陳靜怡,姜 鑫,吳 佩,崔輝梅,崔金霞
(石河子大學(xué)農(nóng)學(xué)院園藝系 / 新疆生產(chǎn)建設(shè)兵團(tuán)特色果蔬栽培生理與種質(zhì)資源利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,新疆石河子 832000)
土壤鹽漬化是全球糧食安全所面臨的一個(gè)重要威脅,世界上大約33%灌溉農(nóng)業(yè)用地受鹽漬化影響[1],鹽可通過(guò)風(fēng)、雨及巖石風(fēng)化作用沉積在土壤中,加上氣候、地貌特征和人為因素決定其在地表的聚集位置,當(dāng)土壤層累積鹽分對(duì)作物生產(chǎn)有不利影響時(shí),提高作物耐鹽性與控制土壤鹽分成為促進(jìn)農(nóng)業(yè)可持續(xù)發(fā)展的重要策略[1-2]。鹽害作用于植物生長(zhǎng)任何階段,最終降低經(jīng)濟(jì)產(chǎn)量[3],對(duì)植物造成離子毒害、滲透脅迫、活性氧(ROS)過(guò)量產(chǎn)生、光合過(guò)程受阻,導(dǎo)致胞內(nèi)損傷,引起葉綠素降解、膜透性增加、蛋白質(zhì)變性、核酸斷裂甚至細(xì)胞死亡等一系列不良后果[4-8]。光合作用對(duì)環(huán)境脅迫高度敏感,使得光合作用測(cè)量成為植物鹽脅迫研究的一個(gè)重要部分,鹽脅迫降低兩個(gè)光系統(tǒng)(PSI、PSⅡ)光化學(xué)效率,減少同化物和能量供應(yīng),限制植物生長(zhǎng)發(fā)育[7-8]。
近20年來(lái),基于“生物膜能量通量理論”的活體快速葉綠素?zé)晒庹T導(dǎo)動(dòng)力學(xué)曲線(OJIP曲線)和JIP-測(cè)定(JIP-test),由于其無(wú)損、精確、快速等特性,已被廣泛用作研究植物生理狀態(tài)的有力工具[9-12]。利用Strasser等[12]建立的快速葉綠素?zé)晒庹T導(dǎo)動(dòng)力學(xué)曲線數(shù)據(jù)分析和處理方法—JIP-test,提供有關(guān)PSⅡ反應(yīng)中心、捕光天線復(fù)合體以及PSⅡ供體側(cè)、受體側(cè)結(jié)構(gòu)和功能的詳細(xì)信息[13]。由于PSⅠ天線色素發(fā)出瞬時(shí)熒光信號(hào)非常弱,而氧化態(tài)PSI反應(yīng)中心(P700+)特異性反射820 nm光[14-15],因此,通過(guò)同步測(cè)量820 nm光反射信號(hào)來(lái)檢測(cè)PSⅠ反應(yīng)中心(P700)及原初電子供體質(zhì)藍(lán)素(PC),從而更深入了解植物光合機(jī)構(gòu)對(duì)逆境的響應(yīng),目前已用于研究溫度[16]、光照[17]、干旱[18]、鹽堿[19-20]、重金屬[21]和除草劑[22]等非生物脅迫下植物的光合性能。
鈣(Ca2+)是植物必需營(yíng)養(yǎng)元素,且作為第二信使對(duì)環(huán)境信號(hào)和內(nèi)源激素等許多刺激有靈敏的反應(yīng),它穩(wěn)定膜系統(tǒng)結(jié)構(gòu)并控制酶活性[23-25],當(dāng)正常條件下植物所需的Ca2+量應(yīng)用于鹽脅迫植物時(shí),鹽脅迫植物表現(xiàn)出Ca2+缺乏狀況[26],添加適量外源Ca2+可以緩解Ca2+缺乏,維持質(zhì)膜的基本結(jié)構(gòu)和功能,保證鹽脅迫下Ca2+信號(hào)系統(tǒng)的正常傳遞[26-29]。Ca2+也是光合釋氧的必要因素[25,27],外源Ca2+可以顯著提高鹽脅迫下部分物種的葉綠素含量和凈光合速率[26,28]。外源鈣緩解蔬菜作物逆境脅迫的作用機(jī)理已有許多報(bào)道,然而關(guān)于鈣離子誘導(dǎo)鹽脅迫下光合作用反應(yīng)和光合機(jī)構(gòu)變化的信息較少。
本研究針對(duì)外源鈣對(duì)鹽脅迫下加工番茄幼苗快速葉綠素?zé)晒夂?20 nm光反射動(dòng)力學(xué)的影響,探討外源鈣緩解蔬菜作物鹽害的光合生理機(jī)制,并利用主成分分析綜合評(píng)價(jià)不同鈣濃度處理的效果,以期為提高鹽環(huán)境下蔬菜作物產(chǎn)量提供理論依據(jù)。
