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        雅致小克銀漢霉與芽孢桿菌聯(lián)合降解義馬煤產(chǎn)腐植酸

        2023-12-11 10:14:34陳林勇劉建民崔宇翔任恒星宋燕莉關(guān)嘉棟牛江露李國富王保玉
        煤炭學(xué)報(bào) 2023年11期
        關(guān)鍵詞:金屬元素腐植酸光度

        陳林勇 , 劉建民 , 崔宇翔 , 任恒星 , 趙 晗 , 趙 娜 , 宋燕莉 , 關(guān)嘉棟 , 牛江露 ,李國富 , 王保玉 , 何 環(huán)

        (1.河南理工大學(xué) 資源環(huán)境學(xué)院, 河南 焦作 454000;2.煤與煤層氣共采國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 山西 晉城 048000;3.易安藍(lán)焰煤與煤層氣共采技術(shù)有限責(zé)任公司, 山西 晉城 048000;4.中國礦業(yè)大學(xué) 化工學(xué)院, 江蘇 徐州 221116;5.中國礦業(yè)大學(xué) 煤炭加工與高效潔凈利用教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 江蘇徐州 221116)

        自20 世紀(jì)80 年代COHEN 等[1]發(fā)現(xiàn)微生物可將褐煤降解為黑色液滴以來,微生物溶煤作為煤的清潔高效利用的技術(shù)手段之一引起了國內(nèi)外學(xué)者的廣泛關(guān)注,基于微生物溶煤的地下煤炭原位生物開采技術(shù)被認(rèn)為是煤炭化學(xué)開采關(guān)鍵技術(shù)之一[2]。經(jīng)過近40 a的發(fā)展,已經(jīng)有上百種與煤降解相關(guān)的微生物被分離出來,研究涵蓋了褐煤[3]、亞煙煤[4]、硬煤[5]、風(fēng)化煤[6]等各種煤,降解的機(jī)理可概括為堿性物質(zhì)[7]、生物氧化酶[8-9]、螯合劑[10]、表面活性劑[11]、酯酶[12]作用。煤的生物降解液可被酸沉淀,沉淀的主要成分為腐植酸(HA)[4,13]。腐植酸的產(chǎn)率通常有3 種計(jì)算方法:第1種是通過實(shí)驗(yàn)前后煤的質(zhì)量差來計(jì)算[14-15],當(dāng)煤因顆粒較小或被菌絲包裹等原因不易收集時(shí)該方法引起的誤差較大;第2 種方式是通過降解液的酸沉淀產(chǎn)物即腐植酸的質(zhì)量來衡量[16];第3 種途徑是以降解液在450 nm 處的吸光度來表征[17],相對于前2 種方法,測量吸光度僅需少量發(fā)酵液,因此更適用于實(shí)驗(yàn)過程的監(jiān)測,用于反映實(shí)驗(yàn)所處的階段。

        微生物與煤的作用方式可分為單一菌降解、真菌細(xì)菌聯(lián)合培養(yǎng)和菌群發(fā)酵[18]。然而對于真菌細(xì)菌聯(lián)合培養(yǎng)對煤的降解作用尚無定論。盧麗麗[12]的研究表明混合菌種對煤的降解率大于單一菌種對煤的降解率,王龍貴等[19]、張明旭等[20-21]的研究具有類似的結(jié)論。李非楊[16]的研究則顯示相對單一菌種來說,混合菌對預(yù)處理風(fēng)化煤的液化并未達(dá)到很好的效果。MAKA 等[22]報(bào)道了一種真菌細(xì)菌組合對煤的降解作用,但未做混菌與純菌的對比。

        武俐等[23]發(fā)現(xiàn)As、Ba、Co、Ni 和Pb 等微量元素在煤生物氣化過程中從煤中轉(zhuǎn)移到了降解液,導(dǎo)致降解液微量元素的質(zhì)量濃度升高。接種嗜酸氧化亞鐵硫桿菌(Acidithiobaillus ferroxridans)的煤矸石,其錳鉻等金屬元素的釋放明顯增加[24]。這些研究表明在煤的微生物降解過程中金屬元素會(huì)發(fā)生遷移轉(zhuǎn)化,而目前對煤的好氧降解過程中金屬元素在煤與降解液之間的轉(zhuǎn)移研究較少。

