劉勃興,劉 暢,王利麗,付 祥,吳同壘,劉 潔,高榮菊,張志強(qiáng)*,史秋梅*
(1.河北科技師范學(xué)院 河北省預(yù)防獸醫(yī)學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,河北 秦皇島 066004;2.河北省唐山市樂亭縣農(nóng)業(yè)農(nóng)村局,河北 唐山 063600)
牛病毒性腹瀉病毒(bovine viral diarrhea virus,BVDV)屬于黃病毒科瘟病毒屬單股RNA囊膜病毒[1-3]。我國(guó)BVDV最早發(fā)現(xiàn)于1980年[4],給我國(guó)肉牛和奶牛養(yǎng)殖業(yè)造成了嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失。DIAO等[5]對(duì)1987—2019年國(guó)內(nèi)牛群中的BVDV進(jìn)行了Meta分析,發(fā)現(xiàn)我國(guó)牛群BVDV的感染率約為36.0%,其中,新疆地區(qū)BVDV感染率(67.5%)最高,西北地區(qū)樣品中BVDV抗原陽(yáng)性率最高。BVDV感染牛臨床可出現(xiàn)消化道、呼吸道、生長(zhǎng)繁殖異常等癥狀,病情嚴(yán)重時(shí)可導(dǎo)致病牛死亡,還可以造成無(wú)任何示病癥狀但危害更大的持續(xù)感染(persistently infected,PI),據(jù)估計(jì),70%~90%的BVDV感染病例無(wú)臨床表現(xiàn)[6-8]。
BVDV的檢測(cè)方法大致可分為病原學(xué)檢測(cè)和血清學(xué)檢測(cè)兩類,其中BVDV抗體血清學(xué)檢測(cè)可輔助抗原檢測(cè),有助于牛群中PI鑒定和評(píng)估接種疫苗牛群的免疫接種效果。目前BVDV的血清學(xué)檢測(cè)方法有ELISA、抗體中和試驗(yàn)和瓊脂擴(kuò)散試驗(yàn)等,其中ELISA是世界動(dòng)物衛(wèi)生組織推薦的BVDV檢測(cè)方法之一,也是在實(shí)驗(yàn)室診斷中的常用方法。我國(guó)BVDV抗體ELISA商品化檢測(cè)試劑盒的品牌和種類較少,導(dǎo)致BVDV抗體檢測(cè)成本較高。國(guó)內(nèi)對(duì)BVDV抗體ELISA檢測(cè)方法已開展了大量的研究,其中基于BVDV結(jié)構(gòu)蛋白E2[9-14]、Erns(E0)[9,15-17]這兩種囊膜蛋白和非結(jié)構(gòu)蛋白NS3[9,17]蛋白建立的間接ELISA方法居多,此外,抗BVDV納米抗體雙抗夾心ELISA[18]、PPA-ELISA[19]、Dot-ELISA[20]等ELISA類型也應(yīng)用于BVDV的抗體檢測(cè)。
為了解河北地區(qū)牛群BVDV抗體陽(yáng)性率,本研究構(gòu)建了BVDV HB-1株的Erns蛋白(gp48基因)的原核表達(dá)載體,并經(jīng)原核系統(tǒng)表達(dá)了Erns蛋白,以該蛋白為包被抗原建立BVDV抗體間接ELISA檢測(cè)方法,并應(yīng)用該方法檢測(cè)河北地區(qū)牛血清樣品的BVDV抗體陽(yáng)性率。
1.1 病毒株、質(zhì)粒和血清BVDV HB-1株,分離自河北肉犢牛腹瀉樣品,由本研究室保存;pET-28a質(zhì)粒、BVDV陽(yáng)性血清和陰性血清、牛傳染性鼻氣管炎病毒(IBRV)陽(yáng)性血清、牛布魯菌陽(yáng)性血清、牛輪狀病毒(BRV)陽(yáng)性血清、牛冠狀病毒(BCoV)陽(yáng)性血清、口蹄疫病毒(FMDV)陽(yáng)性血清均由河北省預(yù)防重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室提供。
