cells (±s,n=9)

        Note:Compared with control group, 1)P<0.05; compared with hypoxia group, 2)P<0.05.

        Cleaved-caspase-3 0.24±0.03 0.75±0.071)0.62±0.062)0.45±0.042)0.32±0.032)166.878 0.000 Groups Control Hypoxia Hypoxia+2 μmol/L etomidate Hypoxia+6 μmol/L etomidate Hypoxia+12 μmol/L etomidate F P CyclinD1 0.86±0.07 0.41±0.041)0.61±0.062)0.75±0.072)0.90±0.092)90.977 0.000

        圖2 Western blot 檢測(cè)CyclinD1、Cleaved-caspase-3 蛋白表達(dá)Fig.2 Expressions of CyclinD1 and Cleaved-caspase-3 protein detected by Western blot

        2.3 依托咪酯對(duì)缺氧處理的PC12 細(xì)胞炎癥因子表達(dá)的影響 與對(duì)照組比較,缺氧組TNF-α、IL-1β、IL-6 水平升高(P<0.05)。與缺氧組比較,缺氧+不同劑量(2、6、12 μmol/L)依托咪酯組TNF-α、IL-1β、IL-6水平均呈降低趨勢(shì)(P<0.05,表3)。

        表3 依托咪酯對(duì)缺氧處理的PC12 細(xì)胞炎癥因子表達(dá)的影響(±s,n=9,ng/L)Tab.3 Effects of etomidate on expressions of inflammatory factors in hypoxia-treated PC12 cells (±s,n=9,ng/L)

        表3 依托咪酯對(duì)缺氧處理的PC12 細(xì)胞炎癥因子表達(dá)的影響(±s,n=9,ng/L)Tab.3 Effects of etomidate on expressions of inflammatory factors in hypoxia-treated PC12 cells (±s,n=9,ng/L)

        Note:Compared with control group, 1)P<0.05; compared with hypoxiagroup, 2)P<0.05.

        Groups Control Hypoxia Hypoxia+2 μmol/L etomidate Hypoxia+6 μmol/L etomidate Hypoxia+12 μmol/L etomidate TNF-α 25.02±2.27 104.02±9.561)IL-1β 81.64±7.61 456.31±41.021)IL-6 12.17±1.14 64.58±6.111)81.17±7.522)384.97±33.142)48.67±4.282)60.53±5.242)254.67±22.132)32.61±2.942)42.19±3.912)147.84±12.572)19.54±1.512)FP 302.733 0.000 223.663 0.000 317.655 0.000

        2.4 依托咪酯對(duì)miR-142-3p 表達(dá)的影響 對(duì)照組、缺氧組、缺氧+不同劑量(2、6、12 μmol/L)依托咪酯組miR-142-3p 表達(dá)量分別為1.00±0.11、0.43±0.04、0.61±0.06、0.79±0.07、0.89±0.09。與對(duì)照組比較,缺氧組miR-142-3p 表達(dá)量減少(P<0.05)。與缺氧組比較,缺氧+不同劑量(2、6、12 μmol/L)依托咪酯組miR-142-3p表達(dá)量呈增加趨勢(shì)(P<0.05)。

        2.5 miR-142-3p 對(duì)缺氧處理的PC12 細(xì)胞活性、凋亡及炎癥因子表達(dá)的影響 miR-142-3p+缺氧組PC12 細(xì)胞miR-142-3p 表達(dá)量、細(xì)胞活性、CyclinD1蛋白表達(dá)量較miR-con+缺氧組升高,Cleaved-caspase-3 蛋白表達(dá)量、TNF-α、IL-1β、IL-6 水平、細(xì)胞凋亡率較miR-con+缺氧組降低(P<0.05,表4、圖3)。

        表4 上調(diào)miR-142-3p對(duì)缺氧處理的PC12細(xì)胞活性、凋亡和炎癥因子表達(dá)的影響(±s,n=9)Tab.4 Effects of up-regulation of miR-142-3p on activity, apoptosis and inflammatory factors expressions in hypoxia-treated PC12 cells (±s,n=9)

        表4 上調(diào)miR-142-3p對(duì)缺氧處理的PC12細(xì)胞活性、凋亡和炎癥因子表達(dá)的影響(±s,n=9)Tab.4 Effects of up-regulation of miR-142-3p on activity, apoptosis and inflammatory factors expressions in hypoxia-treated PC12 cells (±s,n=9)

        Note:Compared with miR-con+hypoxia group, 1)P<0.05.

