吳沛柯,溫燕勤,周 娟,張金脈,李曉柒,張 含,潘 敦,師詠勇,2

(1.上海交通大學(xué)Bio-X研究院,教育部發(fā)育和神經(jīng)精神疾病遺傳學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海 200030;2.上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬上海精神衛(wèi)生中心 上海市精神疾病重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海 200030)

DNA自組裝技術(shù)(DNA納米技術(shù))是近幾年的研究熱點(diǎn),其中的自組裝指的是基本結(jié)構(gòu)單元(如DNA)利用非共價(jià)鍵的作用而自發(fā)結(jié)合成有序結(jié)構(gòu)的過(guò)程[1]。DNA分子具有尺寸可控制,組裝操作簡(jiǎn)易,成本低廉的獨(dú)特優(yōu)勢(shì),這為納米技術(shù)的進(jìn)一步發(fā)展提供了可能。生物學(xué)家Holliday在研究酵母細(xì)胞染色體同源重組過(guò)程中時(shí),意外觀察到兩條同源染色體的雙鏈DNA間形成了十字交叉結(jié)構(gòu),經(jīng)研究發(fā)現(xiàn)這是因?yàn)殡p鏈DNA發(fā)生了部分鏈交換。而后“結(jié)構(gòu)DNA納米技術(shù)”的開創(chuàng)者,美國(guó)科學(xué)家Seeman教授利用幾何學(xué)和計(jì)算學(xué)再次研究了Holliday結(jié)構(gòu)模型,發(fā)現(xiàn)Holliday結(jié)構(gòu)具有新的空間取向,并認(rèn)為以其作為基本單元可以拼接成二維甚至三維的有序復(fù)雜網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)[2]。之后Seeman教授對(duì)這種結(jié)構(gòu)的再發(fā)現(xiàn)和利用標(biāo)志著DNA自組裝技術(shù)的產(chǎn)生。經(jīng)歷了無(wú)數(shù)次嘗試后,Seeman教授最終在探索實(shí)驗(yàn)中構(gòu)建了一系列DNA納米結(jié)構(gòu),如經(jīng)典的四臂結(jié)結(jié)構(gòu)[2]。有了Seeman教授開創(chuàng)性的研究成果[3],后續(xù)生物學(xué)家相繼設(shè)計(jì)構(gòu)建了由兩股雙螺旋并排而成,內(nèi)部具有交叉(crossover)結(jié)構(gòu)且更加穩(wěn)定堅(jiān)固的DX結(jié)構(gòu),以及利用兩種tile(四臂結(jié)結(jié)構(gòu)單元)組裝出的條紋DNA平面網(wǎng)絡(luò)等,這為DNA納米材料的深入研究提供了多樣的模板[4-5]。

DNA自組裝實(shí)際上是熱力學(xué)驅(qū)動(dòng)下的DNA分子互補(bǔ)鏈之間自發(fā)互補(bǔ)配對(duì)的動(dòng)力學(xué)過(guò)程,依靠的是非共價(jià)鍵(如氫鍵、靜電作用等)。然而,如果想要使用tile構(gòu)建復(fù)雜結(jié)構(gòu),大量的邊界條件和多種單元組件會(huì)使得DNA序列設(shè)計(jì)難度的上升和保真度的下降。2006年Rothemund開發(fā)了一種從未報(bào)道過(guò)的DNA自組裝技術(shù)——DNA折紙術(shù)[6],該技術(shù)的誕生標(biāo)志著DNA納米技術(shù)新時(shí)代的來(lái)臨。DNA折紙術(shù)的基本原理是通過(guò)向一條長(zhǎng)的DNA腳手架鏈上加入一系列經(jīng)過(guò)特殊設(shè)計(jì)的短的DNA片段(訂書釘鏈),依據(jù)堿基互補(bǔ)原則,可以構(gòu)建出各種各樣的納米二維三維結(jié)構(gòu)。相較于傳統(tǒng)tile拼接自組裝技術(shù),DNA折紙術(shù)反應(yīng)條件更加簡(jiǎn)易,退火時(shí)間通常少于2 h,同時(shí)具有高精準(zhǔn)的可尋址性,該技術(shù)也可以組裝更為復(fù)雜的結(jié)構(gòu),折紙產(chǎn)物很容易實(shí)現(xiàn)MDa級(jí)別分子量。2007年,Douglas實(shí)驗(yàn)室[7]開創(chuàng)了DNA三維納米DNA結(jié)構(gòu)組裝的先河,首次成功運(yùn)用DNA折紙術(shù)制備出了410 nm的六螺旋納米管,并通過(guò)對(duì)該tile長(zhǎng)度和濃度的調(diào)整,構(gòu)建出了豐富的三維結(jié)構(gòu)。之后還有更為復(fù)雜的六面體、納米籠等結(jié)構(gòu)的出現(xiàn)。2009年,Douglas等[8]首次獲得蜂窩形狀的三維結(jié)構(gòu)單元,再通過(guò)分級(jí)組裝成更大尺寸,更為復(fù)雜的三維結(jié)構(gòu)。同年Dietz等[9]的弧線立體DNA納米結(jié)構(gòu)取得了成功。Han等[10]于2011年闡述了DNA折紙術(shù)用于構(gòu)造任意三維納米結(jié)構(gòu)的可能性,由于該三維結(jié)構(gòu)的腔體內(nèi)部可用于放置特定的藥物分子,這也為疾病的靶向治療提供了可能。

