高明,王琪,孫遠松,李賀
(安徽醫(yī)科大學第二附屬醫(yī)院 急診外科,安徽 合肥 230601)
急性胰腺炎(acute pancreatitis,AP)是臨床上最常見的急腹癥之一,發(fā)病率在全球范圍內(nèi)正以每年3.07%的增長幅度逐年提升,其總體病死率約為1%[1]。盡管AP患者大多數(shù)臨床分類為輕度和中度AP,但仍有1/5的患者進展為重癥急性胰腺炎(severe acute pancreatitis,SAP),表現(xiàn)為持續(xù)性單個器官或多器官功能衰竭,其病死率高達20%[2]。故在疾病早期進行及時有效的針對性干預治療顯得尤為重要,目前臨床治療上多采用早期目標導向液體復蘇、腸內(nèi)外營養(yǎng)、鎮(zhèn)痛等對癥支持治療,尚缺乏特異性的治療藥物或干預方法[3]。相關(guān)研究表明,線粒體膜通透性改變引起線粒體功能障礙,進而導致自噬受損、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激是引起細胞凋亡和壞死的普遍機制[4],而胰腺腺泡細胞凋亡是介導AP發(fā)生發(fā)展的關(guān)鍵環(huán)節(jié),其在促進炎癥反應和多器官繼發(fā)損傷方面發(fā)揮重要作用[5-6]。因此,恢復腺泡細胞凋亡失調(diào)成為治療AP的潛在靶點和方向之一。Wang等[7]表明,敲除鋅指蛋白基因ZMYM2轉(zhuǎn)錄環(huán)狀核糖核酸(zinc finger protein gene ZMYM2 transcribed circular RNA,circZMYM2)可使表達乙型肝炎病毒X蛋白的肝細胞免于DNA損傷誘導的細胞凋亡;Wang等[8]發(fā)現(xiàn)上調(diào)微小RNA-29a(miR-29a)可改善糖尿病心肌?。╠iabetic cardiomyopathy,DCM)大鼠的心臟結(jié)構(gòu)和功能、減輕心肌組織學異常和纖維化并降低心肌細胞凋亡;何勇等[9]通過對AP相關(guān)肺損傷的肺組織檢測發(fā)現(xiàn)p53上調(diào)凋亡調(diào)節(jié)因子(p53 upregulated modulator of apoptosis,PUMA)上調(diào)可促進肺泡上皮細胞凋亡。因此,本研究分析AP腺泡細胞中circZMYM2、miR-29a、PUMA表達水平的變化及其相互關(guān)系,以期為AP的治療提供新靶點及新思路。
大鼠胰腺腺泡細胞AR42J購自上海佰利萊生物科技有限公司;DMEM-F12培養(yǎng)基購自武漢普諾賽生命科技有限公司;雨蛙素購自北京索萊寶科技有限公司;pcDNA3.1-si-ZMYM2購自蘇州吉瑪基因股份有限公司;RAPI蛋白裂解液購自愛必信(上海)生物科技有限公司;BCA蛋白檢測試劑盒購自合肥萊爾生物科技有限公司;兔多克隆抗PUMA抗體、鼠單克隆β-actin抗體、山羊抗兔IgG抗體、CCK-8檢測試劑盒、膜聯(lián)蛋白V-APC細胞凋亡檢測試劑盒、TUNEL檢測試劑盒均購自艾博抗(上海)貿(mào)易有限公司;Immobilon? Western HRP底物試劑盒及電泳槽、TRIzol試劑、PrimeScript RT Master混合物、SYBR Premix Ex TaqTM試劑及熒光定量PCR檢測儀、細胞培養(yǎng)箱、全自動多功能酶標儀、FACS Caliber流式細胞分析儀均由安徽醫(yī)科大學第二附屬醫(yī)院科研實驗中心付費提供。
1.2.1 細胞培養(yǎng)與處理 將AR42J腺泡細胞種于含10%胎牛血清和1%青霉素的DMEM-F12培養(yǎng)基中,再將培養(yǎng)基置于37 ℃條件下、5% CO2濃度的細胞培養(yǎng)箱中保存培養(yǎng)。培養(yǎng)基每48 h更換1次,細胞每周傳代1次,生長和適應4~6周后進行實驗。將AR42J腺泡細胞分為對照組、AP組和si-circZMYM2組。對照組不作處理,AP組用10 nmol/L濃度的雨蛙素誘導AP體外模型,si-circZMYM2組使用pcDNA3.1-si-ZMYM2對AR42J腺泡細胞進行瞬時轉(zhuǎn)染,將轉(zhuǎn)染后的AR42J腺泡細胞置于37 ℃條件下、5% CO2濃度的2 mL正常培養(yǎng)基中繼續(xù)培養(yǎng)24 h,24 h后與AP組同時按照10 nmol/L濃度的雨蛙素誘導AP體外模型。3 h后檢測相關(guān)指標。
