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        GDF-5對(duì)大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞增殖、遷移的影響及相關(guān)作用機(jī)制

        2022-11-11 02:54:22胡廣關(guān)智宇張開偉
        中國(guó)老年學(xué)雜志 2022年21期
        關(guān)鍵詞:增殖率明顯降低軟骨

        胡廣 關(guān)智宇 張開偉

        (貴州中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院骨科,貴州 貴陽 550001)

        骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(BMSC)有多向分化、自我更新潛能,可以分化為多種間質(zhì)組織〔1〕。在哺乳動(dòng)物的骨髓基質(zhì)中發(fā)現(xiàn)BMSC有分化形成骨、脂肪、神經(jīng)、軟骨、成肌細(xì)胞等多種分化潛能的細(xì)胞亞群〔2〕。BMSC來源豐富,容易分離,對(duì)供體影響較少,在一定條件下可轉(zhuǎn)化為軟骨細(xì)胞〔3〕。目前認(rèn)為是骨組織工程最重要的種子細(xì)胞來源,且具有免疫調(diào)節(jié)功能,通過細(xì)胞間的相互作用、產(chǎn)生細(xì)胞因子抑制T細(xì)胞的增殖和其免疫反應(yīng),從而起到免疫重建的功能〔4,5〕。BMSC可以分化成血管平滑肌細(xì)胞、心肌細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞。本文旨在探討GDF-5對(duì)大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞增殖、遷移的影響及相關(guān)作用機(jī)制。

        1 材料與方法

        1.1材料 研究細(xì)胞:分離大鼠BMSC并進(jìn)行培養(yǎng)。主要試劑與細(xì)胞:SPF級(jí)SD大鼠(河南中醫(yī)藥大學(xué),SYXK(豫)2020-0009);高糖DMEM培養(yǎng)基(北京凱瑞基生物科技有限公司);胎牛血清(武漢益普生物科技有限公司);PCR試劑盒(上海彩佑實(shí)業(yè)有限公司);流式細(xì)胞儀(基爾頓生物科技(上海)有限公司);Transwell小室(上海子起生物科技有限公司);磷脂酰肌醇3激酶(PI3K)一抗(北京百奧萊博科技有限公司);噻唑藍(lán)(MTT)試劑(艾美捷科技有限公司);蛋白激酶B(Akt)一抗(上海莼試生物技術(shù)有限公司),本研究獲醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn)。

        1.2方法

        1.2.1BMSC分離 無菌條件下分離大鼠脛骨、股骨,用眼科剪從股骨及脛骨的干骺端切開骨髓腔,將骨髓腔用含肝素的DMEM培養(yǎng)液進(jìn)行沖洗。吸管重復(fù)吹打后,1 500 r/min離心5 min,棄上清。加入DMEM培養(yǎng)基4 ml重懸,密度為1 073 g/ml的PercoⅡ分離液中滴加細(xì)胞重懸液按1∶1比例,1 500 r/min離心30 min,取乳白色云霧狀的單個(gè)核細(xì)胞層,添加到DMEM培養(yǎng)液稀釋混勻,1 500 r/min離心5 min,沖洗2~3次,將多余的脂肪細(xì)胞和組織液去除。用DMEM培養(yǎng)基且含有雙抗的10%胎牛血清進(jìn)行重懸細(xì)胞,細(xì)胞密度為20×105個(gè)/cm2接種于培養(yǎng)瓶?jī)?nèi),在37℃、飽和濕度為5%的孵箱內(nèi)培養(yǎng)。

        1.2.2慢病毒載體構(gòu)建 GDF-5表達(dá)抑制的慢病毒載體構(gòu)建及測(cè)定患者GDF-5的序列查找和設(shè)計(jì)(由廣州易錦公司完成)。GDF-5引物序列:上游:5′-ATGGTACCTTCGCTGCTACGGCCTTTCTCT-3′;下游:5′-TATCTAGAGGGGTAGTCTCTGGATGTGCCA-3′組成。目標(biāo)基因探針和內(nèi)參基因探針均為5′端采用FAM報(bào)告熒光標(biāo)記,3′端采用TAMRA淬滅熒光標(biāo)記。PCR體系:4.5 μl反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物,0.5 μl TaqMan microRNA assay(5×),5.0 μl TaqMan Mix。PCR反應(yīng)條件:95℃預(yù)熱5 min;95℃ 15 s,60℃ 1 min,循環(huán)40次。將細(xì)胞分為:對(duì)照組、下調(diào)組、上調(diào)組,其中對(duì)照組細(xì)胞不做任何處理,對(duì)下調(diào)組、上調(diào)組按照Li-pofectamine2000說明書分別進(jìn)慢病毒滴度轉(zhuǎn)染miR-639 mimics和miR-inhibibor。

