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        QuEChERS-氣相色譜—串聯(lián)質(zhì)譜法測定茶葉中水胺硫磷農(nóng)藥殘留的不確定度評定

        2022-11-02 01:08:32陸振華于麗芳蔡丹萍
        食品與機(jī)械 2022年10期
        關(guān)鍵詞:標(biāo)準(zhǔn)檢測

        陸振華 于麗芳 蔡丹萍 李 成

        水胺硫磷是由德國拜耳公司研發(fā)的一種廣譜性有機(jī)磷殺蟲、殺螨劑,具觸殺、殺卵和胃毒作用,在昆蟲體內(nèi)能首先被氧化成毒性更大的水胺氧磷,抑制昆蟲體內(nèi)的乙酰膽堿酯酶[1]。水胺硫磷屬于高毒農(nóng)藥,已禁止在蔬菜、瓜果、茶葉、菌類、中草藥材上使用。GB 2763—2021《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品中農(nóng)藥最大殘留限量》中規(guī)定茶葉中水胺硫磷的最大殘留限量為0.05 mg/kg。近年來,茶葉中水胺硫磷超限量常有報道,如何提升農(nóng)藥殘留檢測結(jié)果的準(zhǔn)確性已成為相關(guān)檢測機(jī)構(gòu)的一項重要工作。

        目前,茶葉中農(nóng)藥殘留的檢測方法較多。對氣相色譜法[2-4]、氣相色譜—質(zhì)譜法[4-6]和液相色譜—質(zhì)譜法[7]測定茶葉中農(nóng)藥殘留的不確定度評定有較多報道,關(guān)于GB 23200.113—2018《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 植物源性食品中208種農(nóng)藥及其代謝物殘留量的測定 氣相色譜—質(zhì)譜聯(lián)用法》測定蔬菜中農(nóng)藥殘留的不確定度評定也有報道[8-9],而參照GB 23200.113—2018測定茶葉中農(nóng)藥殘留的不確定度評定還未見相關(guān)報道。茶葉基質(zhì)復(fù)雜,含有較多的生物堿、茶多酚和色素等對農(nóng)藥殘留檢測產(chǎn)生干擾的物質(zhì),檢測時需加入更多的凈化試劑,且茶葉含水率較低,在提取過程中需用水浸泡使細(xì)胞膨脹,與有機(jī)溶劑充分接觸,才能達(dá)到提高提取效率的目的。且茶葉農(nóng)殘檢測時,取樣量較少,稱樣量及均勻性對檢測結(jié)果的影響較大。因此茶葉的前處理對檢測結(jié)果的影響更大。對于各影響因素評定方法的處理,通?;厥章视酗@著性差異時,會將回收率代入計算公式以修正樣品的測定結(jié)果[10-11],但當(dāng)實際出具的檢測數(shù)據(jù)滿足標(biāo)準(zhǔn)要求時,對回收率的處理并不直接折算到結(jié)果中。評定用內(nèi)標(biāo)法定量時的不確定度,通常的處理方法是用內(nèi)標(biāo)濃度進(jìn)行評定再進(jìn)行合成[12-13],但內(nèi)標(biāo)法一般用同一種內(nèi)標(biāo),只與加標(biāo)的體積有關(guān)。

        研究基于CNAS-GL006—2019《化學(xué)分析中不確定度的評估指南》和JJF 1059.1—2012《測量不確定度評定與表示》,參照GB 23200.113—2018中QuEChERS-氣相色譜—串聯(lián)質(zhì)譜法測定茶葉農(nóng)藥殘留的方法,用單獨(dú)的數(shù)學(xué)模型將內(nèi)標(biāo)參與到評定過程中,將回收率以純度的方式參與到評定過程中,再對樣品稱量、體積引入、測量重復(fù)性等因素進(jìn)行評定,找出影響茶葉中水胺硫磷檢測結(jié)果測量不確定度的主要原因,以期為實驗室檢測茶葉中水胺硫磷時進(jìn)一步提高檢測數(shù)據(jù)的可靠性提供參考。

        1 材料與方法

        1.1 儀器與試劑

        氣相色譜質(zhì)譜聯(lián)用儀:GCMS-TQ8040型,日本SHIMADZU公司;

        氮吹儀:N-EVAP 111型,美國Organomation公司;

        旋渦儀:XH-B型,江蘇康健醫(yī)療用品有限公司;

        超聲儀:KH-500DE型,昆山禾創(chuàng)超聲儀器有限公司;

        離心機(jī):TG1850-WS型,上海盧湘儀離心機(jī)儀器有限公司;

