任新萍，李 勝，齊一霖，冉 松，張 程，曾曉希

（湖南工業(yè)大學 生命科學與化學學院，湖南 株洲 412007）

0 引言

鐵是自然界中常見的一種金屬，也是生物體所必需的礦質元素之一，在光合作用、呼吸作用、固氮作用、三羧酸循環(huán)、氧化磷酸化等生理代謝過程中發(fā)揮著重要的作用[1-2]。由于絕大部分的鐵處于中性或堿性的有氧環(huán)境中，會形成難溶的Fe3+化合物，抑制生物體對其的利用，導致農業(yè)生產中植物缺鐵現(xiàn)象比較普遍，影響農作物的產量、品質[3-5]。為了適應高氧低鐵的脅迫條件，大多數微生物和禾本科植物會誘導自身產生鐵載體，一種強金屬螯合劑，在缺鐵環(huán)境下能與Fe3+螯合成鐵-鐵載體復合物，將Fe3+轉運至胞內并還原成Fe2+供生物體利用[6-7]。由于鐵載體與鐵離子具有強螯合作用，當發(fā)生螯合時就能阻止病原菌對鐵的吸收，從而達到生物防治作用[8]。鐵載體根據螯合基團的化學性質不同可分為三大類：兒茶酚型（Catecholates）、異羥肟酸型（Hydroxamates）和羧酸型（Carboxylates）[9-10]。

近年來，鐵載體在病原菌抑制、植物生長調控、環(huán)境污染修復等方面受到廣泛的關注。朱慧明等[11]研究發(fā)現(xiàn)，銅綠假單胞菌Z158 對金黃色葡萄球菌、普通變形桿菌等病原菌具有抑菌作用，可作為生防菌株用于植物疾病防控。彭雯杰等[12]篩選得到一株阿斯青霉菌XK-12，研究發(fā)現(xiàn)其能產生異羥肟酸型鐵載體，鐵載體發(fā)酵液對病原菌具有抑制作用，對葡萄座腔菌的抑制率達到了100%。王東升等[13]發(fā)現(xiàn)鐵載體可顯著提高龍葵的生物量，與對照組未接菌相比，接種產鐵載體菌后的實驗組的莖葉干重分別增加1.55,1.47 倍，根干重增加2.45,2.28 倍。趙銳名等[14]研究發(fā)現(xiàn)，產鐵載體細菌可以通過產生鐵載體，并通過鐵載體螯合Pb2+來提高受鉛脅迫芒草幼苗的耐受性，降低根系鉛的富集程度。因此，對產鐵載體微生物的篩選及鐵載體相關應用進行研究，能豐富產鐵載體微生物資源，進一步了解分泌性鐵載體在醫(yī)藥、環(huán)境保護和農業(yè)等各個領域的應用，對于鐵載體研究有一定的基礎意義。

1 實驗

1.1 材料

1.1.1 菌種來源

采集校園內葉片發(fā)黃具缺鐵癥狀的植物根際土壤，加入無菌水振蕩，從菌懸液中進行菌種篩選。金黃色葡萄球菌（StaphyloccocusaureusRosenbach）和大腸桿菌（Escherichiacoli）均為湖南工業(yè)大學生命科學與化學學院微生物實驗室保藏菌種。

1.1.2 培養(yǎng)基

MKB 培養(yǎng)基：甘油15 mL、酸水解酪蛋白5 g、磷酸氫二鉀2.5 g、硫酸鎂1 g，溶于1 L 水中，pH 自然，121 ℃溫度下滅菌20 min。

CAS 固體培養(yǎng)基：質量分數為10%的酸水解酪蛋白30 mL、質量分數為20%的蔗糖溶液10 mL、0.1 mol/L 磷酸鹽緩沖液5 mL、1 mmol/L CaCl21 mL、CAS 染液50 mL、瓊脂18 g，溶于1 L 水中，121℃溫度下滅菌20 min。