        筆者利用從腐木中分離得到的一株真菌和一株細(xì)菌開展了聯(lián)合降解義馬煤研究,對降解液及其酸沉淀產(chǎn)物腐植酸進(jìn)行了分析,為深入分析煤的真菌細(xì)菌聯(lián)合降解過程提供參考。

        1 材料與方法

        1.1 煤樣與菌源

        (1)硝酸氧化煤。河南義馬煤,破碎篩分至80~120 目(0.125~0.200 mm),80 ℃烘干48 h。在500 mL 燒杯中加入煤樣100 g、7.6 mol/L 硝酸150 mL,反應(yīng)過程中將燒杯放入室溫水中避免反應(yīng)物溢出,同時(shí)不斷攪拌至黃煙消失后靜置反應(yīng)24 h,用純水清洗煤至上清液pH > 6 后將煤樣在80 ℃下烘干72 h 備用。

        (2)菌源。實(shí)驗(yàn)室分離的真菌雅致小克銀漢霉(Cunninghamella elegans),簡稱F11;細(xì)菌芽孢桿菌(Bacillussp.),簡稱B1。

        1.2 培養(yǎng)基

        (1) PDA 培養(yǎng)基。市售PDB(環(huán)凱生物)培養(yǎng)基干粉24 g、瓊脂粉25 g、純水定容至1 L。

        (2) LB 培養(yǎng)基。蛋白胨10 g、氯化鈉10 g、酵母粉5 g、純水定容至1 L。LB 固體培養(yǎng)基另加入瓊脂粉12 g。

        1.3 實(shí)驗(yàn)方法

        1.3.1 真菌細(xì)菌混合物聯(lián)合降解

        用接種環(huán)從保存的F11 斜面上刮取適量菌絲轉(zhuǎn)入含有5 mL 無菌水的離心管中,充分震蕩離心管使菌液均勻,取200 μL 菌液滴加于PDA 培養(yǎng)基,用涂布棒均勻涂布,30 ℃恒溫倒置培養(yǎng)5 d,菌絲鋪滿平板。

        用接種環(huán)從保存的B1 斜面上蘸取少量菌體轉(zhuǎn)入含有5 mL 無菌水的離心管中,充分震蕩離心管使菌液均勻,取200 μL 菌液滴加于LB 固體培養(yǎng)基,用涂布棒均勻涂布,30 ℃恒溫倒置培養(yǎng)2 d,菌落鋪滿平板。

        在250 mL 三角瓶中加入150 mL LB 培養(yǎng)基,濕熱滅菌后,用打孔器分別接入4 孔真菌(4F)、3 孔真菌+1 孔細(xì)菌(3F1B)、2 孔真菌+2 孔細(xì)菌(2F2B)、1 孔真菌+3 孔細(xì)菌(1F3B)、4 孔細(xì)菌(4B)、50 孔真菌+1孔細(xì)菌(50F1B),放入恒溫振蕩器在30 ℃、150 r/min條件下恒溫振蕩培養(yǎng)4 d,加入2 g 滅菌的硝酸氧化煤振蕩均勻,靜置4 h 后取上清液測pH、吸光度A450作為第0 天的數(shù)據(jù)。放入恒溫振蕩器在30 ℃、150 r/min 條件下繼續(xù)培養(yǎng),每4 d 取降解液測pH、吸光度A450(尤尼柯,UV-4802)。對照組(CK)的培養(yǎng)基中不接種。每組實(shí)驗(yàn)做3 個(gè)平行樣。

        1.3.2 降解液中金屬元素質(zhì)量濃度測定

        待A450穩(wěn)定后(A450為降解液在450 nm 處的吸光度),將降解液在10 000 r/min 下離心10 min,收集上清液,按照HJ 700—2014《水質(zhì) 65 種元素的測定 電感耦合等離子體質(zhì)譜法》測上清液中Cr、As、Mn、Pb、Co、Ni、Cu、Zn、Mo 的質(zhì)量濃度。