試驗(yàn)于2020年4月在石河子大學(xué)農(nóng)學(xué)院試驗(yàn)站進(jìn)行,供試材料為耐鹽性強(qiáng)的加工番茄(Lycopersicon esculentumMill.)自交品系‘KT-7’,由石河子大學(xué)農(nóng)學(xué)院提供。選取飽滿一致加工番茄種子,經(jīng)消毒、浸種、催芽后,播于草炭∶蛭石=2∶1 (V/V)基質(zhì)。幼苗長(zhǎng)至2葉1心時(shí),挑選長(zhǎng)勢(shì)整齊、形態(tài)良好的幼苗進(jìn)行水培。將幼苗莖底部用海綿條包好,固定在開好5孔的泡沫板上,定植于裝有10 L Hoagland完全營(yíng)養(yǎng)液(pH = 6.2)的12 L水桶中,每桶5株,為防止光照使桶內(nèi)營(yíng)養(yǎng)液溫度升高和營(yíng)養(yǎng)液表面生長(zhǎng)綠藻,用黑色噴漆將桶身透光處噴滿。每3天更換一次營(yíng)養(yǎng)液,試驗(yàn)期間營(yíng)養(yǎng)液全天通氣。
幼苗培養(yǎng)至4葉1心時(shí)分成6組進(jìn)行處理(表1),鹽脅迫環(huán)境:100 mmol/L NaCl于處理時(shí)直接加入營(yíng)養(yǎng)液中,在NaCl脅迫下設(shè)外源噴施5個(gè)CaCl2濃度處理:0 (蒸餾水)、5、10、15、20 mmol/L,分別記為Ca0、Ca5、Ca10、Ca15、Ca20,以未添加NaCl的營(yíng)養(yǎng)液為對(duì)照(CK),每日上午10:00進(jìn)行1次葉面噴施CaCl2,以均勻附于葉面且不滴落為準(zhǔn)。每個(gè)處理共15株,隨機(jī)排列試驗(yàn),設(shè)3次重復(fù),每個(gè)重復(fù)5株。在處理第3、6、9天后,選擇第4片真葉測(cè)定快速葉綠素?zé)晒狻?20 nm光反射,處理9天后將各處理植株收獲進(jìn)行生長(zhǎng)指標(biāo)測(cè)定。
表1 試驗(yàn)處理Table 1 Experimental treatments
分別用直尺和游標(biāo)卡尺測(cè)量幼苗株高(子葉節(jié)至頂部生長(zhǎng)點(diǎn))、莖粗(子葉節(jié)處粗度)。用蒸餾水將根系表面鹽分清洗干凈,吸水紙吸干根系表面水分后,將地上部和地下部分開測(cè)定其鮮重,得到地上部、地下部鮮重,然后將地上部和地下部分別放入信封中進(jìn)行105℃殺青30 min,80℃烘干到恒重,得到地上部、地下部干重。
應(yīng)用連續(xù)激發(fā)式熒光儀M-PEA (Hansatech,英國(guó)),參照Schansker等[14]方法,葉片先暗適應(yīng)30 min,然后測(cè)定葉片OJIP曲線和820 nm光反射曲線。從OJIP曲線直接獲得熒光參數(shù):Fo(初始熒光,O相)、FK(0.3 ms時(shí)熒光,K相)、FJ(2 ms時(shí)熒光,J相)、FI(30 ms時(shí)熒光,I相)、Fm(最大熒光,P 相)。根據(jù)Strasser等[12]方法對(duì)OJIP曲線進(jìn)行JIP-test分析,得到衍生參數(shù):
1) 按公式Vt= (Ft-Fo)/(Fm-Fo)對(duì)OJIP曲線進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化得到相對(duì)可變熒光Vt曲線,按公式ΔVt=Vt(處理)-Vt(對(duì)照)對(duì) Vt曲線中各處理與對(duì)照作差后,得到相對(duì)可變熒光的差異動(dòng)力學(xué)ΔVt曲線。
2) 性能指數(shù):以吸收光能為基礎(chǔ)的PSⅡ性能指數(shù) PIabs= (RC/ABS)[φPo/(1-φPo)][Ψo/(1-Ψo)]。
3) 量子產(chǎn)額或能量分配比率參數(shù):PSⅡ最大光化學(xué)效率Fv/Fm= φPo= (Fm-Fo)/Fm;原初光化學(xué)反應(yīng)(電子傳遞至)效率Fv/Fo= φPo/(1-φPo);捕獲的激子將電子傳遞到電子傳遞鏈中超過(guò)QA的其它電子受體概率Ψo= ETo/TRo= 1-VJ;用于電子傳遞的量子產(chǎn)額 φEo= ETo/ABS = φPo×Ψo;用于熱耗散的量子比率φDo= 1-φPo= Fo/Fm;用于還原PSⅠ受體側(cè)末端電子受體的量子產(chǎn)額φRo= REo/ABS = TRo/ABS(1-VI)。
4) 達(dá)到最大熒光值Fm時(shí),單位葉截面積量子通量:?jiǎn)挝蝗~截面積吸收的光能ABS/CSm≈ Fm;單位葉截面積捕獲的光能TRo/CSm= φPo(ABS/CSm);單位葉截面積電子傳遞的能量ETo/CSm= φEo(ABS/CSm);單位葉截面積的熱耗散DIo/CSm= (ABS/CSm)-(TRo/CSm);單位葉截面積反應(yīng)中心數(shù)量RC/CSm=φPo(VJ/Mo)(ABS/CSm)。