1.2 引物的設(shè)計(jì)與合成根據(jù)BVDV HB-1株的Erns蛋白基因(gp48)序列,應(yīng)用Primer Premier 5.0軟件設(shè)計(jì)用于Erns蛋白基因(gp48)擴(kuò)增的引物。E-BamHⅠ:5′-CGGGATCCGAGAACATAACGCA-ATGGAACTTGC-3′;E-SalⅠ:5′-GCGTCGACTGCATATGCCCCAAACCATGTC-3′。
1.3 主要試劑病毒RNA快速提取試劑盒購(gòu)自北京艾德萊科技有限公司;SalⅠ、BamHⅠ限制性內(nèi)切酶購(gòu)自NEB公司;明膠、牛血清白蛋白 BSA-V、IPTG、羊抗小鼠IgG-HRP購(gòu)自北京索萊寶科技有限公司;SDS-PAGE Gel Kit、eECL Western blot Kit、His-Taggde Protein Purification Kit購(gòu)自北京康為世紀(jì)(CWBIO)生物科技有限公司;兔抗牛IgG/HRP血清、鼠抗His tag antibody購(gòu)自北京博奧森生物技術(shù)有限公司;Gel Extraction Kit、Plasmid Mini KitⅠ購(gòu)自美國(guó)OMEGA公司;BVDV ELISA抗體檢測(cè)試劑盒購(gòu)自愛德士(IDEXX)瑞士生物科技有限公司
1.4 Erns(gp48)基因的PCR擴(kuò)增、序列分析及原核表達(dá)載體構(gòu)建與鑒定用病毒RNA快速提取試劑盒提取感染BVDV HB-1的MDBK細(xì)胞培養(yǎng)物中的病毒RNA,反轉(zhuǎn)錄為cDNA,以cDNA為模板,用合成gp48擴(kuò)增引物進(jìn)行PCR并回收純化。將目的基因克隆至pMD19-T載體,構(gòu)建重組質(zhì)粒pMD19-T-gp48,轉(zhuǎn)化至DH5α感受態(tài)細(xì)胞,涂布于含氨芐青霉素的LB培養(yǎng)基上培養(yǎng),挑取單菌落用gp48基因擴(kuò)增引物進(jìn)行PCR檢測(cè),陽(yáng)性菌落送至生工生物工程(上海)股份有限公司測(cè)序。從NCBI下載BVDV參考株的Erns基因序列并用Lasergene.v7.1中Editseq軟件翻譯為氨基酸序列,用Megalign軟件進(jìn)行同源性比對(duì)并建立發(fā)育進(jìn)化樹。在確認(rèn)獲得的gp48序列無(wú)移碼突變后,將pET-28a和pMD19-T-gp48質(zhì)粒經(jīng)BamHⅠ和SalⅠ雙酶切,回收目的片段構(gòu)建pET-28a-gp48重組載體,轉(zhuǎn)化至BL21感受態(tài)細(xì)胞,涂布于含卡那霉素的LB培養(yǎng)基,挑取單菌落進(jìn)行雙酶切與測(cè)序鑒定。
1.5 重組Erns蛋白的原核表達(dá)、純化及Western blot鑒定將pET-28a-gp48/BL21接種于含卡那霉素的LB液體培養(yǎng)基在37℃恒溫?fù)u床培養(yǎng)至D600 nm值為0.4~0.6,加入IPTG至終濃度為1 mmol/L,37℃誘導(dǎo)6 h,離心收集菌液,用PBS重懸菌泥超聲破碎,收集上清和沉淀,用SDS-PAGE鑒定重組蛋白的表達(dá)形式并用His-Taggde Protein Purification Kit純化蛋白。以鼠抗His tag antibody(1∶1 000)為一抗,羊抗小鼠IgG-HRP血清(1∶5 000)為二抗,Western blot鑒定重組蛋白。
