陳娜,張肖靜,張楠,馬冰冰,張涵,楊浩潔,張宏忠
(鄭州輕工業(yè)大學(xué)材料與化學(xué)工程學(xué)院,環(huán)境污染治理與生態(tài)修復(fù)河南省協(xié)同創(chuàng)新中心,河南 鄭州 450001)
目前脫氮仍是污水處理領(lǐng)域的研究重點(diǎn),特別是低碳氮比(C/N)條件下的高效脫氮問題仍亟待解決。傳統(tǒng)的硝化反硝化工藝因受碳源不足的影響,脫氮效率嚴(yán)重下降[1]。自養(yǎng)脫氮技術(shù)作為一種新型脫氮技術(shù),可在低氧環(huán)境和無需有機(jī)碳源的條件下,實現(xiàn)脫氮[2]。據(jù)不完全統(tǒng)計,我國大約有65%以上的污水處理廠存在進(jìn)水碳源不足的現(xiàn)象,針對于此,基于厭氧氨氧化的自養(yǎng)脫氮技術(shù)表現(xiàn)出明顯優(yōu)勢[3]。由于自養(yǎng)脫氮系統(tǒng)中缺乏有機(jī)質(zhì),且系統(tǒng)污泥齡較長,因此系統(tǒng)中在伴隨大量微生物凋亡釋放出原生質(zhì)時,易誘導(dǎo)內(nèi)源反硝化的產(chǎn)生;另一方面在厭氧或缺氧條件下,部分微生物能夠吸收揮發(fā)性脂肪酸將其轉(zhuǎn)化為內(nèi)部儲能物質(zhì),外部碳源不足時可分解胞內(nèi)聚合物進(jìn)行內(nèi)源反硝化[4-7]。因此,本研究建立了亞硝化-混合自養(yǎng)脫氮工藝(厭氧氨氧化和內(nèi)源反硝化),用于處理低C/N 廢水。據(jù)報道,亞硝化菌、反硝化菌及厭氧氨氧化菌均具有群體感應(yīng)性能[8-10],因此,該工藝極有可能受到群體感應(yīng)的影響。
群體感應(yīng)是微生物間的通信機(jī)制,通過釋放信號分子調(diào)控微生物的基因表達(dá)、胞外聚合物(extracellular polymeric substance,EPS)的 分 泌、生物膜的形成和蛋白酶的合成等[11]。群體淬滅則是群體感應(yīng)的反過程。群體感應(yīng)淬滅酶可以分解微生物之間用于交流的信號分子,從而使群體感應(yīng)減弱或失效。目前研究較多的淬滅酶主要是?;呓z氨酸內(nèi)酯(acyl homoserine lactone,AHLs)介導(dǎo)的群體感應(yīng)淬滅酶,包括AHLs-內(nèi)酯酶、AHLs-?;D(zhuǎn)移酶以及AHLs-氧化還原酶。2009 年,Yeon 等[12]首次將酰基轉(zhuǎn)移酶應(yīng)用于污水深度處理的膜生物反應(yīng)器(membrane bioreactor,MBR)中,發(fā)現(xiàn)AHL-酰基轉(zhuǎn)移酶能使AHLs類信號分子淬滅,從而防止生物膜的產(chǎn)生,減緩膜污染。隨后,Kim 等[13]通過壓力作用直接將?;D(zhuǎn)移酶固定在膜組件上,發(fā)現(xiàn)能夠顯著抑制生物膜生長,有效緩解了膜堵塞現(xiàn)象。在此背景下,相關(guān)研究也不斷拓寬,如崔雪燕[9]通過研究?;D(zhuǎn)移酶對菌株反硝化的影響,發(fā)現(xiàn)20mg/L 的淬滅酶對菌株生長并未造成影響,但對反硝化過程具有明顯的促進(jìn)作用。但這類研究大多關(guān)注微生物菌株的變化或者膜污染控制方面,未對反應(yīng)系統(tǒng)的脫氮性能變化進(jìn)行深入探究。