        1.2.3細(xì)胞培養(yǎng) 用移液槍吸取200 μl BMSC懸液置于96孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,混勻后放入37℃、5%CO2培養(yǎng)箱24 h,3 d更換一次新鮮培養(yǎng)液,當(dāng)細(xì)胞融合度在70%~80%時(shí),進(jìn)行繼代培養(yǎng)。

        1.2.4BMSCs的細(xì)胞周期檢測(cè) 實(shí)驗(yàn)分組同凋亡檢測(cè),消化收集細(xì)胞后,加入細(xì)胞周期液,放置30 min,然后使用流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞周期。

        1.2.5細(xì)胞增殖情況檢測(cè) 采用MTT比色法檢測(cè)各組骨BMSC增殖情況,在細(xì)胞培養(yǎng)后將細(xì)胞濃度調(diào)整至3×104個(gè)/ml,接種于96孔板中,把200 μl細(xì)胞懸液加入每個(gè)孔中,在37℃、5%CO2溫度下培養(yǎng)24 h、48 h、72 h后,加入10 μl MTT試劑繼續(xù)孵育4 h,采用酶標(biāo)儀測(cè)定波長(zhǎng)為570 mm的細(xì)胞組OD值,計(jì)算各組細(xì)胞增殖率。細(xì)胞增殖率=(細(xì)胞組OD值/參照組OD值)×100%。

        1.2.6細(xì)胞凋亡情況檢測(cè) 使用流式細(xì)胞儀檢測(cè)各組BMSC凋亡情況,將細(xì)胞傳到5孔板中,在37℃、5%CO2溫度下培養(yǎng)24 h、48 h、72 h后,加入0.25%胰蛋白酶消化,2 000 r/min離心處理5 min,收集離心處理后的細(xì)胞,磷酸鹽緩沖液(PBS)反復(fù)清洗2次,每次清洗3 min,再次離心收集細(xì)胞,加入1 ml PI染液,在避光常溫下放置1 h,使用流式細(xì)胞儀檢測(cè),用特異熒光標(biāo)記,標(biāo)記后在鞘液包裹下快速流動(dòng),流動(dòng)期間發(fā)射光子,利用發(fā)光信號(hào)測(cè)量?jī)x檢測(cè)光子數(shù)值。

        1.2.7細(xì)胞遷移能力檢測(cè) 采用細(xì)胞劃痕實(shí)驗(yàn)檢測(cè)各組BMSC遷移能力,將細(xì)胞接種于18孔板中,細(xì)胞增長(zhǎng)至90%左右時(shí),采用100 μl槍頭垂直劃3條直線,使用PBS反復(fù)清洗3次,每次清洗3 min,加入0.5%血清培養(yǎng)基并觀察24 h,使用倒置顯微鏡觀察各組BMSC遷移能力。

        1.2.8細(xì)胞侵襲能力檢測(cè) 采用Transwell小室檢測(cè)各組BMSC侵襲能力,將Transwell小室放入培養(yǎng)板中,細(xì)胞懸液接種于上室,100 ng/ml IL-8接種于下室,24 h后100 μg/ml三羥甲基丙烷(TMP)溶液加入下室并孵育24 h,將上室微孔中的細(xì)胞使用棉簽擦除,PBS反復(fù)清洗3次,每次清洗3 min,固定在4%多聚甲醛溶液中處理15 min,使用蘇木精染色處理10 min,用PBS清洗,每次清洗3 min,在倒置顯微鏡下觀察上室微孔下層的細(xì)胞數(shù),觀察各組BMSC侵襲能力。

        1.2.93組細(xì)胞PI3K/Akt蛋白信號(hào)通路表達(dá)量檢測(cè) 采用Western印跡檢測(cè)各組細(xì)胞PI3K/Akt蛋白信號(hào)通路PI3K、Akt蛋白表達(dá)量,取RIPA裂解液150 μl及苯甲基磺酰氟(PMSF)1.5 μl加在冰上孵育30 min,4℃ 1 500 r/min離心15 min,取上清液,二喹啉甲酸(BCA)法測(cè)定蛋白濃度。每樣樣品取15 μg蛋白進(jìn)行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE),轉(zhuǎn)移至聚偏氟乙烯(PDVF)膜,5%脫脂乳室溫封閉2 h,將PI3K、Akt一抗加入4℃孵育過夜;在1∶5 000二抗TBST(北京中杉金橋生物技術(shù)公司)中加入TBST,用增強(qiáng)型敏化學(xué)發(fā)光底物試劑(ECL)處理,然后在凝膠成像系統(tǒng)顯像,采用Image J軟件進(jìn)行蛋白定量分析。每組檢測(cè)3次取平均值。

