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        優(yōu)選本土非釀酒酵母混合發(fā)酵在干紅葡萄酒中的應(yīng)用潛力分析

        2022-08-04 06:45:14梁麗紅高娉娉張馨文康文軍李敏王婧
        食品與發(fā)酵工業(yè) 2022年14期
        關(guān)鍵詞:酒樣乙酯釀酒

        梁麗紅,高娉娉,2,張馨文,2,康文軍,2,李敏,2,王婧,2*

        1(甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院,甘肅 蘭州,730070)2(甘肅省葡萄與葡萄酒工程學(xué)重點實驗室,甘肅 蘭州,730070)

        香氣和感官特性是影響消費者葡萄酒偏好的重要因素之一。在釀酒過程中,酵母菌株的選擇對芳香化合物的形成至關(guān)重要,進而決定葡萄酒的感官特性。目前,利用非釀酒酵母的混合發(fā)酵以定向改善葡萄酒某些釀酒參數(shù)和風(fēng)味特征的研究已得到廣泛關(guān)注[1]。許多非釀酒酵母菌株存在于酒精發(fā)酵(alcoholic fermentation, AF)階段,通過產(chǎn)生一系列酶和代謝物影響葡萄酒的理化成分,香氣特性和感官品質(zhì)[2]。但非釀酒酵母通常不能獨立完成AF,需要與發(fā)酵性能較強的菌株進行混合接種以完成AF[3]。

        近年來,“微生物風(fēng)土”對葡萄酒風(fēng)格的影響逐漸受到關(guān)注,具有優(yōu)良釀酒特性的本土酵母可促進產(chǎn)區(qū)或地域特色葡萄酒的風(fēng)土表達[4]。釀酒酵母(Saccharomycescerevisiae)在AF過程中可快速適應(yīng)高滲透壓、低pH值、低氧氣利用率、高乙醇濃度等苛刻的環(huán)境條件[5],逐漸開發(fā)為商業(yè)活性干粉制劑,盡管使用干粉制劑發(fā)酵具有易于控制和發(fā)酵迅速的優(yōu)點,但會導(dǎo)致葡萄酒缺乏由本土酵母帶來的風(fēng)格的差異性和復(fù)雜性,使葡萄酒風(fēng)味特征出現(xiàn)同質(zhì)化現(xiàn)象[6]。有學(xué)者研究發(fā)現(xiàn),接種優(yōu)選的本土酵母菌的混合發(fā)酵有利于提高葡萄酒的香氣復(fù)雜性[7]。LIN等[8]將篩選自南澳大利亞的多株本土非釀酒酵母與S.cerevisiae混合發(fā)酵,結(jié)果表明,酵母之間的相互作用促進灰比諾葡萄酒中短鏈脂肪酸乙酯的生成,對香氣成分的促進效果顯著,從而增強葡萄酒的地域特征。

        耐熱克魯維酵母(Lachanceathermotolerans)在AF期間通過糖代謝產(chǎn)生較高的乳酸[9],其乳酸的產(chǎn)生量取決于菌株自身的特性和接種策略,在混合發(fā)酵過程中可能會因為菌株之間的拮抗作用產(chǎn)生較低的乳酸[10]。而粟酒裂殖酵母(Schizosaccharomycespombe)擁有較強的發(fā)酵能力和蘋果酸降解能力,對葡萄酒生境有較強的耐受性[11]。另外,S.pombe可代謝產(chǎn)生含量較高的吡喃型花色苷和某些特征性香氣物質(zhì),具有改善顏色參數(shù)、提高香氣復(fù)雜性等優(yōu)勢[12]。

        西班牙學(xué)者BENITO等[13]指出L.thermotolerans與S.pombe菌株是一對完美搭檔,用于彌補彼此的缺陷。目前L.thermotolerans和S.pombe的混菌發(fā)酵在干紅葡萄酒中的研究報道較少。本文以分離篩選于甘肅河西走廊的優(yōu)良本土L.thermotolerans和S.pombe酵母作為發(fā)酵劑,以明確本土酵母在混合發(fā)酵中的細胞動態(tài)變化規(guī)律,評估其純發(fā)酵和混合發(fā)酵引起的葡萄酒理化特性和香氣成分的變化,為建立多菌種發(fā)酵工藝模式提供技術(shù)參考。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        1.1.1 試驗原料