因此,本文以亞硝化-混合自養(yǎng)脫氮系統(tǒng)為研究對象,跟蹤分析群體感應(yīng)淬滅酶-AHLs ?;D(zhuǎn)移酶對反應(yīng)體系脫氮性能、EPS、溶解性微生物產(chǎn)物(soluble microbial products,SMP)的分泌、關(guān)鍵酶活和微生物群落的影響,探究淬滅酶對亞硝化-混合自養(yǎng)脫氮工藝的調(diào)控作用,以期為低C/N廢水的高效低耗處理提供理論支持,并為生物脫氮處理技術(shù)提供新的探索途徑。
本研究接種污泥采用培養(yǎng)良好的MBR 反應(yīng)器中的自養(yǎng)脫氮活性污泥。該MBR 已經(jīng)在實驗室運(yùn)行兩年以上,在進(jìn)行本文實驗之前,MBR 的水力停留時間為18h,除了每天取樣帶走的泥量,沒有額外排泥,膜組件也保證了所有污泥被截留在反應(yīng)器中。因此,該MBR 中存在大量死亡微生物殘體釋放的SMP,進(jìn)而為內(nèi)源反硝化提供了碳源[14]。該反應(yīng)器中氨氮的氧化主要以亞硝化為主,總氮去除以亞硝化-內(nèi)源反硝化為主,同時含有微量的厭氧氨氧化過程,但并未檢測到厭氧氨氧化菌。接種污泥的總氮去除負(fù)荷約為0.2kg/(m3·d),混合液懸浮固體(mixed liquor suspended solids,MLSS)的質(zhì)量濃度為10g/L。
將接種污泥混勻后等分至2個血清瓶中,分別命名為R1 和R2,R1 作為空白對照不加淬滅酶,R2中加入2μmol/L的淬滅酶,其他運(yùn)行條件完全相同。兩個反應(yīng)器置于搖床,每天于150r/min條件下避光反應(yīng)18h,整個實驗運(yùn)行30d。每個周期設(shè)置如下:進(jìn)水5min,反應(yīng)18h,靜置0.5h,換水5min,換水比控制在70%,剩余時間靜置。具體運(yùn)行參數(shù)見表1。
表1 各反應(yīng)器運(yùn)行條件和平均進(jìn)水水質(zhì)
淬滅酶為酰基轉(zhuǎn)移酶Ⅰ(C30H34Cl2N4O),酶活力為500~1500U/mg,美國Sigma 公司產(chǎn),淬滅酶在投加時先溶于甲醇中配成濃度為1g/L 的儲備溶液,再把溶液加入反應(yīng)器中。因此空白對照組R1中各周期也添加了相同量的甲醇,以保證實驗的單一變量。實驗用水采用人工配置的模擬廢水,(NH4)2SO4用于提供氨氮,NaHCO3用于提供堿度。各周期始末測定pH、T和DO,并取水樣測定反應(yīng)前后氨氮、亞氮、硝氮的濃度。整個實驗結(jié)束后,取污泥樣品用于測定EPS、SMP、關(guān)鍵酶活力和微生物群落結(jié)構(gòu)。
兩個反應(yīng)器進(jìn)出水氨氮、亞氮和硝氮分別采用納氏試劑分光光度法、N-1-萘基乙二胺分光光度法和紫外分光光度法測定[15],pH、DO 和T采用便攜式多參數(shù)水質(zhì)分析儀(德國WTW)測定,MLSS含量采用稱重法測定??偟コ剩╰otal nitrogen removal efficiency,TNRE)、氨氮去除率(ammonia removal efficiency,ARE)分別按照式(1)和式(2)計算。
