陳輝,趙春水,張春偉,劉欣
缺血性腦梗死(ischemic cerebral infarction,ICI)是常見的腦血管疾病,致死率、病死率均較高,且發(fā)病率逐漸升高[1]。目前超早期溶栓是治療ICI的最佳方式,但其受治療時間窗限制,且易并發(fā)腦出血,臨床應(yīng)用受到限制[2]。因此,探尋更為有效的ICI治療方式備受關(guān)注,而基因治療被認(rèn)為是該病有希望的治療途徑之一。ICI的治療原則在于保護(hù)缺血半暗帶神經(jīng)細(xì)胞,減少其凋亡,以盡早恢復(fù)缺血區(qū)域供血,挽救瀕死腦組織,故基因抗凋亡成為ICI實(shí)驗(yàn)研究熱點(diǎn)之一[3]。微RNA(miRNA/miR)是由18~25個核苷酸構(gòu)成的內(nèi)源性非編碼RNA,其不編碼蛋白質(zhì),通過調(diào)控基因轉(zhuǎn)錄后水平參與蛋白表達(dá),從而促進(jìn)mRNA降解或抑制蛋白翻譯過程。目前已經(jīng)發(fā)現(xiàn)miRNA在多種中樞神經(jīng)系統(tǒng)疾病如ICI中發(fā)揮著重要作用[4]。有學(xué)者指出,miR-24在急性腦梗死病人中低表達(dá),且可作為該病進(jìn)展的生物標(biāo)志物,為ICI基因治療提供了思路[5]。2020年1月至2022年1月,本研究通過建立ICI大鼠模型,分析miR-24過表達(dá)對其腦保護(hù)作用及對神經(jīng)細(xì)胞凋亡的影響,現(xiàn)報告如下。
1.1 材料
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動物 45只SPF級SD雄性大鼠,6周齡,體質(zhì)量(200±10)g,購自北京科宇動物養(yǎng)殖中心,動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(京)2018-0010,動物使用許可證號:SYXK(豫)2020-0002。自由進(jìn)食、飲水,溫度22~26 ℃,12 h/12 h明暗交替,適應(yīng)性飼養(yǎng)1周。本研究符合一般動物實(shí)驗(yàn)倫理學(xué)原則。
1.1.2 主要試劑和儀器 含有miR-24激動劑miR-24 agomir、miR-24抑制劑miR-24 antagomir、陰性對照(negative control,NC)序列的pcDNA 3.0質(zhì)粒(蘇州吉瑪基因股份有限公司);SYBR Green熒光定量染料法試劑盒(美國Thermo Fisher Scientific公司);2% TTC染色液(上海信帆生物科技有限公司);兔抗鼠神經(jīng)元核抗原(neuronal nuclei antigen,NeuN)、B細(xì)胞淋巴瘤-2(Bcl-2)、Bcl-2相關(guān)X蛋白(Bax)一抗(美國Abcam公司)。
StepOne Puls實(shí)時熒光定量逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng)(qRT-PCR)儀(美國Applied Biosystems公司);Synergy-HD顯微鏡(日本Toshiba公司);Mini Protean 3 Cell小型垂直電泳(美國伯樂公司)。
1.2 方法