        1.3.3 腐植酸收集與分析

        待A450穩(wěn)定后,將降解液在10 000 r/min 下離心10 min,收集上清液,用鹽酸將上清液pH 調(diào)至2 以下[15],靜置沉淀24 h,10 000 r/min 下離心10 min,收集沉淀(腐植酸),在80 ℃下烘干48 h 后稱重,根據(jù)腐植酸的質(zhì)量計(jì)算產(chǎn)率。

        腐植酸產(chǎn)率計(jì)算公式為

        式中,ηi為實(shí)驗(yàn)組i的 腐植酸產(chǎn)率,i取1F3B、2F2B、3F1B、50F1B、4B、4F;Mi為實(shí)驗(yàn)組i的腐植酸質(zhì)量,g;MCK為對照組CK 的腐植酸質(zhì)量,g;M0為實(shí)驗(yàn)啟動(dòng)時(shí)加煤的質(zhì)量,g。

        取烘干后的腐植酸1 g 加入5 mL 甲醇, 50 ℃浸泡萃取72 h[25]。萃取完成后,將上清液用氮吹儀在45 ℃濃縮至1 mL,采用氣質(zhì)聯(lián)用儀(Agilent 7890A-5795C)進(jìn)行組分分析。色譜柱采用Agilent VFWAXms(30 m×250 μm×0.25 μm),載氣為高純度的氦氣,進(jìn)樣量0.8 μL,柱流速1.0 mL/min,柱子初始溫度60 ℃,保持2 min,以10 ℃/min 的速率升溫至250 ℃,保持20 min。分析完成后用NIST08 數(shù)據(jù)庫進(jìn)行有機(jī)物鑒定。

        采用島津IRAffinity-1S 對腐植酸進(jìn)行紅外光譜掃描,樣品與溴化鉀質(zhì)量比為1∶200,掃描范圍為400~4 000 cm-1,掃描24 次,分辨率0.5 cm-1。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 產(chǎn)物元素分析

        研究表明,煤的硝酸氧化反應(yīng)可以將煤中的脂肪結(jié)構(gòu)、酚羥基和醌結(jié)構(gòu)氧化破裂生成腐植酸、草酸和小分子脂肪酸[26],煤的微生物好氧降解產(chǎn)物是腐殖酸[27]。因此經(jīng)過鹽酸沉淀后對照組的產(chǎn)物是化學(xué)提取的腐植酸(chemically extracted humic acid, cHA),實(shí)驗(yàn)組是生物提取的腐植酸(bio-extracted humic acid,bHA)。由表1 可知,原煤經(jīng)過硝酸氧化后氮、氧質(zhì)量分?jǐn)?shù)升高,這是因?yàn)槊合跛嵫趸磻?yīng)過程中存在著硝化反應(yīng)[26]。DONG 等[28]的研究說明褐煤好氧降解過程中腐植酸(bHA)結(jié)合了培養(yǎng)基中的氮,VERHEYEN 等[29]研究發(fā)現(xiàn)原煤氧化過程中40%的氫生成了脂肪化合物,其中乙酸、丁二酸和丙二酸是主要產(chǎn)物。本文所用LB 培養(yǎng)基中的蛋白胨和酵母粉都是富含氮元素的試劑,由表1 可知氮、氫質(zhì)量分?jǐn)?shù)呈現(xiàn)出bHA >cHA > 氧化煤的趨勢,說明bHA 和cHA 均可結(jié)合培養(yǎng)基中的氮且在微生物的作用下bHA 結(jié)合氮能力大于cHA,腐植酸生成的過程中還富集了煤中的氫元素,這一現(xiàn)象與文獻(xiàn)[30-31]一致。

