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        復(fù)方益生菌粉提高小鼠免疫力的實驗研究

        2023-11-07 04:42:44劉柘君劉振權(quán)孫文燕
        食品與藥品 2023年5期
        關(guān)鍵詞:益生菌批號復(fù)方

        劉柘君,劉振權(quán),孫文燕

        (1. 北京中醫(yī)藥大學(xué) 中醫(yī)學(xué)院,北京 100029;2. 北京中醫(yī)藥大學(xué) 中藥學(xué)院,北京 100029)

        益生菌是指一類對人體有益處的微生物有機(jī)體,通常在人體腸道黏膜中定植,發(fā)揮維持腸道生態(tài)平衡、增強(qiáng)機(jī)體免疫力等重要作用[1]。隨著研究不斷深入,益生菌用于消化系統(tǒng)腫瘤患者和手術(shù)患者預(yù)后的輔助用藥[2]。中醫(yī)學(xué)者則通常立足于臟象氣血理論,認(rèn)為人體“正氣存內(nèi),邪不可干”,此處的“正氣”即機(jī)體抵御病邪的能力,即西醫(yī)中的免疫力一詞,治法多著眼于扶正祛邪、補(bǔ)中益氣[3]。本研究根據(jù)《保健食品檢驗與評價技術(shù)規(guī)范》中有關(guān)增強(qiáng)免疫力的檢測方法,研究復(fù)方益生菌粉增強(qiáng)小鼠免疫力的效果。

        1 材料與方法

        1.1 受試材料

        鼠李糖乳桿菌R9639(活菌數(shù)2000億CFU/g)、干酪乳桿菌Zhang(活菌數(shù)2000億CFU/g)及植物乳桿菌P9(活菌數(shù)2000億CFU/g)(北京科拓恒通),按照質(zhì)量比4:2:4比例混合。

        1.2 實驗動物及給藥

        SPF級ICR雌性小鼠200只,體重18~22 g(北京維通利華),適應(yīng)性飼養(yǎng)7 d后,隨機(jī)分為A、B、C、D和E 5個大組,每大組再隨機(jī)分為陰性對照組、低、中、高劑量組各10只,具體分組及各組實驗項目見表1。

        表1 動物分組

        用純凈水配制濃度為0.21,0.42,1.25 mg/(kg·d)復(fù)方益生菌粉,對低、中、高3個劑量組小鼠進(jìn)行灌胃,陰性對照組灌胃給予同等體積純凈水。每日給藥1次,連續(xù)灌胃30 d后各組對應(yīng)實驗項目進(jìn)行檢測。

        1.3 主要試劑和儀器

        RPMI1640培養(yǎng)基(批號:SH30809.01,Hyclone);四季青胎牛血清(批號:11011-8611,浙江天杭);CCK8試劑盒(批號:CA1210,北京百瑞極);刀豆蛋白A (Con A,批號:C8110),Hank’s液,瓊脂糖(批號:A8530),臺盼藍(lán)染色液(批號:C0040-50),Giemsa染液(批號:G1015)(北京索萊寶),NP40(批號:N8030);綿羊紅細(xì)胞(SRBC,批號:HQ80073),雞紅細(xì)胞(批號:HQ80071)(鴻泉生物);文奇氏試劑(批號:H1025,上海源葉);乳酸脫氫酶(LDH)測定試劑盒(批號:A020-2,南京建成生物工程研究所)。

        CO2培養(yǎng)箱(松下健康醫(yī)療器械);96孔板(美國康寧costar);倒置顯微鏡(日本OLYMPUS);油鏡(日本OLYMPUS);低速離心機(jī)(北京北利時代);酶標(biāo)儀(BIO-TEK)。

        1.4 實驗方法

        1.4.1 小鼠體重差值及臟器/體重比 取小鼠胸腺和脾臟稱重,計算小鼠體重、胸腺/體重比值及脾臟/體重比值。

        1.4.2 小鼠體液免疫功能影響

        1.4.2.1 血清溶血素半數(shù)溶血值(HC50)測定 于第31天對B組小鼠腹腔注射0.2 ml 的2 %(V/V)SRBC,并于注射后第4 d摘眼球取血,置入離心管,離心1 h后收取上層血清。將血清稀釋300倍后取50 μl置于96孔板,依次加入25 μl 10 %(V/V)SRBC和50 μl已制備好的補(bǔ)體,37 ℃恒溫培養(yǎng)箱30 min后終止反應(yīng)并再次離心取0.05 ml上清,加文奇氏試劑0.15 ml作為樣品。同時設(shè)半數(shù)溶血孔,取12.5 μl 10 %(V/V)SRBC,加文奇氏試劑至0.2 ml,各組試劑充分混合,放置10 min后,于540 nm下測定各孔A值。溶血素具體數(shù)值以半數(shù)溶血值(HC50)表示,按式(1)計算。