5) 能量比通量:?jiǎn)挝籔SⅡ活性反應(yīng)中心(PSⅡRCs)吸收的光能ABS/RC = Mo(1/VJ)(1/φPo);單位活性PSⅡ RCs捕獲用于還原QA的能量TRo/RC =Mo(1/VJ);單位活性PSⅡ RCs捕獲用于電子傳遞的能量ETo/RC = Mo(1/VJ)Ψo;單位活性PSⅡ RCs熱耗散的能量DIo/RC = ABS/RC-TRo/RC。
6) 參照Guo等[22]的方法,排除其他因素對(duì)820 nm光反射的干擾,采用MR/MRo表示820 nm光反射動(dòng)力學(xué)曲線,MRo是光化照明開始時(shí)(0.7 ms)信號(hào)值,定量分析不同處理對(duì)820 nm光反射的影響,根據(jù)MR/MRo曲線計(jì)算以下參數(shù),ΔMRfast/MRo=(MRo-MRmin)/MRo,表示快速下降階段反映PC和P700的氧化態(tài);ΔMRslow/MRo= (MRmax-MRmin)/MRo,表示緩慢上升階段反映PC+和P700+的再還原狀態(tài);Vox表示PC和P700氧化速率;Vred表示PC+和P700+再還原速率。
文中數(shù)據(jù)為3次重復(fù)的平均值,采用Microsoft Excel 2019進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與計(jì)算,用SPSS 22.0對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行單因素方差分析和主成分分析,結(jié)合Duncan檢驗(yàn)法對(duì)顯著性差異(P<0.05)進(jìn)行多重比較,用OriginPro軟件進(jìn)行作圖。
表2所示,鹽脅迫下加工番茄幼苗生長(zhǎng)顯著受到抑制,Ca0處理的株高、莖粗、地上部鮮重與干重、地下部鮮重與干重分別比CK顯著降低了40.05%、25.94%、63.60%、39.74%、53.83%、47.37%,當(dāng)Ca2+濃度≤15 mmol/L時(shí),生長(zhǎng)指標(biāo)隨Ca2+濃度升高呈增加趨勢(shì),Ca15處理對(duì)鹽脅迫抑制幼苗生長(zhǎng)的緩解作用最佳,Ca15處理的株高、莖粗、地上部鮮重、地上部干重、地下部鮮重和地下部干重分別比Ca0處理增加33.19%、21.72%、129.94%、38.13%、149.50%和117.50%。
表2 外源CaCl2對(duì)鹽脅迫下加工番茄幼苗生長(zhǎng)的影響Table 2 Effects of exogenous CaCl2 on the plant growth parameters of processing tomato seedlings under salt stress
圖1-a、b、c顯示,隨鹽脅迫時(shí)間延長(zhǎng),不同濃度CaCl2處理下葉片OJIP曲線發(fā)生不同程度變形,鹽脅迫9天時(shí),與CK相比,Ca0處理下OJIP曲線發(fā)生變形:K相出現(xiàn)、J相升高、I-P相振幅減小、曲線趨于平緩,與Ca0相比,Ca15處理曲線變形幅度最小。鹽脅迫9天,與CK相比,Ca0處理下Vt曲線的 K、J相明顯上升 (圖1-d、e、f),ΔVt曲線中ΔK>0 (圖1-g、h、i),表明PSⅡ供體側(cè)向下游提供電子能力減弱,放氧復(fù)合體(OEC)受到傷害,ΔJ>0,說(shuō)明(初級(jí)醌受體QA還原形式)大量積累,PSⅡ受體側(cè)QA至QB電子傳遞被抑制,綜上PSⅡ反應(yīng)中心供體側(cè)和受體側(cè)均遭到鹽脅迫傷害。當(dāng)CaCl2濃度≤15 mmol/L時(shí),ΔK、ΔJ隨Ca2+濃度增加而減小,Ca15處理最小,當(dāng)Ca2+濃度>15 mmol/L時(shí),Ca20處理的ΔK、ΔJ甚至高于Ca0處理,說(shuō)明適宜濃度外源Ca2+能減輕鹽脅迫對(duì)PSⅡ反應(yīng)中心供體側(cè)和受體側(cè)電子傳遞的抑制,提高植物耐鹽性,其中15 mmol/L Ca2+緩解效果最佳,而20 mmol/L Ca2+則表現(xiàn)出加重鹽脅迫傷害。