1.6 BVDV抗體間接ELISA檢測(cè)方法的建立及優(yōu)化采用方陣滴定法確定。蛋白包被質(zhì)量濃度分別為每孔包被20,40,80,160,320 ng,血清按照1∶25,1∶50,1∶100,1∶200,1∶400進(jìn)行稀釋?;谏鲜龅淖罴褩l件,分別進(jìn)行包被條件(37℃包被0.5,1.0,1.5,2.0 h,4℃包被過夜)、封閉液(5%脫脂奶、2% BSA和1%明膠)、封閉時(shí)間(37℃封閉0.5,1.0,1.5,2.0 h)、血清孵育時(shí)間(37℃孵育0.5,1.0,1.5,2.0 h)、二抗稀釋度(1∶5 000,1∶10 000,1∶20 000,1∶40 000,1∶80 000)、二抗孵育時(shí)間(37℃孵育0.5,1.0,1.5,2.0 h)和顯色時(shí)間(37℃顯色5,10,15,20 min)的條件優(yōu)化。
1.10 重復(fù)性試驗(yàn)分別驗(yàn)證建立的ELISA方法的批內(nèi)和批間重復(fù)性。批內(nèi)重復(fù)性試驗(yàn):分別用同批次的重組Erns蛋白包被并封閉后的ELISA板檢測(cè)4份BVDV陽(yáng)性和4份BVDV陰性的牛血清;批間重復(fù)性試驗(yàn):分別用重組Erns蛋白包被并封閉后1,14,28 d的ELISA板檢測(cè)BVDV陽(yáng)性和BVDV陰性的牛血清。每個(gè)血清做3個(gè)平行孔,測(cè)定D450 nm值,計(jì)算不同批次內(nèi)的變異系數(shù)(CV),評(píng)估本研究建立的ELISA方法的批間重復(fù)效果。
1.11 與商品化試劑盒比較試驗(yàn)以建立的間接ELISA方法和IDEXX BVDV的ELISA抗體檢測(cè)試劑盒同時(shí)檢測(cè)河北某牛場(chǎng)的90份牛血清,比較2種方法檢測(cè)結(jié)果并計(jì)算符合率,計(jì)算方法見表1。
表1 符合率計(jì)算方法
1.12 臨床樣品的檢測(cè)用本研究建立的間接ELISA方法檢測(cè)河北地區(qū)牛場(chǎng)的血清樣品477份,統(tǒng)計(jì)并分析牛血清樣品的陽(yáng)性率。
2.1 Erns(gp48)基因的PCR擴(kuò)增、序列分析及原核表達(dá)載體構(gòu)建與鑒定以提取的BVDV HB-1株感染細(xì)胞的RNA,反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,PCR擴(kuò)增gp48基因。結(jié)果顯示,在681 bp出現(xiàn)目的條帶,與預(yù)期結(jié)果一致(圖1A)。序列測(cè)定與比對(duì)分析結(jié)果顯示,BVDV HB-1株與NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)國(guó)內(nèi)的BVDV-1型參考株的Erns氨基酸序列同源率為96.0%~99.1%,與國(guó)外BVDV-1型的Erns氨基酸序列同源率為92.4%~95.6%,與國(guó)內(nèi)外BVDV-2型的參考株Erns氨基酸序列同源率為79.1%~81.3%。進(jìn)化樹分析結(jié)果顯示,BVDV HB-1株Erns氨基酸序列與國(guó)內(nèi)的BVDV-1型的Erns氨基酸序列屬于同一個(gè)大分支,且與相應(yīng)參考株距離較近,其次距離較近的BVDV株為國(guó)外的BVDV-1型參考株,而國(guó)內(nèi)外3株BVDV-2型的參考株處于另一個(gè)大分支且距離最遠(yuǎn)(圖2)。序列分析結(jié)果表明,BVDV HB-1株Erns氨基酸序列與國(guó)內(nèi)基因1型BVDV的同源性較高,具有作為診斷試劑研發(fā)實(shí)驗(yàn)材料的潛力。