        1.4.2.2 抗體生成細(xì)胞檢測 將1 ml 壓積SRBC加至5 ml空白小鼠血清中,于4 ℃冰箱放置30 min,離心取上清,-70 ℃保存作為補(bǔ)體待用。并于第31天對B組小鼠腹腔注射0.2 ml 的2 %(V/V)SRBC,注射后第4天處死各組小鼠并取出脾臟于Hank’s液中保存,磨碎脾臟篩網(wǎng)過濾并離心制成細(xì)胞懸液,細(xì)胞濃度調(diào)整為5×106個/ml,待用。將表層培養(yǎng)基加熱溶解后置于45 ℃水浴保溫,與等體積 2倍濃度的Hank’s液混勻后,以每管0.5 ml的容量分裝于試管中,再加入50 μl的10 %(V/V)SRBC和20 μl脾細(xì)胞懸液,迅速混合,傾倒于已刷瓊脂糖薄層的玻璃片上,待瓊脂糖凝固,將玻片水平扣放在片架上放入CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)孵育1.5 h,再加入已制備好補(bǔ)體,置于玻片凹槽內(nèi),培養(yǎng)1.5 h后,計數(shù)溶血空斑數(shù)。

        1.4.3 小鼠細(xì)胞免疫功能影響

        1.4.3.1 遲發(fā)型變態(tài)反應(yīng)(DTH)測定 于第31天對A組每只小鼠腹腔注射0.2 ml 的2 %(V/V)SRBC,經(jīng)4 d免疫后,精確測量小鼠的左后足趾厚度,并在測量部位皮下注射20 μl 20 %(V/V)SRBC再次致敏,經(jīng)24 h再次免疫后,觀察并再次測量小鼠的左后足趾厚度,計算首次致敏后和再次致敏后小鼠左后足趾厚度的差值,即通過足趾腫脹度表征DTH的程度。

        1.4.3.2 ConA誘導(dǎo)的淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化試驗 于第31天對C組小鼠處死后浸于75 %乙醇中滅菌10 min,并在無菌條件下取出脾臟,制備無菌脾細(xì)胞懸液并用RPMI1640不完全培養(yǎng)基調(diào)整細(xì)胞濃度為3×106個/ml,按照CCK8法測定淋巴細(xì)胞增殖情況,將脾細(xì)胞分兩孔加入培養(yǎng)板,每孔200 μl,一孔加入15 μl ConA液,另一孔對照,在CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)72 h,培養(yǎng)結(jié)束前4 h每孔吸取上清0.7 ml,加入100 μl不含牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)基和10 μl CCK8,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,結(jié)束時加入1 ml酸性異丙醇,混勻后于450 nm下測定A值,計算加入ConA和未加入ConA各孔的A差值,按式(2)計算。

        1.4.4 小鼠單核-巨噬細(xì)胞功能影響

        1.4.4.1 碳廓清實驗 取稀釋后濃度為10 ml/kg印度墨汁,于第31天尾靜脈注射E組小鼠,注射后開始計時,于注射后第2 min和第10 min分別眼眶取血20 μl,并分別與2 ml 0.1 % Na2CO3溶液混合均勻。于600 nm波長處檢測吸光度值(A),稱量小鼠肝重及脾重,并按式(3)(4)計算吞噬指數(shù)α。式中:K代表廓清指數(shù);α代表吞噬指數(shù)。

        1.4.4.2 小鼠腹腔巨噬細(xì)胞吞噬實驗 于第31天將D組小鼠腹腔注射20 % SRBC 1 ml,并于0.5 h后處死小鼠并使其呈仰臥位,注射生理鹽水洗液2 ml至小鼠腹腔,按揉腹部1 min后吸出生理鹽水洗液1 ml,分別均勻的滴于2片載玻片上,移至37 ℃孵箱中孵育30 min。然后用生理鹽水漂洗載玻片后干燥。在甲醇溶液中固定1 min后,用4 %的Giemsa進(jìn)行染色3 min,用蒸餾水漂洗晾干。通過40×顯微鏡觀察巨噬細(xì)胞的形態(tài)并計數(shù),按式(5)(6)進(jìn)行計算。