圖1 外源CaCl2對(duì)鹽脅迫下加工番茄幼苗葉片快速葉綠素?zé)晒庹T導(dǎo)OJIP曲線(a、b、c)、相對(duì)可變熒光Vt曲線(d、e、f )及相對(duì)可變熒光的差異動(dòng)力學(xué)ΔVt曲線(g、h、i)的影響Fig.1 Effects of exogenous CaCl2 on the fast chlorophyll a fluorescence induction curves OJIP (a, b, c), relative variable fluorescence curves Vt (d, e, f ) and differential kinetic curves ΔVt (g, h, i) in leaves of processing tomato seedlings under salt stress
Fv/Fo表示PSⅡ潛在活性,VJ反映2 ms時(shí)PSⅡRCs關(guān)閉程度[11]。圖2顯示,隨鹽脅迫天數(shù)增加,F(xiàn)v/Fo逐漸減小,VJ逐漸增大,即PSⅡ潛在活性與PSⅡ RCs關(guān)閉程度呈反比,F(xiàn)v/Fo隨CaCl2濃度增加呈先升高后降低的趨勢(shì)。鹽脅迫3天,Ca0、Ca20處理顯著低于其他CaCl2處理;鹽脅迫6天,CK處理顯著高于Ca0~Ca20處理;鹽脅迫9天,F(xiàn)v/Fo大小表現(xiàn)為:CK>Ca15>Ca10>Ca5>Ca0>Ca20,Ca0處理顯著低于CK,Ca15較Ca0處理Fv/Fo顯著升高39.67%且與CK無(wú)顯著差異,Ca20較Ca0處理Fv/Fo顯著降低23.92%且為最小值。鹽脅迫9天,VJ大小表現(xiàn)為:CK<Ca15<Ca10<Ca0<Ca5<Ca20,Ca0~Ca20處理均顯著高于CK,與Ca0處理相比,Ca5、Ca10處理VJ無(wú)顯著差異,Ca20處理VJ顯著升高22.43%,Ca15處理VJ顯著降低18.35%。綜上,鹽脅迫降低PSⅡ活性,抑制QA被還原,Ca15處理能有效緩解上述傷害,但Ca2+濃度過(guò)高(如Ca20處理)則加重鹽脅迫傷害。
圖2 外源CaCl2對(duì)鹽脅迫下加工番茄幼苗Fv/Fo和VJ的影響Fig.2 Effects of exogenous CaCl2 on the Fv/Fo and VJ in leaves of processing tomato seedlings under salt stress
Fv/Fm是反映PSⅡ活性中心光能轉(zhuǎn)換效率的重要參數(shù),PIabs是指以吸收光能為基礎(chǔ)的性能指數(shù)。圖3顯示,F(xiàn)v/Fm與PIabs變化趨勢(shì)相同,隨鹽脅迫時(shí)間增加而逐漸減小,隨CaCl2濃度增大呈先升后降,Ca0處理在整個(gè)鹽脅迫過(guò)程中Fv/Fm與PIabs均顯著低于CK。鹽脅迫3天,Ca5、Ca10、Ca15處理下Fv/Fm以及Ca5處理下PIabs顯著高于Ca0處理;鹽脅迫6天,Ca5、Ca10、Ca15處理下Fv/Fm與PIabs均顯著高于Ca0處理,Ca20處理下Fv/Fm與PIabs與Ca0處理差異不顯著;鹽脅迫9天,F(xiàn)v/Fm與PIabs大小依次為:CK>Ca15>Ca10>Ca5>Ca0>Ca20,與Fv/Fm相比鹽脅迫對(duì)PIabs的影響更明顯,反映加工番茄葉片PIabs對(duì)鹽脅迫的敏感性強(qiáng)于Fv/Fm,Ca0~Ca20處理依次與CK相比PIabs分別降低了77.42%、76.34%、51.04%、29.31%、90.68%,與Ca0處理相比,Ca5、Ca10處理Fv/Fm差異不顯著,Ca20處理 Fv/Fm顯著降低、PIabs沒(méi)有顯著差異,Ca15與Ca0處理相比Fv/Fm與PIabs均顯著升高,說(shuō)明15 mmol/L CaCl2更好地緩解了鹽脅迫誘導(dǎo)的光合性能降低,Ca20處理則未表現(xiàn)出緩解鹽脅迫損傷的作用。
圖3 外源CaCl2對(duì)鹽脅迫下加工番茄幼苗Fv/Fm和PIabs的影響Fig.3 Effects of exogenous CaCl2 on the Fv/Fm and PIabs in leaves of processing tomato seedlings under salt stress
