高堯華,劉夢(mèng)琳,李林杰,孫 立,張曉文,閻 炳,張鴻偉*
(1.日照海關(guān),山東 日照 276826;2.青島海關(guān)技術(shù)中心,山東 青島 266114)
綠茶因含有多種氨基酸和豐富的礦物質(zhì)等營(yíng)養(yǎng)成分,多年來(lái)占據(jù)我國(guó)傳統(tǒng)飲品的重要位置,同時(shí)也是我國(guó)主要出口經(jīng)濟(jì)作物之一,廣受國(guó)內(nèi)外市場(chǎng)好評(píng)。近年來(lái)茶葉的需求量增大,種植面積及生產(chǎn)規(guī)模相應(yīng)擴(kuò)大,但部分茶農(nóng)的食品安全意識(shí)淡薄,在茶樹種植采摘期間用藥種類及劑量不科學(xué),導(dǎo)致部分茶葉中農(nóng)藥殘留污染問(wèn)題,不但影響廣大消費(fèi)者對(duì)茶類產(chǎn)品的認(rèn)可度,更引起對(duì)茶類食品安全的關(guān)注。我國(guó)最新國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)(GB 2763-2021 和GB 2763.1-2022)規(guī)定了茶葉中71 種農(nóng)藥的最大殘留限量[1-2],歐盟規(guī)定了茶葉中502種農(nóng)藥、日本相關(guān)法規(guī)規(guī)定了230種農(nóng)藥的最大殘留限量[3],且規(guī)定茶葉中多種農(nóng)藥的最大殘留限量最小值為0.01 mg/kg[4]。因此,茶葉中農(nóng)藥殘留檢測(cè)方法的性能指標(biāo)事關(guān)農(nóng)藥殘留控制,影響我國(guó)茶葉產(chǎn)業(yè)對(duì)外貿(mào)易發(fā)展。
目前,茶葉類產(chǎn)品中農(nóng)藥殘留的分析方法主要以色譜和質(zhì)譜測(cè)定為主[5-10]。茶葉基質(zhì)復(fù)雜,增加了農(nóng)藥殘留分析難度,因此降低茶葉基質(zhì)影響,提高檢測(cè)方法的準(zhǔn)確度和靈敏度成為茶葉分析的關(guān)鍵技術(shù)。QuEChERS 法因具有通用性強(qiáng)、操作簡(jiǎn)單快速等優(yōu)點(diǎn),在農(nóng)藥殘留前處理中已被廣泛應(yīng)用。茶葉作為復(fù)雜基質(zhì)植物源性產(chǎn)品,在前處理過(guò)程中主要使用QuEChERS 法[11-13]和固相萃取法[14-16]。本研究根據(jù)GB 2763-2021 及GB 2763.1-2022 的檢測(cè)要求,通過(guò)優(yōu)化QuEChERS 前處理方法,建立了同時(shí)測(cè)定綠茶中35種常用農(nóng)藥的氣相色譜-三重四極桿質(zhì)譜法。該方法檢測(cè)靈敏度高,可實(shí)現(xiàn)茶葉中35種常用農(nóng)藥的準(zhǔn)確測(cè)定,可為茶葉類產(chǎn)品的質(zhì)量安全把控提供技術(shù)支持。
7890A-7000B 氣相色譜-三重四極桿質(zhì)譜儀(美國(guó)Agilent 公司);IKA KS260 振蕩器(德國(guó)IKA 公司);Buchi 旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(瑞士Buchi 公司);離心機(jī)(上海安亭科學(xué)儀器廠);IKA MS3 basic 渦旋混勻器(德國(guó)IKA公司)。
乙腈(色譜純,美國(guó)Tedia 公司);丙酮、正己烷(色譜純,德國(guó)Merck 公司);氯化鈉(分析純,天津市鼎盛鑫化工有限公司);十八烷基硅烷(C18)、石墨化炭黑(GCB)、N-丙基乙二胺(PSA)購(gòu)于天津博納艾杰爾股份有限公司。
35種農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)品(農(nóng)業(yè)部環(huán)境保護(hù)科研監(jiān)測(cè)所,純度均大于99%,質(zhì)量濃度均為1 000 μg/mL):具體名稱見表1,用丙酮-正己烷(3∶7,體積比)混合溶液稀釋,配制成質(zhì)量濃度為10 μg/mL的混合中間標(biāo)準(zhǔn)溶液,于-18 ℃冰箱避光、密封保存,保存期為6個(gè)月。
表1 35種化合物的儀器分析參數(shù)Table 1 Parameters for instrumental analysis of 35 compounds
標(biāo)準(zhǔn)工作溶液的配制:準(zhǔn)確移取適量混合中間標(biāo)準(zhǔn)溶液,用經(jīng)確證不含目標(biāo)農(nóng)藥的綠茶空白基質(zhì)提取液稀釋成10、20、50、100、200、500、1 000 μg/L的標(biāo)準(zhǔn)工作液,現(xiàn)配現(xiàn)用。
