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        基于IL-6/miR-155軸探討潰結寧膏穴位敷貼對脾腎陽虛型潰瘍性結腸炎大鼠的影響

        2023-10-17 03:46:08陳凱朱瑩周牧之
        中國中醫(yī)藥信息雜志 2023年10期
        關鍵詞:模型

        陳凱,朱瑩,周牧之

        湖南中醫(yī)藥大學第一附屬醫(yī)院,湖南 長沙 410007

        潰瘍性結腸炎(ulcerative colitis,UC)主要臨床特征包括大便帶血、腹部疼痛,以及大便形狀、質地等改變。腸黏膜損傷和潰瘍形成是UC常見病理表現(xiàn),好發(fā)于直腸與乙狀結腸,也可延伸至降結腸甚至整個結腸[1]。UC在我國發(fā)病率逐年升高[2-3],常用藥物有5-氨基水楊酸、激素、生物制劑及免疫調節(jié)劑,約一半患者服藥后癥狀有效緩解,但可能導致嚴重不良反應,如嘔吐、貧血和全身水腫等。由于UC病因復雜、復發(fā)風險高,易伴發(fā)其他并發(fā)癥,已成為臨床亟需解決的難題。UC發(fā)病機制復雜,具體原因尚未完全明確。IL-6/miR-155軸在UC發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮重要作用,白細胞介素(IL)-6通過作用于下游信號因子促進信號傳導與轉錄激活因子(STAT)3磷酸化,STAT3磷酸化入核后能誘導miR-155表達,進一步調控UC炎癥反應及Th17/Threg平衡[4-6]。潰結寧膏是朱瑩教授根據(jù)多年臨床經驗所創(chuàng),課題組運用潰結寧膏穴位敷貼治療脾腎陽虛型UC臨床療效顯著[7]。前期實驗研究表明,潰結寧膏能減輕UC大鼠及細胞模型炎癥反應,降低腫瘤壞死因子(TNF)-α、IL-1等促炎因子分泌[8-9]。本實驗在前期研究基礎上,觀察潰結寧膏穴位敷貼對UC大鼠炎癥反應及Th17/Threg平衡的影響,進一步闡明其治療UC的分子機制,為臨床應用提供實驗依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 動物

        SPF級雄性SD大鼠60只,體質量180~220 g,購于湖南斯萊克景達實驗有限公司。飼養(yǎng)于湖南中醫(yī)藥大學第一附屬醫(yī)院動物房,溫度20~25 ℃,濕度40%~70%,12 h光暗循環(huán),自由攝食飲水。本實驗經湖南中醫(yī)藥大學第一附屬醫(yī)院實驗動物倫理委員會批準(ZYFY20190814-1)。

        1.2 藥物、試劑及儀器

        潰結寧膏(由炮附子、延胡索、丁香、芥子、赤芍、細辛、生姜按1∶1∶1∶1∶1∶1∶2組成)、無藥物巴布劑基質(由聚丙烯酸鈉、高嶺土、明膠、甘羥鋁、聚乙烯醇、蓖麻油、甘油組成),湖南省中醫(yī)院藥劑科提供。柳氮磺嘧啶(SASP)片,批號09190501,上海信誼天平藥業(yè)有限公司。番瀉葉,湖南然潤堂中藥有限公司。

        2,4,6-三硝基苯磺酸(TNBS,批號2297,美國Sigma公司),腺嘌呤(批號A8626-25G,美國Sigma公司),大便隱血試劑(批號C027-1-1,珠海貝索生物技術有限公司),IL-8、IL-17、IL-23 ELISA試劑盒(批號分別為I03050436、I0303471、I040347110,武漢華美生物工程有限公司),mRNA反轉錄試劑盒(批號CW2569,北京康為世紀),miRNA反轉錄試劑盒(批號CW2141,北京康為世紀),p-STAT3一抗(批號ab76315,英國Abcam),IL-6一抗(批號ab233706,英國Abcam),CD4-FITC抗體(批號11-0040-82,美國Invitrogen公司),IL-17A-PE抗體(批號12-7177-81,美國Invitrogen公司),Cell Stimulation Cocktail(Plus protein transport inhibitors)500×(批號00-4975-93,美國eBiosciences公司),人外周血淋巴細胞分離液(批號P8610,北京索萊寶公司),紅細胞裂解液(批號C3702,北京索萊寶公司),CD25-PE抗體(批號17-0390-82,美國eBiosciences公司),F(xiàn)oxp3-APC抗體(批號12-5773-80,美國eBiosciences公司),β-actin抗體(批號66009-1-Ig,美國Proteintech),HRP標記山羊抗小鼠IgG(批號SA00001-1,美國Proteintech),HRP標記山羊抗兔IgG(批號SA00001-2,美國Proteintech)。

