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        油橄欖葉多糖的提取工藝優(yōu)化及其理化性質(zhì)和抗氧化活性

        2022-12-06 10:58:32任一杰趙小亮王寶忠向紫駿楊超福王海利馬君義張偉杰
        食品工業(yè)科技 2022年23期
        關鍵詞:油橄欖單糖分子量

        任一杰,趙小亮,王寶忠,向紫駿,楊超福,王海利,馬君義,張偉杰

        (1.甘肅隴神戎發(fā)藥業(yè)股份有限公司,甘肅 蘭州 730102;2.甘肅省中藥固體分散制劑重點實驗室,甘肅 蘭州 730102;3.蘭州理工大學生命科學與工程學院,甘肅 蘭州 730050;4.西北師范大學生命科學學院,甘肅 蘭州 730070)

        油橄欖(Olea europaeaL.)系木犀科木犀欖屬常綠喬木,是重要的木本油料和果用樹種,原產(chǎn)于地中海地區(qū),在我國甘肅、云南、四川和福建等地有廣泛分布[1-3],現(xiàn)有種植面積已超過120 萬畝。油橄欖樹在進行修剪和果實采摘過程中會產(chǎn)生大量的副產(chǎn)物油橄欖葉,目前對于油橄欖葉沒有進行有效的利用。研究發(fā)現(xiàn),油橄欖葉中含有黃酮、多酚、多糖等生物活性成分[4-6],多糖作為生物大分子具有重要的生理活性,在食品、化妝品、保健品、藥品和醫(yī)用材料等領域已有廣泛應用[7-9]。

        多糖由于其多羥基的結構特點,易溶于水,不溶于乙醇等有機溶劑。熱水提取法是目前多糖提取中最常用的方法,材料經(jīng)過粉碎、脫脂等前處理后經(jīng)熱水提取,提取液加入一定濃度的乙醇,收集沉淀可獲得粗多糖。除此之外,微波、超聲波、超臨界萃取、超高壓等技術也可用于多糖的輔助提取,也有通過酶的作用破壞細胞壁來提高多糖的提取效果[10]。利用油橄欖葉提取多糖,不僅能夠充分利用油橄欖葉這一資源,同時也可以為功能性多糖提供新的來源。鄧建梅等[11]通過微波輔助提取油橄欖葉多糖,在最佳工藝條件下油橄欖葉的多糖得率為12.4535 mg/g。原姣姣等[12]通過響應面優(yōu)化了超聲-酶輔助油橄欖葉多糖的提取工藝,發(fā)現(xiàn)先用酶解處理,之后再進行超聲提取可以提高提取率,在優(yōu)化的工藝條件下油橄欖葉多糖的提取率可以達到4.50%。王布雷等[13]從油橄欖葉提取了一種由甘露糖、鼠李糖、葡萄糖醛酸、半乳糖醛酸、葡萄糖、半乳糖和阿拉伯糖組成的酸性雜多糖,活性研究發(fā)現(xiàn)該多糖具有良好的抗氧化作用,對革蘭氏陰性細菌的抑制能力強于革蘭氏陽性細菌。而對于油橄欖葉多糖的精細結構及活性方面的深入研究相對較少,多糖的結構復雜,活性與結構密切相關,研究發(fā)現(xiàn)不同的方法提取獲得的多糖組成不同,結構和性質(zhì)存在差異,造成多糖的活性不穩(wěn)定及質(zhì)量控制難度大。熱水提取是多糖最常用的提取方法,方法穩(wěn)定,重復性好,獲得的多糖結構穩(wěn)定。因此,本研究采用正交試驗優(yōu)化油橄欖葉多糖的熱水提取工藝,通過紅外光譜、分子量及單糖組成分析進行多糖結構的初步分析,并評價多糖的抗氧化活性,為油橄欖葉多糖的進一步開發(fā)利用提供參考,為油橄欖葉的綜合利用奠定基礎。

        1 材料與方法

        1.1 材料與儀器

        油橄欖葉 采于甘肅省隴南市,經(jīng)鑒定為木犀科植物油橄欖(Olea europaeaL.)的葉子;乙腈 色譜純,德國Merck 公司;1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮(PMP) 分析純,上海阿拉丁生化科技股份有限公司;1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)、系列單糖標準品(甘露糖、氨基葡萄糖、鼠李糖、葡萄糖醛酸、氨基半乳糖、半乳糖醛酸、葡萄糖、半乳糖、木糖和阿拉伯糖) 分析純,Sigma-Aldrich 公司;其它化學試劑均為國產(chǎn)分析純。