        1.3統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS19.0軟件進(jìn)行F檢驗(yàn)、t檢驗(yàn)。

        2 結(jié) 果

        2.1GDF-5表達(dá)量比較 與對(duì)照組(2.02±0.59)相比,下調(diào)組GDF-5表達(dá)量(0.51±0.12)明顯降低(P<0.05);與對(duì)照組相比,上調(diào)組GDF-5表達(dá)量(3.72±1.17)明顯升高(P<0.05);與下調(diào)組相比,上調(diào)組GDF-5表達(dá)量明顯升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

        2.2BMSCs的細(xì)胞周期分布 與對(duì)照組相比,下調(diào)組G1期明顯上升,S期、G2期明顯下降,上調(diào)組G1期明顯降低,S期、G2期明顯升高(均P<0.05);與下調(diào)組相比,上調(diào)組G1期明顯降低,S期、G2期明顯升高(P<0.05)。見表1。

        表1 BMSCs的細(xì)胞周期分布

        2.33組細(xì)胞不同時(shí)間點(diǎn)增殖率、凋亡率比較 與對(duì)照組相比,下調(diào)組不同時(shí)間點(diǎn)增殖率明顯降低,凋亡率明顯升高,上調(diào)組不同時(shí)間點(diǎn)增殖率明顯上升,凋亡率明顯降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.05);與下調(diào)組相比,上調(diào)組不同時(shí)間點(diǎn)增殖率明顯上升,凋亡率明顯降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.05)。見圖1,表2。

        圖1 3組不同時(shí)間點(diǎn)細(xì)胞凋亡流式檢測(cè)細(xì)胞凋亡

        表2 3組細(xì)胞不同時(shí)間點(diǎn)增殖率、凋亡率、細(xì)胞遷移、侵襲能力比較

        2.43組細(xì)胞遷移、侵襲能力比較 與對(duì)照組相比,下調(diào)組細(xì)胞遷移明顯降低,侵襲數(shù)明顯升高,上調(diào)組細(xì)胞遷移明顯上升,侵襲數(shù)顯著下降(均P<0.05);與下調(diào)組相比,上調(diào)組細(xì)胞遷移明顯上升,侵襲數(shù)明顯下降(均P<0.05)。見表2、圖2、圖3。

        圖2 GDF-5轉(zhuǎn)染后BMSC遷移比較(×200)

        圖3 GDF-5轉(zhuǎn)染后BMSC侵襲比較(蘇木精染色,×200)

        2.53組細(xì)胞PI3K/Akt信號(hào)通路蛋白表達(dá)量比較 與對(duì)照組相比,下調(diào)組PI3K、AKT蛋白表達(dá)量明顯升高,上調(diào)組PI3K、Akt信號(hào)通路蛋白表達(dá)量明顯降低(均P<0.05);與下調(diào)組相比,上調(diào)組PI3K、Akt信號(hào)通路蛋白表達(dá)量明顯降低(均P<0.05)。見圖4,表3。

        圖4 Western印跡檢測(cè)各組細(xì)胞PI3K/AKT信號(hào)通路蛋白表達(dá)

        表3 3組PI3K/Akt信號(hào)通路蛋白表達(dá)量比較

        3 討 論

        BMSCs來源較廣、容易獲取、無醫(yī)學(xué)倫理學(xué)爭(zhēng)議等優(yōu)點(diǎn),是目前骨組織工程最理想的種子細(xì)胞來源。BMSC有血管生成、抗凋亡、抗纖維化、抗炎和免疫抑制等生物學(xué)特性〔6,7〕。骨髓包含多種細(xì)胞,包括血管細(xì)胞、脂肪細(xì)胞、成骨細(xì)胞、破骨細(xì)胞、造血干細(xì)胞、間充質(zhì)干細(xì)胞等〔8,9〕。早期認(rèn)為骨髓中細(xì)胞的功能只是骨髓細(xì)胞再生、循環(huán)血細(xì)胞再生,骨髓干細(xì)胞將有可能成為治療遺傳病或變性疾病的理想來源細(xì)胞〔10,11〕。本研究結(jié)果顯示,GDF-5可有效促進(jìn)大鼠BMSC增殖、遷移。

