黃婷婷 鄭殿峰 馮乃杰 趙黎明 周鴻凱 沈雪峰*
(1 廣東海洋大學(xué) 濱海農(nóng)業(yè)學(xué)院,廣東 湛江 524088;2 國(guó)家耐鹽堿水稻技術(shù)創(chuàng)新中心 華南中心,廣東 湛江 524088;*通訊作者)
近年來,土壤鹽漬化問題已經(jīng)引起國(guó)內(nèi)外學(xué)者的廣泛關(guān)注,全球20%以上的耕地受到鹽脅迫的影響,且數(shù)量還在增加[1]。其中,中國(guó)鹽漬土總面積為3.6×107hm2,占可耕地總面積的4.88%,且還有9.2×107hm2的耕地正面臨著鹽漬化的危害[2]。全球農(nóng)業(yè)正面臨重大挑戰(zhàn),到2050 年,全世界將新增23 億人口,糧食作物產(chǎn)量需增加70%[3]。可見,鹽脅迫是限制糧食作物生產(chǎn)的重要問題,是世界范圍內(nèi)影響作物產(chǎn)量的最重要環(huán)境壓力之一。
水稻是全球重要的糧食作物之一,也是對(duì)鹽脅迫較為敏感的作物,隨著全球氣候變暖及生態(tài)環(huán)境不斷惡化,水稻生長(zhǎng)過程中遭受干旱、高鹽等非生物脅迫在增加[4]。鹽脅迫作為主要的非生物脅迫之一,嚴(yán)重影響水稻的生長(zhǎng)發(fā)育[5]。植物鹽脅迫一般表現(xiàn)為滲透脅迫和離子毒害兩個(gè)階段,引起植株體內(nèi)活性氧破壞、膜系統(tǒng)損傷、光合和呼吸作用受抑制、酶活性降低等,表現(xiàn)為植株矮小、葉片黃化,最終導(dǎo)致糧食產(chǎn)量、品質(zhì)的下降[6-7]。多胺(Polyamines,PAs)主要包括腐胺(二胺,Putrescine,Put)、亞精胺(三胺,Spermidine,Spd)和精胺(四胺,Spermine,Spm),是生物代謝過程中產(chǎn)生的一類具有生物活性的低分子量脂肪族含氮堿,廣泛作用于高等植物的生長(zhǎng)發(fā)育、形態(tài)建成、防止衰老、抵抗環(huán)境脅迫等方面[8]。大量研究表明,外源Spd 能夠在一定程度上緩解鹽脅迫對(duì)植物生長(zhǎng)的抑制效應(yīng)[9-12]。但目前關(guān)于鹽脅迫條件下施用外源Spd 對(duì)水稻根系生長(zhǎng)的影響報(bào)道較少。本文以水稻為研究對(duì)象,探討在鹽脅迫下外源Spd 對(duì)水稻幼苗根系的抗氧化防御和Na+穩(wěn)態(tài)的影響,為鹽脅迫下水稻的科學(xué)栽培提供依據(jù)。
供試水稻品種為黃華占,由廣東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院水稻研究所提供?;瘜W(xué)試劑有:2',7'-二氯二氫熒光素二乙酸酯(2,7 -Dichlorodi -hydrofluorescein diacetate,DCFH-DA)和二氫乙啶(Dihydroethidium, DHE),購(gòu)于北京索萊寶科技有限公司;羥基苯基熒光素(HPF)和SBFI AM(Na+Indicator)鈉離子指示探針,購(gòu)于上海懋康生物科技有限公司。
本試驗(yàn)于2021 年3 月至7 月在廣東海洋大學(xué)興農(nóng)樓112 室進(jìn)行。挑選籽粒飽滿、大小相似的水稻種子,經(jīng)5%的過氧化氫消毒15 min 后,用去離子水沖洗3~5 遍,置于恒溫培養(yǎng)箱中(28 ℃)培養(yǎng)并催芽1 d,從中挑選露白一致的種子,將其放置于含有1/2 倍Hoagland 營(yíng)養(yǎng)液發(fā)芽盒中進(jìn)行培養(yǎng)。