        AB104-N 型分析天平 梅特勒-托利多儀器公司;FD-1-55 型冷凍干燥機 北京博醫(yī)康實驗儀器有限公司;RE-52CS-2 型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 上海亞榮生化儀器廠;SHB-IIIA 型循環(huán)水式真空泵 鄭州長城科工貿(mào)有限公司;UV-9200 紫外可見分光光度計 北京瑞利分析儀器公司;Agilent1260 高效液相色譜儀、Eclipse XDB-C18色譜柱(4.6 mm×150 mm,5 μm)美國安捷倫公司;Frontier 紅外光譜儀 美國Perkin Elmer 公司;Dawn 型多角度激光光散射儀美國Wyatt 公司;OHpak SB-806M HQ 凝膠色譜柱(8.0 mm×300 mm) 日本昭和電工;TG16-WS 型低速大容量離心機 湖南湘儀離心機儀器有限公司。

        1.2 實驗方法

        1.2.1 油橄欖葉前處理 油橄欖葉陰涼處晾干后粉碎機粉碎,過60 目篩,用80%乙醇80 ℃加熱回流脫脂4 次,每次2 h,脫脂后的油橄欖葉粉末干燥后備用[14]。

        1.2.2 油橄欖葉多糖提取單因素實驗 以影響多糖得率的料液比、溫度和時間為考察因素,研究不同單因素對油橄欖葉多糖得率的影響。分別稱取脫脂后油橄欖葉粉末2 g 于三口燒瓶中,置恒溫磁力加熱攪拌器水浴中分別按以下條件提?。涸?0 ℃、提取時間為3 h 條件下,考察提取料液比(1:20、1:25、1:30、1:35 和1:40 g/mL)對多糖得率的影響;在料液比為1:30 g/mL、提取時間為3 h 的條件下,考察提取溫度(50、60、70、80、90、95 ℃)對多糖得率的影響;在料液比為1:30 g/mL、提取溫度為80 ℃的條件下,考察提取時間(1、2、3、4 和5 h)對多糖得率的影響[15]。每組實驗重復3 次,計算多糖得率。

        1.2.3 正交試驗設計 在1.2.2 單因素實驗的基礎上,對3 個影響因素進行三因素三水平L9(34)正交試驗,根據(jù)多糖得率對結果進行分析[16],正交試驗設計因素水平見表1。

        表1 正交試驗因素水平Table 1 Orthogonal assay factors and levels

        1.2.4 多糖得率的計算 采用硫酸-苯酚法[17]測定總糖含量,參考文獻[18]按以下公式計算不同條件下油橄欖葉的多糖得率:

        1.2.5 油橄欖葉多糖的純化 根據(jù)正交試驗優(yōu)化的提取工藝條件提取油橄欖葉多糖,提取液經(jīng)減壓濃縮,乙醇沉淀后復溶于蒸餾水,用透析袋(截留分子量為7 kDa)對蒸餾水透析3 d,透析液減壓濃縮后冷凍干燥,得油橄欖葉多糖OLP,用于后續(xù)理化性質(zhì)分析及抗氧化活性評價[18]。

        1.2.6 紅外光譜分析 油橄欖葉多糖置于裝有P2O5的真空干燥箱中,50 ℃真空干燥至恒重,后取2~3 mg用KBr 壓片,在4000~400 cm-1范圍內(nèi)進行紅外光譜掃描,記錄紅外光譜圖[19]。

        1.2.7 分子量分析 高效凝膠滲透色譜-多角度激光光散射儀聯(lián)用(HPGPC-MALLS)測定分子量,OLP用0.1 mol/L Na2SO4溶液溶解為5 mg/mL,0.22 μm微孔濾膜過濾后備用。分析用色譜柱為OHpak SB-806M HQ,流動相為0.1 mol/L Na2SO4溶液,進樣量100 μL,流速0.6 mL/min,柱溫35 ℃,示差檢測器(RID)和多角激光光散射儀(MALLS)串聯(lián)在線檢測,用Astra 5.3.4.20 工作軟件進行數(shù)據(jù)處理,計算OLP 重均分子量(Mw)、數(shù)均分子量(Mn)以及分散系數(shù)[20-21]。