1.2.1 分組及立體定向注射 45只大鼠以隨機(jī)數(shù)字表法分為健康組(8只)、腦梗死組(9只)、腦梗死過表達(dá)組(9只)、腦梗死低表達(dá)組(9只)、腦梗死NC組(10只)。選取接近腦缺血半暗帶皮質(zhì)位置、距離腦梗死內(nèi)緣0.5~1.0 mm處注射。戊巴比妥鈉腹腔注射麻醉,將其固定于立體定向儀上,消毒腦部頂部皮膚并清除毛發(fā),在兩耳中點(diǎn)向后3 cm切口,逐層分離皮下組織,暴露前囟、矢狀縫、右側(cè)顱骨表面,選取兩個注射點(diǎn),注射點(diǎn)1:前囟前1.7 mm,矢狀縫右側(cè)3.8 mm,深2.8 mm。注射點(diǎn)2:前囟后3.3 mm,矢狀縫右側(cè)3.8 mm,深2.3 mm。用胰島素針吸取腺病毒,在腦梗死過表達(dá)組、腦梗死低表達(dá)組、腦梗死NC組兩個注射點(diǎn)分別注射miR-24 agomir、miR-24 antagomir和miR-24陰性對照序列,注射速度1 μL/min,總量10 μL。注射完成后撤出針頭,采用骨蠟將顱骨孔道封閉,縫合頭皮。健康組與腦梗死組同法、同位置、同量注射生理鹽水。
1.2.2 模型建立[6]立體定向注射后24 h采用改良Longa線栓法建立ICI模型。戊巴比妥鈉腹腔注射麻醉,鈍性分離右側(cè)頸部肌群,分離、結(jié)扎右頸總動脈、頸外動脈與分支。距離頸總動脈1 cm位置采用1 mL注射液針頭將右頸總動脈上壁分離刺破,將尼龍線從頸總動脈插入內(nèi)動脈,感受到阻力停止,深度18~20 mm,線栓即到達(dá)并阻塞大腦中動脈開口處,扎緊動脈殘端,常規(guī)縫合、消毒。健康組將阻塞線插入頸內(nèi)動脈深度約5 mm,其余步驟同上。大鼠清醒后單籠飼養(yǎng),采用Zea-longa神經(jīng)功能評價方法評價神經(jīng)功能,評分范圍為0~4分,1、2、3分提示建模成功,0、4分剔除。最終各組均納入8只。建模成功后1、3 d采用Zea-longa神經(jīng)功能評價方法評價大鼠神經(jīng)功能。
1.2.3 組織取材 神經(jīng)功能評價完成后,戊巴比妥鈉腹腔注射麻醉,剪開胸廓,鑷子輕固定心臟,輸液針頭插進(jìn)左心室,剪開右心房,迅速推注多聚甲醛至大鼠右心房流出無色液體。脫頸處死,剝離顱骨,將腦組織迅速取出,清除血污,4只置于冰上用于TTC染色;4只取腦組織中動脈供血區(qū)域,分成2份,1份保存于液氮中,1份固定于4%多聚甲醛中。
1.2.4 qRT-PCR檢測腦組織miR-24 mRNA表達(dá)取液氮保存腦組織,轉(zhuǎn)錄得互補(bǔ)DNA(cDNA),鑒定后試劑盒說明書要求設(shè)定反應(yīng)體系(總反應(yīng)體系20 μL:SYBR Green Mix 11 μL,正、反向引物各1 μL,DNA模板1.0 μL,雙蒸水7.0 μL)及反應(yīng)條件(95 ℃35 s,60 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s),重復(fù)40次,72 ℃延伸4 min。以U6為內(nèi)參基因,2-ΔΔCt法計算。實(shí)驗(yàn)所用引物:miR-24正向:5′-TGACGCTTACGTGAACTCCACCAC-3′,反向:5′-GTACCACGCTGCACGGACGTGCAC-3′;U6正向:5′-GTGCACGCACGTGTGTCCAACCAC-3′,反向:5′-GTGCACCTACCACGCACGTGCTGC-3′。所有實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次取平均值。
1.2.5 TTC染色法檢測腦梗死體積 取冰上保存腦組織,-20 ℃中存放30 min取出,沿冠狀面從前腦額部向后連續(xù)切成2 mm薄片,迅速置入磷酸緩沖鹽溶液(PBS)溶液中(含2% TTC染色液),37 ℃避光孵育30 min,每5分鐘輕晃1次容器,4%多聚甲醛固定12 h,取出后PBS充分洗滌,拍照后經(jīng)Image Pro Plus 6.0分析圖像。正常腦組織為鮮紅色,梗死灶為蒼白色。測量每片梗死面積、總面積,梗死體積=層厚×梗死面積乘積,總梗死體積為各層梗死體積之和。