試驗(yàn)分為3 部分進(jìn)行:①NaCl 對(duì)水稻幼苗根系的影響。水稻種子催芽1 d 后,取露白一致的種子,分別定植于含有0、25、50、100、150 和200 mmol/L NaCl 濃度梯度的1/2 Hoagland 營(yíng)養(yǎng)液的發(fā)芽盒中進(jìn)行培養(yǎng),設(shè)置6 次重復(fù),72 h 后取樣、測(cè)定植株生長(zhǎng)指標(biāo)。②外源Spd 對(duì)NaCl 脅迫下水稻幼苗根系生長(zhǎng)的影響。水稻種子催芽1 d 后,依據(jù)試驗(yàn)①篩選出的鹽濃度,分別加入0、0.1、0.2、0.3、0.4 和0.5 mmol/L Spd 溶 液 的1/2 Hoagland 營(yíng)養(yǎng)液的發(fā)芽盒中培養(yǎng),試驗(yàn)設(shè)置5 次重復(fù),72 h 后取樣,測(cè)定植株生長(zhǎng)指標(biāo)。③外源Spd 對(duì)鹽脅迫下水稻幼苗根系的抗氧化防御和Na+穩(wěn)態(tài)的影響。水稻種子催芽1 d 后,依據(jù)試驗(yàn)①和試驗(yàn)②篩選出的NaCl濃度和Spd 濃度,設(shè)置4 個(gè)處理:僅用營(yíng)養(yǎng)液(CK)、0.1 mmol/L Spd、100 mmol/L NaCl、100 mmol/L NaCl + 0.1 mmol/L Spd。每個(gè)處理5 次重復(fù),120 h 后測(cè)定根長(zhǎng),并取根樣進(jìn)行生理分析和組織化學(xué)檢測(cè)。
1.3.1 組織化學(xué)檢測(cè)
分別采用熒光探針DCFH-DA、DHE、HPF 檢測(cè)水稻幼苗根尖細(xì)胞中的總ROS、·O2-、H2O2含量。應(yīng)用鈉離子指示探針測(cè)定幼苗根尖細(xì)胞中的Na+含量[13-14]。
1.3.2 生理指標(biāo)
于水稻培養(yǎng)72 h 后,進(jìn)行根系取樣,立即置于液氮中速凍,移至-20 ℃冰箱保存,待測(cè)。通過測(cè)定硝基藍(lán)四唑(NBT)的光化學(xué)還原測(cè)定SOD 活性:反應(yīng)混合物(3 mL)由酶提液(30 μL)、PBS(50 mmol/L, pH 7.8)、EDTA(3 mmol/L)、核黃素(60 μmol/L)、NBT(2.25 μmol/L)和甲硫氨酸(14.5 mmol/L)組成。測(cè)定560 nm 波長(zhǎng)下的吸光度,計(jì)算SOD 活性(1 單位)作為酶促量,得到最大NBT 還原抑制量的一半。
通過測(cè)定CAT 對(duì)H2O2的分解能力來測(cè)定其活性:將30%的H2O2加入含50 mmol/L、pH 7.8、10 mL 的PBS 和酶提液的反應(yīng)混合液中,立即記錄在240 nm 處的吸光度。CAT 活性以每分鐘分解H2O2(1 mol)的酶量來量化。
通過測(cè)定POD 對(duì)H2O2的氧化能力來測(cè)定其活性:將愈創(chuàng)木酚加入PBS(pH 6.0,0.2 mol/L)緩沖液中,于磁力攪拌器上加熱攪拌,直至溶解,待溶液冷卻后加入19 μL 30%的H2O2。取3 mL 反應(yīng)液并加入40 μL 酶液后,通過測(cè)定470 nm 下吸光值變化,測(cè)定過氧化物酶活性。
根據(jù)丙二醛(MDA)在高溫、酸性條件下與硫代巴比妥酸(TBA)反應(yīng),形成在532 nm 波長(zhǎng)處有最大光吸收的三甲基復(fù)合物。分別于450、532 和600 nm 波長(zhǎng)下測(cè)定OD 值,確定MDA 含量。