1.2.2 生化檢測 取上清液并以1 000 r/min離心5 min,采用ELISA法檢測淀粉酶水平。
1.2.3 細胞活力檢測 用CCK-8檢測試劑盒檢測AR42J腺泡細胞活力,加入CCK-8溶液10 μL后在37 ℃條件下、5% CO2濃度環(huán)境中孵育4 h,通過酶標儀測定450 nm處的吸光度值。
1.2.4 細胞凋亡檢測 ⑴ 流式細胞術(shù):AR42J腺泡細胞用磷酸緩沖溶液(PBS)洗滌2次,使用膜聯(lián)蛋白V-APC細胞凋亡檢測試劑盒進行染色,所有流式細胞術(shù)分析均使用FACS Caliber流式細胞分析儀進行。⑵ TUNEL法:加入原位細胞死亡檢測試劑并在37 ℃條件下孵育1 h后檢測AR42J腺泡細胞凋亡情況。
1.2.5 Western blot檢測 在RAPI蛋白裂解液中裂解后,通過BCA蛋白檢測試劑盒完成總蛋白的定量檢測,再采用SDS-PAGE電泳2 h進行蛋白質(zhì)分離,并轉(zhuǎn)移印跡到PVDF膜上。然后將膜浸泡在Tris緩沖鹽水和5%脫脂牛奶中并在室溫下封閉2 h,最后與以下抗體混合并在4 ℃條件下培養(yǎng)過夜,包括兔多克隆抗PUMA抗體以及鼠單克隆β-actin抗體。用TBST緩沖液洗滌3次后再加入HRP標記的抗體山羊抗兔IgG并在室溫下孵育2 h。最后,使用Immobilon? Western HRP底物試劑盒觀察顯色;采用Quantity One version 4.6.9 進行密度定量分析。以β-actin作為內(nèi)參對照。
1.2.6 qRT-PCR檢測 使用TRIzol試劑裂解AR42J腺泡細胞后分離提取總RNA,并用PrimeScript RT Master混合物逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,再使用SYBR Premix Ex TaqTM試劑進行qRT-PCR檢測,使用GAPDH和U6作為內(nèi)參對照,采用2-ΔΔCT法檢測circZMYM2相對于GAPDH、miR-29a相對于U6的表達情況。qRT-PCR中使用的所有不同引物序列見表1。
表1 qRT-PCR引物序列Table 1 Primers sequence for qRT-PCR
所有數(shù)據(jù)均使用Excel 2019記錄,采用IBM SPSS 21.0軟件進行統(tǒng)計分析,使用GraphPad Prism 8軟件進行圖形生成,服從正態(tài)分布的測量值以均數(shù)±標準差(±s)表示,組間差異對比使用單因素方差分析,P<0.01為差異有統(tǒng)計學意義。
ELISA檢測結(jié)果顯示,與對照組比較,AP組和si-circZMYM2組淀粉酶水平均明顯升高(均P<0.01),表明AP細胞模型成功建立,但si-circZMYM2組淀粉酶水平明顯低于AP組(P<0.01)(圖1)。
圖1 各組細胞淀粉酶水平比較Figure 1 Comparison of amylase levels among the groups of cells
CCK-8實驗結(jié)果顯示,AP組和si-circZMYM2組的細胞活力均明顯低于對照組(均P<0.01),而sicircZMYM2組細胞活力明顯高于AP組(P<0.01)(圖2)。
圖2 各組細胞活力比較Figure 2 Comparison of cell viability among the groups of cells
流式細胞術(shù)檢測結(jié)果顯示,AP組和sicircZMYM2組細胞凋亡率均顯著高于對照組(均P<0.01),而與AP組比較,si-circZMYM2組細胞凋亡率明顯降低(P<0.01)(圖3A)。TUNEL法檢測結(jié)果顯示,與對照組比較,AP組和si-circZMYM2組凋亡細胞數(shù)均明顯增加(均P<0.01),但si-circZMYM2組凋亡細胞數(shù)明顯低于AP組(P<0.01)(圖3B)。
圖3 各組細胞凋亡情況比較 A:流式細胞術(shù)檢測;B:TUNEL法檢測Figure 3 Comparison of cell apoptosis status among the groups A: Flow cytometry determination; B: TUNEL assay