Ψo、φEo、φDo用來(lái)反映 PSⅡ受體側(cè)變化,φRo是用于還原PSI受體側(cè)末端電子受體的量子產(chǎn)額。圖4顯示,隨鹽脅迫天數(shù)增加,Ψo、φEo遞減,φDo遞增。與CK相比,鹽脅迫3天Ca0處理Ψo、φEo未觀察到明顯差異;鹽脅迫6天,Ca0處理下Ψo、φEo顯著低于CK,與Ca0處理相比,Ca10處理Ψo、φEo無(wú)顯著差異,Ca5、Ca15處理Ψo、φEo顯著增加,Ca20處理Ψo、φEo顯著減?。畸}脅迫9天,CK處理Ψo、φEo顯著高于Ca0~Ca20處理,與Ca0處理相比,Ca5、Ca10處理無(wú)顯著差異,Ca20處理顯著降低,而Ca15處理顯著升高。φDo隨CaCl2濃度升高呈先降后升的趨勢(shì),整個(gè)鹽脅迫過(guò)程Ca0處理下φDo顯著高于CK,鹽脅迫9天,Ca0~Ca20處理依次較CK上升36.09%、25.48%、13.34%、4.79%、67.92%,與Ca0處理相比,Ca5、Ca10處理φDo無(wú)顯著差異,Ca20處理φDo顯著增大,而Ca15處理φDo顯著降低且與CK無(wú)顯著差異。φRo隨處理時(shí)間延長(zhǎng)變化不大,鹽脅迫9天Ca0處理顯著低于CK,Ca20與Ca0處理無(wú)顯著差異,Ca15處理顯著高于Ca0處理并與CK差異不顯著。綜上,說(shuō)明鹽脅迫下施加15 mmol/L CaCl2能夠降低熱耗散的量子比率,從而提高電子傳遞的量子產(chǎn)額。
圖4 外源CaCl2對(duì)鹽脅迫下加工番茄幼苗量子產(chǎn)額的影響Fig.4 Effects of exogenous CaCl2 on the yield flux ratios in leaves of processing tomato seedlings under salt stress
能量分配參數(shù)以“雷達(dá)圖”形式表示(圖5),隨鹽脅迫時(shí)間延長(zhǎng),處理間能量分配參數(shù)差異逐漸明顯。對(duì)葉截面積而言,鹽脅迫6、9天,與CK相比,Ca0處理下單位葉截面積中活性反應(yīng)中心數(shù)量(RC/CSm)及吸收、捕獲和傳遞的能量(ABS/CSm、TRo/CSm、ETo/CSm)明顯降低,而單位葉截面積熱耗散(DIo/CSm)大于CK,與Ca0處理相比,Ca15處理下RC/CSm、ABS/CSm、TRo/CSm、ETo/CSm明顯增大,DIo/CSm則減小,鹽處理下RC/CSm大小依次為:Ca15>Ca10>Ca5>Ca0>Ca20;對(duì)反應(yīng)中心而言,鹽脅迫 6、9天,與CK相比,Ca0處理下單位活性反應(yīng)中心吸收、捕獲和熱耗散的能量(ABS/RC、TRo/RC、DIo/RC)均高于CK,用于電子傳遞的能量(ETo/RC)低于CK,與Ca0處理相比,Ca15處理下ABS/RC、TRo/RC、DIo/RC明顯降低,而ETo/RC升高,鹽處理下 DIo/CSm、DIo/RC 大小均為:Ca20>Ca0>Ca5>Ca10>Ca15,綜上Ca15處理逆轉(zhuǎn)了鹽脅迫誘導(dǎo)活性反應(yīng)中心數(shù)量減少、熱耗能升高,提高了用于電子傳遞的能量,降低能量的熱耗散,優(yōu)化了反應(yīng)中心能量分配。
圖5 外源CaCl2對(duì)鹽脅迫下加工番茄幼苗能量分配參數(shù)的影響Fig.5 Effects of exogenous CaCl2 on the energy distribution parameters in leaves of processing tomato seedlings under salt stress
葉片暗適應(yīng)后PSⅠ反應(yīng)中心處于完全還原狀態(tài),照光后PSⅠ逐漸氧化,820 nm光反射強(qiáng)度逐漸下降,圖6顯示,與CK相比,820 nm光反射曲線在鹽脅迫下發(fā)生變形,表現(xiàn)為下降階段最低點(diǎn)升高和上升階段最高點(diǎn)降低,說(shuō)明PSⅠ氧化還原能力被鹽脅迫抑制,鹽脅迫3、6天Ca0處理變形幅度最大,鹽脅迫9天Ca20處理變形幅度超過(guò)Ca0處理,Ca10、Ca15處理變形幅度較小。
圖6 外源CaCl2對(duì)鹽脅迫下加工番茄幼苗調(diào)制820 nm反射動(dòng)力學(xué)曲線的影響Fig.6 Effects of exogenous CaCl2 on the modulated 820 nm reflection kinetics curves in leaves of processing tomato seedlings under salt stress