        A value 0.516±0.05 1.013±0.091)14.482 0.000 Groups miR-con+hypoxia miR-142-3p+hypoxia t P miR-142-3p 1.00±0.10 2.53±0.221)18.994 0.000 CyclinD1 0.42±0.04 0.88±0.081)15.429 0.000 Cleavedcaspase-3 0.76±0.07 0.37±0.031)15.363 0.000 TNF-α/(ng·L-1)105.11±9.25 30.94±2.341)23.321 0.000 IL-1β/(ng·L-1)455.61±41.02 95.56±9.161)25.699 0.000 IL-6/(ng·L-1)64.21±6.17 13.54±1.061)24.281 0.000 Apoptosis rate/%24.84±2.08 5.43±0.511)27.190 0.000

        圖3 上調(diào)miR-142-3p對(duì)缺氧處理的PC12細(xì)胞凋亡及相關(guān)蛋白表達(dá)的影響Fig.3 Effect of up-regulation of miR-142-3p on apoptosis of PC12 cells under hypoxia and expressions of related proteins

        2.6 下調(diào)miR-142-3p 逆轉(zhuǎn)依托咪酯對(duì)缺氧處理的PC12 細(xì)胞活性、凋亡和炎癥因子表達(dá)的影響 antimiR-142-3p+缺氧+12 μmol/L 依托咪酯組miR-142-3p表達(dá)量、細(xì)胞活性、CyclinD1蛋白表達(dá)量低于antimiR-con+缺氧+12 μmol/L 依托咪酯組,Cleaved-caspase-3 蛋白表達(dá)量、TNF-α、IL-1β、IL-6 水平及細(xì)胞凋亡率均高于anti-miR-con+缺氧+12 μmol/L 依托咪酯組(P<0.05,圖4、表5)。

        表5 下調(diào)miR-142-3p逆轉(zhuǎn)依托咪酯對(duì)缺氧處理的PC12細(xì)胞活性、凋亡和炎癥因子表達(dá)的影響(±s,n=9)Tab.5 Down-regulation of miR-142-3p reverses effects of etomidate on activity, apoptosis and inflammatory factors expressions in hypoxia-treated PC12 cells (±s,n=9)

        表5 下調(diào)miR-142-3p逆轉(zhuǎn)依托咪酯對(duì)缺氧處理的PC12細(xì)胞活性、凋亡和炎癥因子表達(dá)的影響(±s,n=9)Tab.5 Down-regulation of miR-142-3p reverses effects of etomidate on activity, apoptosis and inflammatory factors expressions in hypoxia-treated PC12 cells (±s,n=9)

        Note:Compared with anti-miR-con+hypoxia+12 μmol/L etomidate group,1)P<0.05.

        Groups anti-miR-con+hypoxia+12 μmol/L etomidate anti-miR-142-3p+hypoxia+12 μmol/L etomidate miR-142-3p CyclinD1 IL-1β/(ng·L-1)IL-6/(ng·L-1)A value 1.00±0.10 0.91±0.09 Cleavedcaspase-3 0.33±0.03 TNF-α/(ng·L-1)42.02±3.86 147.39±11.94 19.47±1.64 Apoptosis rate/%6.61±0.65 0.910±0.09 0.537±0.051)10.869 0.000 t P 0.48±0.041)14.484 0.000 0.45±0.041)14.012 0.000 0.71±0.071)14.969 0.000 94.13±8.531)16.697 0.000 421.57±40.011)19.700 0.000 67.94±5.971)23.487 0.000 23.18±1.991)23.745 0.000