DNA折紙術(shù)為分子結(jié)構(gòu)的設(shè)計(jì)提供了前所未有的復(fù)雜性和納米級(jí)分辨率。DNA固有的納米尺度特性和分子識(shí)別特性使其有助于構(gòu)建各種復(fù)雜精細(xì)的納米結(jié)構(gòu),這也讓DNA在生物學(xué)[11]、醫(yī)學(xué)[12]、材料科學(xué)[13]和信息處理和存儲(chǔ)[14-15]等領(lǐng)域有著廣泛的應(yīng)用。有學(xué)者通過(guò)構(gòu)建5位納米開關(guān)操作系統(tǒng),實(shí)現(xiàn)了數(shù)據(jù)的寫入、擦除和重寫的功能,并能實(shí)現(xiàn)“或”“與”邏輯門。由于DNA納米結(jié)構(gòu)的獨(dú)特優(yōu)良特性,目前已經(jīng)有大量研究通過(guò)DNA分子生化處理后完成相應(yīng)的計(jì)算操作,進(jìn)而模擬數(shù)學(xué)運(yùn)算過(guò)程對(duì)問(wèn)題通過(guò)DNA反應(yīng)進(jìn)行求解。然而對(duì)于DNA納米開關(guān)的研究以及在DNA納米開關(guān)上進(jìn)行相應(yīng)操作的研究并不充分。如何實(shí)現(xiàn)DNA納米開關(guān)特定數(shù)據(jù)的輸入以及數(shù)據(jù)的連續(xù)輸入成為了研究熱點(diǎn)。本研究通過(guò)在骨架鏈中依次加入不同的數(shù)據(jù)鏈(訂書釘鏈),借助可以形成不同數(shù)目的環(huán)狀結(jié)構(gòu)來(lái)映射反應(yīng)的步驟,再通過(guò)凝膠電泳篩選出級(jí)聯(lián)反應(yīng)的具體步驟,進(jìn)而可以證明此開關(guān)的級(jí)聯(lián)放大作用,具體過(guò)程如圖1所示。本研究所構(gòu)建的納米開關(guān)級(jí)聯(lián)反應(yīng)結(jié)構(gòu)將有望在數(shù)據(jù)存儲(chǔ)釋放方面有所應(yīng)用。

1 材料和方法

1.1 材料

噬菌體M13mp18單鏈DNA和BtsCⅠ反應(yīng)酶均購(gòu)于New England Biolabs(NEB)公司,PEG購(gòu)于上海Bioscience公司,寡核苷酸Oligos若干(骨架鏈,填充鏈,數(shù)據(jù)鏈,引發(fā)鏈,尋址鏈)以及BtsCI限制性片段互補(bǔ)寡核苷酸均由杰李公司合成(PAGE法純化),PBS購(gòu)于GE生命科學(xué)HyClone公司,磁珠購(gòu)于Invitrogen公司,MgCl2、瓊脂糖均購(gòu)于Fisher Bio Reagents公司,TBE購(gòu)于上海Bioscienc公司,gel red購(gòu)于Biotium公司,MarkerⅣ和D15000 DNA Marker均購(gòu)于上海天根生化科技有限公司。