如圖7所示,ΔMRfast/MRo、ΔMRslow/MRo、Vox、Vred隨時(shí)間持續(xù)變化不明顯,鹽脅迫9天,隨Ca2+濃度增加,ΔMRfast/MRo、ΔMRslow/MRo、Vox、Vred呈先增大后減小,在Ca0處理下均顯著低于CK,與Ca0處理相比,當(dāng)Ca2+濃度≤15 mmol/L時(shí)顯著升高,在Ca20處理顯著降低,說(shuō)明適宜濃度外源Ca2+能有效促進(jìn)鹽脅迫下植物體PSⅠ氧化還原性能,Ca2+濃度過(guò)高(Ca20處理)則加重鹽脅迫對(duì)PSⅠ氧化還原性能的抑制,其中Ca15處理對(duì)鹽脅迫誘導(dǎo)降低PSⅠ氧化還原性能的緩解作用最佳。
圖7 外源CaCl2對(duì)鹽脅迫下加工番茄幼苗葉片調(diào)制 820 nm 動(dòng)力學(xué)參數(shù)的影響Fig.7 Effects of exogenous CaCl2 on the parameters of the modulated 820 nm reflection kinetics in leaves of processing tomato seedlings under salt stress
主成分分析(principal components analysis, PCA)也稱主分量分析,旨在利用“降維”的思想,把多指標(biāo)轉(zhuǎn)化為少數(shù)幾個(gè)綜合指標(biāo)。快速葉綠素?zé)晒夂?20 nm光反射動(dòng)力學(xué)參數(shù)具有不同的量綱與數(shù)量級(jí),為了避免其對(duì)結(jié)果的影響,主成分分析前對(duì)處理9天后的原始數(shù)據(jù)進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化,標(biāo)準(zhǔn)化數(shù)據(jù)通過(guò)PCA,根據(jù)特征值大于1的標(biāo)準(zhǔn)提取到兩個(gè)主成分,其特征值、貢獻(xiàn)率、累計(jì)貢獻(xiàn)率等如表3所示,特征值分別為15.769、1.632,貢獻(xiàn)率分別為82.996%、8.591%,累積貢獻(xiàn)率達(dá)91.587%,表明這兩個(gè)相互獨(dú)立的主成分能夠反映19個(gè)指標(biāo)91.587%的信息,符合分析要求。
表3 兩個(gè)主成分的載荷矩陣、特征值及貢獻(xiàn)率Table 3 Component matrix, Eigen values, and contributing rate of two principal components
主成分載荷矩陣反映各指標(biāo)對(duì)此主成分負(fù)荷相對(duì)大小與作用的方向,即該指標(biāo)對(duì)主成分的影響程度。表3中,第一主成分(principal component 1,PC1)絕對(duì)值較高的正向特征向量指標(biāo)有Fv/Fo、Fv/Fm、ETo/CSm、TRo/CSm、ΔMRfast/MRo,PC1 可稱為光合反應(yīng)中心工作效率的量度。第二主成分(principal component 2, PC2)絕對(duì)值較高的正向特征向量指標(biāo)有ETo/RC、TRo/RC,PC2可稱為PSⅡ RCs支配光能的量度,由表4可知,不同處理綜合排名依次為CK>Ca15>Ca10>Ca5>Ca0>Ca20。
表4 鹽脅迫下加工番茄幼苗在不同濃度外源CaCl2處理的綜合得分及排名Table 4 The comprehensive score and ranking of processing tomato seedlings treated with different concentrations of exogenous CaCl2 under salt stress
植物響應(yīng)鹽脅迫最直觀變化就是植株生長(zhǎng)受到明顯抑制,土壤鹽漬化已成為番茄設(shè)施栽培及優(yōu)質(zhì)高產(chǎn)的限制因素之一,鹽分導(dǎo)致番茄幼苗體內(nèi)發(fā)生離子失衡和質(zhì)膜過(guò)氧化,通過(guò)破壞光合作用等一系列生理過(guò)程來(lái)抑制番茄生長(zhǎng)[4,29]。本試驗(yàn)結(jié)果表明葉面噴施外源15 mmol/L CaCl2有效緩解鹽脅迫對(duì)加工番茄幼苗的生長(zhǎng)抑制(表2)。