取5mL 污泥混合液,在8000r/min 下離心15min,上清液用于測定SMP。用pH 為7.0 磷酸緩沖溶液將剩余泥樣稀釋至原體積,超聲3min 后于水浴鍋中80℃條件下,將樣品加熱30min,每隔10min 搖勻1 次。冷卻后,在8000r/min 下離心15min,所得上清液用于EPS 的測定,SMP 和EPS中蛋白質(zhì)和多糖的含量分別采用福林-酚法和蒽酮法測定[16]。
取混合均勻的泥水混合液,在4℃、4000r/min條件下離心3min,棄去上清液并用緩沖溶液清洗定容至原體積,再重復(fù)上述步驟兩次。采用細(xì)胞破碎儀進(jìn)行細(xì)胞破碎,隨后離心30min,得到的上清液即為粗酶液。羥胺氧化還原酶(hydroxylamine oxidoreductase,HAO)活性的測定如下:先取4mL反應(yīng)混合液(1mmol/L 鐵氰化鉀和1mmol/L 鹽酸羥胺),再加入適量粗酶液并立即搖勻。隨后在25°C下反應(yīng)15min后,加入2mL HCl 溶液終止反應(yīng),室溫放置5min 后于400nm 處測吸光度;空白組則先加入終止劑,再加入粗酶液。HAO 活性按照式(3)計算。
式中,A400為400nm處的吸光度;VL為測定液體積,mL;B為稀釋倍數(shù);ε為吸光系數(shù),L/(mol·cm);b為比色皿寬度,cm;t為時間,min;V為粗酶液體積,mL;m為測定時的泥重,g。
Heme-c 的測定如下:向離心管中先加入1mL(體積分?jǐn)?shù)為40%的吡啶和200mmol/L的氫氧化鈉)混合溶液,再加入適量的粗酶液混勻。將混合液加入到比色皿中,再加入3mg的連二亞硫酸鈉,此過程需在1min內(nèi)于波長500~600nm范圍內(nèi)進(jìn)行光譜掃描[17]。Heme-c含量按照式(4)進(jìn)行計算。
式中,A500、A535為500nm 和535nm 處的吸光度的差值;m為測定時加入粗酶液所對應(yīng)的泥重,g。
用Qubit2.0 DNA 檢測試劑盒(Sangon 公司,中國)檢測樣品的DNA。采用高通量焦磷酸測序,使用V3-V4 高變區(qū)域的通用PCR 引物341F/805R (341F:CCTACGGGNGGCWGCAG;805R:GACTACHVGGG-TATCTAATCC)進(jìn)行擴(kuò)增,高通量焦磷酸測序使用MiSeq測序平臺進(jìn)行分析。所得序列與Silva數(shù)據(jù)庫中的微生物進(jìn)行了比較。
圖1反映了兩個反應(yīng)器進(jìn)出水中氮素含量及脫氮性能的變化情況。R1僅加入等量甲醇作為對照,R2 中加入了2μmol/L 的淬滅酶。R1、R2 反應(yīng)器平均進(jìn)水氨氮濃度分別為168.0mg/L、171.7mg/L。
圖1 淬滅酶對反應(yīng)器脫氮性能的影響
在R1 中,以每5 個周期為一個階段取平均值進(jìn)行脫氮性能分析,反應(yīng)器的脫氮性能呈先升高后降低的趨勢。其中前兩階段出水氨氮濃度從35.3mg/L 降低至23.2mg/L,ARE 由80.4%升高至86.1%,TNRE由59.9%升高至61.9%。隨后反應(yīng)器各階段出水氨氮和亞氮濃度不斷升高,兩者最終穩(wěn)定在56.0mg/L 和47.5mg/L,出水硝氮含量不斷降低,最終降至9.0mg/L;各階段ARE 由80.3%升高至86.1%,后不斷下降至67.2%,TNRE由59.9%升高至61.9%,后不斷下降至37.4%。