王淑梅,邸 維,于佳睿,王 雪,單 藝,易華西
(1.哈爾濱學(xué)院 食品工程學(xué)院,黑龍江 哈爾濱 150086;2.廣東科貿(mào)職業(yè)學(xué)院 食品與生物工程學(xué)院,廣東 廣州 510430;3.中國海洋大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院,山東 青島 266100)
亞硝酸鹽作為護色劑或防腐劑在肉制品加工中被廣泛應(yīng)用。在一定條件下,亞硝酸鹽與二級胺或三級胺相互作用生成N-亞硝基化合物。存在于食品中的N-亞硝基化合物主要為N-亞硝胺類[1],是毒性很強的一類物質(zhì)[2]。研究顯示,多種食物中都含有一定量的N-亞硝胺,如N-二甲基亞硝胺(N-nitrosodimethylamine,NDMA)、N-二乙基亞硝胺(N-nitrosodiethylamine,NDEA)、N-亞硝基吡咯烷(N-nitrosopyrrolidine,NPYR)、N-亞硝基哌啶(N-nitrosopiperi dine,NPIP)[1],是食品中重要的致癌物[3]。N-亞硝胺誘發(fā)人體癌變具有明顯的器官親和性,不同化合物具有不同的致癌靶器官[4]。如外源性NDMA隨食物進入體內(nèi),主要在腸道被吸收[4],因此腸道黏膜成為NDMA發(fā)揮毒性作用的靶向組織[5]。而體內(nèi)亞硝化反應(yīng)生成內(nèi)源NDMA也發(fā)生在腸腔內(nèi),因此,NDMA成為腸道癌的誘變劑[6],誘導(dǎo)腸道黏膜細胞的損傷[7-9]。
在我國肉制品加工中,除控制護色劑、防腐劑使用量之外,也制訂了N-亞硝胺的限量標準?,F(xiàn)行食品安全國家標準GB 2762—2017《食品安全國家標準食品中污染物限量》中規(guī)定肉制品中NDMA含量≤3 μg/kg,海產(chǎn)品中NDMA含量≤5 μg/kg。雖然對肉制品及海產(chǎn)品中NDMA含量有嚴格限定,但是隨著食品產(chǎn)地、種類及加工方式的不同,NDMA的含量也顯著不同。調(diào)查顯示,NDMA在我國熏肉制品中僅含0.3~6.5 μg/kg,而在日本加工干魷魚中含量高達300 μg/kg[4]。因此,除了改進加工工藝及在加工過程中添加抗氧化劑外,適當(dāng)增加亞硝化阻斷劑,如維生素C(vitamin C,VC)、維生素E(vitamin E,VE)、酚類及黃酮類的攝入量也可降低NDMA對人體的毒性損傷。
目前研究證實,乳酸菌可降低N-亞硝胺的毒性作用[2],可直接降低食品(如泡菜、香腸)中N-亞硝胺的含量。LIAO E等[10-11]研究發(fā)現(xiàn),植物乳桿菌(Lactobacillus plantarum)120的添加可顯著降低中國傳統(tǒng)發(fā)酵魚制品中的亞硝酸鹽和NDMA含量,說明乳酸菌是抑制中國傳統(tǒng)發(fā)酵魚制品發(fā)酵過程中NDMA累積的一種有效方法。有研究發(fā)現(xiàn),乳桿菌屬中的植物乳桿菌、雙歧桿菌(Bifidobacterium)、保加利亞乳桿菌(Lactobacillus bulgaricus)、噬酸乳桿菌(Lactobacillus acidophilus)、鼠李糖乳桿菌(Lactobacillus rhamnosus)具有降低N-亞硝基化合物含量的能力[12],有望與VC、VE和酚類等一同作為亞硝化阻斷劑。前期研究顯示,干酪乳桿菌(Lactobacillus casei)SB27作為發(fā)酵菌種具有較強的耐酸、耐膽鹽性能,可定植于人體腸道上皮細胞[13]。因此,在前期研究的基礎(chǔ)上,本研究以干酪乳桿菌SB27為研究對象,考察NDMA、NDEA、NPYR和NPIP(0~80 μg/mL)對其生長繁殖的影響,并以VC(50 μmol/L)為陽性對照,采用細胞計數(shù)試劑盒(cell counting kit,CCK)-8法分析干酪乳桿菌SB27(103~106CFU/mL)降低NDMA、NDEA、NPYR和NPIP(0~80 μg/mL)對大鼠腸道黏膜細胞IEC-6毒性作用的能力,以期進一步明確干酪乳桿菌SB27降解N-亞硝胺及菌株發(fā)揮功能的關(guān)鍵成分提供理論研究基礎(chǔ)。