Western blot結(jié)果顯示,與對照組比較,PUMA蛋白表達水平在AP組和si-circZMYM2組中均明顯升高(均P<0.01),但si-circZMYM2組PUMA水平明顯低于AP組(P<0.01)(圖4)。
圖4 各組細胞PUMA蛋白表達水平比較Figure 4 Comparison of PUMA protein expression levels among the groups of cells
qRT-PCR法檢測結(jié)果顯示,circZMYM2表達水平在AP組明顯高于對照組,而在si-circZMYM2組明顯低于對照組和AP組(均P<0.01);miR-29a表達水平在AP組明顯低于對照組,而在si-circZMYM2組中明顯高于對照組和AP組(P<0.01)(圖5)。
圖5 各組細胞circZMYM2及miR-29a表達水平比較Figure 5 Comparison of circZMYM2 and miR-29a expression levels among the groups of cells
AP是多種病因引起的胰酶過度激活釋放、胰腺實質(zhì)自身消化的急性炎癥性疾病[10],常見病因包括高脂血癥、膽源性結(jié)石繼發(fā)膽胰管梗阻、酒精、內(nèi)鏡逆行胰膽管造影以及藥物等,上述病因觸發(fā)胰腺腺泡細胞一系列病理通路和細胞器功能障礙,最終導致腺泡細胞凋亡壞死以及局部或全身性炎癥反應[11]。發(fā)生AP時,在嚴重或持續(xù)的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激下,未折疊蛋白反應(unfolded protein response,UPR)破壞保護性細胞反應從而引起不可逆的細胞損傷,細胞凋亡信號通路被激活、細胞凋亡和炎癥反應隨之發(fā)生[12]。細胞凋亡被認為與AP的進展密切相關(guān),AP中非胰腺器官的損傷主要即由細胞凋亡引起[13-14]。因此,進一步探究凋亡機制及信號通路,通過對信號通路相關(guān)蛋白的調(diào)控來改善細胞凋亡途徑,延緩甚至逆轉(zhuǎn)AP的發(fā)展病程,成為了治療AP潛在有吸引力的治療靶點和思路。
環(huán)狀RNA(circular RNA,circRNA)是一類非編碼閉環(huán)RNA,具有結(jié)構(gòu)高度穩(wěn)定性、細胞組織特異性表達、物種間高度保守等特征[15-16]。其中circZMYM2基因編碼一種鋅指蛋白,主要定位于細胞核,根據(jù)circBase收錄信息,circZMYM2可通過反向剪接產(chǎn)生60個環(huán)狀RNA。circRNA富含穩(wěn)定的微小核糖核酸(microRNA,miRNA)應答元件,后者作為一種重要的競爭性內(nèi)源RNA(competing endogenous RNA,ceRNA)與miRNA結(jié)合,發(fā)揮miRNA海綿作用,常通過負調(diào)控miRNA調(diào)節(jié)下游靶基因表達水平[17]。An等[18]的研究發(fā)現(xiàn),circZMYM2可以通過對其靶點miR-335-5p的海綿作用來抑制miR-335-5p的表達,調(diào)節(jié)下游致癌基因JMJD2C的表達水平并調(diào)控細胞凋亡,從而延緩胰腺癌的進展。吳明浩等[19]的研究表明circKIF4A可與miR-515-5p結(jié)合發(fā)揮海綿作用并靶向下游SLC7A11的表達,在結(jié)直腸癌的生長與侵襲中可能發(fā)揮重要作用。本研究首次發(fā)現(xiàn),circZMYM2表達水平在AP組中顯著高于對照組、miR-29a表達水平顯著低于對照組,而通過對circZMYM2進行轉(zhuǎn)染抑制表達后,與AP組相比,circZMYM2表達水平顯著降低、miR-29a表達水平顯著升高,腺泡細胞活力顯著增加、細胞凋亡率及凋亡細胞數(shù)顯著降低,初步表明circZMYM2可能同樣包含有相應競爭性內(nèi)源ceRNA并與miR-29a結(jié)合發(fā)揮miRNA海綿作用,并通過負調(diào)控來下調(diào)miR-29a水平,從而在AP中調(diào)控腺泡細胞凋亡。