        1.4.5 NK細(xì)胞活性

        1.4.5.1 乳酸脫氫法(LDH)測定NK細(xì)胞活性 于第30天將靶細(xì)胞YAC-1傳代培養(yǎng)并調(diào)整細(xì)胞濃度為4×105個/ml,并于第31天對C組小鼠處死后置于75 %乙醇中滅菌后無菌取脾鑷子磨碎后篩網(wǎng)過濾、離心棄上清液,向細(xì)胞漿中加入0.5 ml滅菌水20 s,再加入Hank’s液清洗3次并離心,用1 ml含小牛血清的RPMI1640完全培養(yǎng)液重懸,測定活細(xì)胞數(shù)量為95 %以上后,用RPMI1640 完全培養(yǎng)基制成脾的單細(xì)胞懸液作為效應(yīng)細(xì)胞,并調(diào)整細(xì)胞濃度為2×107個/ml,靶細(xì)胞和效應(yīng)細(xì)胞比例約為50:1。取靶細(xì)胞和效應(yīng)細(xì)胞溶液各50 μl,加入U型96孔板中,其中靶細(xì)胞自然釋放孔中分別加入靶細(xì)胞和培養(yǎng)液各100 μl,靶細(xì)胞最大釋放孔分別加靶細(xì)胞和1 % NP40各100 μl,均設(shè)3個平行孔,37 ℃CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)4 h后,離心5 min,吸取上清100 μl鋪于新的96孔板中,加入LDH基質(zhì)液100 μl,室溫反應(yīng)10 min后,加入鹽酸溶液(1 mol/L)30 μl終止反應(yīng),采用酶標(biāo)儀490 nm處測定A值。按式(7)進(jìn)行計算。

        1.5 數(shù)據(jù)分析

        應(yīng)用SPSS19.0軟件對以上符合正態(tài)分布的計量數(shù)據(jù)資料進(jìn)行單因素方差分析和組間LSD檢驗,若數(shù)據(jù)資料不符合正態(tài)分布,則采用非參數(shù)檢驗統(tǒng)計學(xué)處理。結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,P<0.05表示差異具有統(tǒng)計學(xué)意義。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 小鼠體重差值及臟器/體重比

        小鼠體重差值及臟器/體重比 結(jié)果見表2。由表2可見,實驗期間各組小鼠生長發(fā)育良好,體重隨給藥時間延長而增加,各劑量組與陰性對照組比較顯示差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。由圖1可見,各劑量組小鼠胸腺/體重比值及脾臟/體重比值與陰性對照組相比差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。結(jié)果表明,不同劑量的復(fù)方益生菌粉對小鼠體重和淋巴器官影響較小。

        表2 復(fù)方益生菌粉對小鼠體重的影響 (±s,n=10)

        表2 復(fù)方益生菌粉對小鼠體重的影響 (±s,n=10)

        組別 始重/g 終重/g高劑量組 23.32±1.05 29.85±1.40中劑量組 24.11±0.58 30.49±1.65低劑量組 23.71±0.67 30.69±2.36陰性對照組 23.40±1.00 31.06±1.45

        圖1 復(fù)方益生菌對小鼠臟器/體重比值的影響

        2.2 復(fù)方益生菌小鼠體液免疫功能影響

        2.2.1 血清溶血素半數(shù)溶血值 結(jié)果見表3。由表3可見,低、中、高劑量組小鼠溶血素半數(shù)溶血值均高于陰性對照組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。結(jié)果表明,復(fù)方益生菌能有效促進(jìn)SRBC細(xì)胞發(fā)生溶血反應(yīng),提高產(chǎn)生溶血素的能力。

        2.2.2 抗體生成細(xì)胞數(shù) 結(jié)果見表3。由表3可見,低、中、高劑量組小鼠的抗體生成細(xì)胞數(shù)均高于陰性對照組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。結(jié)果表明,復(fù)方益生菌能有效增加小鼠抗體生成細(xì)胞的數(shù)量。