        臺式高速冷凍離心機(型號H1650R,湖南湘儀),多功能酶標分析儀(型號MB-530,深圳匯松科技發(fā)展有限公司),全自動酶標洗板機(型號PW-812,深圳市匯松科技發(fā)展有限公司),電熱恒溫培養(yǎng)箱(型號DHP-500,北京市永光明醫(yī)療儀器有限公司),熒光定量RCP儀(型號PIKOREAL96,美國Thermo),熒光PCR板(型號SPL0960,美國Thermo),搖床(型號TS-1,江蘇其林貝爾),電泳儀(型號DYY-6C,北京六一),電泳槽(型號DYCZ-24DN,北京六一),轉膜儀(型號DYCZ-40D,北京六一),-80 ℃冰箱(型號DW-HW438,中國美菱)。

        1.3 造模

        大鼠適應性喂養(yǎng)1周,采用隨機數(shù)字表法選取12只大鼠正常喂養(yǎng),剩余48只參照課題組前期方法[10]制備脾腎陽虛型UC大鼠模型,先予腺嘌呤10 mL/kg灌胃2周,第3周起用冰番瀉葉溶液10 mL/kg灌胃,連續(xù)2周,期間自由攝食飲水,每日灌胃30 min后將冰水噴至大鼠毛發(fā),使肌肉等全身各處濕透,再用風扇吹干。第29日大鼠禁食不禁水24 h,腹腔注射0.3%戊巴比妥鈉10 mL/kg麻醉,用石蠟油潤滑聚乙烯管后插入大鼠直腸,深度約8 cm,緩慢注入5%TNBS(100 mg/kg,加50%乙醇0.25 mL),提起大鼠尾巴倒置2 min。次日開始觀察大鼠一般狀況,隨機取模型組4只、空白組1只過量麻醉處死,驗證造模效果。造模后大鼠精神萎靡,毛發(fā)枯槁,體質量降低,進食減少,明顯黏液膿血便,肉眼可見結腸組織局部潰瘍、充血、糜爛,顯微鏡下可見中性粒細胞聚集,腺體排列紊亂,結合黏膜組織缺損提示造模成功。

        1.4 分組及給藥

        將正常喂養(yǎng)的11只大鼠作為空白組,44只成模大鼠按隨機數(shù)字表法分為模型組、非穴位敷貼組、穴位敷貼組和SASP組,每組11只。取穴參考《實驗針灸學》[11],選擇“脾俞”“膈俞”“足三里”“大腸俞”“天樞”“腎俞”,模型組用無藥物巴布劑基質敷貼穴位+生理鹽水灌胃,穴位敷貼組用潰結寧膏敷貼穴位+生理鹽水灌胃,非穴位敷貼組用潰結寧膏敷貼臀部肌肉豐厚處+生理鹽水灌胃,SASP組用無藥物巴布劑基質敷貼穴位+SASP灌胃,兩側穴位交替進行,1.5 h/次,1次/d,連續(xù)14 d。

        1.5 取材

        末次干預后大鼠禁食不禁水24 h,腹腔注射3%戊巴比妥鈉10 mL/kg麻醉,腹主動脈取血,3 500 r/min離心10 min,血清保存于-20 ℃?zhèn)溆谩H⊙竺擃i處死大鼠,取距肛門6~10 cm結腸組織于多聚甲醛中固定,用于病理檢測,另取部分結腸組織于-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.6 指標檢測