隨著反應(yīng)的進(jìn)行,反應(yīng)器中氨氮的升高和亞氮的積累可能是自養(yǎng)脫氮微生物無法適應(yīng)新環(huán)境,導(dǎo)致反應(yīng)器污泥活性下降。最終ARE 由80.3%下降至67.2%,TNRE 由59.9% 下降至37.4%,兩者的下降幅度分別為13.1%和22.5%。根據(jù)進(jìn)出水氮素濃度變化規(guī)律、較高的ARE和較低的TNRE,可以推測反應(yīng)器中大部分的亞氮都由好氧氨氮氧化生成,由于兩組反應(yīng)器DO 均小于0.05mg/L,因此反應(yīng)器中基本不存在硝化過程。由于兩個反應(yīng)器中都存在亞硝化過程,氨氮和亞氮的共存為厭氧氨氧化提供了反應(yīng)的底物,因此這表明反應(yīng)器中存在厭氧氨氧化過程,故反應(yīng)器中大部分的硝氮主要來源于厭氧氨氧化過程,則反應(yīng)器中的總氮主要依靠亞硝化-內(nèi)源反硝化和少量厭氧氨氧化共同去除。
R2 反應(yīng)器中加入2μmol/L 的淬滅酶,與R1 進(jìn)行相同分析,反應(yīng)器脫氮性能呈現(xiàn)不斷下降趨勢。其中前兩個階段出水氨氮由最初的34.7mg/L降低至31.5mg/L,ARE 由80.8%升高至81.9%。隨后反應(yīng)器各階段出水氨氮和亞氮濃度不斷升高,兩者最終穩(wěn)定在61.4mg/L和66.5mg/L,出水硝氮含量不斷降低,最終降至4.2mg/L;各階段脫氮性能ARE 由80.8%升高至81.9%,后不斷下降至64.4%,TNRE由51.5%不斷下降至26.4%,兩者最終的下降幅度分別為16.4%和25.1%。
結(jié)合圖1兩組反應(yīng)器各階段氮素變化和脫氮性能的變化可知,R2 內(nèi)出現(xiàn)了明顯的亞氮積累,各階段出水亞氮均高出R1 約19.0mg/L。阮心怡等[18]研究淬滅酶對菌株P(guān).aeruginosa反硝化的影響結(jié)果表明,群體淬滅對提升菌株反硝化作用具有促進(jìn)作用,這表明淬滅酶的加入具有促進(jìn)R2 反硝化作用的可能。值得注意的是,R2各階段ARE比R1略有降低,且出水硝氮略低于R1,各階段TNRE 比R1平均低11.1%,這說明淬滅酶在強(qiáng)化亞硝化的同時,厭氧氨氧化過程受到抑制,不能及時消耗氨氮和亞氮,從而導(dǎo)致氨氮去除下降以及亞氮的積累。張肖靜等[19]研究群體感應(yīng)淬滅酶對MBR-CANON系統(tǒng)脫氮的影響,發(fā)現(xiàn)淬滅酶抑制了亞硝化和厭氧氨氧化。這一結(jié)果與本研究略有不同,可能是兩個反應(yīng)系統(tǒng)內(nèi)微生物組成的不同以及淬滅酶濃度的較大差異造成的。另一方面,相關(guān)研究[9]表明,向原本含有外源信號分子的系統(tǒng)中加入20mg/L 的豬腎酰化酶后,厭氧反硝化作用被顯著促進(jìn),但實驗中各菌株亞氮積累量均較低。本文則主要表現(xiàn)為亞氮的積累,分析原因可能是:上述研究中反應(yīng)系統(tǒng)含有充足的碳源,而本研究為自養(yǎng)系統(tǒng),溶解淬滅酶的微量甲醇及內(nèi)源碳源SMP 等并不足以使硝氮轉(zhuǎn)化為氮?dú)?,而是停留在亞氮階段造成亞氮積累,即短程反硝化得到強(qiáng)化。