CAS 雙層固體培養(yǎng)基：兩層培養(yǎng)基，上層為MKB 固體培養(yǎng)基，下層為CAS 固體培養(yǎng)基

PDA 培養(yǎng)基：馬鈴薯浸粉5 g、葡萄糖20 g、氯霉素0.1 g、瓊脂18 g，溶于1 L 水中，pH 自然，121℃溫度下滅菌20 min。

LB 培養(yǎng)基：蛋白胨5 g、酵母浸粉10 g、NaCl 5 g、瓊脂 18 g，加水定容至1 L，121℃溫度下滅菌20 min。

1.1.3 主要試劑

CAS（鉻天青）染液：A 液，CAS 0.605 g，100 μL 濃鹽酸，100 mL 濃度為1 mmol/L 的氯化鐵，500 mL 去離子水；B 液，CTAB 0.729 g，400 mL 去離子水；A 液倒入B 液混勻。

質量分數為10%的酸水解酪蛋白：稱取10 g 酸水解酪蛋白粉末溶于100 mL 水中。

質量分數為20%的蔗糖溶液：稱取20 g 蔗糖溶于100 mL 水中。

檸檬酸緩沖液（pH 值為4）：84.7 mL 濃度為0.1 mol/L醋酸與15.3 mL濃度為0.25 μmol/L醋酸鈉混勻。

鉬酸鹽溶液：100 g 硝酸鈉、100 g 鉬酸鈉，定容至1 000 mL。

1 mmol/L AgNO3：稱取AgNO30.169 88 g，定容至1 000 mL。

0.1 mol/L 磷酸鹽緩沖液（pH 值為6.8）：Na2HPO4·12H2O 24.27 g、NaH2PO4·2H2O 5.905 g、KH2PO40.75 g、NH4Cl 2.5 g、NaCl 1.25 g，溶于1 L水中。

瓊脂、蛋白胨、酵母浸粉、氯化鈣、甘油、蔗糖、3,5-二硝基水楊酸，上海生工生物工程有限公司；葡萄糖，天津大茂化學試劑廠；無水乙醇，湖南匯虹試劑有限公司；硝酸鈉、硝酸銀、鉬酸鈉、酸水解酪蛋白、磷酸氫二鉀，國藥集團化學試劑有限公司；以上試劑均為分析純。

1.2 實驗方法

1.2.1 菌株篩選

1）初篩。取土樣5 g 溶于100 mL 的錐形瓶中，振蕩培養(yǎng)30 min，使樣品充分混合均勻。采用濃度梯度稀釋法，稀釋成10-2,10-3,10-4,10-5g·mL-14 個濃度梯度備用；采用涂布平板法，取各濃度的菌懸液各100 μL，涂布在CAS 雙層平板上，倒置培養(yǎng)3～5 d，待有菌落出現(xiàn)，挑取周圍產生棕黃色或紅色螯合圈的菌落進行反復劃線分離，將分離后得到的純菌株進行復篩并保藏。

2）復篩。采用CAS 平板檢測法和CAS 液體顯色法進行復篩，將初篩菌株用接種環(huán)點接到CAS 固體培養(yǎng)基上，在30 ℃倒置培養(yǎng)7 d，觀察菌落透明圈的顏色和大小。將初篩菌株接種于MKB 培養(yǎng)基中，在30 ℃、180 r/min 培養(yǎng)7 d，取發(fā)酵液用多層紗布過濾菌體，將上清液與CAS 染液1:1 混勻，觀察混合液的顏色變化。

1.2.2 菌株鑒定

1）形態(tài)學鑒定。參考《微生物學實驗教程》[15]，將活化后的菌株稀釋涂布至PDA 培養(yǎng)基上，在30 ℃溫度下倒置培養(yǎng)3～7 d，觀察菌落形成過程及菌落特征。

2）分子生物學鑒定。提取真菌RNA，逆轉錄生成cDNA 后以真菌通用引物進行PCR 擴增[16]，將PCR 擴增產物送至上海生工測序，測序結果利用NCBI-BLAST 進行序列比對，并利用MEGA 軟件構建系統(tǒng)發(fā)育進化樹。