        1.2.8 單糖組成分析 采用PMP 柱前衍生高效液相色譜法測定油橄欖葉多糖的單糖組成。取OLP 3 mg溶于300 μL 2 mol/L 三氟乙酸(TFA),加入安瓿瓶后封口,在105 ℃條件下水解6 h,水解液氮吹儀吹干后反復加甲醇3 次吹干,除去TFA[22]。水解產(chǎn)物溶解于100 μL 蒸餾水中,加入100 μL 0.3 mol/L NaOH和120 μL 0.5 mol/L PMP 溶液在70 ℃水浴中反應1 h,反應物冷卻后加入100 μL 0.3 mol/L HCl 溶液中和,后用三氯甲烷萃取3 次以除去未反應的PMP,收集水相經(jīng)0.22 μm 微孔濾膜過濾,備用。不同單糖標準品采用同樣方法進行衍生和處理[23-24]。

        HPLC 測定單糖組成色譜分析條件:色譜柱為Eclipse XDB-C18(4.6 mm×150 mm,5 μm),流動相為磷酸鹽緩沖液:乙腈=83:17(V/V),流速1.0 mL/min,柱溫25 ℃,紫外檢測器245 nm 在線檢測,根據(jù)標準品和樣品出峰時間確定單糖種類,根據(jù)峰面積計算各單糖相對摩爾比[23-24]。

        1.2.9 抗氧化活性的評價 取1.2.5 所得OLP,用蒸餾水配制濃度分別為0.1、0.25、0.5、1、2.5 和3 mg/mL溶液,按以下方法進行抗氧化活性評價。

        羥自由基清除能力測定:分別取不同濃度OLP 1 mL 于試管中,等體積蒸餾水作為空白對照,依次加入9 mmol/L Fe2SO4溶液1 mL、8.8 mmol/L H2O21 mL和9 mmol/L 水楊酸溶液1 mL 后混勻,在37 ℃水浴恒溫反應15 min,VC作為陽性對照,在510 nm 處測定吸光值[25-26]。用公式(1)計算樣品對羥基自由基的清除率:

        式中:A0:空白對照組吸光值;A:樣品吸光值。

        超氧陰離子清除能力測定:分別取不同濃度OLP 1 mL 于試管中,等體積蒸餾水為空白對照,立即加入3 mL 0.05 mol/L Tris-HCl (pH8.2)溶液混勻,37 ℃水浴加熱10 min 后加入2 mL 30 mmol/L鄰苯三酚溶液反應5 min,加入1 mL 8 mol/L HCl 中止反應,VC作為陽性對照,320 nm 處測定吸光值[25-26]。代入公式(1)計算樣品對超氧陰離子自由基的清除率。

        DPPH 自由基清除能力測定:分別取不同濃度OLP 2 mL 于試管中,等體積蒸餾水為空白對照,分別加入2 mL 0.1 mmol/mL DPPH 乙醇溶液混勻,避光靜置30 min,VC作為陽性對照。517 nm 處測定吸光值[25-26]。代入公式(1)計算樣品對DPPH 自由基的清除率。

        1.3 數(shù)據(jù)處理

        實驗均進行3 次重復,結果用平均值±標準偏差表示,采用Origin 9.0 軟件進行數(shù)據(jù)處理和作圖;利用SPSS 17.0 軟件進行IC50計算。

        2 結果與分析

        2.1 單因素實驗結果

        2.1.1 料液比對多糖得率的影響 從圖1 可以看出,在料液比為1:20~1:30 g/mL 時,隨著提取溶劑量的增加,油橄欖葉多糖的得率在不斷增加,當料液比達到1:30 g/mL 時多糖得率為2.13%,經(jīng)過顯著性檢驗發(fā)現(xiàn)繼續(xù)增加提取溶劑的量多糖得率沒有明顯增加,說明多糖的溶出達到了平衡,從節(jié)約溶劑以及后續(xù)多糖提取液濃縮能耗的角度考慮,選擇料液比1:30 g/mL為正交試驗設計的中心值。

        圖1 料液比對多糖得率的影響Fig.1 Effects of material-liquid ratio on the yield of polysaccharides

        2.1.2 溫度對多糖得率的影響 從圖2 可以看出,提取溫度對OLP 得率有明顯的影響,隨著溫度的升高,多糖得率也在增加,隨著溫度的升高油橄欖葉細胞壁的破壞程度也增加,有利于多糖的溶出,當溫度達到90 ℃時多糖得率為2.03%,從提取過程水浴加熱方式溫度的限制及提取溫度升高造成溶劑揮發(fā)等方面考慮,選擇90 ℃為正交試驗工藝優(yōu)化的中心值。