1.1.1 細胞和菌株
大鼠腸道黏膜細胞IEC-6:東北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院;干酪乳桿菌(Lactobacillus casei)SB27:分離自甘肅北部的牦牛乳,現(xiàn)保存于哈爾濱工業(yè)大學(xué)化學(xué)工程與技術(shù)學(xué)院。
1.1.2 化學(xué)試劑
N-二甲基亞硝胺、N-二乙基亞硝胺、N-亞硝基吡咯烷、N-亞硝基哌啶:美國Sigma-Aldrich公司;CCK-8試劑盒:上海碧云天生物技術(shù)有限公司;胰酶消化液:美國Corning公司;胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS):美國Thermo Fisher Scientific公司。其他試劑均為國產(chǎn)分析純。
1.1.3 培養(yǎng)基
DMEM(Dulbecco's modified eagle medium):美國Corning公司。
MRS液體培養(yǎng)基[14]:蛋白胨10 g/L,牛肉膏8 g/L,酵母浸粉5 g/L,葡萄糖20 g/L,吐溫-80 1.0 mL/L,磷酸氫二鉀2 g/L,檸檬酸氫二胺2 g/L,七水硫酸鎂0.58 g/L,三水乙酸鈉5 g/L,硫酸錳0.25 g/L,蒸餾水1 000 mL,調(diào)整pH 6.2~6.6,于121 ℃高壓蒸汽滅菌15 min。MRS固體培養(yǎng)基中添加瓊脂18 g/L。
HEPA1100二氧化碳培養(yǎng)箱、Forma 102厭氧培養(yǎng)箱:美國Thermo Electron公司;CX31電子顯微鏡:日本Olympus公司;Sartorius AG PB-10 pH計:德國Sartorius公司;Bio-Rad-680酶標儀:美國Bio-rad公司。
1.3.1N-亞硝胺工作液的制備
將NDMA、NDEA、NPYR和NPIP溶于雙蒸水中,配成質(zhì)量濃度為10mg/mL的儲備液[15],4℃保存。實驗中將10mg/mL儲備液稀釋成1 000 μg/mL工作液,4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.3.2N-亞硝胺在MRS液體培養(yǎng)基中對菌株SB27生長的影響
取50 μL菌液接種于MRS液體培養(yǎng)基中,輕微振蕩,37 ℃培養(yǎng)18 h,活化2代后備用。將N-亞硝胺工作液加入MRS液體培養(yǎng)基中,使終質(zhì)量濃度分別為0、5 μg/mL、10 μg/mL、20 μg/mL、40 μg/mL、80 μg/mL[1],將已活化的干酪乳桿菌SB27以4%(V/V)的接種量加入培養(yǎng)基中,37 ℃條件下培養(yǎng)7 d,每隔24 h采用傾注平板法進行菌落計數(shù)[16]。
1.3.3 干酪乳桿菌SB27對IEC-6細胞存活率的影響
將IEC-6細胞懸于DMEM中,調(diào)整細胞濃度為5×104個/mL,將細胞懸液加入到96孔組織培養(yǎng)板中,每孔100 μL。待細胞完全貼壁后,移去細胞培養(yǎng)液,加入10 μL各劑量的干酪乳桿菌SB27,使其終濃度分別為0(空白對照組)、103CFU/mL、104CFU/mL、105CFU/mL和106CFU/mL。各孔最后用DMEM補至100 μL。96孔培養(yǎng)板放置CO2培養(yǎng)箱中(5%CO2,95%空氣,100%相對濕度),37 ℃條件下分別培養(yǎng)至2 h、8 h、14 h和20 h時加入10 μL CCK-8溶液,再繼續(xù)孵育4 h。采用酶標儀檢測波長450 nm處的吸光度值,并計算細胞存活率,其計算公式如下:
式中:A0為具有DMEM和CCK-8溶液的孔的吸光度值;A1為具有DMEM、IEC-6細胞、CCK-8溶液和干酪乳桿菌SB27的孔的吸光度值;A2為具有DMEM、IEC-6細胞、CCK-8溶液的孔的吸光度值。
1.3.4 干酪乳桿菌SB27降低N-亞硝胺毒性作用的檢測