1.2 方法

1.2.1 設(shè)計(jì)寡核苷酸序列

寡核苷酸的設(shè)計(jì)參考了文獻(xiàn)[16]的序列并采用NUPACK軟件進(jìn)行結(jié)構(gòu)模擬和穩(wěn)定性驗(yàn)證。DNA納米開關(guān)的制備也參考了文獻(xiàn)[16]的報(bào)道,這種納米開關(guān)具有能夠同時(shí)輸入多個(gè)數(shù)據(jù)鏈的特點(diǎn),我們對(duì)此納米開關(guān)進(jìn)行了改進(jìn)以實(shí)現(xiàn)納米開關(guān)的級(jí)聯(lián)反應(yīng)。在本研究中,所采用的DNA納米開關(guān)是一段長(zhǎng)的DNA二聚物,它包含了一條長(zhǎng)的單鏈DNA支架(采用了M13病毒)和若干短的互補(bǔ)寡核苷酸鏈,而短的寡核苷酸將影響整個(gè)DNA納米結(jié)構(gòu)的形成以及納米開關(guān)的功能。本研究中短的寡核苷酸鏈中包含3條均勻分布的郵局鏈(post strand),可通過(guò)尋址鏈(address strand)替換,通過(guò)選擇不同的尋址鏈與數(shù)據(jù)鏈結(jié)合進(jìn)而形成數(shù)量不同的環(huán)狀結(jié)構(gòu)。尋址鏈核苷酸包含可以綁定到特定數(shù)據(jù)鏈(data strand)的單鏈延伸序列。同時(shí)本研究還創(chuàng)造性地設(shè)計(jì)了能夠與尋址鏈特異結(jié)合并含有toehold序列的引發(fā)鏈(trigger strand),通過(guò)數(shù)據(jù)鏈的加入可以釋放引發(fā)鏈進(jìn)而引發(fā)級(jí)聯(lián)反應(yīng),具體反應(yīng)過(guò)程如圖1(c)所示。當(dāng)加入數(shù)據(jù)鏈1后,數(shù)據(jù)鏈1與A0,A1互補(bǔ)配對(duì),中間的骨架鏈而會(huì)形成環(huán)狀結(jié)構(gòu),同時(shí)會(huì)釋放引發(fā)鏈1,引發(fā)鏈1與A2,A3互補(bǔ)配對(duì),A2,A3中間的骨架鏈形成環(huán)狀結(jié)構(gòu),同時(shí)釋放引發(fā)鏈2,最終納米開關(guān)會(huì)形成兩個(gè)環(huán)狀結(jié)構(gòu)。若只加入數(shù)據(jù)鏈2,數(shù)據(jù)鏈2可與A2,A3互補(bǔ)配對(duì),A0,A1不成環(huán),A2,A3成環(huán),最終形成一個(gè)環(huán)狀結(jié)構(gòu),數(shù)據(jù)鏈2作用與引發(fā)鏈1一樣,即使得A2和A3形成環(huán)狀結(jié)構(gòu)。具體的寡核苷酸序列見表1(第437～439頁(yè))。

表1 本文所用到的寡核苷酸序列Tab.1 Oligonucleotide sequences used in this study

(續(xù)表)

(續(xù)表)

圖1 納米開關(guān)的級(jí)聯(lián)反應(yīng)示意圖Fig.1 Sketch map of cascade reaction of nanoswitches

1.2.2 M13mp18噬菌體單鏈DNA的線性化

在PCR管(或96孔板)中加入5μL 100 nmol/L單鏈M13,再加入2.5μL 10×Cut Smart buffer,0.5μL 100μmol/LBtsCⅠ反應(yīng)酶(用于與BtsCⅠ酶配對(duì)的寡核苷酸序列為CTACTAATAGTAGTAGCATTAACA TCCAATAAATCATACA)和16μL去離子水,吹吸混勻后短暫離心,PCR儀加熱到95℃(30 s),儀器自然降溫到50℃溫度。退火完成后再加入1μLBtsCⅠ酶50℃孵育15 min,將混合物升溫至95℃1 min以滅活,最后快速降溫至4℃,通過(guò)電泳檢測(cè)線性化結(jié)果。