        圖2 溫度對多糖得率的影響Fig.2 Effects of temperature on the yield of polysaccharides

        2.1.3 時間對多糖得率的影響 從圖3 可以看出,隨著提取時間的延長OLP 得率明顯增加,在1~3 h 范圍內(nèi),時間的延長對OLP 得率影響顯著(P<0.05),提取時間達到3 h 時,多糖得率為1.95%,經(jīng)過顯著性檢驗發(fā)現(xiàn)3 h 后繼續(xù)延長提取時間多糖得率增加不顯著(P>0.05),從節(jié)約成本和時間考慮,選擇3 h 為后續(xù)正交試驗工藝優(yōu)化的中心值。

        圖3 時間對多糖得率的影響Fig.3 Effects of time on the yield of polysaccharides

        2.2 正交試驗結果及分析

        2.2.1 正交試驗結果 根據(jù)2.1 單因素實驗結果可知,選取影響OLP 得率的料液比、溫度和時間三個因素,采用標準L9(34)正交試驗設計進行提取工藝優(yōu)化,正交試驗及試驗結果見表2。

        表2 L9(34)正交實驗及結果Table 2 L9(34) orthogonal design and experiment results

        從表2 正交試驗結果極差分析可以看出,3 個提取因素對OLP 得率影響的順序為B>A>C,即溫度對OLP 得率的影響最大,其次是料液比和時間,最佳提取條件為A1B3C3,即料液比為1:27.5 g/mL,在溫度95 ℃下提取3.5 h。

        2.2.2 工藝驗證試驗 根據(jù)2.2.1 正交試驗工藝優(yōu)化結果,取油橄欖脫脂粉末2.0 g,3 份,按照A1B3C3條件進行OLP 提取工藝驗證試驗,測定提取液多糖含量,計算OLP 得率。計算結果得率分別為2.77%、2.75%和2.74%,平均得率為2.75%,高于正交試驗設計中所有條件下OLP 得率,表明工藝優(yōu)化成功。該工藝油橄欖葉多糖的得率高于鄧建梅等[11]采用微波輔助提取的多糖得率(12.4535 mg/g),低于原姣姣等[12]采用的超聲-酶輔助提取的得率(4.50%),相比而言,本研究多糖的得率較高,并且提取條件簡單,成本較低,易于大規(guī)模制備。

        2.3 油橄欖葉多糖紅外光譜分析結果

        從圖4 可知,OLP 的紅外光譜圖中可以看出OLP具有多糖的一般吸收特征峰,3427 cm-1處的吸收峰為糖結構中-OH 的O-H 的伸縮振動吸收峰,2935 cm-1處吸收峰為糖結構中C-H 特征吸收峰,1747、1631、1439 cm-1這3 處為C=O 和O-H 特征吸收峰,1100~1022 cm-1為吡喃糖殘基糖環(huán)C-O-C和C-O-H 吸收[7]。通過紅外光譜分析說明所制備的OLP 為糖類化合物[19]。

        圖4 OLP 紅外光譜圖Fig.4 Infrared spectrogram of OLP

        2.4 分子量分析結果

        采用HPGPC-MALLS 法對OLP 的分子量進行了分析測定,結果見表3。

        表3 OLP 分子量分析結果Table 3 OLP molecular weight analysis results

        從表3 可知,OLP 的重均分子量(Mw)和數(shù)均分子量分別為25.36 和19.32 kDa,多分散系數(shù)為1.313,表明OLP 的分子量分布范圍較窄。