準(zhǔn)確稱取2.00 g(精確至0.01 g)茶葉試樣,置于50 mL 離心管中,加入15 mL 85 ℃熱水充分浸泡30 min,放涼后,加入20 mL 乙腈振蕩提取30 min,加入5 g 氯化鈉渦旋1 min,以5 000 r/min 離心5 min。移取10 mL 上清液至盛有200 mg PSA、200 mg C18、50 mg GCB 的凈化管中,渦旋30 s,過(guò)濾至雞心瓶中,濾液經(jīng)45 ℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至近干,加入1.0 mL 丙酮-正己烷(3∶7)混合溶液定容后,過(guò)0.22 μm濾膜,供上機(jī)分析。
1.4.1 色譜條件色譜柱:HP-5MS(30 m×0.25 mm×0.25 μm)彈性石英毛細(xì)管柱;載氣:高純氦氣(99.999%);碰撞氣:高純氮?dú)猓?9.999%);流速:1.1 mL/min;進(jìn)樣方式:不分流進(jìn)樣;升溫程序:50 ℃保持2 min,以25 ℃/min 程序升溫至150 ℃保持6 min,再以3 ℃/min 程序升溫至200 ℃,最后以8 ℃/min程序升溫至280 ℃保持7 min;進(jìn)樣口溫度:260 ℃;進(jìn)樣量:1.0 μL;溶劑延遲:5 min。
1.4.2 質(zhì)譜條件離子源:電子轟擊源(EI);電離能量:70 eV;離子源溫度:230 ℃;輔助加熱溫度:280 ℃;掃描方式:多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(MRM)模式。35種化合物的儀器分析參數(shù)見表1。
2.1.1 提取溶劑的優(yōu)化綠茶的沖泡建議溫度為85 ℃,為準(zhǔn)確測(cè)得人體攝入茶湯中農(nóng)藥殘留含量,本實(shí)驗(yàn)采用85 ℃熱水沖泡。在100 μg/L 的35 種農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)溶液中,加入85 ℃熱水沖泡后,采用乙腈提取并濃縮定量,測(cè)得定量后溶液與等濃度未加入熱水的標(biāo)準(zhǔn)溶液的濃度差小于10%。綜合回收率實(shí)驗(yàn)結(jié)果,說(shuō)明35種農(nóng)藥在加入85 ℃熱水后無(wú)降解。
根據(jù)茶葉中常用農(nóng)藥的化學(xué)性質(zhì),在其他條件相同的情況下,考察了甲醇、乙酸乙酯、正己烷、丙酮、乙腈、0.2%及0.5%(體積分?jǐn)?shù))甲酸-乙腈作為提取溶劑的提取效果。結(jié)果顯示,丙酮可提取多種色素,提取液呈深綠色近似黑色;甲醇提取液呈墨綠色;乙腈提取液呈綠色;對(duì)于甲酸-乙腈提取液,甲酸的加入對(duì)色素類化合物無(wú)影響,其提取液顏色較乙腈提取液無(wú)明顯變化;正己烷提取液中色素類化合物較少,呈淺綠色;乙酸乙酯提取液顏色介于乙腈和正己烷提取液顏色之間。各提取液顏色排序:丙酮>甲醇>乙腈及甲酸-乙腈>乙酸乙酯>正己烷。此外,通過(guò)添加100 μg/kg的35種農(nóng)藥對(duì)上述提取溶劑的回收率進(jìn)行考察(見表2)。結(jié)果表明,乙腈及甲酸-乙腈的回收率明顯優(yōu)于其他提取溶劑,與乙腈相比,甲酸-乙腈在提取過(guò)程中對(duì)目標(biāo)物回收率的改善不明顯,僅有5 種目標(biāo)物采用甲酸-乙腈提取的回收率略高,其他30種目標(biāo)物與采用乙腈提取的回收率相當(dāng)或略低。因此實(shí)驗(yàn)選擇乙腈為提取溶劑。
表2 提取溶劑對(duì)35種農(nóng)藥回收率的影響Table 2 Effect of extraction solvents on the recoveries of 35 pesticides
2.1.2 凈化條件的優(yōu)化茶葉中含有多種色素及堿性組分等復(fù)雜基質(zhì),樣品經(jīng)乙腈提取后提取液中含大量色素及部分脂類共提取物。實(shí)驗(yàn)選取QuEChERS 方法的常用凈化劑(PSA、C18、GCB)對(duì)樣品進(jìn)行凈化處理。