通過對大鼠腸道黏膜細胞IEC-6的生長增殖分析干酪乳桿菌SB27降低N-亞硝胺的毒性作用。采用CCK-8法,細胞處理及干酪乳桿菌SB27的添加同1.3.3,再分別加入NDMA、NDEA、NPYR和NPIP,使其終質(zhì)量濃度分別為0、5 μg/mL、10 μg/mL、20 μg/mL、40 μg/mL和80 μg/mL,陽性對照組為VC(50μmol/L)。96孔培養(yǎng)板放置CO2培養(yǎng)箱中(5%CO2,95%空氣,100%相對濕度),37 ℃條件下培養(yǎng)至20 h時加入10 μL CCK-8溶液,再繼續(xù)孵育4 h。采用酶標儀檢測波長450 nm處的吸光度值,并計算細胞存活率,其計算公式如下:
式中:A0為具有DMEM和CCK-8溶液的孔的吸光度值;A3為具有DMEM、IEC-6細胞、CCK-8溶液、干酪乳桿菌SB27和N-亞硝胺的孔的吸光度值;A4為具有DMEM、IEC-6細胞、CCK-8溶液的孔的吸光度值。
1.3.5 數(shù)據(jù)處理及統(tǒng)計分析
實驗重復(fù)3次,利用SAS 9.1軟件進行方差分析,結(jié)果表示為“平均值±標準偏差”(X±SD),顯著性水平設(shè)定為P<0.05。
N-亞硝胺在MRS液體培養(yǎng)基中對干酪乳桿菌SB27生長的影響見圖1。
圖1 不同質(zhì)量濃度的NDMA(a)、NDEA(b)、NPYR(c)和NPIP(d)對干酪乳桿菌SB27生長的影響Fig.1 Effect of different mass concentrations of NDMA (a),NDEA (b),NPYR (c) and NPIP (d) on Lactobacillus casei SB27 growth
由圖1可知,隨著培養(yǎng)時間的延長,各實驗組干酪乳桿菌SB27的活菌數(shù)均呈先升高后下降的趨勢,且各劑量組之間干酪乳桿菌SB27活菌數(shù)的差異不顯著(P>0.05)。說明隨著培養(yǎng)時間的變化,干酪乳桿菌SB27活菌數(shù)的顯著差異是由菌株自身生長和繁殖周期所致,并非N-亞硝胺的毒性損傷。結(jié)果表明,N-亞硝胺在MRS液體培養(yǎng)基中對干酪乳桿菌SB27的生長增殖無顯著影響,與NOWAK A等[16]的研究結(jié)果相似。
干酪乳桿菌SB27對IEC-6細胞存活率的影響見圖2。
圖2 干酪乳桿菌SB27對IEC-6細胞增殖的影響Fig.2 Effect of Lactobacillus casei SB27 on IEC-6 cells proliferation
由圖2可知,隨著培養(yǎng)時間的延長,各組IEC-6細胞的存活率呈現(xiàn)增長的趨勢,培養(yǎng)6h與培養(yǎng)24h差異顯著(P<0.05)。但是在相同培養(yǎng)時間內(nèi),空白對照組和干酪乳桿菌SB27各劑量組差異不顯著(P>0.05)。說明干酪乳桿菌SB27對大鼠腸道黏膜細胞IEC-6的存活率并未產(chǎn)生顯著的影響,因此可進行后續(xù)研究。
VC每日推薦攝取量(recommended dietary allowance,RDA)約為60 mg/d[17]。人體每天攝入100 mg的VC會使血漿VC的濃度略低于60 μmol/L,由此推測平衡膳食條件下人血漿VC水平范圍為5~50 μmol/L[18]。研究也顯示,VC(50 μmol/L)在NPIP和NPYR存在下,對人的白血病細胞HL-60和肝癌細胞HepG2發(fā)揮保護作用。由于VC具有抗氧化性,又可減少N-亞硝胺對機體的損傷[19],因此本研究選用VC(50 μmol/L)作為陽性對照,選定干酪乳桿菌SB27的活菌體成分,分析其發(fā)揮降低N-亞硝胺對IEC-6細胞毒性作用的能力。
2.3.1 干酪乳桿菌SB27降低NDMA毒性的作用
由圖3可知,當(dāng)干酪乳桿菌SB27添加量分別為104CFU/mL、105CFU/mL、106CFU/mL時,NDMA劑量為20~80 μg/mL時的IEC-6細胞存活率顯著高于空白對照組(P<0.05),NDMA劑量為0~10 μg/mL時的細胞存活率與空白對照組差異不顯著(P>0.05),以上各組與陽性對照組差異均不顯著(P>0.05)。當(dāng)干酪乳桿菌SB27添加量為103CFU/mL時,NDMA劑量為80 μg/mL時的IEC-6細胞存活率顯著高于空白對照組(P<0.05),NDMA劑量為0~40 μg/mL時的IEC-6細胞存活率與空白對照組差異不顯著(P>0.05)。
