肖 定 紀(jì)桂寶 溫松奇 鄒雯佳 胡 勇
(武漢市第四醫(yī)院,華中科技大學(xué)附屬普愛(ài)醫(yī)院普通外科,武漢 430030)
潰瘍性結(jié)腸炎(ulcerative colitis,UC)是一種臨床較為常見(jiàn)的慢性腸道疾病,同時(shí)也是一種由多因素引起的非特異性炎癥性疾病,其病程遷延不愈,病情輕重不一。UC 主要發(fā)病于結(jié)腸黏膜或黏膜下層,常累及患者的直腸及乙狀結(jié)腸。其臨床表現(xiàn)主要為反復(fù)發(fā)作的腹痛、腹瀉、黏液膿血便、惡心、納差、里急后重、嘔吐、發(fā)熱及營(yíng)養(yǎng)不良等,患者同時(shí)可伴有皮膚、黏膜、肝膽、眼及腸外的表現(xiàn)[1]。目前臨床上對(duì)UC 的治療主要采用藥物治療,即采用免疫抑制劑、生物制劑、糖皮質(zhì)激素及氨基水楊酸類(lèi)治療,盡管藥物的使用能夠緩解患者癥狀,但其副作用仍然明顯且無(wú)法避免復(fù)發(fā)[1]。中醫(yī)藥是我國(guó)傳統(tǒng)醫(yī)療的寶貴財(cái)富,越來(lái)越多的研究表明中藥在UC的治療中發(fā)揮重要作用,特別是中藥方劑聯(lián)合西藥的中西醫(yī)結(jié)合治療方法在臨床上被廣泛應(yīng)用[2]。盡管如此,中醫(yī)藥在UC 治療領(lǐng)域仍存在很多局限。因此尋找新的、綠色的中醫(yī)藥治療方法成為中醫(yī)臨床治療UC 面臨的難點(diǎn)。為此,本研究擬探討綠色無(wú)公害食物來(lái)源中藥材大蒜衍生的類(lèi)外泌體樣納米顆粒(garlic-derived exosome-like nanoparticles,GDELN)在葡聚糖硫酸鈉(dextran sulfate sodium,DSS)誘導(dǎo)的結(jié)腸炎中對(duì)腸道炎癥的保護(hù)作用及其作用機(jī)制。
1.1 材料 5~6 周齡SPF 級(jí)C57BL/6 雄性小鼠,采用國(guó)際標(biāo)準(zhǔn)方法清除腸道微生物,清除后收集小鼠糞便,采用常規(guī)細(xì)菌培養(yǎng)基培養(yǎng)檢測(cè)并細(xì)菌。本研究經(jīng)華中科技大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理委員會(huì)審批(2020-1102)。
1.2 方法
1.2.1 GDELN 的制備及鑒定 將產(chǎn)地為山東的新鮮大蒜參考文獻(xiàn)[3]方法去皮后勻漿,采用梯度離心法(500 g 10 min,2 000 g 20 min,5 000 g 30 min,10 000 g 1 h,100 000 g 2 h)離心,100 000 g 之前每次的沉淀均丟棄,收集100 000 g 后的沉淀物,用預(yù)冷的PBS重懸沉淀,參考文獻(xiàn)[4]中植物外泌體純化方法,通過(guò)8%、30%、45%及60%的梯度蔗糖離心純化,收集30%~45%的外泌體樣顆粒。電鏡檢測(cè):將收集的GDELN 溶于含3%戊二醛及1%多聚甲醛的0.1 mol/L 的二甲胂酸鈉緩沖液,然后用含2%四氧化鋨的0.1 mol/L 的二甲胂酸鈉緩沖液固定1 h,2%醋酸鈾作用30 min 后經(jīng)30%、50%、70%、80%、90%、100%梯度乙醇分別脫水15 min。電鏡下觀察顆粒形態(tài)。顆粒直徑分析:取純化后的納米顆粒溶于40μm濾膜過(guò)濾后的PBS,采用倍比稀釋法分析顆粒濃度,取1∶1 000 稀釋后的顆粒,采用NANOSIGHT 檢測(cè)GDELN的直徑及濃度。
1.2.2 GDELN進(jìn)入小鼠腸道后的吸收分布檢測(cè)Dir 染料標(biāo)記的2.5 mg GDELN 懸浮在0.5 ml PBS中,通過(guò)灌胃方式給予小鼠。在第0、2、4、6 小時(shí)使用珍珠脈沖成像系統(tǒng)(LI-COR Biosciences)捕獲活體圖像。16 h 后,對(duì)小鼠實(shí)施安樂(lè)死,采集小鼠肝、肺、心、腎、胃、腸、腸系膜淋巴結(jié)(MLN)、脾和腦,采用Odyssey CLX成像儀掃描GDELN在器官內(nèi)的分布。