1.3.3 數(shù)據(jù)處理
采用Image pro-plus 6.0 對(duì)熒光圖片進(jìn)行定量分析,經(jīng)SPSS 23.0 進(jìn)行方差分析,由Excel 2013 作圖,進(jìn)行單因素方差(ANOVA)的Duncan 顯著性分析(p<0.05)。
由圖1 可知,隨著NaC1 濃度的升高,水稻幼苗的根長(zhǎng)呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢(shì)。其中,25 mmol/L NaC1處理下根長(zhǎng)最長(zhǎng),與對(duì)照相比,50、100、150 和200 mmol/L NaC1 處理下根長(zhǎng)顯著降低,分別下降86.95%、91.83%、93.37%和94.24%。鹽脅迫條件下,施用外源Spd 水稻幼苗的根長(zhǎng)均有不同程度增加,且隨著Spd濃度增加呈先上升后下降趨勢(shì)(圖2)。與對(duì)照相比,施用0.10 mmol/L Spd 處理的水稻幼苗根長(zhǎng)增加13.38%,達(dá)到顯著水平;而施用0.50 mmol/L Spd 處理抑制作用最強(qiáng),根長(zhǎng)與對(duì)照相比顯著降低25.75%。因此,選擇100 mmol/L NaCl 和0.10 mmol/L Spd 作為后續(xù)試驗(yàn)處理濃度。
圖1 不同濃度NaCl 對(duì)水稻幼苗根系生長(zhǎng)的影響
圖2 不同濃度Spd 對(duì)鹽脅迫下水稻幼苗根系生長(zhǎng)的影響
由圖3 可以看出,與對(duì)照相比,NaCl 處理水稻幼苗根長(zhǎng)顯著下降23.79%。與NaCl 處理相比,Spd+NaCl 處理幼苗根長(zhǎng)顯著增加14.62%。說明外源Spd 能夠緩解鹽脅迫對(duì)水稻根系生長(zhǎng)的抑制作用。
圖3 外源Spd 對(duì)鹽脅迫下水稻幼苗根系生長(zhǎng)的影響
由圖4 可知,與對(duì)照相比,NaCl 處理下水稻幼苗根系的DCF(2',7'-二氯熒光素)熒光密度增加120.51%,幼苗根系中H2O2和·O2-水平分別增加29.52%和18.68%,均達(dá)到顯著水平;與NaCl 處理相比,Spd+NaCl處理下幼苗根系的DCF 熒光密度顯著降低31.54%,H2O2水平和·O2-水平顯著降低16.39%和14.36%??梢姡庠碨pd 能夠在一定程度上抑制NaCl 誘導(dǎo)的ROS在水稻幼苗根系中的積累。
圖4 外源Spd 對(duì)鹽脅迫下水稻幼苗根系中H2O2、·O2-和ROS的影響
由圖5 可以看出,與對(duì)照相比,NaCl 處理水稻幼苗根系中的CAT 和POD 活性分別顯著降低54.28%和20.36%;與NaCl 處理相比,Spd+NaCl 處理幼苗根系中的CAT 和POD 活性分別顯著升高36.21%和22.25%。但不同處理間的SOD 酶活性差異不顯著。可見,外源Spd 能夠在一定程度抑制NaCl 誘導(dǎo)的水稻幼苗根系抗氧化酶活性,提高其清除體內(nèi)活性氧能力,有效降低氧化傷害程度。
圖5 外源Spd 對(duì)鹽脅迫下水稻幼苗根系抗氧化酶活性的影響
由圖6 可以看出,與對(duì)照相比,NaCl 處理水稻幼苗根系中的MDA 含量顯著增加149.88%;與NaCl 處理相比,Spd+NaCl 處理幼苗根系中MDA 含量顯著降低31.01%。這說明外源Spd 能有效降低鹽脅迫下活性氧引起的傷害,進(jìn)而緩解膜脂過氧化傷害,降低細(xì)胞膜的受損程度。
圖6 外源Spd 對(duì)鹽脅迫下水稻幼苗根系MDA 含量的影響