        電子天平:SL2002N型,上海民橋精密科學(xué)儀器有限公司;

        乙腈、乙酸乙酯:色譜純,美國Fisher公司;

        水胺硫磷(CAS:24353-61-5;相對擴(kuò)展不確定度±3%):1 000.0 μg/mL,北京曼哈格生物科技有限公司;

        環(huán)氧七氯B(CAS:1024-57-3;相對擴(kuò)展不確定度±3%):100.0 μg/mL,北京曼哈格生物科技有限公司;

        乙二胺-N-丙基硅烷化硅膠(PSA):50 μm,納譜分析技術(shù)(蘇州)有限公司;

        十八烷基硅烷鍵合硅膠(C18):50 μm,納譜分析技術(shù)(蘇州)有限公司;

        石墨化炭黑(GCB):100 μm,納譜分析技術(shù)(蘇州)有限公司。

        1.2 試驗方法

        1.2.1 試樣處理

        (1) 提?。簻?zhǔn)確稱取2 g粉碎均勻的茶葉樣品,于50 mL 塑料離心管中,加10 mL水渦旋混勻,靜置30 min。加入15 mL乙腈—醋酸(V乙腈∶V醋酸=99∶1)溶液、6 g無水硫酸鎂、1.5 g醋酸鈉、1顆陶瓷均質(zhì)子,渦旋1 min,超聲30 min,4 200 r/min離心5 min。

        (2) QuEChERS凈化:吸取8 mL上清液到15 mL塑料離心管中(內(nèi)含1 200 mg硫酸鎂、400 mg PSA、400 mg C18及200 mg GCB),渦旋混勻1 min。4 200 r/min離心5 min。

        (3) 濃縮:準(zhǔn)確吸取2 mL上清液至10 mL玻璃試管中,40 ℃水浴中氮吹至近干。加入20 μL的內(nèi)標(biāo)溶液(環(huán)氧七氯B 5 μg/mL),加入1 mL乙酸乙酯復(fù)溶,過0.22 μm 濾膜,用于GC-MS/MS測定,內(nèi)標(biāo)法定量。

        1.2.2 儀器檢測條件

        (1) 色譜條件:色譜柱為TG-5MS(30 m×0.25 mm×0.25 μm);流量1.69 mL/min;程序升溫條件為初溫50 ℃,保留1 min,以25 ℃/min升溫至125 ℃,再以10 ℃/min 升溫至300 ℃,保留6 min;進(jìn)樣口溫度250 ℃;不分流進(jìn)樣,進(jìn)樣量體積1 μL。

        (2) 質(zhì)譜條件:EI源;電子轟擊源70 eV;傳輸線溫度250 ℃;離子源溫度230 ℃;溶劑延遲2 min;多反應(yīng)監(jiān)測(MRM),優(yōu)化后的質(zhì)譜參數(shù)見表1。

        1.2.3 測量數(shù)學(xué)模型

        (1)

        式中:

        ω——待測樣品中水胺硫磷的含量,mg/kg;

        c——試樣中水胺硫磷的質(zhì)量濃度,μg/mL;

        v——總的樣品代表的試樣體積,mL;

        V1——加入提取溶劑的體積,mL;

        V2——移取上清液的體積,mL;

        V3——最終樣品復(fù)溶體積,mL;

        m——試樣稱樣量,g;

        fmethod——方法校正因子。

        1.2.4 不確定度分量的主要來源 根據(jù)試驗的測定,茶葉中水胺硫磷殘留量測定不確定度分量主要來源如圖1所示。

        表1 水胺硫磷及環(huán)氧七氯B的質(zhì)譜參數(shù)表Table 1 Mass spectrum parameters of isocarbophos and heptachlor epoxide B

        圖1 不確定度來源Figure 1 Analysis diagram of the uncertainty source

        2 水胺硫磷農(nóng)藥殘留不確定度分量的評定

        2.1 樣品稱量引入的相對標(biāo)準(zhǔn)不確定度urel(m)

        2.2 體積引入的相對標(biāo)準(zhǔn)不確定度urel(v)

        主要包含加入提取溶劑V1、移取上清液的體積V2、最終乙酸乙酯復(fù)溶的體積V3。

        2.2.1 加入提取溶劑引入的相對標(biāo)準(zhǔn)不確定度urel(V1)

        所以移液管移取15 mL乙腈—醋酸(V乙腈∶V醋酸=99∶1)溶液引入的相對標(biāo)準(zhǔn)不確定度為:

        2.2.2 移取上清液引入的相對標(biāo)準(zhǔn)不確定度urel(V2)

        移取2 mL上清液使用的是2 mL A級單標(biāo)線吸量管,其允許誤差為±0.010 mL,參考15 mL單標(biāo)線吸量管的評定過程,2 mL A級單標(biāo)線吸量管引入的不確定度為:

        實驗室溫度變化引入的標(biāo)準(zhǔn)不確定度為:

        所以吸量管移取2 mL上清液引入的相對標(biāo)準(zhǔn)不確定度為:

        2.2.3 乙酸乙酯復(fù)溶引入的相對標(biāo)準(zhǔn)不確定度urel(V3)

        使用1 mL A級單標(biāo)線吸量管移取1 mL乙酸乙酯復(fù)溶,1 mL A級單標(biāo)線吸量管允許誤差為±0.007 mL,參考15 mL單標(biāo)線吸量管的評定過程,1 mL A級單標(biāo)線吸量管引入的不確定度為:

        乙酸乙酯的體積膨脹系數(shù)為1.38×10-3℃-1,則溫度對乙酸乙酯體積變化引入的標(biāo)準(zhǔn)不確定度為:

        所以移取1 mL乙酸乙酯復(fù)溶的相對標(biāo)準(zhǔn)不確定度為:

        綜上,由提取液移取、提取液凈化分取和濃縮定容3個步驟引起的合成相對不確定度urel(v)為:

        2.3 標(biāo)準(zhǔn)工作溶液校準(zhǔn)過程引入的相對標(biāo)準(zhǔn)不確定度urel(c)

        該相對標(biāo)準(zhǔn)不確定度主要來源:標(biāo)準(zhǔn)工作溶液的配制、標(biāo)準(zhǔn)工作曲線擬合。

        2.3.1 標(biāo)準(zhǔn)工作溶液的配制引入的相對標(biāo)準(zhǔn)不確定度u1rel(c) 試驗使用的水胺硫磷標(biāo)樣購于北京曼哈格生物科技有限公司,標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)給出的質(zhì)量濃度為1 000.0 μg/mL,其擴(kuò)展不確定度為±3%(k=2),所以標(biāo)準(zhǔn)溶液的不確定度為:

        10 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)儲備液的配制:使用量程為20~200 μL的移液器移取1 000.0 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)原液100 μL到10 mL容量瓶,用乙酸乙酯定容至刻度。

        標(biāo)準(zhǔn)溶液稀釋過程:其數(shù)學(xué)模型為

        (2)

        式中:

        cx——稀釋后標(biāo)準(zhǔn)溶液的質(zhì)量濃度,μg/mL;

        cs——標(biāo)準(zhǔn)原液的質(zhì)量濃度,μg/mL;

        vy——移液器移取的體積,μL;

        vr——定容時容量瓶的體積,mL。

        1 μg/mL儲備液:用1 mL A級單標(biāo)線吸管吸取10 μg/mL 的儲備液1 mL到10 mL A級容量瓶中,用乙酸乙酯定容至刻度,其相對標(biāo)準(zhǔn)不確定度為:

        標(biāo)準(zhǔn)工作溶液的配制:移取上述標(biāo)準(zhǔn)溶液1 mL到茶葉空白基質(zhì)中,加20 μL環(huán)氧七氯B內(nèi)標(biāo)溶液(5 μg/mL),過膜,配制成質(zhì)量濃度分別為0.005,0.01,0.05,0.1,0.5 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)工作溶液。1 mL標(biāo)樣的移取使用的是1 mL A級單標(biāo)線吸量管,樣品復(fù)溶時已有評定,這里不重復(fù)評定。試驗選擇與被測樣品接近的urel(c0.01)=2.223%予以評定,則u1rel(c)=urel(c0.01)=2.223%。

        2.3.2 標(biāo)準(zhǔn)工作曲線擬合引入的不確定度 5種濃度的標(biāo)準(zhǔn)工作溶液由低到高分別上機(jī)進(jìn)樣,得到的濃度比及面積比的數(shù)據(jù)見表2。采用儀器自帶的定量軟件最小二乘法擬合,得到標(biāo)準(zhǔn)工作曲線的回歸方程和相關(guān)系數(shù)為:

        Arf=-0.025 042+5.544 347cri,R2=0.999 997,

        (3)

        式中:

        cri——標(biāo)準(zhǔn)溶液與內(nèi)標(biāo)溶液濃度比值;

        Arf——標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)峰面積與內(nèi)標(biāo)峰面積的比值。