1.2.3 納米開關(guān)的構(gòu)建

在線性化后的20 nmol/L的M13鏈中加入至少10倍的骨架Oligos(提前將引發(fā)鏈與A1鏈混合)。混合物退火,退火條件為從90℃到20℃并且每分鐘下降1℃。退火后的產(chǎn)物用聚乙二醇(Polyethylene Glycol,PEG)沉降純化或磁珠純化均可以除去多余的未配對(duì)的寡核苷酸鏈,配對(duì)結(jié)果通過(guò)電泳檢測(cè)。然后混合物在1×PBS中稀釋以達(dá)到下一步操作所要求的濃度范圍。

1.2.4 純化納米開關(guān)

為了去除會(huì)影響級(jí)聯(lián)反應(yīng)的寡核苷酸(引發(fā)鏈),本實(shí)驗(yàn)需要在納米開關(guān)操作之前進(jìn)行納米開關(guān)的純化操作,本實(shí)驗(yàn)主要采用PEG沉淀去除過(guò)量低聚物[17]和磁珠純化這兩個(gè)方法進(jìn)行純化。

1.2.5 納米開關(guān)的操作和數(shù)據(jù)輸入

將上述構(gòu)建好的純化過(guò)后的納米開關(guān)稀釋至400 pmol/L以下,并分為4份5μL的初始溶液,并將數(shù)據(jù)鏈寡核苷酸的最終濃度控制在2.5 nmol/L。第1組加入一定量的數(shù)據(jù)鏈1,第2組加入等量的數(shù)據(jù)鏈2,同時(shí)第3組在未加入引發(fā)鏈的納米開關(guān)中加入數(shù)據(jù)鏈1,第4組同時(shí)加入數(shù)據(jù)鏈1和2(總量與前三組相同)。所有樣品均放置在25℃孵育40 min。

1.2.6 納米開關(guān)操作結(jié)果的檢測(cè)與鑒定

參考文獻(xiàn)[16]的方法,樣品在0.8%瓊脂糖凝膠中電泳,條件為180 V(恒定電壓)室溫下。用1×gel red(Biotium公司)與凝膠溶液混合,對(duì)凝膠進(jìn)行預(yù)染色。最后通過(guò)Bio-Rad Gel Doc XR+gel成像儀觀察膠圖,并對(duì)結(jié)果進(jìn)行分析。

2 結(jié)果與分析

2.1 M13線性化結(jié)果及納米開關(guān)的構(gòu)建

M13具有EcoRⅠ,SacⅠ和BamHⅠ等許多限制性酶切位點(diǎn),參考之前文章[16]的報(bào)道,實(shí)驗(yàn)最終選擇了限制性內(nèi)切酶BtsCⅠ的酶切位點(diǎn)進(jìn)行切割。由于M13為環(huán)狀單鏈DNA,結(jié)合的上樣緩沖液染料較少且不夠牢固,故顏色較淺,當(dāng)環(huán)狀DNA被切割成單鏈DNA后,與染料結(jié)合的能力不會(huì)有顯著提高,但是在瓊脂糖凝膠的遷移速率會(huì)有明顯的降低,此時(shí)可以通過(guò)電泳圖直觀地觀察。如圖2(a)(見第 440頁(yè))所示,線性化后的M13遷移速率(泳道2)小于單鏈環(huán)狀DNA(泳道3,4)。圖2(b)(見第 440頁(yè))展示了在線性化后的M13中加入骨架寡核苷酸后成功構(gòu)建了納米開關(guān)元件,泳道1為納米開關(guān)(M13mp18+Oligos)的條帶,泳道2為線性化M13條帶,由于納米開關(guān)為雙鏈結(jié)構(gòu),因而在電泳道上的遷移速率明顯低于線性化M13的遷移速率。