1.2.3 菌株鐵載體曲線測定

將活化后的菌株接種至發(fā)酵培養(yǎng)基MKB 培養(yǎng)基上，在30℃、180 r/min 的搖床上培養(yǎng)7 d。用無菌紗布進行過濾，得到發(fā)酵上清液，吸取2 mL 發(fā)酵上清液并加入等體積的CAS 染液，混合均勻后測定其OD630值，記作As；測定空白培養(yǎng)基的OD630值，記作Ar；鐵載體活性單位[17]記作SU（%），表示鐵載體產量，計算公式為SU=（Ar-As）/Ar×100%。

1.2.4 鐵載體類型鑒定

鐵載體類型鑒定，分別采用Arnow 實驗檢驗兒茶酚型鐵載體，F(xiàn)eCl3實驗檢驗異羥肟酸型鐵載體或兒茶酚型鐵載體，分光光度法鑒定是否羧酸型鐵載體[18-19]。

Arnow 實驗。取1 mL 發(fā)酵上清液和未接菌的培養(yǎng)基分別加入2 根試管中，再向兩根試管中分別加入1 mL濃度為0.5 mol/L鹽酸和1 mL鉬酸鹽溶液。若此時溶液顏色變黃，再加入1 mL 濃度為1 mol/L的氫氧化鈉溶液；若溶液顏色由黃變紅，并且紅色保持一個小時不會消失，說明產生的鐵載體為兒茶酚型鐵載體。

FeCl3實驗。取1 mL 發(fā)酵上清液和未接菌的培養(yǎng)基分別加入2 根試管中，再加入2 g/L 的FeCl3溶液，一次加入1 mL，總共加入5 mL。若加入1 mL FeCl3溶液后立即變紅，則為異羥肟酸型鐵載體；若加入多于1 mL FeCl3溶液才發(fā)生顏色變化，則為兒茶酚型鐵載體。

分光光度法。取1 mL 發(fā)酵上清液于試管中，依次加入1 mL 濃度為0.25 μmol/L 的CuSO4溶液和1 mL（pH 值為4.0）醋酸鹽緩沖液，將其在紫外分光光度計下進行全波長掃描，若在190～280 nm 之間有吸收峰出現(xiàn)，說明產生的鐵載體為羧酸型鐵載體。

1.2.5 菌株產鐵載體條件優(yōu)化

以MKB 液體培養(yǎng)基為基礎，選擇不同碳源、氮源和初始pH 值進行菌株產鐵載體的條件優(yōu)化。

最佳碳源選擇。選擇果糖、乳糖、可溶性淀粉、蔗糖、葡萄糖和甘油作為不同的碳源進行優(yōu)化，在裝液量為100 mL 的錐形瓶中，培養(yǎng)條件如下：以2%的量接種、培養(yǎng)溫度為30 ℃、轉速為180 r/min 和初始pH 值為7 進行接種，并搖床培養(yǎng)7 d。測定不同條件下菌株的生長量和鐵載體產量。選擇最佳碳源種類，將其濃度分別設置為5,10,15,20,25 g/L 的濃度梯度進行優(yōu)化，采用上述培養(yǎng)條件，測定不同碳源濃度下菌株的生長量和鐵載體產量。

最佳氮源選擇。選擇半胱氨酸、酸水解酪蛋白、(NH4)2SO4、KNO3、谷氨酸作為不同的氮源進行優(yōu)化，在裝液量為100 mL 的錐形瓶中，在上述培養(yǎng)條件下培養(yǎng)。測定不同條件下菌株的生長量和鐵載體產量。選用最佳氮源種類，將其質量濃度分別設置2,3,4,5,6 g/L 的濃度梯度進行優(yōu)化，培養(yǎng)條件同上所述，測定不同氮源濃度下菌株的生長量和鐵載體產量。

最佳初始pH 值選擇。選擇初始pH 值為5,6,7,8,9 共5 個梯度，在裝液量為100 mL 的錐形瓶中，按照上述培養(yǎng)條件培養(yǎng)。測定不同初始pH 條件下菌株的生長量和鐵載體產量。

1.2.6 探究鐵載體對病原菌的抑制作用

本實驗取目標菌株發(fā)酵至鐵載體活性最大時的發(fā)酵液，取發(fā)酵上清液來探究鐵載體對金黃色葡萄球菌和大腸桿菌的抑制作用，金黃色葡萄球菌和大腸桿菌為實驗室保藏的菌株活化后備用。