        美樂葡萄:2020年10月采自甘肅省武威市民勤縣夏博覽葡萄酒莊園,葡萄汁含糖量229.5 g/L,葡萄汁含總酸量6.94 g/L(以酒石酸計)。

        1.1.2 酵母與培養(yǎng)基

        L.thermotolerans(LT),由甘肅省葡萄與葡萄酒工程學(xué)重點實驗室篩選于甘肅祁連葡萄酒業(yè)有限責(zé)任公司的自然發(fā)酵葡萄醪;S.pombe(SP),由甘肅省葡萄與葡萄酒工程學(xué)重點實驗室保藏。以上菌株均在甘油管中于-80 ℃保存。

        釀酒酵母活性干粉(Vintage Red, VR),意大利Enartis公司;商業(yè)酒酒球菌(Oenococcusoeni):OMEGA,法國Lallemand公司。

        YPD固體培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖20.0,蛋白胨20.0,酵母浸粉10.0,瓊脂20.0。

        YPD液體培養(yǎng)基:同YPD培養(yǎng)基,不加瓊脂。

        WL培養(yǎng)基,青島海博生物技術(shù)有限公司。

        葡萄汁培養(yǎng)基:葡萄汁與無菌純水(1∶1,體積比)。培養(yǎng)基均現(xiàn)用現(xiàn)配,于121 ℃高壓滅菌20 min后備用。

        1.2 試劑與設(shè)備

        1.2.1 試驗試劑

        2-辛醇(色譜級),美國SIGMA-ALDRICH貿(mào)易有限公司;氯化鈉(分析純),天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司;EX-V果膠酶(分析純),法國Lallemand公司。

        1.2.2 儀器與設(shè)備

        SW-CJ-2FD超凈工作臺,蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司;EX-150-II生化培養(yǎng)箱,上海躍進醫(yī)療器械有限公司;LDZX-50KBS立式壓力蒸汽滅菌器,上海申安醫(yī)療器械廠;Genesis 10 s紫外-可見分光光度計、Ultimate 3000高效液相色譜儀,美國Thermo VRientific公司;TRACE 1310-ISQ氣相色譜質(zhì)譜儀,美國Thermo Scientific公司。

        1.3 試驗方法

        1.3.1 酵母培養(yǎng)

        挑取菌株LT和SP的單菌落分別接入YPD液體培養(yǎng)基,28 ℃培養(yǎng)48 h,連續(xù)培養(yǎng)2次后,以2%接種量接種至葡萄汁培養(yǎng)基,28 ℃培養(yǎng)48 h后接種于葡萄醪(生物量達到108CFU/mL)。

        商業(yè)菌株活化:將菌株VR以0.02 g/L添加量加入6%無菌葡萄糖水溶液中,37 ℃活化30 min后,按2%接種量接于葡萄汁培養(yǎng)基中,連續(xù)培養(yǎng)2次后,接種葡萄醪。

        1.3.2 小容器發(fā)酵

        5 L的發(fā)酵罐中加入約3.5 L的美樂葡萄醪(裝液量為70%),后加入20 mg/L的果膠酶、50 mg/L的SO2(以偏重亞硫酸鉀的形式),15 ℃低溫浸漬48 h后,按照接種方案分別接入種子液,25 ℃控溫發(fā)酵,當(dāng)殘?zhí)呛康陀? g/L時,添加60 mg/L的SO2終止發(fā)酵,倒罐除去酒泥后裝入棕色發(fā)酵罐,進行滿罐低溫貯存(15 ℃,4個月),后續(xù)測定葡萄酒的發(fā)酵參數(shù)。