葉綠素?zé)晒庠谝欢ǔ潭壬戏从抄h(huán)境因子對(duì)植物的影響,OJIP曲線包含PSⅡ原初光化學(xué)反應(yīng)及光合機(jī)構(gòu)電子傳遞狀態(tài)等過(guò)程[30],與植物異質(zhì)性、非生物脅迫程度有關(guān)[11,31],光合電子傳遞鏈的組成部分位于植物細(xì)胞類囊體膜上,鹽脅迫損傷植物葉片葉綠體中類囊體結(jié)構(gòu),降低光合色素含量和光合效率[7,31-33]。OJIP曲線J點(diǎn)、I點(diǎn)、IP相分別與PSⅡ受體側(cè)QA、質(zhì)體醌(PQ)、PSI受體側(cè)狀態(tài)有關(guān)[9,11,34],如果在極短時(shí)間內(nèi)(即J點(diǎn)之前,0.3 ms處)葉綠素?zé)晒馍仙霈F(xiàn)K點(diǎn),是因?yàn)殡娮觽鬟f中水裂解過(guò)程和Pheo (去鎂葉綠素)到QA部分被抑制,標(biāo)志PSⅡ供體側(cè)OEC活性被抑制[19]。本研究發(fā)現(xiàn),隨鹽脅迫時(shí)間延長(zhǎng),加工番茄幼苗葉片OJIP曲線出現(xiàn)K點(diǎn)、J點(diǎn)上升,I點(diǎn)、P點(diǎn)降低、I-P相振幅減小(圖1-a、b、c),在Ca0與Ca20處理中更為明顯,這與鹽脅迫在玉米[31]、葡萄[35]、綠豆[36]中的試驗(yàn)結(jié)果相似,I-P階段降低表明鹽脅迫降低PSI氧化還原能力[14],P點(diǎn)下降是由PSI受體側(cè)葉綠素蛋白降解或變性以及閉合PSⅡRCs數(shù)量的減少引起[9,34],而15 mmol/L CaCl2處理減輕上述鹽脅迫傷害。
Vt曲線 (圖1-d、e、f)及 ΔVt曲線 (圖1-g、h、i)更直觀表現(xiàn)OJIP曲線的不可見(jiàn)特征,明顯可見(jiàn)鹽脅迫誘導(dǎo)VK增加且ΔK>0反映PSⅡ供體側(cè)OEC受損,而OEC參與光合作用光反應(yīng)過(guò)程中水的光氧化,鹽脅迫削弱OEC電子轉(zhuǎn)移能力,因此推測(cè)鹽脅迫抑制加工番茄葉片中光能氧化水釋放電子的過(guò)程。同時(shí),VJ增加(圖2)是PSⅡ受體側(cè)QA向次級(jí)醌受體(QB)電子傳遞受阻的特異性標(biāo)志[22],表明鹽脅迫限制超出QA的電子運(yùn)輸,即(QA的還原形式)大量積累,濃度增加引發(fā)PSⅡ RCs閉合,結(jié)合鹽脅迫下捕獲激子將電子傳遞到超過(guò)QA其它電子受體的概率Ψo和用于電子傳遞的量子產(chǎn)額φEo顯著降低,能量耗散的量子效率φDo升高(圖4),表明鹽脅迫抑制PSⅡ受體側(cè)QA下游的電子傳遞,在其他植物研究中也發(fā)現(xiàn)了類似的結(jié)果[19,31,36],這些結(jié)果說(shuō)明PSⅡ受體側(cè)是鹽脅迫的靶點(diǎn),可能由于鹽脅迫導(dǎo)致QB從蛋白復(fù)合體脫落,使PSⅡ受體側(cè)PQ結(jié)合親和力降低[11]。據(jù)報(bào)道鹽脅迫對(duì)小麥的傷害位點(diǎn)為供體側(cè)[33],而在油菜葉中為受體側(cè)[37],表明鹽脅迫對(duì)不同物種光合電子傳遞鏈的傷害位點(diǎn)不同,本試驗(yàn)則表明加工番茄幼苗葉片PSⅡ供體側(cè)和受體側(cè)均受到鹽脅迫傷害,而鹽脅迫下施加外源15 mmol/L CaCl2可通過(guò)保護(hù)OEC結(jié)構(gòu),使光解水向PSⅡ提供電子,降低能量耗散,維持電子傳遞鏈正常運(yùn)行。
鹽脅迫下Fv/Fo、Fv/Fm降低是Fm減小和Fo增大共同作用的結(jié)果,說(shuō)明從PSⅡ反應(yīng)中心色素分子(P680)向QA電子傳遞受阻,且PSⅡ天線色素激發(fā)態(tài)非輻射耗散發(fā)生[32],F(xiàn)v/Fo降低表明鹽脅迫損傷類囊體膜結(jié)構(gòu)、有活性的反應(yīng)中心數(shù)量降低[38],F(xiàn)v/Fm降低表明鹽脅迫削弱PSⅡ光化學(xué)效率[30],進(jìn)一步分析發(fā)現(xiàn)Ca0處理單位葉截面積中RCs密度(RC/CSm)、吸收的光能(ABS/CSm)減少,表明鹽脅迫造成PSⅡRCs失活或天線色素結(jié)構(gòu)改變、降解,使捕獲、傳遞電子的光能(TRo/CSm、ETo/CSm)減少,但熱耗散(DIo/CSm)升高,表明加工番茄幼苗葉片受到鹽脅迫啟動(dòng)光合機(jī)構(gòu)的保護(hù)機(jī)制[11],進(jìn)一步表現(xiàn)為單位反應(yīng)中心捕獲的用于電子傳遞的能量(ETo/RC)明顯降低,而吸收、捕獲用于還原QA、熱耗散的能量(ABS/RC、TRo/RC、DIo/RC)增加,表明部分PSⅡRCs失活后,單位葉截面積吸收、捕獲、傳遞的光能降低,致使剩余有活性的RCs吸收、轉(zhuǎn)換光能及熱耗散的工作效率提高、用于傳遞電子的能量減少,從而保證在鹽脅迫下能量供應(yīng)。這是在PSⅡ中安全耗散過(guò)剩激發(fā)能量的機(jī)制之一—葉黃素循環(huán),其功能是通過(guò)非光化學(xué)猝滅的過(guò)程,將PSⅡ天線中過(guò)剩激發(fā)能作為熱量耗散,對(duì)保護(hù)光合電子傳遞鏈有積極作用,這個(gè)結(jié)果與前人[8,31,36,39]得出PSⅡ RCs對(duì)逆境響應(yīng)的結(jié)論一致。然而,鹽脅迫對(duì)加工番茄葉片PSⅡRCs數(shù)量與能量支配的負(fù)面影響被外源15 mmol/L CaCl2所抵消。