微小RNA(microRNA,miRNA)是一種長度約為18到25個核苷酸的小型非編碼RNA,這些小分子RNA可以在翻譯或轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控mRNA及靶基因的表達,從而在細胞多種生理和病理過程如增殖、轉(zhuǎn)移、分化和凋亡中發(fā)揮重要作用[20]。miR-29家族是疾病中最常見的關(guān)聯(lián)miRNA之一,在多種疾病如骨關(guān)節(jié)炎[21]、骨質(zhì)疏松癥[22]和惡性腫瘤[23]中均有異常表達,是上述疾病的病因?qū)W和發(fā)病機制的核心,其中以miR-29a表達最為豐富[24]。相關(guān)研究[25]表明,在炎癥刺激誘導的信號級聯(lián)反應中,促炎細胞因子可激活相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子并導致包括miR-29a在內(nèi)的多種miRNA的上調(diào)。Hsu等[26]雖已在糖尿病腎小球功能障礙中證實過表達miR-29a可以通過DKK1/Wnt/β-catenin信號通路挽救高糖誘導的小鼠系膜細胞凋亡并具有保護作用,但在AP等急性炎癥性疾病中尚無研究。本研究通過建立AP細胞模型發(fā)現(xiàn),AP組中miR-29a表達水平顯著低于對照組,而通過對circZMYM2進行表達抑制后,與AP組相比,si-circZMYM2組的miR-29a表達水平顯著升高,而PUMA水平顯著下降、細胞凋亡率及凋亡細胞數(shù)明顯減少,本研究初步表明miR-29a在AP中可能具有抗凋亡作用,其表達水平可能受circZMYM2調(diào)控,亦可調(diào)控下游PUMA的表達而參與腺泡細胞凋亡。
PUMA作為B淋巴細胞瘤-2基因(B-cell lymphoma-2,BCL-2)家族中促凋亡的BCL-2同源3(BH3)成員,是各種刺激誘導細胞凋亡的最有效介質(zhì)之一[27]。其中只有PUMA-α和PUMA-β編碼蛋白顯示出促凋亡活性,它們與線粒體膜中的BCL-2家族成員相互作用,直接激活促凋亡載體BCL-2相關(guān)X蛋白(BCL-2-associated X protein,BAX)和/或BCL-2拮抗劑(BCL-2 antagonist/killer,BAK),從而導致線粒體外膜通透(mitochondrial outer membrane permeabilization,MOMP)及線粒體功能障礙、凋亡分子釋放以及caspase級聯(lián)激活,最終誘導細胞凋亡壞死[28]。目前已有研究[29]表明miR-29a可調(diào)控Bax和PUMA的表達、Caspase-3的激活以及細胞凋亡。Wei等[30]通過螢光素酶報告基因?qū)嶒灪蚖estern blot分析進一步證明了miR-29a在成熟交感神經(jīng)元中能夠靶向調(diào)控促凋亡BCL-2家族成員PUMA的表達。本研究發(fā)現(xiàn)在AP組中PUMA表達水平顯著升高,細胞活力下降、細胞凋亡率及凋亡細胞數(shù)明顯增加,而通過對circZMYM2進行表達抑制后,腺泡細胞miR-29a表達水平顯著升高,而PUMA水平顯著下降、細胞凋亡率及凋亡細胞數(shù)明顯減少,表明miR-29a對促凋亡基因PUMA可能起負調(diào)控作用并抑制其表達,從而調(diào)控腺泡細胞凋亡。
綜上所述,circZMYM2在AP的腺泡細胞中表達水平顯著升高,其可能通過內(nèi)源競爭性作用與miR-29a結(jié)合并抑制miR-29的表達,從而上調(diào)下游靶基因PUMA的表達水平并誘導腺泡細胞凋亡,而通過抑制circZMYM2表達可上調(diào)miR-29a表達水平并抑制下游PUMA表達水平,進而減少腺泡細胞凋亡,據(jù)此筆者推測circZMYM2/miR-29a/PUMA軸可能在AP的腺泡細胞凋亡調(diào)控中發(fā)揮重要作用,為AP的特異性治療方面提供新靶點及新思路。然而,本研究也存在一定局限性,如未在臨床水平檢測正?;颊吆虯P患者circZMYM2、miR-29a及PUMA的表達水平變化,也未在細胞實驗中過表達或沉默miR-29a進一步驗證circZMYM2/miR-29a/PUMA軸的靶向作用機制,本課題組將在后續(xù)實驗中進一步完善來加以佐證。
利益沖突:所有作者均聲明不存在利益沖突。
作者貢獻聲明:高明負責實驗設計與實施以及論文撰寫,王琪負責數(shù)據(jù)的收集與統(tǒng)計學分析,孫遠松負責技術(shù)、材料支持,李賀負責指導實驗、審核和修改論文。