張在花,常大勇,孫明明,丁瑋琳,王 琳
(煙臺凱多海洋生物研究院有限公司,山東煙臺 264000)
花青素又稱花色素,主要以糖苷形式存在,因此也被稱為花色苷,是構成果實和花瓣顏色的主要色素之一,常存在于植物的花、莖、葉及果實的表皮層細胞中,是使用范圍最廣的天然色素之一[1-3]?;ㄇ嗨氐奶崛》椒ㄖ饕腥軇┨崛》?、超聲波提取法[4]、酶解法、高壓輔助提取法等[5]。其中,因花青素在酸性條件下比較穩(wěn)定,通常選擇酸化乙醇、醋酸、檸檬酸、甲酸等來提取花青素,該法工藝簡單、成本低,因而應用較為廣泛[6]。紫薯,旋花科一年生草本植物,是生產(chǎn)花青素的主要原料之一,用紫薯提取花青素具有來源豐富、生產(chǎn)成本低等優(yōu)點,開發(fā)前景較好。有研究表明,花青素具有很好的抗氧化、抗突變、抑菌、護肝等功效,在化工、食品、醫(yī)藥及化妝品行業(yè)均有很高的應用價值[2-3]。但是目前對紫薯花青素抑菌、防腐及食品保鮮方面的報道較少[7-11]。
關于柑橘保鮮,目前廣泛應用化學和生物保鮮法[12]。苯甲酸鈉作為一種價格低廉的食品防腐劑,在水果保鮮中應用廣泛[13],將花青素與苯甲酸鈉組合能進一步增強對柑橘的貯藏保鮮效果。本實驗通過酸性溶劑浸提法提取紫薯中花青素,優(yōu)化提取工藝,測定紫薯中花青素含量,并研究其對柑橘保鮮效果,為紫薯花青素作為天然水果保鮮劑的開發(fā)提供理論依據(jù)。
新鮮紫薯,臨沂沂蒙薯業(yè)種植;新鮮柑橘,當?shù)厥袌霾少彙?/p>
無水乙醇、醋酸、苯甲酸鈉,分析純,國藥集團化學試劑有限公司公司生產(chǎn);實驗用水均為18.2 MΩ·cm 的去離子水,實驗室自制。
DK-98-1 數(shù)顯恒溫水浴鍋,天津市泰斯特儀器有限公司;BSM220 電子天平,上海越平科學儀器有限公司;UV-5 紫外可見分光光度計,青島維思設備儀器有限公司;DZF-6020 電熱恒溫鼓風干燥箱,上海三發(fā)科學儀器有限公司;TG16W13 離心機,青島維思設備儀器有限公司;阿貝折光儀,上海卓光儀器科技有限公司;滴定管、CM-RO-C2 超純水機,青島維思設備儀器有限公司。
1.3.1 紫薯花青素的提取
將新鮮紫薯清洗干凈,切成薄片,50 ℃低溫干燥至恒質量,粉碎,過1 mm 篩子,備用。采用恒溫水浴酸性溶劑浸提法[13]。向盛有一定量的酸化乙醇中準確加入稱好的5.00 g 紫薯粉末,搖勻置于恒溫水浴鍋中,一定溫度下加熱提取一定時間,將提取液移至離心管中,4500 r/min離心15 min,上清液保存于4 ℃冰箱中。
1.3.2 紫薯花青素提取的單因素試驗
乙醇濃度分別為0、15%、30%、45%、60%、80%,pH為3.5,料液比1∶15(g/mL),60 ℃提取2 h,離心,測上清液吸光度A530,每個乙醇濃度平行試驗3 次,考察不同乙醇濃度對花青素提取效果的影響。
提取溶劑pH 分別為2.0、2.5、3.0、3.5、4.0、4.5,乙醇濃度45%,料液比1∶15(g/mL),60 ℃提取2 h,離心,測上清液吸光度A530,每個pH 平行試驗3 次,考察提取溶劑不同pH 對花青素提取效果的影響。
料液比分別為1∶5、1∶10、1∶15、1∶20、1∶25、1∶50(g/mL),乙醇濃度45%,pH 為3.5,60 ℃提取2 h,離心,測上清液吸光度A530,每個料液比平行試驗3 次,考察不同料液比對花青素提取效果的影響。
提取溫度分別為30、40、50、60、70、80 ℃,乙醇溶度45%,pH 為3.5,料液質量體積比1∶15(g/mL),提取2 h,離心,測上清液吸光度A530,每個溫度平行試驗3 次,考察不同提取溫度對花青素提取效果的影響。
1.3.3 正交試驗
以乙醇濃度、提取劑pH、料液比、提取溫度為試驗要素,依據(jù)單因素試驗結果,選擇3 個最佳水平,以花青素吸光度A530為指標,采用L9(34)正交試驗,確定紫薯花青素的最佳提取條件。正交試驗設計見表1。
表1 正交試驗因素水平表Table 1 Factors and levels of orthogonal experiment
1.3.4 紫薯花青素含量測定