        表3 復(fù)方益生菌粉對小鼠體液免疫的影響(±s,n=10)

        表3 復(fù)方益生菌粉對小鼠體液免疫的影響(±s,n=10)

        注:**P<0.01 vs 陰性對照組

        組別 HC50 溶血空斑數(shù)(個/全脾細(xì)胞)高劑量組 80.37±1.50** 313.90±53.28**中劑量組 76.73±0.70** 207.44±18.32**低劑量組 75.74±0.41** 151.78±14.29**陰性對照組 69.36±1.27 101.00±15.78

        2.3 小鼠細(xì)胞免疫功能影響

        2.3.1 遲發(fā)型變態(tài)反應(yīng) 結(jié)果見表4。由表4可見,與陰性對照組相比低、中劑量組差異無統(tǒng)計學(xué)意義,而高劑量組小鼠的足趾腫脹程度差值顯著性增大(P<0.01),因此可進(jìn)一步猜測隨著劑量再次增加,其淋巴細(xì)胞誘導(dǎo)的細(xì)胞免疫功能可能會一定程度的再次增強(qiáng)。

        表4 復(fù)方益生菌粉對小鼠細(xì)胞免疫的影響(±s,n=10)

        表4 復(fù)方益生菌粉對小鼠細(xì)胞免疫的影響(±s,n=10)

        注:**P<0.01 vs 陰性對照組

        足趾腫脹程度差值/mm高劑量組 0.222±0.010** 0.215±0.097**中劑量組 0.185±0.017** 0.170±0.0945低劑量組 0.097±0.010** 0.117±0.071陰性對照組 0.069±0.018 0.105±0.086組別 淋巴細(xì)胞增殖能力

        2.3.2 淋巴細(xì)胞增殖能力 結(jié)果見表4。由表4可見,隨著復(fù)方益生菌粉劑量的增加,低、中、高劑量組均能顯著增加ConA誘導(dǎo)的小鼠淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化能力,促進(jìn)淋巴細(xì)胞的增殖,低、中、高劑量組均高于陰性對照組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。結(jié)果表明,復(fù)方益生菌能有效增強(qiáng)小鼠的淋巴細(xì)胞免疫功能。

        2.4 復(fù)方益生菌小鼠單核-巨噬細(xì)胞功能影響

        2.4.1 小鼠碳廓清功能 結(jié)果見表5。由表5可見,低、中、高劑量組小鼠吞噬指數(shù)均高于陰性對照組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。結(jié)果表明,復(fù)方益生菌能針對小鼠的碳廓清功能有顯著增強(qiáng)作用,提高小鼠單核-巨噬細(xì)胞吞噬能力。

        表5 復(fù)方益生菌粉對小鼠單核-巨噬細(xì)胞功能的影響(±s,n=10)

        表5 復(fù)方益生菌粉對小鼠單核-巨噬細(xì)胞功能的影響(±s,n=10)

        注:**P<0.01 vs 陰性對照組

        組別 吞噬率% 吞噬雞紅細(xì)胞指數(shù) 吞噬指數(shù)α高劑量組 4.16±0.40** 0.0416±0.004** 7.034±0.268**中劑量組 2.88±0.40** 0.029±0.004** 6.200±0.117**低劑量組 1.43±0.10** 0.014±0.001** 5.043±0.182**陰性對照組 0.81±0.16 0.008±0.001 4.303±0.262

        2.4.2 腹腔巨噬細(xì)胞吞噬雞紅細(xì)胞指數(shù) 結(jié)果見表5。由表5可見,低、中、高劑量組小鼠巨噬細(xì)胞的吞噬能力均高于陰性對照組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。結(jié)果表明,復(fù)方益生菌能增強(qiáng)小鼠腹腔巨噬細(xì)胞的吞噬活性,提高小鼠單核-巨噬細(xì)胞的功能。

        2.5 復(fù)方益生菌NK細(xì)胞活性

        NK細(xì)胞活性結(jié)果見表6。由表6可見,低、中、高劑量組小鼠的NK細(xì)胞活性均高于陰性對照組,差異有顯著性(P<0.01),復(fù)方益生菌能夠增強(qiáng)小鼠的NK細(xì)胞活性,增強(qiáng)NK細(xì)胞功能。

        表6 復(fù)方益生菌粉對小鼠NK細(xì)胞活性的影響(±s,n=10)