EPS為微生物的主要代謝產(chǎn)物,其分泌為微生物抵御外界環(huán)境的一種保護(hù)機(jī)制,SMP則主要與微生物的凋亡有關(guān)[20]。圖2 反映了反應(yīng)器中EPS 和SMP 含量的變化情況。經(jīng)過長期運(yùn)行后,R1 的EPS 中蛋白質(zhì)和多糖分別為45.2mg/g 和10.2mg/g,R2 的EPS 中蛋白質(zhì)和多糖則分別為32.1mg/g 和5.2mg/g。與R1 相比,向反應(yīng)器中投加2μmol/L 淬滅酶后,EPS 總含量由55.4mg/g 降低為37.2mg/g,原因是微生物之間會通過群感效應(yīng)機(jī)制分泌大量的EPS或其他代謝產(chǎn)物,從而形成穩(wěn)定的生物膜結(jié)構(gòu)以幫助細(xì)菌向固體表面附著[21]。淬滅酶則會降解群體感應(yīng)信號分子,抑制群感效應(yīng),從而降低微生物EPS的分泌。另一方面研究表明Metagenome是主要的EPS 產(chǎn)生菌和AHLs 類信號分子的產(chǎn)生菌[22]。值得注意的是,本研究向R2反應(yīng)器中加入淬滅酶后,Metagenome菌屬相對豐度由2.19%減少至1.46%,因此Metagenome菌屬的減少直接降低了系統(tǒng)中EPS的含量;另一方面Metagenome菌屬的減少限制了AHLs 類信號分子的產(chǎn)生,從而減弱了群體感應(yīng),最終表現(xiàn)為EPS的降低。
圖2 長期作用后兩個反應(yīng)器中EPS和SMP的變化情況
R1 的SMP 中蛋白質(zhì)和多糖的含量分別為44.8mg/L 和22.5mg/L,R2 的SMP 中蛋白質(zhì)和多糖的含量分別為73.9mg/L和10.5mg/L,可以看出淬滅酶的加入使得反應(yīng)器中SMP 的含量由67.3mg/L 升高為84.4mg/L,這表明淬滅酶的加入使得部分微生物凋亡,這與R2 中微生物豐富度和多樣性降低的結(jié)果相一致。值得注意的是,淬滅酶的加入使得蛋白質(zhì)含量明顯升高、多糖含量明顯降低,這表明淬滅酶使得SMP 的組成發(fā)生了變化。另一方面,相關(guān)研究表明[23],在厭氧和缺乏外源營養(yǎng)物質(zhì)條件下,反硝化菌可以利用SMP作為碳源進(jìn)行反硝化??梢钥闯?,R2 反應(yīng)器中EPS 和SMP 類有機(jī)質(zhì)含量低于R1,可能是淬滅酶誘導(dǎo)了反硝化菌的增殖,從而消耗有機(jī)質(zhì)促進(jìn)了內(nèi)源反硝化。但由于外源有機(jī)質(zhì)的缺乏和反硝化菌對內(nèi)源有機(jī)質(zhì)利用率有限,因此致使短程內(nèi)源反硝化的發(fā)生,從而造成了亞氮積累,最終反應(yīng)器脫氮性能降低,該結(jié)論和2.1 節(jié)脫氮過程的分析結(jié)果一致。
HAO 為生物脫氮過程的關(guān)鍵酶,其在硝化、反硝化以及厭氧氨氧化過程中均發(fā)揮著重要作用[24]。一方面亞硝化菌的HAO 能將羥胺進(jìn)一步氧化成亞硝酸鹽,從而完成亞硝化,推動硝化作用;另一方面,異養(yǎng)反硝化菌的HAO 在氧化羥胺時產(chǎn)生一部分電子還原亞硝酸鹽,從而促進(jìn)反硝化過程[25]。如圖3(a)所示,在R1中HAO酶活為0.80EU/g,在加入2μmol/L 淬滅酶的R2 中,HAO 酶活增高為0.99EU/g。這說明淬滅酶的加入促進(jìn)了HAO 酶活,結(jié)合2.1節(jié)系統(tǒng)脫氮性能和脫氮途徑的分析,R2出水氨氮升高、硝氮降低以及亞氮積累,都表明系統(tǒng)亞硝化和短程內(nèi)源反硝化增強(qiáng),因此HAO 的增加與上述兩種反應(yīng)過程的強(qiáng)化密切相關(guān)。