圖2 (a)M13的線性化和(b)納米開關(guān)的構(gòu)建電泳分析Fig.2 Electrophoretic analysis for(a)linearization of M13 and(b)construction of nanoswitches

2.2 納米開關(guān)的運(yùn)行和數(shù)據(jù)輸入

為了驗(yàn)證納米開關(guān)的運(yùn)行和數(shù)據(jù)輸入的效果,我們?cè)跇?gòu)建好的納米開關(guān)上進(jìn)行數(shù)據(jù)的輸入和檢測(cè)工作,在納米開關(guān)中加入不同數(shù)據(jù)鏈(實(shí)驗(yàn)組1～4分別加入數(shù)據(jù)鏈1,數(shù)據(jù)鏈2,不含引發(fā)鏈(trigger-free)的數(shù)據(jù)鏈1,數(shù)據(jù)鏈1+2),結(jié)果如圖3(a)所示。在納米開關(guān)中加入數(shù)據(jù)鏈1之后會(huì)引發(fā)該開關(guān)的級(jí)聯(lián)反應(yīng)(泳道1),最終會(huì)形成兩個(gè)環(huán)狀結(jié)構(gòu),這與同時(shí)加入數(shù)據(jù)鏈1和數(shù)據(jù)鏈2的作用一致(圖3(a)泳道4)。圖3(a)中泳道1和泳道4的條帶均在7 500～15 000 bp之間,且大體在同一位置,從而驗(yàn)證了該設(shè)想。在只有數(shù)據(jù)鏈2存在的條件下(圖3(a)泳道2),納米開關(guān)只能形成第二個(gè)環(huán),而在沒(méi)有引發(fā)鏈的條件下(圖3(a)泳道3)能且只能形成第一個(gè)環(huán),因此,實(shí)驗(yàn)組2和實(shí)驗(yàn)組3都只能形成一個(gè)環(huán),兩者電泳條帶位置相當(dāng),并且條帶位置低于實(shí)驗(yàn)組1和4。線性化的M13,構(gòu)建好的納米開關(guān)以及輸入不同數(shù)據(jù)鏈后的納米開關(guān)完整電泳結(jié)果如圖3(b)所示。圖3(b)結(jié)果表明線性化的M13遷移速率(泳道5)＞納米開關(guān)(泳道4)的遷移速率＞加入數(shù)據(jù)鏈2的納米開關(guān)的遷移速率(泳道1)＞加入數(shù)據(jù)鏈1的遷移速率(泳道3)=加入數(shù)據(jù)鏈1和2(泳道2)的遷移速率。最終得出結(jié)論,單鏈結(jié)構(gòu)的遷移速率＞雙鏈結(jié)構(gòu)的遷移速率＞雙鏈上有環(huán)狀結(jié)構(gòu)的速率,且環(huán)狀結(jié)構(gòu)越多,遷移速率越慢。

圖3 納米開關(guān)的(a)數(shù)據(jù)輸入和(b)運(yùn)行的電泳分析Fig.3 Electrophoretic analysis for(a)data input and(b)the whole process of nanoswitch

3 討 論

本次實(shí)驗(yàn)的設(shè)計(jì)主要參考了文獻(xiàn)[16]關(guān)于DNA納米結(jié)構(gòu)的可重寫記憶系統(tǒng)的實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)。在參考實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)上本研究創(chuàng)造性地構(gòu)建了一種可以引發(fā)級(jí)聯(lián)反應(yīng)的新型納米開關(guān)結(jié)構(gòu),并且能夠通過(guò)電泳的方法快速簡(jiǎn)便地檢測(cè)出結(jié)果。這種級(jí)聯(lián)反應(yīng)式的納米開關(guān)可以精確地控制納米結(jié)構(gòu)形成不同數(shù)目的環(huán)狀結(jié)構(gòu),根據(jù)堿基互補(bǔ)原則可以設(shè)計(jì)不同的開關(guān)序列(數(shù)據(jù)鏈)控制級(jí)聯(lián)反應(yīng)發(fā)生的位置和形成環(huán)狀結(jié)構(gòu)的數(shù)目。本實(shí)驗(yàn)采用的電泳方法與其他的檢測(cè)方法相比(包括熒光共振能量轉(zhuǎn)移(Fluorescence Resonance Energy Transfer,FRET)、光學(xué)輸出、電化學(xué)檢測(cè)或原子力顯微鏡(Atomic Force Microscope,AFM)相比,電泳檢測(cè)更加簡(jiǎn)單并且便宜,在實(shí)際應(yīng)用中可操作性更強(qiáng)。由于該電泳方法檢測(cè)時(shí)間短并且方法的操作難度較低,因此該方法適合于使用點(diǎn)檢測(cè),特別是可以考慮到使用手持式無(wú)緩沖凝膠系統(tǒng)(如Invitrogen e-gel系統(tǒng))。