        1.3.3 接種方案

        酵母菌株經(jīng)YPD培養(yǎng)基活化擴培,以2%接種量接種于葡萄醪中。對照組是以2%的接種量單獨接種商業(yè)釀酒酵母VR,AF結(jié)束后按0.02 g/L接入商業(yè)酒酒球菌O.oeni啟動蘋果酸-乳酸發(fā)酵(malolactic fermentation, MLF),記為VR。同時接種:以LT (106)∶SP (103)=103∶1;LT (106)∶SP (102)=104∶1;LT (106)∶SP (10)=105∶1的比例接種,分別記為LS3, LS4, LS5。同時,以2%的接種量單獨接種LT和SP進行純發(fā)酵,記為LT和SP。所有試驗組設(shè)置3個平行。

        1.3.4 指標(biāo)測定

        1.3.4.1 理化指標(biāo)測定

        總糖,酒精度,總酸,揮發(fā)酸等釀酒參數(shù)參照GB/T 15038—2006《葡萄酒、果酒通用分析方法》測定。

        總花色苷含量采用pH示差法測定,參照岳泰新[14]的方法;色度和色調(diào)參照田秀等[15]的方法。

        1.3.4.2 酵母計數(shù)

        通過WL營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基平板計數(shù)法檢測整個發(fā)酵過程中的細胞濃度。在27 ℃下培養(yǎng)48 h后,根據(jù)非釀酒酵母與釀酒酵母在WL培養(yǎng)基上所呈現(xiàn)的表型特征進行差異計數(shù)。

        1.3.4.3 蘋果酸、乳酸測定

        參照BUGLASS等[16]的方法,并略作修改,采用高效液相色譜儀進行測定。

        1.3.4.4 甘油含量測定

        采用專用酶試劑盒進行測定,具體操作根據(jù)試劑盒說明書進行。

        1.3.4.5 香氣成分測定

        參照宋茹茹等[17]的方法并略作修改。以2-辛醇為內(nèi)標(biāo),采用內(nèi)標(biāo)法進行定量。

        1.3.4.6 感官分析

        由擁有葡萄酒品鑒資格證的專業(yè)品鑒員(5名女性和5名男性)組成的品嘗小組對供試葡萄酒進行感官評定。分別從濃郁度,果香味,花香味,余味,生青味,酸味這6個方面對酒樣進行評價,以8分結(jié)構(gòu)數(shù)值量化為標(biāo)準(zhǔn)。感官分析過程中,每一供試酒樣重復(fù)分析3次。

        1.4 數(shù)據(jù)分析

        采用Microsoft Office Excel 2010和Origin 9.0進行數(shù)據(jù)處理,SPSS 22.0對數(shù)據(jù)進行單因素方差分析,利用Duncan’s多重比較在置信區(qū)間0.05下對數(shù)據(jù)進行差異顯著性分析和香氣化合物分析。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 不同接種方式對發(fā)酵速率的影響

        如圖1所示,各試驗組均完成AF。VR對照組最快完成AF,歷時9 d,LT和SP組分別于第14、15天完成AF。不同比例共接種發(fā)酵(LS3, LS4, LS5)均于第14天左右完成發(fā)酵。發(fā)酵第2天時,各試驗組的發(fā)酵速率與VR對照組無顯著差異。但隨著發(fā)酵的進行,發(fā)酵速率呈現(xiàn)明顯差異。與VR發(fā)酵相比,非釀酒酵母LT和SP混菌發(fā)酵在一定程度上延緩了發(fā)酵進程,可能是由于非釀酒酵母具有較弱的AF能力導(dǎo)致的[18]。

        圖1 不同接種方式下的發(fā)酵曲線Fig.1 Fermentation curve under different inoculation methods

        2.2 菌株生長動態(tài)分析

        圖2為AF過程中的酵母細胞生長動態(tài),圖2-A表示單獨接種VR、LT和SP菌株的酵母細胞數(shù)量變化,3株酵母的初始菌株生物量均在106~107CFU/mL,生長趨勢較為相似。VR菌株在第2天時細胞數(shù)量達到最高值(7.6 lgCFU/mL),而非釀酒酵母LT和SP在第4天細胞數(shù)量達到最高值,分別為7.9、7.1 lgCFU/mL。隨后菌體數(shù)量均開始下降,發(fā)酵結(jié)束時,VR和SP菌株細胞數(shù)量均穩(wěn)定在106CFU/mL,而LT菌株細胞數(shù)量均穩(wěn)定在105CFU/mL。

