肖莉,陳雄偉,李輝
(愛(ài)美客技術(shù)發(fā)展股份有限公司,北京 101204)
生物補(bǔ)片是將生物來(lái)源的組織利用物理、化學(xué)和生物技術(shù)(如經(jīng)過(guò)固定、交聯(lián)及除抗原等一系列技術(shù))改造后,形成的可植入以支持組織或器官的補(bǔ)片[1]。其主要成分是蛋白質(zhì),包括形成細(xì)胞外基質(zhì)三維網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)的膠原蛋白及糖蛋白、黏蛋白等,可用于填補(bǔ)受損部位,誘導(dǎo)組織再生[2-3],是治療臨床組織損傷的理想方法[4-5]。
在部分生物補(bǔ)片的生產(chǎn)過(guò)程中會(huì)使用十二烷基硫酸鈉(SDS),以達(dá)到除去雜蛋白的目的。SDS作為表面活性劑,當(dāng)其到達(dá)一定濃度會(huì)產(chǎn)生細(xì)胞毒性[6]、造成皮膚紅腫[7]、產(chǎn)生溶血作用[8],因此為了降低產(chǎn)品在使用過(guò)程中的安全風(fēng)險(xiǎn),需要控制SDS的殘留量。目前,常見(jiàn)的SDS殘留的檢測(cè)方法中使用的溶劑為水,沒(méi)有考慮到生物補(bǔ)片中SDS洗脫或浸提的難度[9-10]。生物補(bǔ)片屬于醫(yī)療器械,目前檢測(cè)醫(yī)療器械中SDS殘留量的方法尚無(wú)相關(guān)的法規(guī)標(biāo)準(zhǔn)及相關(guān)的文獻(xiàn)報(bào)道,本試驗(yàn)建立了生物補(bǔ)片中十二烷基硫酸鈉(SDS)殘留量的檢測(cè)方法,并依據(jù)《方法學(xué)驗(yàn)證指導(dǎo)原則》[11-12]對(duì)該方法進(jìn)行了驗(yàn)證。
生物補(bǔ)片(20180701、20180901、20181101),愛(ài)美客技術(shù)發(fā)展股份有限公司;十二烷基硫酸鈉,分析純,阿拉丁試劑(上海)有限公司;氯仿,分析純,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;亞甲基藍(lán),分析純,南京化學(xué)試劑有限公司;無(wú)水硫酸鈉,分析純,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;濃硫酸,分析純,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;甲醇,分析純,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;碳酸鈉,分析純,西隴化工股份有限公司。
BSA224S-CW電子天平,德國(guó)Sartorius公司;IS-RDV1恒溫振蕩器,美國(guó)精騏有限公司;TGL20M臺(tái)式高速冷凍離心機(jī),湖南易達(dá)京華儀器有限公司;M4多功能酶標(biāo)儀,美谷分子儀器(上海)有限公司。
1.3.1 溶液制備
亞甲基藍(lán)溶液:取亞甲基藍(lán)25 mg,無(wú)水硫酸鈉5 g,加100 mL純化水使溶解后,加濃硫酸1 mL,混勻。
甲醇-碳酸鈉溶液:取甲醇與10 mmol/L碳酸鈉溶液按照體積比(1∶1)混合。
1.3.2 樣品預(yù)處理
生物補(bǔ)片屬于植入性醫(yī)療器械,參照《醫(yī)療器械生物學(xué)評(píng)價(jià) 第12部分:樣品制備與參照樣品》[13]中規(guī)定,將供試品剪碎,加入甲醇-碳酸鈉溶液適量,在37 ℃,150 r/min條件下浸提,取浸提液1 mL作為供試品溶液。
1.3.3 檢測(cè)波長(zhǎng)驗(yàn)證
取SDS適量,精密稱(chēng)定,用甲醇-碳酸鈉溶液稀釋制成10 μg/mL、6 μg/mL、2 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)溶液,按照“1.3.4”項(xiàng)下方法處理后,分別在可見(jiàn)光區(qū)(350~750 nm)進(jìn)行全波長(zhǎng)掃描,同法用甲醇-碳酸鈉溶液作空白對(duì)照。
1.3.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)的繪制
精密稱(chēng)取SDS適量,置于容量瓶中,用甲醇-碳酸鈉溶解并稀釋成每1 mL中含10 μg/mL SDS的標(biāo)準(zhǔn)溶液。取10 μg/mL SDS的標(biāo)準(zhǔn)溶液0.0 mL、0.2 mL、0.4 mL、0.6 mL、0.8 mL和1.0 mL于離心管中,加甲醇-碳酸鈉溶液至1.0 mL,制成SDS標(biāo)準(zhǔn)系列溶液。