圖3 長期作用后兩個反應(yīng)器中HAO和Heme-c的變化情況
Heme-c是厭氧氨氧化菌的特征色素[26]。圖3(b)反映了反應(yīng)器內(nèi)Heme-c的變化情況,R1中Heme-c的含量為0.002mmol/g,R2 中Heme-c 的含量為0.004mmol/g。相較于R1,淬滅酶的加入提高了Heme-c 的含量。有研究[27]表明Heme-c 含量增加,可能是厭氧氨氧化菌受到抑制后的應(yīng)激反應(yīng),通過分泌更多的Heme-c以應(yīng)對外部環(huán)境沖擊。結(jié)合R2中厭氧氨氧化受到抑制以及總氮去除下降的結(jié)果可知,淬滅酶的加入誘導(dǎo)厭氧氨氧化菌分泌更多的Heme-c 以抵抗其抑制。另一方面,據(jù)報道[28],亞氮本身對微生物有毒害作用,出水亞硝酸鹽濃度為70mg/L 即可達(dá)到半抑制效果。R2 出水亞氮高達(dá)66.5mg/L,足以抑制厭氧氨氧化菌的活性,而微生物活性的降低又會反過來促進(jìn)亞氮的積累。淬滅酶的抑制作用和亞氮的毒害作用相結(jié)合,是否會產(chǎn)生聯(lián)合毒害作用,從而影響脫氮性能,相關(guān)機(jī)理還有待深入研究。
對各反應(yīng)器的活性污泥樣品進(jìn)行高通量測序并分析,結(jié)果如圖4和表2所示。兩組反應(yīng)器樣品的Coverage 均等于0.998,表明數(shù)據(jù)分析覆蓋了絕大多數(shù)微生物,保證了數(shù)據(jù)的可靠性。ACE 和Chao指數(shù)越大,表明以O(shè)TU 為分類單元的優(yōu)勢物種的豐富度越大??梢园l(fā)現(xiàn),空白組R1的ACE和Chao指數(shù)高出R2 近1 倍,表明淬滅酶的加入降低了優(yōu)勢微生物的豐度。Shannon 指數(shù)與Simpson 指數(shù)的變化趨勢相反,但反映的規(guī)律一致,Shannon 指數(shù)越大代表微生物的多樣性越高。R1的Shannon指數(shù)與Simpson 指數(shù)分別為3.8 和0.075,R2 分別為3.4和0.078。這表明兩組反應(yīng)器的微生物多樣性相差不大。值得注意的是R1、R2反應(yīng)器的微生物豐富度存在不容忽視的差異,造成這種差異的主要原因可能是淬滅酶的投加破環(huán)了部分微生物的群感效應(yīng),從而阻礙了部分微生物的生長繁殖。
圖4 屬水平微生物群落變化情況
表2 微生物測序多樣性指數(shù)和相對豐度
圖4 反映了兩組反應(yīng)器中的微生物群落組成。如圖所示,R1和R2菌屬種類未發(fā)生變化,但各菌屬相對豐度發(fā)生了變化??梢钥闯龈鞣磻?yīng)器中均未檢測出厭氧氨氧化菌,主要是因為反應(yīng)器中厭氧氨氧化菌并不是優(yōu)勢菌屬,由于濃度較低未被檢出。在R1 中,優(yōu)勢菌屬主要為Hyphomicrobium、Arenimonas、Nitrosomonas和Truepera,它們的相對豐度分別為20.56%、7.37%、5.83%和4.33%。