        A-單獨接種VR、LT和SP菌株的酵母細胞數(shù)量變化;B-LT和SP菌株以103∶1共接種發(fā)酵過程中酵母細胞數(shù)量變化;C-LT和SP菌株以104∶1共接種發(fā)酵過程中酵母細胞數(shù)量變化;D-LT和SP菌株以105∶1共接種發(fā)酵過程中酵母細胞數(shù)量變化圖2 不同接種發(fā)酵中LT和SP的菌株生物量變化Fig.2 The changes of the number of LT and SP in different inoculation fermentation

        圖2-B~圖2-D為LT和SP菌株以不同比例共接種發(fā)酵過程中酵母的生長動態(tài)變化。同時接種發(fā)酵中LT在第4天達到最大生長量后即開始逐漸下降,在發(fā)酵結(jié)束時(14 d左右)即無法檢測到LT活細胞的存在。而SP在達到最大生長量后,隨著發(fā)酵進程其細胞數(shù)量略有下降,直至發(fā)酵結(jié)束,細胞數(shù)量依然維持在106CFU/mL,表明SP在AF過程中具有良好的定殖能力。相關(guān)研究表明,當(dāng)接種S.pombe時,L.thermotolerans細胞在幾天內(nèi)迅速消失[13, 19]?;旌习l(fā)酵中非釀酒酵母生存能力的喪失與主要代謝物(尤其是乙醇)濃度的變化有關(guān)。本試驗中,LT菌株的衰亡與SP菌株的代謝產(chǎn)物或乙醇濃度的抑制作用是否有較強的相關(guān)性,還有待于進一步研究。

        2.3 理化指標(biāo)分析

        2株本土非釀酒酵母以不同比例混合發(fā)酵對葡萄酒主要發(fā)酵參數(shù)的影響如表1所示。與VR對照組相比,LT和SP酒樣的酒精體積分數(shù)較低,并且殘?zhí)呛枯^高;共同接種組酒樣的酒精體積分數(shù)(11.05%~12.37%)略低于純發(fā)酵組(12.65%~13.64%)。已有研究表明,使用非釀酒酵母可將碳代謝從乙醇途徑轉(zhuǎn)移到甘油等其他代謝產(chǎn)物途徑,從而降低葡萄酒的酒精含量[20]。2株非釀酒酵母參與發(fā)酵的酒樣揮發(fā)酸(以乙酸計)含量均低于VR酒樣,其中SP酒樣的揮發(fā)酸質(zhì)量濃度最低(為0.30 g/L)。相比于VR組,其他試驗組酒樣中總酸含量升高,且隨著LT菌株接種比例的增加,總酸含量逐漸增加。共同接種發(fā)酵酒樣的pH值顯著低于VR組,而SP純發(fā)酵組的pH值顯著高于其他試驗組。

        表1 發(fā)酵結(jié)束后酒樣的基本理化指標(biāo)Table 1 Chemical composition of wines at the end of fermentation

        葡萄汁中的初始蘋果酸含量為2.15 g/L,乳酸含量為0.31 g/L。對供試酒樣蘋果酸的含量分析表明,各試驗組的蘋果酸降解能力差異顯著,且純發(fā)酵組SP的蘋果酸降解能力達81.86%,顯著高于其他試驗組。LS3、LS4、LS5組蘋果酸降解率分別為75.35%,67.91%,70.71%,表明LT和SP按不同比例接種發(fā)酵,對最終的蘋果酸含量有一定的調(diào)整作用。另外,涉及LT參與發(fā)酵的酒樣中乳酸含量顯著高于其他試驗組。DEL FRESNO研究發(fā)現(xiàn)L.thermotolerans+S.pombe組合的試驗中,最終乳酸含量顯著增加,且大多數(shù)乳酸是在AF的第一階段產(chǎn)生的,此時L.thermotolerans占據(jù)主導(dǎo)地位[13]。上述結(jié)果還表明LT菌株的接種比例會影響乳酸產(chǎn)生量,其可能是由于混合發(fā)酵酒樣中菌株之間的互作作用和競爭作用。