在SDS標(biāo)準(zhǔn)系列溶液中分別加入1 mL亞甲基藍(lán)溶液,充分混勻,然后加入6.0 mL氯仿,充分萃取后,以2 000 r/min離心5 min,吸棄溶液上層。在保留有溶液下層的每一試管中加入無(wú)水硫酸鈉(約1 g,不定量),即刻混勻后,以2 000 r/min離心5 min。用吸管吸取試管內(nèi)澄清溶液在651 nm波長(zhǎng)處測(cè)定OD值,注意勿攪動(dòng)試管底部沉淀的硫酸鈉晶體。
以溶液濃度對(duì)吸光度值進(jìn)行線(xiàn)性回歸,得回歸方程。連續(xù)4日分別繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)。
另精密稱(chēng)取SDS適量,用甲醇-碳酸鈉溶液稀釋制 成 40 μg/mL、20 μg/mL、10 μg/mL、8 μg/mL、6 μg/mL、4 μg/mL、2 μg/mL 和 0 μg/mL 的標(biāo)準(zhǔn)溶液,取1 mL溶液按照“標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)的繪制”項(xiàng)下方法操作,考察標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)的范圍。
1.3.5 重復(fù)性考察
取同一批樣品按照“1.3.2”項(xiàng)下方法制備6份供試品,按照“1.3.3”項(xiàng)下方法操作。
1.3.6 準(zhǔn)確度考察
取已知SDS殘留量的補(bǔ)片樣品,按限度的100%濃度加入一定量的SDS,按“1.3.3”項(xiàng)下方法操作,計(jì)算回收率。
1.3.7 溶液穩(wěn)定性考察
取同一批樣品按照“1.3.2”項(xiàng)下方法制備供試品,按照“1.3.3”項(xiàng)下方法操作,分別在0 h、2 h、4 h、6 h和8 h測(cè)定吸光度。
1.3.8 樣品中SDS殘留量測(cè)定
取3批生物補(bǔ)片,按照“1.3.2”項(xiàng)下方法制備供試品,按照“1.3.3”項(xiàng)下方法測(cè)定。
在可見(jiàn)光區(qū)(350~750 nm)進(jìn)行全波長(zhǎng)掃描,結(jié)果如圖1所示。經(jīng)比較發(fā)現(xiàn)十二烷基硫酸鈉與亞甲基藍(lán)染色液反應(yīng)后形成的藍(lán)色物質(zhì)從350 nm開(kāi)始,吸光度逐漸增大,在(651±2)nm波長(zhǎng)處有最大吸收值,文獻(xiàn)[14]中檢測(cè)波長(zhǎng)十二烷基硫酸鈉與亞甲基藍(lán)染色液反應(yīng)后形成的藍(lán)色物質(zhì)在650 nm處有最大吸收值,測(cè)得的最大吸收波長(zhǎng)稍有不同,可能為所用設(shè)備的廠(chǎng)家不同導(dǎo)致,但二者的最大檢測(cè)波長(zhǎng)相差較小,可認(rèn)為結(jié)論基本一致。因此本方法采用的檢測(cè)波長(zhǎng)(651 nm)是合適的。
圖1 SDS標(biāo)準(zhǔn)溶液全波長(zhǎng)掃描圖(350~750 nm)
如圖2所示,以溶液濃度對(duì)吸光度值進(jìn)行線(xiàn)性回歸,得回歸方程為y=0.049 2x+0.341 5,R=0.999 1,在0.0~40.0 μg/mL線(xiàn)性關(guān)系良好,本法標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)范圍較寬,適用范圍較廣。
圖2 SDS標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)
連續(xù)4日的標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)繪制結(jié)果見(jiàn)表1。本法用于測(cè)定SDS含量,在0.0~11.0 μg/mL線(xiàn)性關(guān)系良好(R>0.99),連續(xù)4日的線(xiàn)性結(jié)果相似(線(xiàn)性系數(shù)統(tǒng)計(jì)學(xué)上無(wú)差別,P>0.05),剩余標(biāo)準(zhǔn)殘差基本一致。這些結(jié)果表明標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)對(duì)測(cè)試環(huán)境(如溫度、濕度)的要求較低,重復(fù)性和耐用性良好。
表1 SDS標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)