        表1 樣品元素分析Table 1 Ultimate analysis of samples %

        2.2 降解機(jī)理分析

        以實(shí)驗(yàn)結(jié)束時(shí)的吸光度及腐植酸質(zhì)量作圖,結(jié)果如圖1 所示,2 組數(shù)據(jù)變化趨勢一致。經(jīng)相關(guān)性分析可知其相關(guān)系數(shù)為0.998,說明2 者間存在強(qiáng)相關(guān)性。將吸光度與產(chǎn)物質(zhì)量進(jìn)行線性擬合,如圖2 所示,判定系數(shù)R2=0.997,說明吸光度可以指示煤的降解程度[32]。

        圖1 不同組降解液吸光度與腐植酸質(zhì)量變化趨勢Fig.1 Trend of absorbance of degradation solution and humic acid quality in different groups

        圖2 不同組降解液吸光度與腐植酸質(zhì)量擬合Fig.2 Fitting of absorbance of degradation solution and humic acid quality in different groups

        實(shí)驗(yàn)組(1F3B、2F2B、3F1B、50F1B、4B、4F)及對照組(CK)的產(chǎn)物質(zhì)量分別為1.23、1.38、1.34、1.31、1.25、1.20、0.03 g,根據(jù)式(1)計(jì)算得混合菌(1F3B、2F2B、3F1B、50F1B)降解的產(chǎn)物產(chǎn)率分別為60.00%、67.17%、65.17%、63.67%,真菌(4F)、細(xì)菌(4B)分別為58.17%、61.00%,降解率整體上呈現(xiàn)出混合菌大于純菌、細(xì)菌大于真菌的規(guī)律。

        實(shí)驗(yàn)過程中各組的pH 變化規(guī)律如圖3 所示,對照組(CK)的pH 從5.33 緩慢降低到4.46 后穩(wěn)定,與文獻(xiàn)報(bào)道的現(xiàn)象一致[31,33],而實(shí)驗(yàn)組的pH 從第4 天至實(shí)驗(yàn)結(jié)束在7.86~8.72 的堿性范圍內(nèi)波動(dòng),說明真菌、細(xì)菌及其混合物在實(shí)驗(yàn)過程中產(chǎn)生了堿性物質(zhì)。純菌作用下的pH 始終略低于混合菌,結(jié)合吸光度變化規(guī)律(圖4)可知相應(yīng)的混合菌的降解率高于純菌,說明真菌細(xì)菌聯(lián)合降解煤時(shí)具有相互促進(jìn)的作用,混合菌產(chǎn)生的堿性物質(zhì)比純菌多,堿性物質(zhì)在煤降解過程中發(fā)揮了重要作用。實(shí)驗(yàn)啟動(dòng)時(shí),真菌實(shí)驗(yàn)組的pH 與其他實(shí)驗(yàn)組相差約1,而吸光度則約為其他實(shí)驗(yàn)組的1/3,也說明了堿性物質(zhì)對煤降解產(chǎn)生了重要影響。

        圖3 不同組降解液pH 變化趨勢Fig.3 Trend of pH in different degradation solutions

        圖4 不同組降解液吸光度變化趨勢Fig.4 Trend of absorbance in different degradation solutions

        2.3 降解液金屬元素變化規(guī)律

        如圖5 所示,Cr、Mn、Co、Ni、Cu、Zn、As、Mo、Pb 等9 種金屬元素在對照組(CK)中均檢出,說明即使無微生物的降解作用也會(huì)有一定量的金屬元素從煤中遷移到降解液中,這是因?yàn)閺?qiáng)酸氧化處理過的煤即使無生物或化學(xué)試劑的作用也可在水中部分溶解[34]。

        圖5 降解液中金屬元素質(zhì)量濃度分布Fig.5 Distribution of metal element content in degradation solution

        Cr、Co、Ni、Cu、Zn、As、Mo、Pb 等8 種金屬元素在實(shí)驗(yàn)組降解液中質(zhì)量濃度高于對照組(CK),說明真菌、細(xì)菌及其混合物在降解煤的同時(shí)具有促進(jìn)金屬元素從煤中向降解液中遷移的作用,這與武俐等[23]在煤的生物氣化過程中發(fā)現(xiàn)的As、Ba、Co、Ni 和Pb 等金屬元素元素從煤中轉(zhuǎn)移到了降解液的現(xiàn)象類似。