        表6 復(fù)方益生菌粉對小鼠NK細(xì)胞活性的影響(±s,n=10)

        注:**P<0.01 vs 陰性對照組

        組別 細(xì)胞活性/%高劑量組 109.68±8.56**中劑量組 68.77±4.25**低劑量組 53.88±4.50**陰性對照組 34.94±4.28

        3 結(jié)論與討論

        機(jī)體免疫功能的強(qiáng)弱與抗疾病能力的強(qiáng)弱及疾病的預(yù)后具有密不可分的聯(lián)系[4-5]。單核-巨噬細(xì)胞和NK細(xì)胞主要參與非特異性免疫,T淋巴細(xì)胞主要參與細(xì)胞免疫,B淋巴細(xì)胞主要參與體液免疫,因此,以上細(xì)胞均在機(jī)體免疫反應(yīng)過程中發(fā)揮重要作用[6],其變化與否及變化程度是評價益生菌對機(jī)體免疫調(diào)節(jié)作用的重要指標(biāo)。本文根據(jù)《保健食品檢驗與評價技術(shù)規(guī)范》有關(guān)檢測方法和判定標(biāo)準(zhǔn),圍繞單核-巨噬細(xì)胞功能、NK細(xì)胞活性、體液免疫和細(xì)胞免疫等方面,評價并驗證復(fù)方益生菌粉對小鼠免疫功能的具體影響。

        本文所用的復(fù)方益生菌粉由鼠李糖乳桿菌R9639、干酪乳桿菌Zhang和植物乳桿菌P9等3種益生菌菌株組成,菌株均為目前國內(nèi)外重點開發(fā)的Lactobacillus屬細(xì)菌,均能耐受酸性胃液、堿性腸液,進(jìn)入腸道并成功黏附于腸黏膜,通過影響多種細(xì)胞因子的釋放發(fā)揮抗炎等特性[7-9]。有研究表明,多種益生菌的復(fù)合搭配能更好地發(fā)揮益生菌本身的功能,促進(jìn)CD8+T淋巴細(xì)胞和B淋巴細(xì)胞增殖轉(zhuǎn)化,使前者發(fā)揮細(xì)胞毒作用釋放穿孔素等細(xì)胞因子攻擊病原微生物,使后者轉(zhuǎn)化為漿細(xì)胞分泌sIgA使病原微生物失去黏附功能,發(fā)揮維護(hù)腸道平衡、增加腸道免疫功能的作用,從而加強(qiáng)機(jī)體先天性免疫反應(yīng)和適應(yīng)性免疫反應(yīng)[10-12]。

        本研究結(jié)果表明,各劑量復(fù)方益生菌對小鼠胸腺指數(shù)和脾臟指數(shù)無差異,初步明確了其安全性。體液免疫實驗結(jié)果表明,低、中、高劑量的復(fù)方益生菌能使小鼠血清溶血素半數(shù)溶血值及抗體生成數(shù)顯著增加;細(xì)胞免疫實驗結(jié)果表明,高劑量復(fù)方益生菌能顯著增強(qiáng)小鼠遲發(fā)型免疫反應(yīng)和淋巴細(xì)胞增殖能力;單核-巨噬細(xì)胞免疫實驗結(jié)果表明,低、中、高劑量復(fù)方益生菌能顯著增強(qiáng)小鼠碳廓清功能和巨噬細(xì)胞吞噬活性;最后通過NK細(xì)胞實驗表明,低、中、高劑量復(fù)方益生菌能顯著增強(qiáng)小鼠NK細(xì)胞功能和活性。

        綜上所述,由3株益生菌組成的復(fù)合益生菌無明顯毒性作用,對小鼠健康狀態(tài)無顯著負(fù)面影響,并能從體液免疫、細(xì)胞免疫、單核-腹腔巨噬細(xì)胞吞噬能力和NK細(xì)胞活性等4個方面起到增強(qiáng)免疫功能的作用,通過《保健食品檢驗與評價技術(shù)規(guī)范》中對增強(qiáng)免疫力實驗結(jié)果判定標(biāo)準(zhǔn)的界定,認(rèn)為該產(chǎn)品具有增強(qiáng)免疫力的作用,并為后續(xù)的開發(fā)和臨床應(yīng)用提供了新的理論依據(jù)。

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