其中Hyphomicrobium、Arenimonas和Truepera為主要的反硝化菌屬[29-31],Nitrosomonas為優(yōu)勢亞硝化菌屬[32]。在加入淬滅酶的R2 中,Nitrosomonas的相對豐度增長至6.32%。這與張肖靜等[19]的AHLs 酰基轉(zhuǎn)移酶使脫氮系統(tǒng)亞硝化菌的相對豐度減少的結(jié)果略有不同,主要可能是兩個反應(yīng)系統(tǒng)中菌群結(jié)構(gòu)存在較大差異,因此亞硝化菌表現(xiàn)出不同的響應(yīng)結(jié)果。Hyphomicrobium和Truepera反硝化菌屬的相對豐度基本不變,分別為20.94% 和4.64%,Arenimonas等反硝化菌屬的相對豐度略有減少,為6.43%。Zhang 等[33]研究發(fā)現(xiàn),Arenimonas能有效消耗硝酸鹽,從而提高總氮(TN)去除效率,故Arenimonas的減少使得TN 去除率下降。同時相關(guān)研究[34]表明,Arenimonas與厭氧氨氧化關(guān)系密切,與自養(yǎng)脫氮性能呈正相關(guān),因此Arenimonas相對豐度的降低也從側(cè)面反映厭氧氨氧化受到了抑制。有研究[35]表明,Thermomonas是短程反硝化體系中的優(yōu)勢反硝化菌屬,值得注意的是,Thermomonas反硝化菌屬的相對豐度由0.28%增長至9.04%,出現(xiàn)了大幅度增長,這再次證明加入淬滅酶后短程反硝化的增強(qiáng)。此外,有研究認(rèn)為Thermomonas為亞硝酸鹽產(chǎn)生的反硝化菌[36],這說明,淬滅酶能夠促進(jìn)硝氮轉(zhuǎn)化成亞氮,這也解釋了為什么R2出水亞氮高于R1。
結(jié)合上述分析,反應(yīng)系統(tǒng)主要以亞硝化反應(yīng),結(jié)合內(nèi)源反硝化和少量厭氧氨氧化協(xié)同脫氮,而淬滅酶的加入促進(jìn)了系統(tǒng)短程內(nèi)源反硝化并抑制了厭氧氨氧化過程,最終使R2 中亞氮積累,TNRE 下降。因此,淬滅酶有可能用于兩級式自養(yǎng)脫氮工藝(短程反硝化-厭氧氨氧化)短程反硝化單元的強(qiáng)化,進(jìn)而為后續(xù)厭氧氨氧化提供亞氮基質(zhì),之后與氨氮廢水混合進(jìn)行處理,最終實現(xiàn)低C/N比廢水的高效處理。
在以內(nèi)源反硝化為主要脫氮過程的亞硝化-混合自養(yǎng)脫氮系統(tǒng)中存在厭氧氨氧化過程,但不占優(yōu)勢。2μmol/L 的淬滅酶長期作用于亞硝化-混合自養(yǎng)脫氮系統(tǒng),導(dǎo)致反應(yīng)器內(nèi)亞氮大量積累,出水亞氮達(dá)到66.5mg/L,同時總氮去除顯著下降,相比未加淬滅酶的對照組降低了11.1%。淬滅酶的加入強(qiáng)化了短程反硝化,但抑制了厭氧氨氧化。淬滅酶抑制了污泥中EPS的分泌,但誘導(dǎo)了SMP的分泌,進(jìn)而為內(nèi)源反硝化提供了碳源。Heme-c 的增加有可能是厭氧氨氧化菌抵抗外界不利環(huán)境的一種機(jī)制。添加2μmol/L 淬滅酶使Nitrosomonas的相對豐度由5.83%增長為6.32%,Thermomonas反硝化菌屬的相對豐度由0.28%增長至9.04%。淬滅酶有望用于短程反硝化單元的強(qiáng)化,進(jìn)而為兩級式自養(yǎng)脫氮工藝的厭氧氨氧化單元提供亞氮基質(zhì)。