(1)pH 1.0 緩沖溶液
準確配制0.2 mol/L 鹽酸溶液,0.2 mol/L 氯化鉀溶液,以67∶25 比例混合后用氯化鉀溶液調節(jié)其pH 為1.0,4 ℃冰箱保存待用。
(2)pH 4.5 緩沖溶液
準確配制0.2 mol/L 醋酸溶液,0.2 mol/L 醋酸鈉溶液,以1∶1 比例混合,4 ℃冰箱保存待用。
(3)紫薯花青素含量測定
采用pH 示差法[14]。計算公式見式(1)。
式中,A為;MW為矢車菊素-3-葡萄糖苷的分子量449.2;DF為稀釋倍數(shù);ε為矢車菊素-3-葡萄糖苷的摩爾消光系數(shù)26900;L為表示比色皿的光路直徑,cm;V為最終體積,mL;Wf為紫薯粉末質量,g。
1.3.5 紫薯花青素對柑橘保鮮效果研究
挑選果實大小均一、無病蟲害、無機械損傷、成熟度一致、外觀品質基本相同的柑橘120 個,分成4 組,其中3 個處理組分別用10 mg/mL 紫薯花青素溶液、1 mg/mL苯甲酸鈉溶液、10 mg/mL 的紫色馬鈴薯花青素+1 mg/mL苯甲酸鈉溶液(體積比為1∶1)浸泡25 min;對照組為無菌水處理。各組處理后用濾紙吸干水分,放置于溫度25℃,濕度50%~55%環(huán)境中,每隔24 h 測定失重率、腐爛率等,連續(xù)測定7 d。所有指標均重復測定3 次,取平均值。其中,柑橘表面有霉斑、褐變或有汁水流出判斷為腐爛。計算公式見式(2)。
式中,w為失重率,%;m0為果實的原始質量,g;m為測定時的質量,g。
腐爛率:腐爛程度分為1 級(腐爛面積<10%),2 級(輕微腐爛,11%<腐爛面積<30%),3 級(中度腐爛,31%<腐爛面積<50%),4 級(嚴重腐爛,腐爛面積>51%)。記錄柑橘的腐爛面積,并統(tǒng)計腐爛個數(shù),計算其腐爛率。計算公式見式(3)。
2.1.1 乙醇濃度對花青素提取效果的影響
由圖1 可知,隨著乙醇濃度的增加,花青素溶液的吸光度逐漸升高,當乙醇濃度大于60%時,花青素溶液的吸光度隨著乙醇濃度的增加而下降。這可能是由于乙醇濃度大于60%,提取液中的雜質不斷析出,導致吸光度下降。因此,乙醇濃度為60%,提取效果較好。此外,由圖1 可以看出,當乙醇濃度為30%、45%、60%時,花青素含量呈上升趨勢,45%與60%提取效果差不多,當濃度增加到75%時,花青素的含量呈明顯下降趨勢,且提取含量低于45%時的含量,因此,正交試驗選擇30%、45%、60%。
圖1 乙醇濃度對花青素提取效果的影響Fig.1 Effect of ethanol concentration on anthocyanin extraction
2.1.2 提取液pH 對花青素提取效果的影響
由圖2(見下頁)可知,隨著pH 的增加,花青素溶液的吸光度先升高后降低,當提取液pH 為2.5 時,花青素溶液的吸光度最大。主要是因為花青素在酸性條件下穩(wěn)定,酸性越弱,穩(wěn)定性越差,進而導致吸光度越低,含量越低。因此,提取液pH 為2.5 時,提取效果較好。
圖2 提取液pH 對花青素提取效果的影響Fig.2 Effect of pH of extraction solution on anthocyanin extraction
2.1.3 料液比對花青素提取效果的影響
由圖3 可知,隨著料液比的減小,花青素溶液的吸光度先升高后降低,當料液比為1∶15 時,花青素溶液的吸光度最高。因此,料液比1∶15 時提取效果較好。
圖3 料液比對花青素提取效果的影響Fig.3 Effect of material liquid ratio on anthocyanin extraction
2.1.4 提取溫度對花青素提取效果的影響
由圖4 可知,隨著提取溫度的增加,花青素溶液的吸光度先升高后降低,當提取溫度為60 ℃時,花青素溶液的吸光度最高,主要是因為高溫會使花青素結構發(fā)生變化,導致含量降低。因此,提取溫度60 ℃時,提取效果較好。
圖4 提取溫度對花青素提取效果的影響Fig.4 Effect of extraction temperature on anthocyanin extraction