1.2.3 結(jié)腸炎動(dòng)物模型的建立及GDELN 處理小鼠 5~6周齡C57BL/6雄性小鼠隨機(jī)分3組,8只/組,第1 天開(kāi)始3 組小鼠分別給予PBS、PBS、GDELN[2.5 mg/(只·d)]灌胃,在預(yù)處理10 d后,3組小鼠分別給予PBS、2%DSS、2%DSS+GDELN。
1.2.4 GDELN 對(duì)DSS 誘導(dǎo)的結(jié)腸炎小鼠體質(zhì)量、生存期及腸道炎癥的影響 從小鼠給予DSS開(kāi)始每天稱(chēng)量、記錄并分析各組小鼠體質(zhì)量,在處死小鼠前比較分析各組小鼠體質(zhì)量差異;從實(shí)驗(yàn)開(kāi)始記錄每組每只小鼠生存的時(shí)間,直至其中1 組小鼠全部死亡,統(tǒng)計(jì)分析各小組的生存期;在第14 天時(shí)處死小鼠,取小鼠結(jié)腸組織,一部分用于固定后組織切片染色,HE 及Alcian blue 染色參照參考文獻(xiàn)[5]的方法;一部分用于蛋白Array(The Common Cytokines RT2Profiler,ARY006)檢測(cè)結(jié)腸組織中炎癥細(xì)胞因子的表達(dá)(參照試劑盒說(shuō)明書(shū))。
1.2.5 炎癥細(xì)胞因子及Smad信號(hào)通路的檢測(cè) 按照ELISA檢測(cè)方法提取組織蛋白,對(duì)蛋白Array篩選出的促炎細(xì)胞因子IL-8、TNF-α 和IL-6 及抑炎細(xì)胞因子TGF-β1、IL-10 和IL-4 進(jìn)行一一驗(yàn)證,統(tǒng)計(jì)分析各細(xì)胞因子的表達(dá)差異。qPCR及Western blot 檢測(cè)結(jié)腸組織中TGF-β1 受體的表達(dá),Western blot 檢測(cè)結(jié)腸組織Smad2和Smad3的磷酸化。
1.2.6 去除腸道微生物后GDELN 對(duì)小鼠DSS誘導(dǎo)結(jié)腸炎的影響 3 組小鼠飲水中分別加入氨芐青霉素鈉(1 g/L)、硫酸新霉素(1 g/L)、鹽酸萬(wàn)古霉素(500 mg/L)和甲硝唑(1 g/L)4 種抗生素組合連續(xù)喂養(yǎng)4 周,以完全清除小鼠腸道共生細(xì)菌。然后分別給3 組小鼠PBS、PBS、GDELN[2.5 mg/(只·d)]灌胃10 d(灌胃所用試劑及器材均為無(wú)菌),10 d 后分別給予PBS、2%DSS、2%DSS+GDELN(無(wú)菌),從給予DSS開(kāi)始,每天稱(chēng)量體質(zhì)量,在處死前比較分析各組小鼠體質(zhì)量差異。記錄每組每只小鼠的生存時(shí)間,直至其中一組小鼠全部死亡后統(tǒng)計(jì)分析各小組的生存期。第14 天處死小鼠,取小鼠結(jié)腸組織,部分用于固定后組織切片染色,部分用于ELISA 檢測(cè)IL-8、TNF-α、IL-6、TGF-β1、IL-10 和IL-4 水平,qPCR及Western blot 檢測(cè)TGF-β1 受體表達(dá),Western blot檢測(cè)Smad2和Smad3的磷酸化。
1.2.7 GDELN 進(jìn)入腸道后腸道微生物代謝產(chǎn)物對(duì)結(jié)腸上皮細(xì)胞TGF-β1 表達(dá)的影響 收集實(shí)驗(yàn)小鼠的糞便及結(jié)腸內(nèi)容物,以預(yù)冷的PBS溶解,然后梯度離心(500 g 10 min,2 000 g 20 min,5 000 g 30 min,10 000 g 1 h)去除沉淀,收集上清(無(wú)菌)。結(jié)腸上皮細(xì)胞株MC-38培養(yǎng)于含10%FBS的DMEM培養(yǎng)基,當(dāng)細(xì)胞生長(zhǎng)至85%時(shí)消化后接種至6孔板,1×105個(gè)/孔,24 h 后加入各組動(dòng)物腸道內(nèi)容物離心后的上清液,再次培養(yǎng)48 h,期間再次加入1 次代謝物上清。