        GDF5是BMPs家族的成員,是機(jī)體軟骨形成、骨骼發(fā)育的主要調(diào)節(jié)因子,在軟骨形成的早期,GDF5可促進(jìn)間充質(zhì)軟骨前細(xì)胞的黏附、聚集、分化〔12,13〕。外源性GDF5可促進(jìn)BMSC的增殖及BMSC的成軟骨分化,在促進(jìn)軟骨細(xì)胞特異性細(xì)胞外基質(zhì)分泌、合成,軟骨細(xì)胞基因及蛋白表達(dá)方面有明顯效果,提示將GDF5用于促進(jìn)脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞成軟骨分化進(jìn)而用于細(xì)胞治療方面可發(fā)揮更重要的作用〔14,15〕。金林等〔16〕研究顯示,GDF-5可以誘導(dǎo)BMSC呈肌腱細(xì)胞分化,且去分化過程可以提高BMSC腱系分化的能力,且BMSCs在去分化后具有更高的增殖和分化潛能,經(jīng)過GDF-5處理的去分化的BMSCs更具有成肌腱細(xì)胞分化的優(yōu)勢(shì)。本文研究顯示,GDF-5可以作用于PI3K/Akt信號(hào)通路,促進(jìn)PI3K、Akt蛋白表達(dá),有效促進(jìn)BMSC向類髓核細(xì)胞分化,PI3K/Akt信號(hào)通路存在于細(xì)胞中,參與生物學(xué)過程的調(diào)控,在腫瘤的發(fā)生、發(fā)展、轉(zhuǎn)歸中起到關(guān)鍵的作用。PI3K是位于胞質(zhì)的脂類激酶〔17〕。經(jīng)成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(FGF)、胰島素樣生長(zhǎng)因子(IGF)-l、表皮生長(zhǎng)因子(EGF)等生長(zhǎng)因子激活后,可以使質(zhì)膜上的二磷酸磷脂酰肌磷酸化為三磷酸磷脂酰肌醇。Akt包含480個(gè)氨基酸殘基,屬于一種絲氨酸/蘇氨酸激酶。作為第二信使,磷脂酰肌醇3磷酸(PIP)3可以將Akt募集到質(zhì)膜,因此,Akt會(huì)被激酶丙酮酸脫氫酶激酶(PDK)1、自噬和雷帕霉素靶蛋白復(fù)合物Ⅰ(mTORC)2分別磷酸化,然而信號(hào)傳遞到叉頭基因(FoxO)、糖原合酶激酶(GSK)-3、mTORC1等效應(yīng)蛋白〔18,19〕。黎鑫等〔20〕研究顯示,在異常微環(huán)境中培養(yǎng)高表達(dá)IGF-1的BMSCs可以減少細(xì)胞凋亡,增加增殖,增加原癌基因表達(dá)。PI3K抑制劑、Akt磷酸化抑制劑可以逆轉(zhuǎn)BMSCs因IGF-1引發(fā)的增殖、凋亡相關(guān)生物學(xué)特性的改變,提示PI3K/Akt信號(hào)通路是IGF-1誘發(fā)BMSCs轉(zhuǎn)化過程中的重要信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路。人類多種惡性腫瘤中IGF-1在異常表達(dá),且與疾病的發(fā)生、發(fā)展緊密相連。有研究發(fā)現(xiàn),IGF-1等生長(zhǎng)因子可以激活PI3K/Akt信號(hào),下游效應(yīng)蛋白mTORC1/S6K1可促進(jìn)成骨細(xì)胞分化,抑制其凋亡,體外破骨細(xì)胞上清也可通過該信號(hào)調(diào)節(jié)成骨細(xì)胞的增殖分化〔21〕。PI3K/Akt信號(hào)通路可抑制成骨細(xì)胞分化。本研究顯示,上調(diào)GDF-5可促進(jìn)BMSC凋亡,抑制增殖、遷移、侵襲,并進(jìn)一步明確其作用機(jī)制,結(jié)果發(fā)現(xiàn)上調(diào)GDF-5經(jīng)作用于PI3K/Akt信號(hào)通路,可促進(jìn)PI3K、Akt表達(dá),發(fā)揮其促進(jìn)BMSC凋亡,抑制增殖、遷移、侵襲的作用。

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