1）鐵載體添加量對抑菌效果的影響。將提取出的鐵載體粗提取液與活化后的兩種菌液分別按比例混合，使鐵載體添加量梯度分別為0%,10%,20%,30%,40%?；旌虾髮⒒旌弦悍胖糜诤銣負u床培養(yǎng)1 h后，用稀釋涂布平板法將兩種菌株接于平板中培養(yǎng)。觀察菌落的數目并記錄。

2）鐵載體粗提取液與病原菌培養(yǎng)時間對抑菌效果的影響。將提取出的鐵載體發(fā)酵液與活化后的兩種菌液分別按最優(yōu)添加量混合，混勻后將其置于恒溫搖床分別培養(yǎng)1,3,5,8,12,24 h 后，用稀釋涂布平板法將兩種菌株接于平板中培養(yǎng)。觀察菌落數目并記錄。

2 結果與分析

2.1 產鐵載體菌株的篩選

利用CAS 雙層平板進行初篩，對圖1a 中產生了橙紅色的菌群進行分離純化，對初篩后的單菌株進行CAS 平板復篩，結果如圖1b所示，菌株Ti-11 在平板上出現(xiàn)了明顯的透明圈并且出現(xiàn)橙紅色色暈，初步鑒定有鐵載體產生。將菌株Ti-11 的發(fā)酵液離心處理后，取上清液與CAS 染液1:1 混合，實驗結果如圖1c所示，左邊為空白對照組，右邊為實驗組，實驗組中的液體逐漸從藍色轉變?yōu)榧t色，這進一步證明該菌株有產生鐵載體的能力。

彩圖

圖1 產鐵載體菌株Ti-11的篩選結果Fig.1 Screening of iron producing carrier strain Ti-11

2.2 菌株的鑒定

2.2.1 形態(tài)學鑒定

Ti-11 菌株在PDA 培養(yǎng)基上培養(yǎng)，菌落表面隆起并形成白色菌絲（圖2）。生長后期出現(xiàn)深綠色的孢子，深綠色的孢子會把附近菌落的菌絲染成深綠色，菌株背面呈現(xiàn)發(fā)散狀，邊緣呈現(xiàn)鋸齒狀，且與培養(yǎng)基緊密貼合，質地較硬。在顯微鏡下該真菌的菌絲為比較細長、表面光滑、邊緣整齊的單條管狀有隔膜的細絲。

彩圖

圖2 Ti-11 的菌株形態(tài)Fig.2 Strain morphology of Ti-11

2.2.2 分子生物學鑒定

提取Ti-11 的RNA，逆轉錄生成cDNA 后以真菌通用引物進行PCR，PCR 產物凝膠電泳驗證后送至上海生工測序，將測序結果利用NCBI-BLAST 進行序列比對，選取同源性高的序列進行系統(tǒng)發(fā)育進化樹的構建。Ti-11 系統(tǒng)發(fā)育樹結果如圖3所示，與菌株Ti-11 同源性最高的為Penicilliumoxalicum，即為草酸青霉菌。再結合以上形態(tài)學鑒定結果可以綜合得出Ti-11 為草酸青霉菌。

圖3 Ti-11 系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.3 Phylogenetic tree of Ti-11

2.3 菌株產鐵載體曲線測定

利用紫外分光光度法測定菌株的產鐵載體能力，每隔1 d 測定其鐵載體活性，結果如圖4所示。

圖4 菌株Ti-11 產鐵載體變化曲線Fig.4 Iron production carrier curve of strain Ti-11

Ti-11 的產鐵載體周期較長，在1～7 d 呈現(xiàn)穩(wěn)步上升的趨勢，在第9 d 達到最大值，鐵載體活性達84.13%，比曹宏麗等[20]篩選得到的惡臭假單胞菌培養(yǎng)48 h 的產鐵載體含量增長了30.69%。且在7～9 d保持相對穩(wěn)定，之后隨著時間的增大，菌株產生的代謝廢物不斷增加，抑制菌株的生長和鐵載體的產生，呈現(xiàn)緩慢下降的趨勢。