當(dāng)細(xì)胞長(zhǎng)滿培養(yǎng)板時(shí),分別收集細(xì)胞制備RNA 和蛋白。qPCR及Western blot檢測(cè)TGF-β1表達(dá)。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 本研究采用Graphad8.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。計(jì)量資料以±s表示,組間比較采用單因素方差分析。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 GDELN 的制備、鑒定及其在體內(nèi)的內(nèi)化分布 通過(guò)梯度離心及蔗糖純化后對(duì)GDELN 的直徑進(jìn)行測(cè)定,結(jié)果顯示,GDELN 的直徑為(156±48)nm(圖1A、B)。電鏡結(jié)果顯示,GDELN呈現(xiàn)球形(圖1C)。小鼠活體成像結(jié)果顯示,GDELN 能夠在小鼠體內(nèi)被吸收,其中肝臟、消化道比例最高(圖1D、E)。
圖1 GDELN的制備、鑒定及其在體內(nèi)的內(nèi)化分布Fig.1 Preparation and identification of GDELN and its internalization distribution in vivo
2.2 GDELN 對(duì)DSS 誘導(dǎo)結(jié)腸炎小鼠體質(zhì)量及生存期的影響 GDELN 處理小鼠能顯著抑制DSS 導(dǎo)致的小鼠體質(zhì)量下降,與未處理組相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,圖2A);此外,給予GDELN 的小鼠生存期顯著高于未給予GDELN 的小鼠(P<0.05),在DSS 組小鼠均死亡的情況下,GDELN 處理組仍未有小鼠發(fā)生死亡事件(圖2B)。
2.3 GDELN 對(duì)DSS 誘導(dǎo)結(jié)腸炎小鼠腸道炎癥的影響 GDELN 處理組小鼠結(jié)腸長(zhǎng)度明顯長(zhǎng)于未處理組(P<0.05,圖3A),經(jīng)HE 及阿利新藍(lán)染色后觀察發(fā)現(xiàn),GDELN 可顯著抑制DSS 誘導(dǎo)的結(jié)腸炎,小鼠腸道組織結(jié)構(gòu)完整性顯著優(yōu)于未處理組(圖3B、C)。細(xì)胞因子蛋白Array 檢測(cè)結(jié)果表明,GDELN 可抑制IL-8、TNF-α 及IL-6 的表達(dá),同時(shí)上調(diào)TGF-β1 表達(dá)(P<0.05,圖3D、E)。ELISA 結(jié)果表明,GDELN 處理組小鼠IL-8、TNF-α 及IL-6 均顯著低于未處理組,而TGF-β1 顯著高于未處理組(P<0.05,圖3F)。Western blot結(jié)果則表明,GDELN處理組小鼠結(jié)腸組織中Smad2和Smad3磷酸化水平顯著高于未處理組(P<0.05,圖3G)。
圖3 GDELN對(duì)DSS誘導(dǎo)的結(jié)腸炎小鼠結(jié)腸炎癥的影響Fig.3 Effect of GDELN on colonic inflammation in mice with DSS-induced colitis
2.4 腸道微生物對(duì)GDELN 緩解DSS誘導(dǎo)結(jié)腸炎的影響 清除小鼠腸道內(nèi)菌群后,GDELN 抑制結(jié)小鼠體質(zhì)量下降的作用被消除(P<0.05,圖4A);小鼠生存期也未得到顯著延長(zhǎng)(P<0.05,圖4B);結(jié)腸組織染色表明,清除腸道微生物后,GDELN 無(wú)法發(fā)揮抑制腸道炎癥的作用(P<0.05,圖4C);ELISA 結(jié)果顯示,清除腸道微生物后,GDELN 無(wú)法上調(diào)結(jié)腸組織中TGF-β1 表達(dá),也無(wú)法抑制IL-8、TNF-α 及IL-6 表達(dá)(圖4D);Western blot 結(jié)果顯示,清除腸道微生物后,GDELN 無(wú)法上調(diào)TGF-β1 的表達(dá)及Smad2 和Smad3 的磷酸化水平(P<0.05,圖4E);體外細(xì)胞實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,GDELN 處理小鼠腸道微生物的代謝產(chǎn)物能顯著上調(diào)結(jié)腸上皮細(xì)胞MC-38 中TGF-β1 的表達(dá)(圖4F)。