        2.4 顏色參數(shù)分析

        圖3為供試酒樣的顏色參數(shù),包括色度、色調(diào)和總花色苷含量。色澤是紅葡萄酒主要發(fā)酵參數(shù)之一。各試驗組的色調(diào)和色度值差異顯著,SP單獨發(fā)酵的色度值最高,為2.01,顯著高于VR和LT純發(fā)酵組。有學(xué)者研究發(fā)現(xiàn),與S.cerevisiae相比,涉及S.pombe的混合發(fā)酵通??墒辜t葡萄酒的顏色強度增加[13],這與本試驗結(jié)果一致。這種效應(yīng)可能歸因于AF期間產(chǎn)生的乳酸導(dǎo)致pH值降低,而這種低pH條件會增加花青素分子(如黃酮)的顏色強度[21]。LS3酒樣色度值為最低水平0.83,顯著低于LS4,LS5;就色調(diào)而言,共接種試驗組的色調(diào)值均顯著低于純發(fā)酵組,其中共接種試驗組間無顯著差異,表明LT和SP共接種對干紅葡萄酒的色調(diào)值影響較小。SP酒樣中的總花色苷含量最高,達到141.98 mg/L,顯著高于其他試驗組酒樣;且總花色苷含量隨著LT接種比例的增高而逐漸升高(128.95~138.54 mg/L)。MORATA等[22]研究表明,S.pombe能夠代謝產(chǎn)生高濃度的丙酮酸等物質(zhì)以合成Vitis A的前體物質(zhì),其次,S.pombe具有較高的羥基肉桂酸乙酯脫羧酶活性,從而對紅葡萄酒的顏色產(chǎn)生積極影響[23]。

        2.5 甘油含量分析

        甘油是葡萄酒中主要化合物之一,高水平的甘油含量通常會增強酒體結(jié)構(gòu)、協(xié)調(diào)性或甜味等感官特性[23]。由圖4可知,涉及非釀酒酵母LT和SP參與發(fā)酵的酒樣中甘油含量顯著增加,顯著高于VR組,共同接種組的甘油含量隨著LT菌株接種比例的增大,其含量不斷升高,甘油含量在5.37~6.18 g/L。表明LT和SP菌株共接種發(fā)酵能夠增加甘油含量。也有研究報道L.thermotolerans[23]和S.pomb[13]等非釀酒酵母可產(chǎn)生比S.cerevisiae更高含量的甘油。

        圖3 不同接種發(fā)酵對色度、色調(diào)和總花色苷含量的影響Fig.3 Effect of different inoculation fermentation on chroma, hue and total anthocyanin content注:不同小寫字母表示組間差異顯著(P<0.05)

        圖4 供試酒樣甘油生成量Fig.4 Glycerol production of sample wines注:不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)

        2.6 香氣化合物分析

        不同處理組酒樣中共檢測分析出44種香氣物質(zhì)(相應(yīng)結(jié)果見附表,https://kns.cnki.net/kcms/detail/11.1802.TS.20211216.1343.003.html),包括C6化合物,萜烯類,醛酮類,C13-去甲類異戊二烯,高級醇,乙酸酯,乙醇酯,脂肪酸,芳香醇等幾大類物質(zhì)。各處理間香氣物質(zhì)種類無顯著差異,但物質(zhì)含量存在顯著差異。