        1.6.1 一般狀況及疾病活動指數(shù)評分

        觀察大鼠一般狀況(精神狀態(tài)、毛發(fā)、大小便等),干預結束后對大鼠進行疾病活動指數(shù)(DAI)評分,DAI=(體質量下降分數(shù)+大便性狀分數(shù)+便隱血分數(shù))÷3。具體評分標準見表1。

        1.6.2 結腸組織病理形態(tài)觀察及結腸黏膜損傷評分

        取病變部位結腸組織,于多聚甲醛中固定,石蠟包埋,切片,60 ℃烤片12 h,切片脫蠟至水,蘇木精染色1~10 min,伊紅染色1~5 min,脫水,烤干,封片。顯微鏡下觀察結腸組織病理變化,并進行結腸黏膜損傷指數(shù)(CMDI)評分。評分標準見表2[12]。

        表2 CMDI評分標準

        1.6.3 ELISA檢測

        按試劑盒說明書配制標準品、洗液工作液、生物素標記抗體工作液及辣根過氧化物酶標記親和素工作液。將試劑在室溫平衡30 min,設置標準孔與待測樣品孔,加樣,棄液,加生物素標記抗體工作液,棄液,加辣根過氧化物酶標記親和素工作液,棄液,甩干,加底物,避光顯色,加終止液終止反應。用酶標儀測定波長450 nm處光密度(OD值),根據(jù)樣品OD值計算血清IL-8、IL-17、IL-23含量。

        1.6.4 RT-PCR檢測

        用Trizol、異丙醇、三氯甲烷、乙醇提取結腸組織總RNA,紫光分光光度計測定波長260 nm與280 nm吸光度,計算RNA濃度和純度。配制反轉錄體系,將總RNA反轉錄為cDNA。PCR條件:95 ℃、10 min,95 ℃、15 s,60 ℃、60 s,共40個循環(huán)。引物序列見表3。以β-actin為內參,2-ΔΔCt法計算各基因相對表達量。

        表3 各基因PCR引物序列

        1.6.5 Western blot檢測

        取結腸組織剪碎,加入RIRA裂解液,生物勻質儀勻漿,冰上裂解10 min,4 ℃、12 000 r/min離心15 min,BCA法測定蛋白濃度。制備15%分離膠及4.8%濃縮膠,蛋白樣品中加入loading buffer,煮沸,置于冰盒中備用。上樣,75 V電泳130 min,300 mA恒流轉膜,用脫脂奶粉室溫封閉90 min。將膜與IL-6一抗(1∶750)、p-STAT3一抗(1∶1 000)、β-actin一抗(1∶5 000)于低溫孵育過夜。次日室溫放置30 min,加HRP-山羊抗小鼠IgG(1∶5 000)、HRP-山羊抗兔IgG(1∶6 000)孵育60 min,ECL發(fā)光液進行顯色,凝膠成像系統(tǒng)成像,Image J軟件分析蛋白相對灰度值。

        1.6.6 流式細胞術檢測

        取抗凝全血,加入淋巴細胞分離液,800×g離心30 min,吸取白膜細胞層,400×g離心5 min,用1640完全培養(yǎng)基重懸細胞備用。按1∶500稀釋Cell Stimulation Cocktail(Plus protein transport inhibitors)后加入細胞懸液中,恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)4 h。收集細胞,用1×Fixation/Permeabilization concentrate重懸細胞沉淀,避光固定破膜30 min,加入1×工作液,反復離心,PBS重懸細胞沉淀,加入CD4、IL-17A、CD25和Foxp3抗體孵育,流式細胞儀上機檢測。

        1.7 統(tǒng)計學方法

        采用Graphpad Prism 8.0軟件進行統(tǒng)計分析。計量資料以-表示,多組間比較采用單因素方差分析。P<0.05表示差異有統(tǒng)計學意義。