圖4 去除腸道微生物后GDELN 對(duì)小鼠DSS誘導(dǎo)結(jié)腸炎的影響Fig.4 Effect of GDELN on DSS-induced colitis in mice after removal of intestinal microorganisms
目前UC 的病因尚不明確,但其發(fā)病機(jī)制正在被逐步破解。在過(guò)去的十幾年中,全基因組關(guān)聯(lián)研究、基于微陣列的轉(zhuǎn)錄組學(xué)分析以及基于腸道微生物的16s 測(cè)序分析都為UC 的研究提供了新的研究方向[5-7]。由于對(duì)發(fā)病機(jī)制的逐步了解,新的治療靶點(diǎn)也在被不斷發(fā)現(xiàn)。消化系統(tǒng)每天都暴露在食源性的納米顆粒中,其中包括可食用植物來(lái)源的納米顆粒。在健康人的腸道中,免疫系統(tǒng)和微生物通過(guò)適當(dāng)調(diào)節(jié)外來(lái)抗原(包括食物源性抗原負(fù)荷及其產(chǎn)生的免疫反應(yīng))從而維持腸道的恒定平衡[8]。一旦這種平衡被打破,就可能導(dǎo)致各種疾病發(fā)生。研究組在小鼠結(jié)腸炎模型中發(fā)現(xiàn),食用來(lái)源的GDELN能夠降低小鼠結(jié)腸炎癥的嚴(yán)重程度,緩解小鼠體質(zhì)量下降程度,且結(jié)腸縮短程度明顯低于未給予GDELN組小鼠。提示GDELN 可能通過(guò)調(diào)控腸道免疫反應(yīng)從而調(diào)節(jié)腸道平衡抑制結(jié)腸炎癥。
研究表明,細(xì)胞因子在調(diào)節(jié)腸道免疫中發(fā)揮重要作用,而在腸道免疫中的細(xì)胞因子又分為促炎細(xì)胞因子和抑炎細(xì)胞因子[9-11]。促炎癥細(xì)胞因子主要包括IL-8、TNF-α、IL-6 等,抑炎細(xì)胞因子主要包括TGF-β1、IL-10、IL-4 等。在UC 的發(fā)生過(guò)程中,促炎細(xì)胞因子和抑炎細(xì)胞因子的平衡失調(diào),IL-8、TNF-α及IL-6 顯著上調(diào),TGF-β1 顯著下調(diào)[12]。IL-8 能夠促進(jìn)PMN 進(jìn)入炎癥結(jié)腸組織,從而加重炎癥反應(yīng)[13]。TNF-α 能夠上調(diào)血管內(nèi)皮細(xì)胞黏附分子表達(dá),同時(shí)誘導(dǎo)內(nèi)皮細(xì)胞產(chǎn)生血小板活化因子和IL-8,這些因素共同導(dǎo)致PMN、淋巴細(xì)胞及單核巨噬細(xì)胞等與血管內(nèi)皮細(xì)胞的黏附,進(jìn)而遷移和外滲至結(jié)腸局部組織,引起腸道炎癥反應(yīng)[14-15]。此外,在IL-6 的參與下,TNF-α能夠誘導(dǎo)凝血酶形成,從而使內(nèi)皮細(xì)胞表面從抗凝血狀態(tài)轉(zhuǎn)變?yōu)榇倌獱顟B(tài),導(dǎo)致黏膜微循環(huán)出現(xiàn)障礙,從而降低腸道黏膜的屏障作用,促進(jìn)細(xì)菌進(jìn)入腸黏膜加重腸道炎癥[16]。本研究結(jié)果表明,小鼠經(jīng)GDELN 處理后可顯著抑制DSS誘導(dǎo)結(jié)腸炎中促炎癥細(xì)胞因子IL-8、TNF-α 及IL-6 的表達(dá)。進(jìn)一步提示GDELN 可能通過(guò)調(diào)節(jié)腸道免疫反應(yīng)從而緩解結(jié)腸的炎癥。