1.2.6 免疫組織化學(xué)染色檢測腦皮質(zhì)NeuN表達(dá)取4%多聚甲醛固定的腦組織,病理切片機(jī)切成厚度5 μm切片;二甲苯Ⅰ、Ⅱ溶液中脫蠟10 min;3%H2O2溶液溫箱中孵育25 min使內(nèi)源性酶失活,PBS緩沖液沖洗;常溫孵育微波修復(fù)抗原,冷卻后5%胎牛血清封閉,加入兔抗鼠NeuN一抗(1∶400),4 ℃孵育過夜;PBS溶液搖床洗滌切片,加入辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗(1∶800),常溫孵育60 min;PBS洗滌,滴加DAB顯色液,乙醇脫水干燥,中性樹膠封片。光學(xué)顯微鏡下隨機(jī)選取5個不相鄰切片觀察、計數(shù)缺血半暗帶被染成棕褐色的神經(jīng)元數(shù)量,Image J2x軟件分析。
1.2.7 蛋白質(zhì)印跡法檢測腦組織Bcl-2、Bax蛋白表達(dá) 取40 mg液氮保存腦組織,眼科剪剪碎,勻漿后移至離心管,RIPA裂解液提取蛋白,BCA試劑盒定量。取50 μg樣本與上樣緩沖液按比例混合,沸水浴5 min使蛋白變性,離心取上清,恒壓電泳后濕轉(zhuǎn)至膜上,封閉液封閉2 h,加入兔抗大鼠Bcl-2、Bax一抗(1∶400),4 ℃搖床孵育過夜,等滲緩沖鹽溶液(TBST)洗膜,加入山羊抗兔IgG二抗(1∶1 000),室溫孵育120 min,TBST洗膜,電化學(xué)發(fā)光法(ECL)顯色劑顯色、曝光,以Bcl-2、Bax/內(nèi)參甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)灰度值表示蛋白相對表達(dá)量,凝膠成像系統(tǒng)分析結(jié)果。重復(fù)3次取均值。
1.3 統(tǒng)計學(xué)方法 采用軟件SPSS 19.0進(jìn)行數(shù)據(jù)的統(tǒng)計及分析,以表示計量資料,組內(nèi)比較采用配對t檢驗(yàn),組間多樣本資料的檢驗(yàn)方式為單因素方差分析,再以LSD-t行兩兩比較。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 神經(jīng)功能評價 與腦梗死組比較,建模后1、3 d腦梗死過表達(dá)組Zea-longa神經(jīng)功能評分降低,腦梗死低表達(dá)組升高(P<0.05);腦梗死組、腦梗死NC組Zea-longa神經(jīng)功能評分比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);腦梗死組、腦梗死過表達(dá)組、腦梗死低表達(dá)組、腦梗死NC組建模后3 d Zea-longa神經(jīng)功能評分均低于建模后1 d(P<0.05)。見表1。
表1 各組腦梗死大鼠神經(jīng)功能評分比較/(分,)
表1 各組腦梗死大鼠神經(jīng)功能評分比較/(分,)
注:①與腦梗死組比較,P<0.05。②與腦梗死過表達(dá)組比較,P<0.05。③與腦梗死低表達(dá)組比較,P<0.05。④與同組建模后1 d比較,P<0.05。
建模后3 d 1.72±0.19④0.82±0.09①④2.36±0.21①②④1.65±0.17①②③④108.97<0.001組別腦梗死組腦梗死過表達(dá)組腦梗死低表達(dá)組腦梗死NC組F值P值鼠數(shù)8 8 8 8建模后1 d 2.06±0.25 0.98±0.11①2.71±0.24①②1.94±0.21①②③92.43<0.001
2.2 腦組織miR-24表達(dá) 健康組、腦梗死組、腦梗死過表達(dá)組、腦梗死低表達(dá)組、腦梗死NC組腦組織miR-24 mRNA相對表達(dá)量分別為0.56±0.12、0.21±0.03、1.38±0.26、0.06±0.01、0.22±0.04(F=133.94,P<0.001);與健康組比較,腦梗死組腦組織miR-24 mRNA表達(dá)降低(LSD-t=8.00,P<0.001);與腦梗死組比較,腦梗死過表達(dá)組腦組織miR-24 mRNA表達(dá)升高(LSD-t=12.64,P<0.001),腦梗死低表達(dá)組miR-24 mRNA表達(dá)降低(LSD-t=13.42,P<0.001);腦梗死組、腦梗死NC組miR-24 mRNA表達(dá)比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(LSD-t=0.57,P=0.581)。