2.4 菌株產鐵載體類型鑒定

采用Arnow 實驗鑒定該菌株產鐵載體是否為兒茶酚型鐵載體，結果如圖5a所示（左邊為對照組，右邊為實驗組），加入鐵載體的實驗組未出現(xiàn)顯色反應，故該鐵載體不為兒茶酚型鐵載體。加入1 mL 和3 mL FeCl3均未出現(xiàn)變紅反應（圖5b），說明該鐵載體不為異羥肟酸型鐵載體和兒茶酚型鐵載體。紫外分光光度法鑒定該菌株產鐵載體是否為羧酸型鐵載體，結果如圖5c所示，該反應液在190～280 nm之間出現(xiàn)吸收峰，證明菌株Ti-11 所產鐵載體類型為羧酸型鐵載體。

彩圖

圖5 Ti-11 產鐵載體類型鑒定結果Fig.5 Identification of Ti-11 iron production carrier types

2.5 菌株產鐵載體條件優(yōu)化

干重可以直接表明菌株的生長狀況，而鐵載體活性單位則可以表明菌株在此條件下產鐵載體的情況。如圖6所示，Ti-11 菌株的最佳碳源是葡萄糖，最佳葡萄糖濃度為15 g/L。如圖7所示，Ti-11 菌株的最佳氮源是酸水解酪蛋白，其最佳濃度為6 g/L。

圖6 碳源及碳源濃度優(yōu)化結果Fig.6 Carbon source and carbon source concentration optimization results

圖7 氮源及氮源濃度優(yōu)化結果Fig.7 Nitrogen source and nitrogen source concentration optimization results

如圖8所示，初始pH 值為8 時，鐵載體活性最高，可達76.95%，但是干重在pH 值為6～7 時最大，說明Ti-11 菌株在酸性的條件下生長較好，但是在偏堿性的初始pH 值環(huán)境下鐵載體產量較高。

圖8 初始pH 值優(yōu)化結果Fig.8 Initial pH optimization

2.6 鐵載體對病原菌的抑制作用探討

1）鐵載體添加量對抑菌效果的影響。鐵載體對金黃色葡萄球菌具有一定的抑菌效果，且效果隨濃度逐漸增加，如圖9（上）所示，從左至右添加量依次為0%，10%，20%，30%，40%，明顯看出隨著添加量的增大，菌落數量不斷減少，大于30%后抑菌效果沒有較大提升。鐵載體對大腸桿菌無明顯抑菌效果，如圖9（下）所示，從左至右添加量依次為0%，10%，20%，30%，40%，但菌落數無明顯差異。

圖9 鐵載體添加量對金黃色葡萄球菌（上）和大腸桿菌（下）的抑制作用Fig.9 Inhibitory effects of Fe-carrier supplementation on Staphylococcus aureus (top) and Escherichia coli (bottom)

2）鐵載體粗提液與病原菌培養(yǎng)時間對抑菌效果的影響。該鐵載體粗提液對于金黃色葡萄球菌有一定的抑制作用。繼續(xù)探討30%添加量下，不同反應時間對抑制效果的影響，結果如圖10所示，從左到右分別為處理1,3,5,8,24 h，可以明顯看出隨著反應時間的增長，菌落數顯著減少。

圖10 反應時間對金黃色葡萄球菌的抑制作用Fig.10 Inhibitory effect of reaction time on Staphylococcus aureus

3 結語

本研究從植物根際土壤中篩選得到一株高產鐵載體真菌Ti-11，經鑒定為草酸青霉菌（Penicillium oxalicum）。測定其產鐵載體曲線，在第9 d 達到最大產量，為84.13%。通過單因素試驗確定產鐵載體最佳培養(yǎng)條件為：10-3mol/L Fe3+能促進菌株生長，葡萄糖為最佳碳源，酸水解酪蛋白為最佳氮源，最佳初始pH 值為8.0。以大腸桿菌和金黃色葡萄球菌為抑菌實驗對象，發(fā)現(xiàn)該含鐵載體的上清液能顯著抑制金黃色葡萄球菌，且處理24 h 時的抑菌效果最好。本研究為微生物產鐵載體提供了新資源，為鐵載體的廣泛應用提供了新思路。