        將金屬元素質(zhì)量濃度與吸光度進(jìn)行線性擬合,結(jié)果如圖6 和表2 所示,Cr、As、Pb、Ni、Cu、Mo 等6種金屬元素與A450擬合的判定系數(shù)(R2)大于0.6 且模型檢驗(yàn)結(jié)果為顯著,即Cr、Ni、Cu、As、Mo、Pb 與A450正相關(guān),也即煤降解液中的金屬元素Cr、Ni、Cu、As、Mo、Pb 質(zhì)量濃度越高,相應(yīng)的煤降解率也越高。

        圖6 金屬元素質(zhì)量濃度與吸光度擬合Fig.6 Fitting of metal element content and absorbance

        表2 金屬元素與吸光度擬合參數(shù)Table 2 Fitting parameters of metal elements and absorbance

        如圖6(d)所示,Mn 元素在對照組(CK)中質(zhì)量濃度高于細(xì)菌實(shí)驗(yàn)組(4B),與吸光度間無顯著的相關(guān)關(guān)系。對照組中含有錳元素說明煤中含有該元素。一方面由上文分析可知細(xì)菌(4B)實(shí)驗(yàn)組的煤發(fā)生了降解,因此煤中的Mn 元素會(huì)轉(zhuǎn)移至降解液中導(dǎo)致Mn元素質(zhì)量濃度升高。另一方面,微生物分離過程中發(fā)現(xiàn)真菌F11 和細(xì)菌B1 均可使苯胺藍(lán)平板褪色而苯胺藍(lán)可以指示錳過氧化物酶的存在,說明兩株菌均可產(chǎn)生錳過氧化物酶。研究表明錳過氧化物酶的反應(yīng)需要Mn 的參與[35-36],因此降解液中的錳因參與反應(yīng)而導(dǎo)致質(zhì)量濃度降低。綜上所述,在煤的降解過程中Mn 元素存在著釋放與利用平衡?;旌暇鷮?shí)驗(yàn)組的Mn 元素質(zhì)量濃度高于對照組(CK)且與之存在顯著差異(P< 0.05),說明真菌與細(xì)菌混合具有協(xié)同作用,錳元素的釋放大于利用,因此在降解液中的質(zhì)量濃度升高,這與pH 分析的結(jié)果一致。Co、Zn 的質(zhì)量濃度與吸光度間無顯著的相關(guān)關(guān)系,具體原因還有待進(jìn)一步研究。

        2.4 腐植酸甲醇萃取物GCMS 分析

        由圖7 及表3 可知,2、3、9、11、13、14、18、19號峰為對照組及實(shí)驗(yàn)組共有的峰,對應(yīng)的化合物為乙二酸、十六烷酸、十八烷酸、吡咯、4 種吡咯衍生物。

        圖7 不同組腐植酸甲醇萃取物GCMSFig.7 GCMS of methanol extracts of humic acid in different groups

        表3 腐植酸甲醇萃取物GCMS 定性結(jié)果Table 3 GCMS qualitative results of methanol extracts of humic acid

        由對照組、4F、4B 組的色譜圖(圖7)可知,7、17號峰僅出現(xiàn)在4F 實(shí)驗(yàn)組,因此對應(yīng)的化合物十八甲基環(huán)九硅氧烷、順-13-二十二碳烯酸為真菌特征性產(chǎn)物。1、6、16 號峰僅出現(xiàn)在4B 實(shí)驗(yàn)組,對應(yīng)的N-乙基吡咯、苯乙酸、4-羥基苯乙酸為細(xì)菌的特征性產(chǎn)物。結(jié)合混合菌實(shí)驗(yàn)組的色譜圖可知,細(xì)菌的特征性產(chǎn)物在混合菌實(shí)驗(yàn)組中檢出而真菌的特征性產(chǎn)物則未檢出,說明混合后細(xì)菌占主導(dǎo)作用。由圖3 可以看出,在整個(gè)實(shí)驗(yàn)周期內(nèi)尤其是第4 天之前混合菌降解液的pH 始終與細(xì)菌降解液接近,也從側(cè)面說明混合后細(xì)菌占主導(dǎo)作用。