2.3 腦梗死體積 腦梗死組、腦梗死過表達(dá)組、腦梗死低表達(dá)組、腦梗死NC組腦梗死體積分別為(40.31±5.30)mm3、(21.25±4.93)mm3、(50.56±6.14)mm3、(41.04±4.62)mm3(F=43.32,P<0.001);與腦梗死組比較,腦梗死過表達(dá)組腦梗死體積縮?。↙SD-t=5.89,P<0.001),腦梗死低表達(dá)組腦梗死體積增大(LSD-t=2.83,P=0.022);腦梗死組、腦梗死NC組腦梗死統(tǒng)計比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(LSD-t=0.23,P=0.822)。
2.4 腦梗死皮質(zhì)區(qū)存活神經(jīng)元密度 健康組、腦梗死組、腦梗死過表達(dá)組、腦梗死低表達(dá)組、腦梗死NC組腦梗死皮質(zhì)區(qū)NeuN陽性表達(dá)神經(jīng)元數(shù)目分別為(501.00±63.71)個/視野、(292.20±35.60)個/視野、(385.20±45.13)個/視野、(154.40±17.91)個/視野、(285.80±32.59)個/視野(F=75.82,P<0.001);與健康組比較,腦梗死組減少(LSD-t=5.61,P=0.001);與腦梗死組比較,腦梗死過表達(dá)組增加(LSD-t=3.62,P=0.007),腦梗死低表達(dá)組減少(LSD-t=7.73,P<0.001);腦梗死組、腦梗死NC組比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(LSD-t=0.30,P=0.774)。
2.5 腦組織Bcl-2、Bax蛋白表達(dá) 與健康組比較,腦梗死組腦組織Bcl-2蛋白表達(dá)降低,Bax蛋白表達(dá)升高(P<0.05);與腦梗死組比較,腦梗死過表達(dá)組腦組織Bcl-2蛋白表達(dá)升高,Bax蛋白表達(dá)降低,腦梗死低表達(dá)組Bcl-2蛋白表達(dá)降低,Bax蛋白表達(dá)升高(P<0.05);腦梗死組、腦梗死NC組腦組織Bcl-2、Bax蛋白表達(dá)比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見圖1,表2。
圖1 蛋白質(zhì)印跡法檢測各組大鼠腦組織Bcl-2、Bax蛋白表達(dá)
表2 各組大鼠腦組織Bcl-2、Bax蛋白表達(dá)比較/
表2 各組大鼠腦組織Bcl-2、Bax蛋白表達(dá)比較/
注:Bcl-2為B細(xì)胞淋巴瘤-2,Bax為Bcl-2相關(guān)X蛋白。①與健康組比較,P<0.05。②與腦梗死組比較,P<0.05。③與腦梗死過表達(dá)組比較,P<0.05。④與腦梗死低表達(dá)組比較,P<0.05。
Bax 0.10±0.01 0.52±0.06①0.36±0.04①②0.69±0.07①②③0.50±0.07①②③④64.34<0.001組別健康組腦梗死組腦梗死過表達(dá)組腦梗死低表達(dá)組腦梗死NC組F值P值鼠數(shù)4 4 4 4 4 Bcl-2 0.74±0.08 0.13±0.02①0.54±0.07①②0.05±0.01①②③0.14±0.03①②③④144.17<0.001