        2 結果

        2.1 潰結寧膏對模型大鼠一般狀況及疾病活動指數(shù)評分的影響

        干預過程中除空白組外,其余各組均有大鼠死亡,分別為模型組3只、穴位敷貼組1只、非穴位敷貼組2只、SASP組1只,死亡時間主要集中在造模后1個星期內,考慮可能為結腸穿孔所致。

        大鼠造模后精神狀態(tài)變差,攝食量減少,毛發(fā)逐漸稀薄、干枯,體質量下降,形體消瘦,弓背蜷縮,喜扎堆,大便質地稀薄,部分夾雜黏液膿血,小便清長。與模型組和非穴位敷貼組比較,穴位敷貼組和SASP組大鼠精神狀態(tài)好轉,毛發(fā)潤澤,攝食量增加,體質量上升,大便逐漸成形,黏液膿血便程度減輕。

        與空白組比較,模型組大鼠DAI評分明顯升高(P<0.05);與模型組和非穴位敷貼組比較,穴位敷貼組和SASP組大鼠DAI評分明顯降低(P<0.05)。見表4。

        表4 各組大鼠DAI評分比較(-,分)

        表4 各組大鼠DAI評分比較(-,分)

        注:與空白組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05;與非穴位敷貼組比較,△P<0.05

        DAI評分組別只數(shù)0 2.67±0.33*2.50±0.22 1.00±0.26#△0.83±0.31#△空白組模型組非穴位敷貼組穴位敷貼組SASP組6 6 6 6 6

        2.2 潰結寧膏對模型大鼠結腸組織病理形態(tài)的影響

        空白組大鼠結腸組織表面光滑,呈淡粉白色,局部未見膨隆,結腸內壁未見潰瘍、充血、水腫等表現(xiàn);顯微鏡下腺體排列整齊,無炎性細胞浸潤,未見細胞變性及壞死。模型組和非穴位敷貼組大鼠結腸長度不同程度縮短、結腸周徑不一,局部可見紅腫膨脹,部分腸段質地變硬,可見深淺不一的潰瘍,黏膜局部紅腫充血;顯微鏡下腺體排列紊亂,可見炎性細胞浸潤及細胞變性、壞死。穴位敷貼組和SASP組大鼠結腸長度有所增加,結腸黏膜充血、水腫、潰瘍明顯好轉,顯微鏡下腺體排列較前規(guī)則,細胞變性、壞死明顯好轉。見圖1。

        與空白組比較,模型組大鼠CMDI評分明顯升高(P<0.05);與模型組和非穴位敷貼組比較,穴位敷貼組和SASP組大鼠CMDI評分明顯降低(P<0.05)。見表5。

        表5 各組大鼠CMDI評分比較(-,分)

        表5 各組大鼠CMDI評分比較(-,分)

        注:與空白組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05;與非穴位敷貼組比較,△P<0.05

        CDMI評分0 2.83±0.31*2.67±0.21 1.33±0.22#△1.17±0.17#△組別空白組模型組非穴位敷貼組穴位敷貼組SASP組只數(shù)6 6 6 6 6

        2.3 潰結寧膏對模型大鼠血清白細胞介素-8、白細胞介素-17、白細胞介素-23含量的影響

        與空白組比較,模型組大鼠血清IL-8、IL-17、IL-23含量明顯增加(P<0.05);與模型組和非穴位敷貼組比較,穴位敷貼組和SASP組大鼠血清IL-8、IL-17、IL-23含量明顯減少(P<0.05)。見表6。

        表6 各組大鼠血清IL-8、IL-17、IL-23含量比較(-,pg/mL)

        表6 各組大鼠血清IL-8、IL-17、IL-23含量比較(-,pg/mL)

        注:與空白組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05;與非穴位敷貼組比較,△P<0.05

        只數(shù)IL-23組別IL-8IL-17 0.88±0.02 3.93±0.08*3.74±0.26 1.39±0.12#△1.21±0.09#△空白組模型組非穴位敷貼組穴位敷貼組SASP組4 4 4 4 4 24.50±0.58 63.09±2.02*58.35±1.06 31.21±0.42#△28.43±2.43#△605.62±3.65 997.14±14.60*979.33±6.73 656.92±19.22#△645.71±16.22#△