        2.6.1 揮發(fā)性香氣物質(zhì)熱圖分析

        圖5顯示不同接種發(fā)酵過程中揮發(fā)性芳香化合物的含量差異變化。與VR對照組相比,LT純接種發(fā)酵促進3-乙氧基丙醇(45.32 μg/L),2-壬醇(9.71 μg/L),癸酸乙酯(304.98 μg/L)和9-癸烯酸(203.43 μg/L)等物質(zhì)的合成。而SP純接種發(fā)酵對中鏈脂肪酸(4-癸烯酸乙酯、月桂酸乙酯、癸酸乙酯),高級醇和香葉醇有較好的促進作用。研究表明,葡萄酒中香氣物質(zhì)的生成在非釀酒酵母的共發(fā)酵體系中存在協(xié)同作用[24]。與純發(fā)酵組相比,共接種組酒樣的香氣物質(zhì)含量顯著增加,且隨著LT菌株接種比例的增大,C6醇、中鏈脂肪酸乙酯、琥珀酸二乙酯和乳酸乙酯等酯類香氣物質(zhì)的含量顯著升高,有利于葡萄酒果香和香氣復(fù)雜性的增強,這可能是混合發(fā)酵過程中酵母之間的互作作用促進酯類的生成。本試驗還檢測出3種乙酸酯類物質(zhì),包括乙酸異戊酯,乙酸苯乙酯和乙酸乙酯。而C6醇是通過脂肪酸代謝途徑產(chǎn)生,但本試驗酒樣中僅檢測到2種C6醇類物質(zhì),分別是正己醇和3-己烯-1-醇。本研究還發(fā)現(xiàn)高比例接種LT菌株發(fā)酵的酒樣中苯甲醇和苯乙醇含量顯著提高,其中苯乙基類物質(zhì)可為葡萄酒帶來玫瑰香等愉悅的香氣特征。LS5組酒樣的苯乙醇質(zhì)量濃度最高,為6 905.10 μg/L。也有文獻報道認為非釀酒酵母具有較高的苯乙醇合成能力[25]。

        葡萄酒中的脂肪酸能夠抑制對應(yīng)芳香酯的水解,但含量過高(>11 mg/L)時會給葡萄酒帶來刺激、腐敗等不良風(fēng)味[26]。本試驗檢出的丁酸,己酸,辛酸,癸酸,9-癸烯酸等脂肪酸,丁酸和辛酸的含量隨LT菌株接種比例的增大顯著升高。另外,其他揮發(fā)性物質(zhì)中,共接種處理酒樣中的β-大馬酮含量顯著提高,具有果香,甜香和蜂蜜香的香氣特征。

        圖5 不同接種方式下?lián)]發(fā)性物質(zhì)的含量變化Fig.5 Changes in the content of volatile substances under different inoculation methods

        2.6.2 感官分析

        各試驗組酒樣的感官分析雷達圖(圖6)表明,不同接種發(fā)酵方式和菌株的選擇對葡萄酒的酸味,果香味,生青味等香氣特征有顯著的影響。各發(fā)酵酒樣在余味長短方面得分無顯著差異。香氣分析表明,非釀酒酵母的共接種處理的花香和果香味均有較高得分,其中,LS5酒樣的香氣濃郁度更強,整體評分較高。從口感方面分析,共同接種發(fā)酵酒樣顯著改善酒體的酸度,增加協(xié)調(diào)性。綜上,共接種發(fā)酵有利于葡萄酒香氣特征的提升,促進花香味和果香味的提高。

        圖6 感官分析雷達圖Fig.6 Sensory analysis radar chart

        3 結(jié)論

        本土耐熱克魯維酵母(L.thermotolerans)菌株LT和粟酒裂殖酵母(S.pombe)菌株SP分別以不同比例同時接種發(fā)酵,探究其對干紅葡萄酒相關(guān)釀酒參數(shù)、香氣成分和感官特性的影響。通過對各供試酒樣在AF過程中菌體數(shù)量的動態(tài)監(jiān)測,結(jié)果表明,SP菌株在整個AF過程中表現(xiàn)出良好的定殖能力,而LT菌株最終全部消亡。葡萄酒的整體香氣是多種揮發(fā)性物質(zhì)相互作用的最終表現(xiàn),其種類及含量顯著影響葡萄酒的香氣特征。LT和SP的混合發(fā)酵有利于干紅葡萄酒香氣質(zhì)量的提升,且105∶1的比例同時接種發(fā)酵可顯著提高C6醇、中鏈脂肪酸乙酯、琥珀酸二乙酯和乳酸乙酯等香氣物質(zhì)的含量,對花果香類成分有較好的促進作用。

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