由表2 可知,影響紫薯花青素提取效果的因素依次為提取液pH>料液比>乙醇濃度>提取溫度,最佳組合為A2B2C2D2,即乙醇濃度為45%,提取液pH 為2.5,料液比1∶15,提取溫度60 ℃。經(jīng)驗證,該工藝條件下得到的紫薯花青素含量最高,為61.59 mg/100 g。
表2 正交實驗優(yōu)化結果Table 2 Optimization results of orthogonal experiment
由表3 可知,以乙醇濃度45%,提取液pH 2.5,料液比1∶15(g/mL),提取溫度60 ℃,提取時間2 h 為提取工藝,采用pH 示差法測定紫薯花青素含量,重復實驗3 次,花青素含量分別為61.86、60.34、61.86 mg/100 g,花青素含量平均值為61.35 mg/100 g,RSD 為1.43%。這表明該工藝條件的提取率較高,而且工藝穩(wěn)定。
表3 紫薯花青素含量測定Table 3 Determination of anthocyanin content in purple sweet potato
2.4.1 紫薯花青素對柑橘失重率的影響
從圖5 可以看出,3 個處理和對照的柑橘隨著時間的延長均出現(xiàn)一定的失重現(xiàn)象,但3 個處理的失重率增加幅度明顯小于對照。對照組從第3 天開始失重率明顯增加,最高失重率達到9.65%,其次是花青素、苯甲酸鈉、花青素+苯甲酸鈉。說明花青素在一定程度上可以減緩柑橘中的水分流失,可作為一種安全的天然保鮮劑[12]。
圖5 不同處理對柑橘失重率的影響Fig.5 Effect of different treatments on weight loss rate of citrus
2.4.2 紫薯花青素對柑橘腐爛率的影響
采用不同方式處理的柑橘腐爛程度有明顯差異,結果如圖6,對照第2 天開始出現(xiàn)霉斑,第3 天開始出現(xiàn)水浸狀斑塊,第4 天腐爛現(xiàn)象明顯,第6 天腐爛率達到58%。防腐能力依次為花青素+苯甲酸鈉>苯甲酸鈉>花青素>對照,表明花青素一定程度上可以降低柑橘腐爛率。
圖6 不同處理對柑橘腐爛率的影響Fig.6 Effect of different treatments on citrus rot rate
紫薯中花青素類色素的含量一般為0.2%~0.8%,有些品種能高達1.2%[15],其成分主要為矢車菊色素和芍藥色素[4]。由于紫薯花青素具有?;鶊F,相比于紅甘藍、葡萄皮和紫玉米等植物,其花青素對光、熱、空氣等的敏感度更低,性質更加穩(wěn)定[4,16]。生產(chǎn)上從植物如藍莓、葡萄、草莓等提取花青素,存在生產(chǎn)季節(jié)性強、造價高等問題,而從紫薯中提取具有原料來源廣、成本低廉的優(yōu)勢。因此,優(yōu)化紫薯花青素的提取工藝,推動花青素在生產(chǎn)上應用是當前的研究熱點。
研究表明,花青素在酸性條件下穩(wěn)定,所以通常采用酸化溶劑作為提取劑來提取花青素[13-16]。但若酸性太強,會導致紫薯中的其它纖維素在H+的作用下被水解,產(chǎn)生較多的副產(chǎn)物[17-21],因此本研究采用加入酸性相對較弱的醋酸來調節(jié)提取劑的pH。提取溶劑過少,不利于花青素的溶出;而提取劑過多,則有更多淀粉及糖類等雜質溶出,使花青素發(fā)生聚合,提取效果下降,因此選擇料液比1∶15(g/mL)為最佳提取料液比。此外,由于高溫易導致花青素降解,所以選擇60 ℃為最佳提取溫度。隨著提取時間的增加,花青素長時間受熱易分解,更多的糖類及淀粉析出,不利于花青素的穩(wěn)定,因此選擇浸提時間為2h。
現(xiàn)代研究表明,花青素具有很顯著的抗氧化活性[21],其抗氧化能力是維生素C 的20 倍,維生素E 的50 倍,不僅能清除自由基,還能延緩維生素E 的氧化和幫助維生素C 的再生[22-24]。由于花青素的抗氧化能力較強,在水果保鮮方面能夠影響微生物的代謝反應,阻礙微生物呼吸,抑制外來微生物的入侵,其保鮮能力強于對照,因此可以在一定程度上延緩水果腐爛,延長貯藏時間。