        2.4 潰結寧膏對模型大鼠結腸組織白細胞介素-6、白細胞介素-17、白細胞介素-23、miR-155、信號傳導與轉錄激活因子3 mRNA表達的影響

        與空白組比較,模型組大鼠結腸組織IL-6、IL-17、IL-23、miR-155、STAT3 mRNA表達明顯升高(P<0.05);與模型組和非穴位敷貼組比較,穴位敷貼組和SASP組大鼠結腸組織IL-6、IL-17、IL-23、miR-155、STAT3 mRNA表達明顯降低(P<0.05)。見表7。

        表7 各組大鼠結腸組織IL-6、IL-17、IL-23、miR-155、STAT3 mRNA表達比較(-)

        表7 各組大鼠結腸組織IL-6、IL-17、IL-23、miR-155、STAT3 mRNA表達比較(-)

        注:與空白組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05;與非穴位敷貼組比較,△P<0.05

        STAT3 0.99±0.15 4.73±0.52*4.08±0.33 1.45±0.12#△1.32±0.31#△組別空白組模型組非穴位敷貼組穴位敷貼組SASP組只數(shù)5 5 5 5 5 IL-6 0.47±0.08 2.45±0.15*2.00±0.14 0.88±0.18#△0.88±0.16#△IL-17 0.76±0.06 3.25±0.28*2.85±0.21 1.09±0.11#△1.11±0.07#△IL-23 0.66±0.10 3.85±0.18*3.65±0.19 1.15±0.15#△1.17±0.06#△miR-155 0.48±0.06 2.50±0.18*2.23±0.22 0.88±0.09#△0.93±0.12#△

        2.5 潰結寧膏對模型大鼠結腸組織白細胞介素-6、磷酸化信號傳導與轉錄激活因子3蛋白表達的影響

        與正常組比較,模型組大鼠結腸組織IL-6、p-STAT3蛋白表達明顯升高(P<0.05);與模型組和非穴位敷貼組比較,穴位敷貼組和SASP組大鼠結腸組織IL-6、p-STAT3蛋白表達明顯降低(P<0.05)。見圖2、表8。

        圖2 各組大鼠結腸組織IL-6、p-STAT3蛋白免疫印跡

        表8 各組大鼠結腸組織IL-6、p-STAT3蛋白表達比較(-)

        表8 各組大鼠結腸組織IL-6、p-STAT3蛋白表達比較(-)

        注:與空白組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05;與非穴位敷貼組比較,△P<0.05

        p-STAT3組別只數(shù)IL-6 0.15±0.02 0.55±0.04*0.53±0.03 0.25±0.03#△0.25±0.02#△空白組模型組非穴位敷貼組穴位敷貼組SASP組5 5 5 5 5 0.17±0.02 0.56±0.04*0.53±0.03 0.24±0.03#△0.25±0.01#△

        2.6 潰結寧膏對模型大鼠血液Th17、Treg細胞比例的影響

        與空白組比較,模型組大鼠血液Th17細胞比例升高,Treg細胞比例降低(P<0.05),Th17/Treg細胞比例明顯升高(P<0.05);與模型組和非穴位敷貼組比較,穴位敷貼組和SASP組大鼠血液Th17細胞比例降低,Treg細胞比例升高(P<0.05),Th17/Treg細胞比例降低(P<0.05)。見表9。

        表9 各組大鼠血液Th17、Treg細胞比例比較(-)

        表9 各組大鼠血液Th17、Treg細胞比例比較(-)

        注:與空白組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05;與非穴位敷貼組比較,△P<0.05

        組別空白組模型組非穴位敷貼組穴位敷貼組SASP組Th17/Treg 0.11±0.02 7.82±1.01*4.42±0.40#0.18±0.04#△0.22±0.03#△只數(shù)5 5 5 5 5 Th17/%1.79±0.31 13.85±1.01*12.37±0.67 2.27±0.37#△2.65±0.33#△Treg/%15.58±0.73 1.87±0.21*2.86±0.22 12.93±0.90#△12.58±1.02#△