在我們所構(gòu)建的納米開關(guān)結(jié)構(gòu)中,除了用于本實(shí)驗(yàn)簡(jiǎn)單的級(jí)聯(lián)反應(yīng)之外,由于DNA經(jīng)過(guò)組裝后的結(jié)構(gòu)具有獨(dú)特的納米尺度,可尋址性和力學(xué)剛性,且物理化學(xué)穩(wěn)定性等優(yōu)勢(shì),使得本實(shí)驗(yàn)構(gòu)建的納米開關(guān)結(jié)構(gòu)在數(shù)據(jù)讀取與存儲(chǔ)、生物檢測(cè)以及藥物運(yùn)輸?shù)确矫娑加袠O大的潛在應(yīng)用價(jià)值。

DNA納米開關(guān)級(jí)聯(lián)反應(yīng)的基本原理是,特定DNA序列結(jié)合DNA納米開關(guān)后,會(huì)引起DNA構(gòu)象變化。級(jí)聯(lián)反應(yīng)的不同狀態(tài)可以通過(guò)不同數(shù)量的環(huán)狀結(jié)構(gòu)得到體現(xiàn),并通過(guò)電泳圖進(jìn)行展示。通過(guò)納米開關(guān)兩種不同狀態(tài)之間的環(huán)狀數(shù)量來(lái)報(bào)告特定數(shù)據(jù)鏈的識(shí)別。數(shù)據(jù)鏈1和數(shù)據(jù)鏈2的加入使得DNA納米開關(guān)在瓊脂糖凝膠上的遷移不同,表明它們?cè)趦煞N可能狀態(tài)下的結(jié)構(gòu)不同。在數(shù)據(jù)存儲(chǔ)方面,大多基于DNA的邏輯系統(tǒng)都是二進(jìn)制的,因此也需要二進(jìn)制輸入格式,針對(duì)DNA納米開關(guān)可通過(guò)不同的DNA鏈分別代表0和1。之前學(xué)者通過(guò)構(gòu)造納米開關(guān),實(shí)現(xiàn)了不同數(shù)據(jù)輸入的快速檢測(cè)[16]。本研究所構(gòu)造的納米開關(guān)可以規(guī)定特定的數(shù)據(jù)鏈分別代表0,1,通過(guò)對(duì)納米開關(guān)的操作實(shí)現(xiàn)數(shù)據(jù)的快速存儲(chǔ)和讀取。隨著以寡核苷酸為基礎(chǔ)的技術(shù)(如合成生物學(xué)中的生物傳感和調(diào)節(jié)系統(tǒng))的復(fù)雜性增加,此類系統(tǒng)的復(fù)雜性和多路輸出信息變得可以利用。在生物標(biāo)志物檢測(cè)方面,本研究也有一定的實(shí)際應(yīng)用價(jià)值。例如,生物來(lái)源的兩個(gè)疾病標(biāo)記物寡核苷酸輸入(分別代表數(shù)據(jù)鏈1和數(shù)據(jù)鏈2),可以通過(guò)制造能夠引發(fā)和不能引發(fā)級(jí)聯(lián)反應(yīng)的納米開關(guān)對(duì)標(biāo)志物1(形成2個(gè)環(huán))和標(biāo)志物2(形成1個(gè)環(huán))進(jìn)行檢測(cè)。在藥物運(yùn)輸方面,一方面由于DNA的無(wú)毒性,另一方面目前研究表明由于病毒顆粒和DNA折紙結(jié)構(gòu)具有極為相似的形態(tài),這使得DNA折紙構(gòu)造的結(jié)構(gòu)更易被細(xì)胞主動(dòng)獲取[12]。同時(shí)DNA折紙結(jié)構(gòu)相較于簡(jiǎn)單的線性單、雙鏈DNA具有更強(qiáng)的剛性和穩(wěn)定性,因而在生物體環(huán)境中可持續(xù)相對(duì)較長(zhǎng)的時(shí)間不被降解,可以設(shè)計(jì)結(jié)構(gòu)來(lái)保護(hù)藥物分子,由于DNA折紙結(jié)構(gòu)還具有可尋址性,據(jù)此特性可以使藥物到達(dá)體內(nèi)的目標(biāo)靶點(diǎn)后才被降解發(fā)揮作用。因而未來(lái)可以通過(guò)構(gòu)造設(shè)計(jì)特定的納米開關(guān)結(jié)構(gòu)實(shí)現(xiàn)藥物的靶向運(yùn)輸。例如通過(guò)在引發(fā)鏈上搭載藥物,通過(guò)引發(fā)鏈的尋址功能實(shí)現(xiàn)藥物的靶向運(yùn)輸,實(shí)現(xiàn)藥物功能。