PIabs是以吸收光能為基礎(chǔ)、包含多個(gè)獨(dú)立參數(shù)(RC/ABS、φPo、Ψo等)的性能指數(shù),許多研究采用最大光化學(xué)效率(Fv/Fm)評(píng)估植物受脅迫程度,但一些研究認(rèn)為PIabs比Fv/Fm更敏感,可以準(zhǔn)確地反映脅迫對(duì)植物光合機(jī)構(gòu)的影響[11-12],在本研究中加工番茄幼苗葉片PIabs對(duì)鹽脅迫更為敏感(圖3),在Fv/Fm尚未發(fā)生變化時(shí),PIabs已出現(xiàn)明顯變化,Ψo是對(duì)PSⅡ反應(yīng)中心電子傳遞鏈性能的綜合評(píng)價(jià)指標(biāo)之一(圖4),PIabs主要反映PSⅡ反應(yīng)中心效率,試驗(yàn)表明,與Ca0處理相比,Ca15處理使鹽脅迫下加工番茄葉片的Ψo和PIabs均顯著升高,但PIabs升高程度大于Ψo,由此可見(jiàn),外源鈣對(duì)改善PSⅡ反應(yīng)中心之后的電子傳遞鏈性能更為顯著,從而提升整體光合性能,這與趙娜等[40]關(guān)于鉀肥提高抗蟲棉葉片PSⅡ性能的研究結(jié)果一致。
除植物葉片PSⅡ反應(yīng)中心容易受到逆境傷害外,PSⅠ反應(yīng)中心也是逆境脅迫作用位點(diǎn)之一,通常使用820 nm光反射來(lái)研究PSⅠ原初光化學(xué)反應(yīng)[10],葉片暗適應(yīng)后PSⅠ反應(yīng)中心處于完全還原狀態(tài),照光后PSⅠ逐漸氧化,820 nm光反射曲線處于快速下降階段代表P700和PC的氧化,最低點(diǎn)(MRmin)是PSⅠ氧化還原的轉(zhuǎn)折點(diǎn),當(dāng)來(lái)自PSⅡ的電子促進(jìn)PSⅠ還原,820 nm光反射曲線轉(zhuǎn)為慢速上升階段代表P700和PC再還原,對(duì)應(yīng)OJIP曲線I-P階段[15,22,30],因此,820 nm光反射曲線同時(shí)受PSⅠ和PSⅡ活性的影響,能夠反映PSⅠ和PSⅡ協(xié)調(diào)性,當(dāng)PSⅠ活性降低會(huì)反饋抑制PSⅡ向PSⅠ傳遞電子,加劇PSⅡ傷害程度[41],PSⅠ穩(wěn)定性可保證受損PSⅡ快速修復(fù)[42]。本試驗(yàn)中隨鹽脅迫天數(shù)增加,MR/MRo曲線(圖6)、PSⅠ性能參數(shù)(圖7)較PSⅡ性能指數(shù)PIabs(圖3)變化幅度明顯減小,這與前人[31,43]研究表明鹽脅迫對(duì)PSⅡ影響大于PSI的結(jié)果一致。本研究結(jié)果顯示,與CK相比,Ca0處理下MR/MRo曲線MRmin增大,ΔMRfast/MRo、ΔMRslow/MRo以及 Vox、Vred顯著降低,表明鹽脅迫抑制P700和PC氧化以及再還原過(guò)程,與Kan等[31]研究結(jié)果不同的是,在玉米對(duì)鹽脅迫響應(yīng)中820 nm光反射曲線下降階段未發(fā)現(xiàn)顯著變化,但其上升階段變化與本試驗(yàn)結(jié)果一致,此外,結(jié)合還原PSⅠ受體側(cè)末端電子受體的量子產(chǎn)額(φRo)減少(圖4),可推測(cè)PSI活性降低可能是PQ向傳遞電子的能力或數(shù)量下降,PSⅡ與PSI之間連通性變差,PSI受體側(cè)電子傳遞受阻,這種效應(yīng)與上文JIP-test分析得出鹽脅迫引起PSⅡ反應(yīng)中心活性降低一致,而15 mmol/L CaCl2處理能夠提高鹽脅迫下PSⅠ氧化還原能力。
施加外源15 mmol/L CaCl2通過(guò)耗散PSⅡ天線色素過(guò)剩激發(fā)能,減輕鹽脅迫氧化應(yīng)激對(duì)葉綠體的損傷,穩(wěn)定光合反應(yīng)中心結(jié)構(gòu)與功能,提高光化學(xué)效率和能量利用率,減輕鹽脅迫的光抑制,從而促進(jìn)加工番茄幼苗生長(zhǎng)。