M1.DL2000 DNA Marker;M2.DL5000 DNA Marker ;1.gp48 基因;2.陰性對(duì)照;3.pET-28a-gp48經(jīng) BamHⅠ/SalⅠ酶切產(chǎn)物;4.pET-28a
紅色代表本研究BVDV毒株;藍(lán)色代表國(guó)外BVDV毒株
構(gòu)建的重組質(zhì)粒pET-28a-gp48經(jīng)BamHⅠ和SalⅠ雙酶切,得到約681 bp的基因片段和約5 300 bp的質(zhì)粒片段,與預(yù)期結(jié)果一致(圖1B)。測(cè)序結(jié)果顯示,基因序列無(wú)移碼、突變,表明成功構(gòu)建重組質(zhì)粒pET-28a-gp48。
2.2 重組Erns蛋白的原核表達(dá)、純化及Western blot鑒定將pET-28a-gp48重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化至BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞,經(jīng)IPTG誘導(dǎo)后用SDS-PAGE鑒定。結(jié)果顯示,在約33 kDa處有目的蛋白條帶,與預(yù)期蛋白大小一致,重組Erns蛋白以包涵體形式表達(dá)(圖3A)。用His-Taggde Protein Purification Kit純化蛋白,結(jié)果顯示,純化后僅在33 kDa出現(xiàn)目的條帶,無(wú)雜帶(圖3B)。Western blot鑒定結(jié)果顯示,在33 kDa處出現(xiàn)目的條帶(圖3C),表明成功獲得重組Erns蛋白,且試劑盒純化蛋白效果較好。
M.蛋白Marker;1.經(jīng)IPTG誘導(dǎo)后菌體裂解物;2.菌體裂解物上清;3.菌體裂解物沉淀;4.陰性對(duì)照;5.純化前的Erns 蛋白;6.純化后的Erns 蛋白;7.陰性對(duì)照;8.重組 Erns
2.3 BVDV抗體間接ELISA檢測(cè)方法的建立及優(yōu)化以重組的Erns蛋白作為包被抗原建立的BVDV抗體間接ELISA檢測(cè)方法經(jīng)條件優(yōu)化試驗(yàn),最終確定的Erns蛋白包被、封閉、血清、二抗(兔抗牛IgG/HRP血清)及顯色條件見表2。
表2 BVDV抗體間接ELISA檢測(cè)方法反應(yīng)條件優(yōu)化結(jié)果
2.4 臨界值的確定用優(yōu)化后的間接ELISA方法檢測(cè)臨床30份BVDV陰性血清,結(jié)果顯示,30份陰性血清D450 nm呈正態(tài)分布,經(jīng)計(jì)算臨界值為0.326,即待檢血清D450 nm高于0.326判定為陽(yáng)性,D450 nm低于0.326判定為陰性(圖4)。
圖4 30份陰性血清D450 nm的正態(tài)分布圖
2.5 特異性試驗(yàn)特異性試驗(yàn)結(jié)果顯示,除BVDV陽(yáng)性血清樣品(D450 nm=1.204)檢測(cè)結(jié)果為陽(yáng)性,其余病原陽(yáng)性血清檢測(cè)結(jié)果(D450 nm<0.326)均為陰性(圖5),表明本研究建立的間接ELISA抗體檢測(cè)方法具有較強(qiáng)特異性,能特異性檢測(cè)出BVDV陽(yáng)性血清。
圖5 特異性試驗(yàn)結(jié)果
2.6 敏感性試驗(yàn)用建立間接ELISA方法分別檢測(cè)不同稀釋度的BVDV陽(yáng)性血清。結(jié)果顯示,經(jīng)1∶1 600稀釋BVDV陽(yáng)性血清后檢測(cè)結(jié)果仍為陽(yáng)性(圖6),表明本研究建立的間接ELISA抗體檢測(cè)方法具有較高的敏感性。