TGF-β1是轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子家族中的重要成員,是一種具有免疫抑制作用的細(xì)胞因子,目前的研究表明,體內(nèi)幾乎所有細(xì)胞均可表達(dá)并分泌TGF-β1,同時(shí)也都對(duì)該細(xì)胞因子產(chǎn)生反應(yīng)。正常情況下,腸道黏膜中高度表達(dá)TGF-β1,而TGF-β1 作為抑制炎癥的細(xì)胞因子,其功能非常強(qiáng)大,可抑制巨噬細(xì)胞的黏附和遷移,同時(shí)還能抑制T 細(xì)胞和B 細(xì)胞凋亡,抑制許多重要的炎癥介質(zhì)表達(dá)從而抑制腸道炎癥[17]。在活動(dòng)性結(jié)腸炎患者中,TGF-β1表達(dá)下調(diào),而在UC患者中,TGF-β1 表達(dá)上調(diào)與病情緩解明顯有關(guān)[18]。TGF-β1 與其受體的結(jié)合導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)Smad2 和Smad3 的磷酸化,進(jìn)而與Smad4 形成復(fù)合物轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核并抑制炎癥基因的轉(zhuǎn)錄水平,其中就包括IL-8、TNF-α 及IL-6 等[19-22]。本研究以DSS 誘導(dǎo)結(jié)腸炎小鼠GDELN 后,結(jié)腸組織中TGF-β1 的表達(dá)顯著上調(diào),同時(shí)Smad2和Smad3的磷酸化水平顯著上調(diào)。
腸道黏膜穩(wěn)態(tài)是基于豐富多樣的共生細(xì)菌生態(tài)系統(tǒng)的生理共存。越來(lái)越多的證據(jù)表明腸道菌群代謝物(包括細(xì)菌與膳食成分相互作用的副產(chǎn)物)均可影響腸道的免疫平衡。任何微生物的異常代謝物都能通過(guò)改變營(yíng)養(yǎng)和支持網(wǎng)絡(luò)的機(jī)制,降低腸黏膜的防御能力,影響腸道免疫系統(tǒng),進(jìn)而影響機(jī)體健康[23]。微生物群從宿主無(wú)法消化的食物成分中獲取能量,這些食物成分被代謝生成物質(zhì),然后被宿主吸收,隨后合成為必需營(yíng)養(yǎng)素,如維生素B和K等,這個(gè)過(guò)程改變了整體能量的平衡[24]。因此,局部微生物群、腸上皮細(xì)胞和常駐免疫細(xì)胞間復(fù)雜的相互作用有助于胃腸道環(huán)境的穩(wěn)定。在這個(gè)系統(tǒng)中,細(xì)菌代謝產(chǎn)物對(duì)上皮屏障和免疫細(xì)胞正常功能發(fā)揮重要的反饋信號(hào)作用。本研究去除小鼠腸道微生物,再給予DSS 誘導(dǎo)結(jié)腸炎小鼠GDELN 后,GDELN對(duì)腸道炎癥的緩解作用被消除,其中TGF-β1表達(dá)顯著下調(diào),炎癥因子IL-8、TNF-α 及IL-6 表達(dá)顯著上調(diào)。提示GDELN進(jìn)入小鼠腸道后,是通過(guò)腸道微生物發(fā)揮其對(duì)腸道免疫調(diào)控作用的。研究組在收集小鼠腸道微生物代謝產(chǎn)物進(jìn)行體外實(shí)驗(yàn)后,發(fā)現(xiàn)腸道微生物代謝產(chǎn)物能夠上調(diào)結(jié)腸上皮細(xì)胞TGF-β1的表達(dá),進(jìn)一步證實(shí)GDELN 進(jìn)入腸道后,通過(guò)調(diào)控微生物代謝產(chǎn)物從而實(shí)現(xiàn)對(duì)結(jié)腸炎癥的緩解。
綜上所述,本研究證實(shí)了日??墒秤弥兴幉腉DELN 能夠顯著緩解DSS 誘導(dǎo)的結(jié)腸炎,并通過(guò)小鼠動(dòng)物模型及細(xì)胞體外實(shí)驗(yàn)證實(shí)GDELN 通過(guò)調(diào)控腸道微生物的代謝產(chǎn)物從而上調(diào)TGF-β1 表達(dá),進(jìn)而激活其下游的Smad2/Smad3 信號(hào)通路,實(shí)現(xiàn)對(duì)炎癥細(xì)胞因子的調(diào)控,緩解結(jié)腸炎癥。