根據(jù)3 種吸附劑的性質(zhì)[17],選取同一茶葉空白樣品,按照相同實(shí)驗(yàn)過(guò)程,選取不同配比的PSA、C18和GCB 為凈化材料,以未添加凈化劑的空白組為對(duì)照,考察對(duì)同一樣品中添加相同濃度(50 μg/kg)35種農(nóng)藥的回收率差異。實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),綠茶基質(zhì)中吸附劑種類和用量均可影響35種農(nóng)藥的回收率。GCB可有效去除綠茶中色素類化合物;C18能夠吸附綠茶樣液中脂類化合物;提取液經(jīng)濃縮后,未添加C18的樣品均含可流動(dòng)油狀物,未加入3 種凈化劑的樣液濃縮后呈深綠色粘稠狀,復(fù)溶后樣液出現(xiàn)分層,導(dǎo)致目標(biāo)物的回收率較低,且污染離子源和色譜柱。經(jīng)綜合考察,選擇PSA+C18+GCB 作為凈化劑,提高了目標(biāo)分析物的回收率,減少了綠茶中脂類和色素類共提取物。為更直觀體現(xiàn)凈化后回收率的改善效果,以35種化合物經(jīng)不同凈化劑凈化后的回收率與其所測(cè)最高回收率的比值為縱坐標(biāo)作圖,對(duì)比結(jié)果見圖1。鑒于六六六、滴滴涕同分異構(gòu)體之間凈化效果的差異小于5%,其凈化效果在圖1中合并表示。
圖1 不同凈化劑對(duì)35種化合物含量的影響Fig.1 Effect of different purifying agents on the contents of 35 compounds
選取PSA、C18用量為50~400 mg,GCB 用量為25~200 mg,對(duì)凈化劑用量組合進(jìn)行了優(yōu)化。結(jié)果顯示,增加凈化劑的用量可提高目標(biāo)物的凈化效果,但當(dāng)PSA、C18的用量>300 mg,GCB用量>50 mg時(shí)甲胺磷、乙酰甲胺磷、硫丹、百菌清、氰戊菊酯、苯醚甲環(huán)唑、溴氰菊酯等化合物的回收率降低。綜合考慮,確定凈化材料用量為200 mg PSA、200 mg C18、50 mg GCB。
根據(jù)歐盟96/23/EC 要求,質(zhì)譜方法定性至少達(dá)到4個(gè)識(shí)別點(diǎn)的要求[18]。三重四極桿質(zhì)譜在MRM 模式下,1 個(gè)母離子加上2 個(gè)及以上子離子的識(shí)別點(diǎn)≥4。將質(zhì)量濃度為10 μg/mL 的35 種農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行質(zhì)譜全掃描模式采集,確定每種化合物的保留時(shí)間,并選擇豐度高、m/z大的特征離子,在MRM 模式下優(yōu)化碰撞能量,選擇1對(duì)豐度較高且基質(zhì)影響較小的離子對(duì)作為定量離子對(duì),另1對(duì)作為定性離子對(duì),優(yōu)化后的參數(shù)見表1。35種農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)溶液的總離子流圖見圖2。
圖2 35種化合物在MRM模式下的總離子流圖Fig.2 Total ion chromatogram of 35 compounds in MRM mode the number denoted was the same as those in Table 1
根據(jù)文獻(xiàn)[19-22],基質(zhì)效應(yīng)(ME)計(jì)算方法為:ME=(基質(zhì)中目標(biāo)分析物的定量離子峰面積/溶劑中目標(biāo)分析物的定量離子峰面積-1)×100%。當(dāng)|ME|≤20%,通常認(rèn)為基質(zhì)效應(yīng)較小,可不考慮基質(zhì)效應(yīng)影響;20%<|ME|≤50%,表明存在中等基質(zhì)效應(yīng);當(dāng)|ME|>50%,表明存在較強(qiáng)基質(zhì)效應(yīng),會(huì)導(dǎo)致目標(biāo)化合物定量不準(zhǔn)確[23-26]。
對(duì)比了200 μg/L 基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)溶液和溶劑標(biāo)準(zhǔn)溶液的峰面積,平行測(cè)定6 次。結(jié)果表明,35 種化合物中,大于70%的化合物表現(xiàn)為強(qiáng)基質(zhì)效應(yīng)。綜合考慮,本實(shí)驗(yàn)選用基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)工作曲線進(jìn)行定量,以降低基質(zhì)效應(yīng)的影響。
配制10、20、50、100、200、500、1 000 μg/L 系列質(zhì)量濃度的基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)溶液,在優(yōu)化的色譜及質(zhì)譜條件下進(jìn)行測(cè)定,以35種農(nóng)藥的質(zhì)量濃度(μg/L)為橫坐標(biāo),以定量離子所對(duì)應(yīng)的峰面積為縱坐標(biāo),得到各目標(biāo)物的線性方程。結(jié)果顯示,35種化合物在10~1 000 μg/L范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)(r2)大于0.99。分別以3 倍信噪比(S/N)和10 倍信噪比所對(duì)應(yīng)的質(zhì)量濃度確定檢出限(LOD)和定量下限(LOQ),得到35種化合物的LOD為1~5 μg/kg,LOQ為5~15 μg/kg(見表3)。