4 結(jié) 論

總之,本次研究已經(jīng)證明可以使用DNA納米開關(guān)以納摩爾水平的靈敏度有效地檢測(cè)不同數(shù)據(jù)鏈輸入下的納米開關(guān)級(jí)聯(lián)反應(yīng),通過(guò)不同數(shù)據(jù)鏈的輸入進(jìn)行數(shù)據(jù)的存儲(chǔ)和讀取。這些納米開關(guān)可以為各種目標(biāo)預(yù)先制作,并且可以作為混合讀取檢測(cè)分析的“智能試劑”。甚至有望可以從隨機(jī)寡核苷酸池中檢測(cè)到目標(biāo)序列(特定的數(shù)據(jù)鏈),或從胎牛血清中檢測(cè)到目標(biāo)序列,這可以說(shuō)明其在生物傳感應(yīng)用中的潛在用途。這些DNA納米開關(guān)價(jià)格低廉,與傳統(tǒng)的復(fù)雜檢測(cè)手段相比,材料成本很低。由于電泳操作技術(shù)要求性不高,同時(shí)材料只需要普通的凝膠電泳材料,因此這項(xiàng)技術(shù)有望為許多研究人員所接受。針對(duì)本實(shí)驗(yàn)所構(gòu)建的DNA納米結(jié)構(gòu),我們未來(lái)可以應(yīng)用該結(jié)構(gòu)于單倍體的精準(zhǔn)分型之中,即先選取某一人類基因組DNA某一性狀易感基因的目標(biāo)片段,在λ核酸外切酶作用下實(shí)現(xiàn)單鏈DNA模版的獲取,在根據(jù)該片段的SNP設(shè)計(jì)相應(yīng)的尋址鏈,通過(guò)將不同SNP整合到納米開關(guān)結(jié)構(gòu)之中,未來(lái)有望可以實(shí)現(xiàn)人類疾病基因的快速高效檢測(cè)。此外,我們的納米開關(guān)操作系統(tǒng)以核酸序列的分子識(shí)別為基礎(chǔ),通過(guò)整合適體或共軛體。記憶操作和簡(jiǎn)單的決策可以通過(guò)生物輸入或輸出,這個(gè)內(nèi)存類型有望應(yīng)用于整合利用分子機(jī)器人技術(shù),特別是DNA折紙結(jié)構(gòu),將數(shù)據(jù)存儲(chǔ)或計(jì)算與傳感或驅(qū)動(dòng)相結(jié)合。同時(shí)由于DNA特殊的生物學(xué)地位在,藥物靶向運(yùn)輸和靶向治療方面也有著潛在的巨大應(yīng)用價(jià)值。已經(jīng)有許多關(guān)于利用DNA折紙術(shù)得到的結(jié)構(gòu)作為模板組裝功能納米材料或分子,能夠獲得光學(xué)、電磁學(xué)等性能可控的納米器件[18-20]或藥物載體[21-23]。