        4、5、8、10、12 號峰在對照組未檢出,其中4、5號峰定性為丁二酸,8、10 號峰為長鏈脂肪酸(C13、C14、C15)、揮發(fā)性脂肪酸(C3、C4、C5),12 號峰為2種吡咯衍生物。與對照組的cHA 相比,除了共有的十六烷酸(C16)、十八烷酸(C18)、4 種吡咯衍生物之外,實(shí)驗(yàn)組的bHA 中含有更多脂肪鏈較短、分子量較小的脂肪酸和種類更豐富的吡咯衍生物。GHANI M J等[13]的研究表明相對于cHA,bHA 的分子量和芳香性降低,與本文的研究結(jié)果類似。

        15 號峰在實(shí)驗(yàn)組及對照組均可定性為芳香族化合物,在對照組為含氧稠雜環(huán)化合物,在實(shí)驗(yàn)組中為含氮稠雜環(huán)化合物或有含氮官能團(tuán)的化合物,說明bHA 的含氮化合物更多,與元素分析的結(jié)果一致。

        2.5 腐植酸紅外光譜分析

        如圖8 所示,各組產(chǎn)物的紅外光譜圖相似,3 500~2 000 cm-1有一個(gè)彌散的強(qiáng)吸收譜帶,對應(yīng)羧基COOH 的O—H 和NH+伸縮振動(dòng)[37]。2 362 cm-1處為羧基的氫鍵締合伸縮振動(dòng)[38-39]。1 720、1 666 cm-1處為羰基C=O 的伸縮振動(dòng)[37,40-41]。1 543、1 407 cm-1處苯環(huán)骨架振動(dòng)[37]。說明腐植酸大分子的基本結(jié)構(gòu)含有芳香環(huán)并富含羧基、羥基、羰基等活性官能團(tuán)。如前文所述,實(shí)驗(yàn)組含有更多的含氮稠雜環(huán)化合物或含氮官能團(tuán),其中吡咯、呋喃和噻吩的結(jié)構(gòu)是與苯環(huán)類似封閉的芳香共軛體系[42]。雜環(huán)的骨架吸收峰與苯環(huán)相似[43],因此在1 407 cm-1處吸收峰比對照組強(qiáng)。

        圖8 不同組腐植酸紅外光譜Fig.8 FTIR of humic acid in different groups

        3 結(jié) 論

        (1)雅致小克銀漢霉(C.elegans)和芽孢桿菌(Bacillussp.)均可通過堿性物質(zhì)作用機(jī)理實(shí)現(xiàn)硝酸氧化煤的降解,腐植酸產(chǎn)率分別為58.17%、61.00%。兩株菌混合具有協(xié)同作用,腐植酸產(chǎn)率可提高到67.17%。

        (2)芽孢桿菌(Bacillussp.)的特征性產(chǎn)物在混合菌實(shí)驗(yàn)組中檢出而雅致小克銀漢霉(C.elegans)的特征性產(chǎn)物則未檢出,混合菌降解液的pH 始終與芽孢桿菌(Bacillussp.)降解液接近,說明混合后芽孢桿菌(Bacillussp.)占主導(dǎo)作用。

        (3)在煤的生物降解過程中Cr、As、Mn、Pb、Co、Ni、Cu、Zn、Mo 等9 種金屬元素從煤遷移到了降解液中,其中Cr、Ni、Cu、As、Mo、Pb 等6 種與吸光度A450具有顯著的正相關(guān)性,可以表征煤降解率的相對大小。Mn 在煤的生物降解過程中存在釋放與利用平衡。

        (4) cHA 與bHA 均富含羧基、羥基、羰基等活性官能團(tuán)、含有長鏈脂肪酸、4 種吡咯衍生物。同時(shí),bHA 還含有分子量較小的脂肪酸(C3、C4、C5、C13、C14、C15)及含氮化合物,bHA 結(jié)合氮、富集氫的能力大于cHA。

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