由圖7 可知,與對(duì)照相比,NaCl 處理水稻幼苗根系中Na+熒光密度顯著增加35.52%。與NaCl 處理相比,Spd+NaCl 處理根系中Na+熒光密度顯著下降13.31%。說明外源Spd 可以減少根系中過多的Na+,從而維持細(xì)胞穩(wěn)態(tài)。
圖7 外源Spd 處理對(duì)鹽脅迫下水稻幼苗根系Na+熒光密度的影響
鹽脅迫是限制水稻生長(zhǎng)和產(chǎn)量形成的主要非生物脅迫之一[15]。大量研究表明,鹽脅迫抑制水稻種子的萌發(fā)、幼苗的生長(zhǎng)和根系的建成[6-7,11]。本研究中,50 mmol/L及以上濃度NaCl 處理顯著降低水稻幼苗的根長(zhǎng),這與王燕等[9]的報(bào)道一致。
Spd 作為一種生理活性物質(zhì),在參與調(diào)控植物各種抗逆性中發(fā)揮重要作用[16]。研究發(fā)現(xiàn),施用外源Spd提高幼苗抗氧化和滲透調(diào)節(jié)能力,維持葉片PSII 的活性和電子傳遞鏈的穩(wěn)定性,提高光合作用,減輕離子毒害,有效提高水稻、燕麥、甜高粱等作物的耐鹽性[9-12]。本試驗(yàn)中,在100 mmol/L NaCl 條件下,施加0.10 mmol/L Spd 能夠緩解鹽脅迫誘導(dǎo)的根系生長(zhǎng)抑制效應(yīng),這與李瑤等[7]采用調(diào)環(huán)酸鈣提高水稻幼苗鹽脅迫的研究結(jié)果一致。
在非生物逆境脅迫下,植物體內(nèi)大量積累活性氧(ROS),而過量的活性氧往往引起蛋白質(zhì)、脂質(zhì)、碳水化合物甚至DNA 的破壞,造成植物細(xì)胞嚴(yán)重?fù)p壞甚至死亡[17-18]。本研究發(fā)現(xiàn),與對(duì)照相比,NaCl 處理下水稻幼苗根系的ROS、·O2-和H2O2的含量顯著上升,且MDA 水平也隨著升高。這與鄒芳等[12]鹽脅迫處理甜高粱的結(jié)果一致。抗氧化酶是植物體內(nèi)ROS 清除系統(tǒng),主要通過SOD、CAT 和POD 保護(hù)酶發(fā)揮作用,平衡細(xì)胞內(nèi)部的ROS[6]。首先由SOD 將·O2-歧化為H2O2和O2,再經(jīng)CAT 和POD 將H2O2轉(zhuǎn)化為H2O 和O2。本研究中,SOD 酶活性無變化,而CAT 和POD 酶活性顯著降低,這與劉玲等[9]研究結(jié)果一致。本研究中,在100 mmol/L NaCl 條件下,施加0.1 mmol/L Spd 處理能夠顯著增強(qiáng)水稻幼苗根系中SOD、POD 和CAT 活性,MDA含量同步下降,這與海霞等[10]的研究結(jié)果一致。
在鹽脅迫條件下,保持植株體以及細(xì)胞內(nèi)的離子平衡是至關(guān)重要的。鹽生植物可以通過自身的Na+排除和Na+分隔來解毒過量的Na+[19]。本研究中,在100 mmol/L NaCl 條件下,施加0.1 mmol/L Spd 處理可以顯著降低水稻幼苗根系中Na+的含量,這與海霞等[10]的報(bào)道一致。
綜上所述,在100 mmol/L NaCl 條件下,施加0.1 mmol·L-1Spd 處理,顯著提高水稻幼苗根系中SOD、POD、CAT 等抗氧化酶活性,降低ROS、·O2-和H2O2含量、MDA 生成量和Na+含量,減輕鹽脅迫下的氧化損傷,維持細(xì)胞膜穩(wěn)定性。可見,0.10 mmol/L Spd 處理可以修復(fù)水稻幼苗因滲透脅迫和離子毒害引起的傷害,維持生理代謝和生化反應(yīng)的穩(wěn)定狀態(tài),以增強(qiáng)水稻幼苗根系的抗鹽性。