圖6 敏感性試驗(yàn)結(jié)果
2.7 重復(fù)性試驗(yàn)用4份BVDV陽(yáng)性血清和4份BVDV陰性血清分別進(jìn)行批內(nèi)和批間重復(fù)性試驗(yàn)。結(jié)果顯示,8份血清檢測(cè)數(shù)據(jù)的批內(nèi)CV為1.88%~9.61%,批間CV為0.82%~9.36%,重復(fù)性試驗(yàn)的CV均低于10%(表3),表明本研究建立的間接ELISA抗體檢測(cè)方法具有較好的重復(fù)性。
表3 重復(fù)性試驗(yàn)結(jié)果(n=8) D450 nm
2.8 與商品化試劑盒比較試驗(yàn)分別用建立的間接ELISA方法和IDEXX BVDV 的ELISA抗體檢測(cè)試劑盒對(duì)河北某牛場(chǎng)的90份牛血清進(jìn)行檢測(cè)。結(jié)果顯示,IDEXX試劑盒檢出陽(yáng)性樣品72份,陰性樣品18份,本研究建立的方法檢出陽(yáng)性樣品72份,陰性樣品18份。2種方法的總符合率為93.33%,陽(yáng)性符合率92.00%,陰性符合率71.43%(表4)。結(jié)果表明,本研究建立的方法與IDEXX試劑盒符合率較高,具有較高的準(zhǔn)確性。
表4 與商品化試劑盒比較結(jié)果
2.9 臨床樣品的檢測(cè)結(jié)果應(yīng)用建立的間接ELISA方法檢測(cè)河北地區(qū)牛場(chǎng)的血清樣品。結(jié)果顯示,接種BVDV疫苗免疫牛場(chǎng)的牛血清樣品BVDV抗體檢測(cè)陽(yáng)性率為30.43%~92.86%,而未接種BVDV疫苗免疫牛場(chǎng)的牛血清樣品BVDV抗體檢測(cè)陽(yáng)性率為0%~100%(表5),表明建立的BVDV抗體ELISA檢測(cè)方法能應(yīng)用于臨床樣品檢測(cè)。在接種疫苗免疫的牛場(chǎng)BVDV抗體陽(yáng)性率明顯高于未接種疫苗免疫的牛場(chǎng),未接種BVDV疫苗免疫的牛場(chǎng)檢測(cè)出BVDV抗體陽(yáng)性血清,表明存在BVDV感染。
表5 臨床樣品檢測(cè)結(jié)果(n=477)
BVDV-1b基因型是全球檢出率最高的BVDV基因型,在我國(guó),該基因型也是BVDV主要流行的基因型之一,因此,該基因型常作為疫苗和診斷試劑的試驗(yàn)株。Erns是BVDV的囊膜蛋白之一,在病毒吸附宿主細(xì)胞、抑制宿主IFN的產(chǎn)生等方面有著重要的作用[21]。更重要的是,Erns可誘導(dǎo)宿主產(chǎn)生中和抗體,據(jù)報(bào)道,在PI動(dòng)物的血清中Erns抗體質(zhì)量濃度可高達(dá)50 μg/L[22]。因此,Erns是BVDV疫苗和診斷試驗(yàn)研制的靶位蛋白之一。本試驗(yàn)BVDV HB-1株分離自河北肉犢牛腹瀉樣品,基因型為我國(guó)主要流行的基因型BVDV-1b,具有作為診斷試劑研發(fā)的潛力。進(jìn)一步對(duì)HB-1株的Erns氨基酸序列進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)BVDV HB-1株的Erns氨基酸序列與NCBI上國(guó)內(nèi)BVDV-1型的參考株同源率為96.0%~99.1%,同源性極高,可作為BVDV抗體ELISA檢測(cè)方法的包被抗原。因此,本研究構(gòu)建了pET-28a-gp48,在BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞進(jìn)行原核表達(dá),成功獲得了重組Erns蛋白。