取同一批補(bǔ)片樣品進(jìn)行重復(fù)性考察,結(jié)果如表2所示。重復(fù)6次測(cè)定結(jié)果的平均值為1.24 μg/mL,RSD為1.5%,說(shuō)明本方法用于生物補(bǔ)片中SDS殘留量的重復(fù)性良好。生物補(bǔ)片可作為醫(yī)療器械,應(yīng)用于神經(jīng)外科腦膜修復(fù)、食管癌切除之后修復(fù),顱骨修復(fù),另外在整形美容以及大面積燒傷的患者、婦科以及腫瘤等領(lǐng)域都有一定的使用[2]。動(dòng)物源材料本身存在一定的薄厚差異,經(jīng)過(guò)化學(xué)處理后,網(wǎng)絡(luò)纖維結(jié)構(gòu)可能不同,厚度也可能不同[7],從而可能造成SDS殘留在不同位置的殘留也不一樣。如果生產(chǎn)工藝不能得到很好的控制,則同批補(bǔ)片中SDS的含量差異將會(huì)較大。實(shí)際工作中發(fā)現(xiàn),較厚的補(bǔ)片比較薄的補(bǔ)片中殘留的SDS多,厚度相差越大,SDS殘留差異越明顯,甚至?xí)_(dá)到5倍以上的差異。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,本批補(bǔ)片的6份樣品結(jié)果差異小,反映出生產(chǎn)工藝控制較好。
表2 重復(fù)性試驗(yàn)結(jié)果
按照限度濃度100%加入SDS后對(duì)本法的準(zhǔn)確度進(jìn)行研究,結(jié)果如表3所示。6份加標(biāo)樣品的回收率分別為104.7%、102.5%、101.9%、105.6%、104.3%和102.5%,平均回收率為103.6%,RSD為1.4%,表明本方法準(zhǔn)確度良好,測(cè)得的結(jié)果可信度高。供試品處理過(guò)程中的浸提介質(zhì)選擇十分重要,由于補(bǔ)片存在纖維網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),SDS更容易吸附與蛋白質(zhì)結(jié)合,如果單純用水或者碳酸鈉溶液浸提,通過(guò)延長(zhǎng)浸提時(shí)間或者增加浸提次數(shù),SDS依然不能被完全浸提出來(lái),會(huì)造成檢測(cè)結(jié)果偏低的現(xiàn)象。本實(shí)驗(yàn)采用甲醇-碳酸鈉溶液為浸提介質(zhì)進(jìn)行浸提,在甲醇和碳酸鈉溶液的共同作用下,可以使SDS從與蛋白質(zhì)的結(jié)合中游離出來(lái),并盡量消除靜電吸附或者表面張力等的作用而使SDS在浸提富集的過(guò)程中重新與蛋白質(zhì)結(jié)合,從而使檢測(cè)結(jié)果更為可靠。
表3 準(zhǔn)確度試驗(yàn)結(jié)果
將供試品溶液于室溫放置8 h,吸光度無(wú)顯著變化,SDS含量變化不大,RSD為0.7%,表明供試品溶液于室溫放置8 h仍處于穩(wěn)定狀態(tài),具體結(jié)果見(jiàn)表4。
表4 溶液穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果
經(jīng)測(cè)定,3批生物補(bǔ)片中SDS的殘留量分別為1.36 μg/mL、1.44 μg/mL 和 1.25 μg/mL。動(dòng)物源性的原料本身存在厚薄不均一性,不同個(gè)體間也存在較大的差異[7],因此對(duì)處理工藝的要求較高[15-16],生物補(bǔ)片中的SDS殘留量均一性可以從側(cè)面表征工藝的穩(wěn)定性。本實(shí)驗(yàn)3批產(chǎn)品中SDS的殘留量較為相近,反映生產(chǎn)工藝較為穩(wěn)定。
由于生物補(bǔ)片與SDS結(jié)合的化學(xué)鍵比較牢固,難以從生物組織中清洗去除,容易殘留在組織中[9-10],因而不能檢出全部的SDS殘留;用氫氧化鈉或硫酸降解生物補(bǔ)片會(huì)使SDS發(fā)生不可逆的化學(xué)變化,因此不能使用直接檢測(cè)SDS殘留的方法(亞甲基藍(lán)法)[14];用鹽酸降解生物補(bǔ)片時(shí),由于降解液中含有大量的氯化物,其會(huì)與亞甲基藍(lán)作用,生成可溶于氯仿的藍(lán)色絡(luò)合物[17],致使測(cè)定結(jié)果偏高,不能準(zhǔn)確反映SDS的殘留量。本試驗(yàn)中采用甲醇-碳酸鈉混合液作為浸提介質(zhì),碳酸鈉所帶的負(fù)電荷可以競(jìng)爭(zhēng)性的與生物補(bǔ)片中的蛋白質(zhì)結(jié)合,從而將SDS替代,使其游離出來(lái),而甲醇可產(chǎn)生界面聚集,能夠加速SDS的游離。
本文建立了生物補(bǔ)片中十二烷基硫酸鈉(SDS)殘留量的檢測(cè)方法,采用甲醇-碳酸鈉混合液作為浸提介質(zhì),通過(guò)方法驗(yàn)證對(duì)SDS殘留量檢測(cè)方法的檢測(cè)波長(zhǎng)、線(xiàn)性范圍、重復(fù)性、準(zhǔn)確度以及穩(wěn)定性等方面進(jìn)行了考察。結(jié)果表明本方法用于生物補(bǔ)片中SDS殘留量檢測(cè)靈敏、準(zhǔn)確可靠。此外,該方法采用浸提法對(duì)樣品進(jìn)行處理,符合《醫(yī)療器械生物學(xué)評(píng)價(jià) 第12部分:樣品制備與參照樣品》中規(guī)定,具有普遍適用性,因此對(duì)于各類(lèi)醫(yī)療器械、生物制品等產(chǎn)品中SDS殘留量的檢測(cè)均具有參考價(jià)值。