表3 35種化合物的檢出限、定量下限、平均回收率與相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(n=6)Table 3 LODs,LOQs,average recoveries and relative standard deviations(n = 6) of 35 compounds
(續(xù)表3)
選取經(jīng)檢測(cè)無(wú)目標(biāo)農(nóng)藥殘留的市售綠茶為空白基質(zhì),分別添加低、中、高3 個(gè)不同水平(20、40、200 μg/kg)的35種農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)溶液,進(jìn)行空白加標(biāo)實(shí)驗(yàn),每個(gè)加標(biāo)濃度平行測(cè)定6次,結(jié)果見表3。結(jié)果顯示,加標(biāo)樣品中35 種農(nóng)藥的平均回收率為70.3%~112%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為1.6%~12%,該方法的精密度和準(zhǔn)確度均符合農(nóng)藥殘留檢測(cè)要求。
根據(jù)日照產(chǎn)茶區(qū)分布特點(diǎn),選取奎山、巨峰、三莊3 個(gè)主產(chǎn)地作為研究對(duì)象,對(duì)同一種植區(qū)春、夏、秋3 季茶葉中的農(nóng)藥殘留概況進(jìn)行分析。采用本方法對(duì)上述產(chǎn)區(qū)市售30 份日照綠茶樣品(春茶12份,夏茶9份,秋茶9份)進(jìn)行檢測(cè)。由表4可見,12份春茶中巨峰、奎山兩地各有1份樣品檢出,9份夏茶中僅巨峰有1份樣品檢出,9份秋茶中僅巨峰有1份樣品檢出。
表4 日照綠茶樣品中農(nóng)藥殘留檢出概況(μg/kg)Table 4 Overview of pesticide residues in Rizhao green tea samples(μg/kg)
實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,日照綠茶中春茶和秋茶的農(nóng)藥殘留種類主要為毒死蜱、溴蟲腈、聯(lián)苯菊酯、甲氰菊酯、氯氰菊酯;夏茶的農(nóng)藥殘留種類主要為毒死蜱、溴蟲腈、聯(lián)苯菊酯、氯氰菊酯、氟氯氰菊酯,以上檢出農(nóng)藥的殘留量均未超過(guò)國(guó)家要求的最大殘留限量。
采用本方法對(duì)5份日照紅茶、1份金駿眉、1份南京綠茶、2份西湖龍井和1份鐵觀音進(jìn)行加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)(100 μg/kg),35 種農(nóng)藥的回收率為77.0%~115%,回收率符合要求,表明本方法不受上述樣品種類限制。
目前我國(guó)已發(fā)布的茶葉中農(nóng)藥殘留檢測(cè)國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)方法主要有GB 23200.13-2016[27]、GB 23200.113-2018[28]和GB/T 23204-2008[29]。GB 23200.13-2016和GB/T 23204-2008在前處理過(guò)程中均采用固相萃取柱凈化,且樣品用量大;本方法采用QuEChERS前處理方法,操作簡(jiǎn)單快速,樣品用量少、試劑消耗少,污染小。GB 23200.113-2018 雖采用QuEChERS 前處理方法,但本實(shí)驗(yàn)針對(duì)35 種綠茶種植常用農(nóng)藥的化學(xué)性質(zhì),對(duì)QuEChERS 方法中3 種凈化劑的配比進(jìn)行優(yōu)化,提高了方法的靈敏度和準(zhǔn)確性。同時(shí),前處理采用85 ℃熱水沖泡,能更準(zhǔn)確反映實(shí)際攝入的農(nóng)藥殘留量。綜上,本方法操作簡(jiǎn)單、快速、準(zhǔn)確,可作為標(biāo)準(zhǔn)方法的有效補(bǔ)充。
本文建立了綠茶中35種常用農(nóng)藥的QuEChERS/氣相色譜-三重四極桿質(zhì)譜測(cè)定方法,樣品用85 ℃熱水沖泡放涼后,采用乙腈提取,經(jīng)優(yōu)化的QuEChERS 前處理方法凈化后,采用MRM 模式進(jìn)行檢測(cè)。該方法操作簡(jiǎn)單,檢測(cè)效率高,成本較低,適用于綠茶中農(nóng)藥殘留的準(zhǔn)確定性和定量分析,為綠茶中農(nóng)藥殘留監(jiān)測(cè)提供了技術(shù)支持。