本研究以重組Erns蛋白作為包被抗原建立BVDV抗體間接ELISA檢測(cè)方法。經(jīng)條件優(yōu)化試驗(yàn),最終確定ELISA反應(yīng)條件:重組Erns包被質(zhì)量濃度為40 ng/孔,包被溫度和時(shí)間為4℃過夜;封閉液為1%明膠溶液,封閉時(shí)間為2 h(37℃);血清稀釋倍數(shù)為100倍,血清孵育時(shí)間為1 h(37℃);二抗稀釋倍數(shù)為40 000倍,二抗孵育時(shí)間為0.5 h(37℃);顯色時(shí)間為10 min(37℃);臨界值為0.326(D450 nm)。進(jìn)一步對(duì)該方法的特異性、靈敏度和重復(fù)性進(jìn)行驗(yàn)證,結(jié)果顯示:該方法能特異性識(shí)別BVDV陽(yáng)性血清和陰性血清,而對(duì)BRV、IBRV、FMDV、BCoV、牛布魯菌共計(jì)5種在牛常見的細(xì)菌和病毒性病原陽(yáng)性血清檢測(cè)結(jié)果均為陰性,表明該方法具有較好的特異性;當(dāng)血清經(jīng)1∶1 600稀釋后結(jié)果仍為陽(yáng)性,表明該方法具有較高的靈敏度;批內(nèi)和批間重復(fù)試驗(yàn)的CV均低于10%,表明該方法具有較好的重復(fù)性。用IDEXX的BVDV抗體檢測(cè)試劑盒與本研究中建立的方法同時(shí)檢測(cè)某牛場(chǎng)的血清樣品,2種方法的總符合率為93.33%,陽(yáng)性符合率92.00%,陰性符合率71.43%。在國(guó)內(nèi)同樣基于Erns蛋白建立的BVDV抗體ELISA檢測(cè)方法中,本研究建立的方法敏感性與肖盛中等[15]和丁金花等[16]建立方法的敏感性(1∶1 600)相同,比陳瑞紅[9]建立方法的靈敏度(1∶640)高;重復(fù)性上,本研究和研究報(bào)道[9,15-16]的重復(fù)性數(shù)據(jù)相似,批內(nèi)和批間CV均小于10%;與其他方法進(jìn)行符合試驗(yàn),本研究(93.33%)高于肖盛中等[15](86%)、丁金花等[16](88.67%)、陳瑞紅[9](88.1%)建立的方法。但陰性符合率(71.43%)偏低,與陰性樣品數(shù)量少有關(guān)。
應(yīng)用建立的間接ELISA方法初步對(duì)河北地區(qū)18個(gè)牛場(chǎng)的477份血清樣品進(jìn)行檢測(cè)。其中,18個(gè)牛場(chǎng)中有4個(gè)奶牛場(chǎng),且均接種了BVDV滅活疫苗(占比100%,4/4),而僅有2家肉牛場(chǎng)接種疫苗(占比11.76%,2/14)。在接種疫苗的牛場(chǎng)中,抗體陽(yáng)性率為30.43% ~ 92.86%,表明在接種疫苗的牛場(chǎng)中,BVDV抗體陽(yáng)性率和抗體水平存有不同,部分牛場(chǎng)的抗體陽(yáng)性率低于50%,需及時(shí)補(bǔ)免。BVDV滅活疫苗在我國(guó)上市時(shí)間較短,應(yīng)用的范圍較小,但奶牛場(chǎng)對(duì)該病的預(yù)防接種意識(shí)明顯高于肉牛場(chǎng)。在未接種疫苗的14個(gè)肉牛場(chǎng)中,陽(yáng)性血清占比明顯低于接種免疫后的牛場(chǎng),其中6個(gè)肉牛場(chǎng)的陽(yáng)性血清占比為0%,僅有1個(gè)承德肉牛場(chǎng)的陽(yáng)性血清占比達(dá)100%,其余陽(yáng)性血清占比均低于50%。在未接種BVDV疫苗的牛場(chǎng)中檢測(cè)到BVDV抗體,表明該場(chǎng)可能存在感染BVDV或PI牛,應(yīng)結(jié)合RT-PCR等檢測(cè)方法進(jìn)一步確認(rèn)這些牛場(chǎng)的肉牛是否存在BVDV感染。