        為了評定茶葉中水胺硫磷殘留限量時(即殘留量為0.05 mg/kg)的不確定度,所以假定某陽性樣品平行測定2次,得到樣液中平均質(zhì)量濃度為0.013 33 μg/mL,內(nèi)標(biāo)質(zhì)量濃度為0.1 μg/mL。其與內(nèi)標(biāo)濃度比的相對標(biāo)準(zhǔn)不確定度按式(4)計算:

        (4)

        表2 線性回歸方程擬合過程及結(jié)果?Table 2 Linear regression equation fitting and results

        式中:

        s——擬合標(biāo)準(zhǔn)工作曲線的標(biāo)準(zhǔn)偏差;

        b——擬合標(biāo)準(zhǔn)工作曲線的斜率,b=5.544 347;

        p——試樣測定的次數(shù),p=2;

        n——標(biāo)準(zhǔn)工作溶液的測定次數(shù),n=5;

        cr——試樣中水胺硫磷與內(nèi)標(biāo)濃度比的平均值,cr=0.133 3;

        cri——標(biāo)準(zhǔn)工作溶液中水胺硫磷與內(nèi)標(biāo)的系列濃度比。

        所以標(biāo)準(zhǔn)工作溶液校準(zhǔn)引入的相對標(biāo)準(zhǔn)不確定度為:

        2.4 重復(fù)性測量引入的不確定度urel(rep)

        2.5 方法回收率引入的不確定度urel(R)

        對市售茶葉按1.2試驗方法進(jìn)行檢測,在水胺硫磷目標(biāo)峰位置觀察其質(zhì)譜圖,無法識別出水胺硫磷特征離子的樣品確定為陰性樣品。稱取6份陰性茶葉樣品,添加量為0.05 mg/kg,測定回收率,結(jié)果見表3。

        表3 樣品添加回收率Table 3 Results of replicate recovery tests in samples

        標(biāo)準(zhǔn)不確定度采用平均值的標(biāo)準(zhǔn)偏差計算得到:

        因此方法回收率引入的不確定度需進(jìn)行修正。但通常情況下,檢測結(jié)果滿足標(biāo)準(zhǔn)要求時,不需要把回收率直接折算到檢測結(jié)果中,所以將回收率以水胺硫磷純度的方式參與到評定過程中,則

        2.6 合成標(biāo)準(zhǔn)不確定度的評定

        綜上所述,各因素相對不確定度分別為urel(m)=2.04%,urel(v)=0.778%,urel(c)=4.35%,urel(rep)=1.88%,urel(R)=3.37%,根據(jù)不確定度傳播公式對各分量進(jìn)行合成:

        u(ω)=0.050×6.22%=0.003 2 mg/kg。

        2.7 擴(kuò)展不確定度U(ω)

        取包含因子k=2,置信水平P=95%,則擴(kuò)展不確定度為:

        U(ω)=2u(ω)=2×0.003 2=0.007 mg/kg。

        測定結(jié)果:

        通過QuEChERS-氣相色譜—串聯(lián)質(zhì)譜法測定,該茶葉樣品中水胺硫磷殘留量結(jié)果為:

        ω=(0.050±0.007) mg/kg,k=2。

        3 結(jié)論

        通過QuEChERS-氣相色譜—串聯(lián)質(zhì)譜法測定茶葉中水胺硫磷殘留量的不確定度分析,得出該方法的檢測結(jié)果表示為ω=(0.050±0.007) mg/kg,k=2。從各標(biāo)準(zhǔn)不確定度分量數(shù)值大小可以看出,濃度c(涉及標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)純度、標(biāo)準(zhǔn)儲備液與標(biāo)準(zhǔn)工作溶液的配制、標(biāo)準(zhǔn)工作曲線校準(zhǔn)及內(nèi)標(biāo)加入量)引入的不確定度分量對合成標(biāo)準(zhǔn)不確定度貢獻(xiàn)最大,加標(biāo)回收試驗引入的不確定度對合成標(biāo)準(zhǔn)不確定度的貢獻(xiàn)次之,因此,可以通過使用不確定度更小的標(biāo)樣,用精度更高的量器配制標(biāo)線及加內(nèi)標(biāo)等方式降低相關(guān)不確定度分量,也可以通過改善樣品的前處理步驟(QuEChERS凈化、氮吹等),減少水胺硫磷殘留量的損失,特殊情況,還可以通過回收率的校準(zhǔn),來提高結(jié)果的準(zhǔn)確性,保證測量結(jié)果準(zhǔn)確、可靠。

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