        3 討論

        根據(jù)UC臨床癥狀,可將其歸屬于中醫(yī)學“泄瀉”“痢疾”等范疇,主要有濕熱下注、脾腎陽虛、肝郁脾虛等類型[13]。本研究用SD大鼠制備動物模型,腺嘌呤灌胃2周后改為番瀉葉灌胃。腺嘌呤具有腎毒性,常作為腎陽虛證的造模藥物。番瀉葉苦寒,傷脾腎之陽氣,在灌胃同時進行環(huán)境干預,進一步損傷機體脾腎陽氣,最后以TNBS和乙醇復合物灌腸制備脾腎陽虛型UC模型。該病證結合模型經前期研究證實可靠[10]。本研究發(fā)現(xiàn),大鼠造模后出現(xiàn)活動遲緩、毛發(fā)枯槁、大便溏瀉、便中帶血等表現(xiàn),結合腸道黏膜情況,提示造模成功。通過潰結寧膏穴位敷貼干預,能夠有效改善模型大鼠一般狀況。

        UC發(fā)病機制復雜,主要與遺傳、環(huán)境、菌群失調和免疫功能障礙相關。腸道炎癥嚴重程度與促炎因子表達密切相關[14-15]。IL-6是由活化的免疫細胞產生的重要促炎因子,越來越多證據(jù)表明,IL-6水平能影響UC病情發(fā)展,改變疾病結局與預后。采用IL-6拮抗劑托珠單抗能減輕患者癥狀,緩解機體炎癥反應[16-17]。IL-6能與其受體結合形成復合物,激活信號轉導β受體gp130和細胞內信號級聯(lián)通路,其中最重要的是JAK/STAT通路。gp130相關的Janus激酶(JAK)特別是JAK1在配體結合后被激活,從而使STAT3磷酸化入核,靶向miR-155轉錄。目前染色質免疫共沉淀已證實STAT3能夠直接與miR-155位點結合,從而調節(jié)IL-6、IL-17、IL-23等炎癥因子分泌。相反,miR-155通過JAK/STAT通路調節(jié)UC Th17/Treg平衡與炎癥反應[5,18-19]。研究表明,IL-6/STAT3信號通路具有調節(jié)T細胞分化、免疫、腸道炎癥的作用,阻斷STAT3可調節(jié)機體免疫反應,緩解腸道炎癥[20-21]。miR-155是具有不同功能的微小RNA,參與造血、炎癥和免疫反應。炎癥因子及Toll樣受體能誘導miR-155表達,UC病變結腸組織miR-155表達升高,采用miR-155拮抗劑能降低其表達,減少炎癥因子分泌,改善UC癥狀及體征[22-23]。以上研究表明,IL-6/miR-155軸在UC發(fā)展中扮演重要角色。本實驗中模型大鼠血清IL-6、IL-8、IL-17、IL-23含量增加,結腸組織IL-6/miR-155軸關鍵因子IL-6、STAT3、miR-155表達升高,潰結寧膏干預能減少模型大鼠血清IL-6、IL-8、IL-17、IL-23含量,抑制IL-6/miR-155軸相關因子表達,調節(jié)Th17/Treg平衡。

        穴位敷貼是常用醫(yī)外治法,具有療效顯著、不良反應少、使用方便等特點,在臨床廣泛應用。在中西藥內服基礎上加用穴位敷貼能提高UC治療效果,減輕藥物不良反應,臨床取穴主要為脾俞、腎俞、大腸俞、神闕等[24-25]。潰結寧膏依據(jù)臟腑經絡理論選擇穴位,采用藥物外用刺激穴位,進一步通過經絡將藥效輸送至相應部位,從而溫補脾腎、調節(jié)氣血。

        綜上,潰結寧膏可降低脾腎陽虛型UC大鼠DAI評分和CMDI評分,修復結腸組織損傷,其機制與減少炎癥因子分泌,抑制IL-6/miR-155軸相關因子IL-6、p-STAT3、miR-155表達,調節(jié)Th17/Treg平衡有關。

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