        3 討論

        缺氧可誘導(dǎo)神經(jīng)細(xì)胞產(chǎn)生過(guò)度炎癥反應(yīng),分泌大量炎癥因子,造成神經(jīng)細(xì)胞炎癥損傷,這些炎癥因子進(jìn)一步刺激神經(jīng)細(xì)胞,誘導(dǎo)神經(jīng)細(xì)胞凋亡,抑制缺氧誘導(dǎo)的神經(jīng)細(xì)胞炎癥反應(yīng)和凋亡對(duì)治療腦缺氧十分關(guān)鍵[8-9]。大鼠嗜鉻細(xì)胞瘤細(xì)胞系PC12 高度分化后,具有神經(jīng)細(xì)胞特性,常用作神經(jīng)生物學(xué)和神經(jīng)化學(xué)研究的模型細(xì)胞[10]。本研究發(fā)現(xiàn),缺氧處理PC12細(xì)胞后,細(xì)胞活性降低,細(xì)胞凋亡增加,且炎癥因子TNF-α、IL-1β、IL-6 分泌量增加,表明缺氧誘導(dǎo)PC12細(xì)胞損傷模型建立成功。

        依托咪酯是一種常用的催眠和靜脈麻醉劑,其還具有抗炎、抗細(xì)胞凋亡作用。例如,SUN 等[11]發(fā)現(xiàn)依托咪酯可抑制晚期糖基化終產(chǎn)物(AGEs)誘導(dǎo)的軟骨細(xì)胞中IL-1β 和TNF-α 表達(dá);LV 等[12]報(bào)道依托咪酯通過(guò)降低炎癥標(biāo)志物IL-6、IL-1β 和TNF-α 分泌防止心肌缺血再灌注損傷;ZOU 等[13]報(bào)道稱,依托咪酯處理可通過(guò)降低TNF-α、IL-1β 表達(dá)、減少凋亡和壞死細(xì)胞數(shù)量緩解大鼠肢體缺血再灌注引起的肺損傷。本研究結(jié)果顯示,依托咪酯劑量依賴性地提高缺氧誘導(dǎo)的PC12 細(xì)胞活性,減少細(xì)胞凋亡,并降低炎癥因子TNF-α、IL-1β、IL-6 分泌,表明依托咪酯可以保護(hù)PC12細(xì)胞免受缺氧誘導(dǎo)的損傷。

        miRNA 參與調(diào)控細(xì)胞凋亡、炎癥反應(yīng)等生理、病理過(guò)程,可作為腦缺氧損傷治療的分子靶點(diǎn)[14]。研究顯示,miR-142-3p 在腦缺血再灌注小鼠大腦皮層和氧糖剝奪誘導(dǎo)的PC12細(xì)胞中表達(dá)增加[15];在培養(yǎng)的背根神經(jīng)節(jié)神經(jīng)元中,miR-142-3p 模擬物通過(guò)促進(jìn)細(xì)胞周期和抑制細(xì)胞凋亡增強(qiáng)細(xì)胞活力[16]。本研究結(jié)果顯示,miR-142-3p在缺氧誘導(dǎo)的PC12細(xì)胞中表達(dá)降低,上調(diào)miR-142-3p 可抑制缺氧誘導(dǎo)的PC12細(xì)胞凋亡及炎癥因子表達(dá),提示miR-142-3p可作為減輕缺氧誘導(dǎo)的PC12 細(xì)胞損傷的分子靶點(diǎn)。WU 等[17]報(bào)道表明,麻醉劑右美托咪定通過(guò)調(diào)節(jié)miR-199a 保護(hù)PC12 細(xì)胞免受氧化損傷。本研究顯示,依托咪酯上調(diào)缺氧誘導(dǎo)的PC12細(xì)胞中miR-142-3p 表達(dá),而下調(diào)miR-142-3p 可逆轉(zhuǎn)依托咪酯對(duì)缺氧誘導(dǎo)的PC12 細(xì)胞活性、凋亡及炎癥因子表達(dá)的影響,提示其可能通過(guò)上調(diào)miR-142-3p 減輕缺氧誘導(dǎo)的PC12細(xì)胞損傷。

        總之,依托咪酯通過(guò)上調(diào)miR-142-3p 表達(dá)抑制細(xì)胞凋亡和炎癥反應(yīng),對(duì)缺氧誘導(dǎo)的PC12細(xì)胞表現(xiàn)出良好的保護(hù)作用。這可能為改善缺氧引起的神經(jīng)細(xì)胞損傷開(kāi)辟新視野。

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