        2.5 油橄欖葉單糖組成分析結果

        采用PMP 柱前衍生-HPLC 法分析OLP 的單糖組成,單糖組成HPLC 結果見圖5,單糖組成分析結果及相對摩爾比見表4。從圖5 和表4 可知,OLP 為含有8 種單糖的雜多糖,主要由葡萄糖(Glc)、半乳糖(Gal)和氨基半乳糖(GalN)組成,此外還含有鼠李糖(Rha)和阿拉伯糖(Ara),以及少量的木糖(Xyl)、甘露糖(Man)和氨基葡萄糖(GlcN),各種單糖的相對摩爾比如表4,其中Glc 所占比例最大。王布雷等[13]也對提取的油橄欖葉多糖的單糖組成進行了分析,發(fā)現(xiàn)其由7 種單糖組成,其中Gal 占比最大,為31.17%,其次是Glc 和Ara,占比分別為29.30%和21.64%,此外還含有GalA(6.95%)、Rha(5.67%)、GlcA(3.11%)和Man(2.17%),為含有糖醛酸的酸性多糖。研究發(fā)現(xiàn),原料的產(chǎn)地、年限及處理工藝[27-28]、多糖的提取方法等均會對多糖的單糖組成和活性產(chǎn)生影響[29-30],該研究與本研究所獲油橄欖葉多糖在單糖組成上存在明顯不同,可能是該研究所用油橄欖葉為四川西昌所產(chǎn),與本研究所用材料的產(chǎn)地以及提取方法等不同有關,這也說明多糖的來源及提取方法會對多糖的結構產(chǎn)生影響。

        圖5 OLP 單糖組成分析HPLC 圖Fig.5 Monosaccharide composition analysis of OLP by HPLC

        表4 OLP 單糖組成及相對摩爾比分析結果Table 4 The analysis results of monosaccharide composition and relative mole ratio

        2.6 油橄欖葉多糖抗氧化活性

        2.6.1 對羥自由基的清除活性 OLP 和VC對羥自由基的清除活性見圖6。

        圖6 OLP 對羥自由基的清除活性Fig.6 Scavenging activity of OLP on hydroxyl free radical

        從圖6 可知,OLP 對羥自由基有一定的清除活性,且呈現(xiàn)明顯的濃度依賴關系,在濃度0.1~3 mg/mL范圍內(nèi)隨著濃度的增加,清除活性明顯增強,濃度為3 mg/mL 時,清除率達到了83.32%,經(jīng)計算OLP 和VC對羥自由基的半數(shù)抑制濃度(IC50)分別為0.422和0.044 mg/mL,表明OLP 對羥自由基具有較好的清除活性,在一定濃度范圍內(nèi)可以發(fā)揮清除羥基自由基的活性。

        2.6.2 對超氧陰離子自由基的清除活性 OLP 和VC對超氧陰離子自由基的清除活性見圖7。

        由圖7 可知,OLP 對超氧陰離子自由基有明顯的清除活性,在濃度0.1~1 mg/mL 范圍內(nèi)隨著濃度的增加清除活性明顯增強,呈現(xiàn)濃度依賴關系,當濃度為2.5 mg/mL 時,清除率達到了85.13%,經(jīng)計算OLP 和VC對超氧陰離子自由基的IC50分別為0.302和0.139 mg/mL,表明OLP 對超氧陰離子自由基具有較好的清除活性。

        圖7 OLP 對超氧陰離子自由基的清除活性Fig.7 Scavenging activity of OLP on superoxide anion free radical

        2.6.3 對DPPH 自由基的清除活性 OLP 和VC對DPPH 自由基的清除活性見圖8。

        由圖8 可知,隨著OLP 濃度的增加對DPPH 自由基的清除活性與VC具有相同的作用趨勢,均表現(xiàn)出明顯的濃度依賴關系,濃度達到3 mg/mL 時清除率達到82.26%,經(jīng)計算OLP 和VC對DPPH 自由基的IC50分別為0.268 mg/mL 和0.073 mg/mL,表明OLP 對DPPH 自由基有較好的清除活性。

        圖8 OLP 對DPPH 自由基的清除活性Fig.8 Scavenging activity of OLP on DPPH free radical

        通過比較發(fā)現(xiàn)OLP 對DPPH 的清除活性最強,其次是超氧陰離子自由基和羥自由基,表明OLP 對不同類型的自由基均有較好的清除活性,可以用于天然抗氧化劑的開發(fā),保護機體免受自由基損傷,有進一步開發(fā)和應用的前景。

        3 結論

        本研究在單因素實驗的基礎上通過正交試驗優(yōu)化了油橄欖葉多糖的提取工藝,發(fā)現(xiàn)提取時間對多糖得率影響最大,在最佳提取工藝條件料液比1:27.5 g/mL,溫度95 ℃,提取時間3.5 h 下,多糖得率為2.75%,分析發(fā)現(xiàn)油橄欖葉多糖主要是由Glc、Gal 和GalN等單糖組成的雜多糖,分子量分布窄,純度較好,能夠清除羥自由基、超氧陰離子自由基和DPPH 自由基,具有較好的體外抗氧化活性。本研究為油橄欖葉多糖的進一步研究以及開發(fā)利用提供了參考。

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