ICI是由腦供血障礙引起的一種以嚴(yán)重意識障礙、感覺和運(yùn)動功能障礙為主要特征的神經(jīng)退行性疾病。研究表明,年齡、高血壓、高脂血癥、長期失眠、不良生活習(xí)慣、遺傳等均是ICI發(fā)生的危險因素[7-8]。越來越多的報道指出,miRNAs與神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育及神經(jīng)功能關(guān)系密切,在大腦特異性表達(dá)功能的調(diào)節(jié)中發(fā)揮重要作用,為ICI的基因治療提供了新的可能[9-11]。本課題組選擇與血脂代謝、高血壓、血管內(nèi)皮細(xì)胞、血管炎癥反應(yīng)均有明顯關(guān)聯(lián)的miR-24作為本研究的重點(diǎn)。
ICI發(fā)生后,在正常腦組織與缺血中心不可逆壞死區(qū)域之間,存在處于低灌注狀態(tài)、可觀察到典型細(xì)胞凋亡特征的缺血半暗帶。細(xì)胞過度凋亡是DNA損傷后細(xì)胞程序化死亡的晚期病理現(xiàn)象,隨著缺血半暗帶的縮小,神經(jīng)細(xì)胞遲發(fā)性死亡及其所致的不可逆性損傷病灶持續(xù)擴(kuò)大,推測主要是通過細(xì)胞凋亡來實(shí)現(xiàn)的,且可能對最終腦梗死體積具有決定性作用。本研究結(jié)果顯示,miR-24過表達(dá)可降低Zea-longa神經(jīng)功能評分,縮小腦梗死體積,增加梗死皮質(zhì)區(qū)NeuN陽性表達(dá)神經(jīng)元數(shù)目,miR-24低表達(dá)則作用相反,提示miR-24對ICI大鼠具有腦保護(hù)及抗神經(jīng)元凋亡作用。miR-24廣泛表達(dá)于全身血管組織及心、肺、腦、肝等器官中,參與調(diào)控細(xì)胞增殖及凋亡,炎癥性疾病及腫瘤發(fā)生等過程。Sun等[12]研究顯示,缺氧將抑制SHR-SY5Y細(xì)胞中miR-24表達(dá),采用miR-24模擬物干預(yù)后在缺氧條件下可抑制細(xì)胞凋亡,誘導(dǎo)細(xì)胞周期及細(xì)胞增殖。此外,Jiang等[13]研究發(fā)現(xiàn),miR-24可降低腦梗死大鼠血清血脂水平及腦梗死面積百分比,抑制腦組織細(xì)胞凋亡。結(jié)合本研究推測,miR-24在神經(jīng)元細(xì)胞凋亡中起關(guān)鍵作用,且是缺血性腦病的潛在治療靶標(biāo)。
既往報道顯示,腦梗死后神經(jīng)元凋亡的主要途徑是線粒體損傷介導(dǎo)的細(xì)胞凋亡信號傳導(dǎo)[14-15]。Bcl-2、Bax分別是Bcl-2基因家族最重要的凋亡抑制、凋亡誘導(dǎo)基因。Bcl-2與Bax可形成異源二聚體,減少或阻斷釋放線粒體細(xì)胞色素C,從而抑制下游的凋亡級聯(lián)反應(yīng)。當(dāng)Bcl-2高表達(dá)時,Bax二聚體解離為穩(wěn)定性更強(qiáng)的Bcl-2/Bax復(fù)合物,從而延長細(xì)胞生存周期。當(dāng)Bax高表達(dá)時,Bax二聚體數(shù)量明顯增加,刺激細(xì)胞凋亡。Liu等[16]研究發(fā)現(xiàn),急性腦梗死外周血中Bax高于健康受試者,而Bcl-2低于健康受試者,經(jīng)溶栓治療后Bax降低,而Bcl-2升高,且與梗死面積密切相關(guān),提示兩者參與該病發(fā)生、發(fā)展。本研究結(jié)果顯示,miR-24過表達(dá)可提高腦組織Bcl-2蛋白表達(dá)量,減少Bax蛋白表達(dá),miR-24低表達(dá)則相反,提示miR-24過表達(dá)對ICI的治療作用可能與調(diào)節(jié)腦組織Bcl-2、Bax蛋白表達(dá)有關(guān)。
綜上所述,miR-24過表達(dá)可改善ICI大鼠神經(jīng)功能,縮小腦梗死體積,減少神經(jīng)元凋亡,可能通過調(diào)節(jié)腦組織Bcl-2、Bax蛋白表達(dá)來實(shí)現(xiàn)。然而,miR-24生理功能是否受細(xì)胞中其他信號轉(zhuǎn)導(dǎo)分子的調(diào)控,以及其對ICI的治療作用是否受劑量影響等,仍有待進(jìn)一步研究。