圖3 干酪乳桿菌SB27降低NDMA對IEC-6細胞毒性作用Fig.3 Effect of Lactobacillus casei SB27 on reducing the toxic of NDMA to IEC-6 cells
有研究表明,NDMA會導(dǎo)致肝臟、胃腸道黏膜的損傷或形成腫瘤,100 mg的NDMA會導(dǎo)致人體腹瀉、嘔吐、肝毒性或死亡[20]。乳酸菌作為功能性益生菌,可通過生物的方式對抗N-亞硝胺的遺傳毒性,抑制腸道黏膜的DNA損傷,如乳桿菌和雙歧桿菌可劑量依賴性地保護人體腸道細胞系(HT-29或Caco-2)的遺傳毒性作用[21]。本研究結(jié)果表明,干酪乳桿菌SB27(103~106CFU/mL)可降低NDMA對大鼠腸道黏膜細胞IEC-6的毒性作用,可抑制NDMA誘導(dǎo)IEC-6細胞的損傷,分析原因可能是干酪乳桿菌SB27降低了NDMA的含量。乳酸菌發(fā)揮降低NDMA毒性的作用可能是通過吸收或降解有毒化學(xué)物的含量[2],減少有毒化學(xué)物合成前體物或是乳酸菌抗氧化功能發(fā)揮的作用[22-23]。
2.3.2 干酪乳桿菌SB27降低NDEA毒性的作用
由圖4可知,當(dāng)干酪乳桿菌SB27添加劑量為104、105和106CFU/mL時,NDEA劑量為40~80 μg/mL時的IEC-6細胞存活率顯著高于空白對照組(P<0.05),而NDEA劑量為0~20 μg/mL時的IEC-6細胞存活率與空白對照組差異不顯著(P>0.05),但以上各組均與陽性對照組差異不顯著(P>0.05)。當(dāng)干酪乳桿菌SB27添加劑量為103CFU/mL時,NDEA劑量為80 μg/mL時的IEC-6細胞存活率顯著高于空白對照組(P<0.05),NDEA劑量為0~40 μg/mL時的細胞存活率與空白對照組差異不顯著(P>0.05)。
圖4 干酪乳桿菌SB27降低NDEA對IEC-6細胞毒性的作用Fig.4 Effect of Lactobacillus casei SB27 on reducing the toxic of NDEA to IEC-6 cells
有研究表明,乳酸菌可降低泡菜中亞硝酸鹽的含量,且在MRS培養(yǎng)基中也有相似的研究結(jié)果[24]。戊糖乳桿菌(Lactobacillus pentosus)R3、發(fā)酵乳桿菌(Lactobacillus fermentum)R6、戊糖片球菌(Pediococcus pentosaceus)P1等五株乳酸菌在MRS培養(yǎng)液中可顯著降低NDEA的濃度[11]。NDEA屬于二級A類環(huán)境致癌物,會導(dǎo)致組織細胞活性氧的堆積,從而導(dǎo)致細胞的氧化應(yīng)激和毒性損傷[25]。由于L.pentosus可降低N-亞硝胺的含量[26],其可作為潛在的提高肉制品質(zhì)量安全的一種發(fā)酵劑。本研究結(jié)果也說明,隨著NDEA添加劑量的增加,其對大鼠腸道黏膜細胞IEC-6的毒性損傷作用增強,而高劑量的干酪乳桿菌SB27(104~106CFU/mL)可顯著抑制NDEA對IEC-6細胞的毒性損傷。
2.3.3 干酪乳桿菌SB27降低NPYR毒性的作用
由圖5可知,當(dāng)干酪乳桿菌SB27添加量為104、105、106CFU/mL時,NPYR劑量為40~80 μg/mL時的IEC-6細胞存活率顯著高于空白對照組(P<0.05),NPYR劑量為0~20 μg/mL時的IEC-6細胞存活率與空白對照組差異不顯著(P>0.05),以上各組與陽性對照組差異均不顯著(P>0.05)。當(dāng)干酪乳桿菌SB27添加劑量為103CFU/mL時,NPYR劑量為80 μg/mL時的IEC-6細胞存活率顯著高于空白對照組(P<0.05),NPYR劑量為0~40 μg/mL時的IEC-6細胞存活率與空白對照組差異均不顯著(P>0.05)。結(jié)果顯示,干酪乳桿菌SB27具有降低NPYR毒性的作用,減小了NPYR對IEC-6細胞存活的抑制作用。
圖5 干酪乳桿菌SB27降低NPYR對IEC-6細胞毒性的作用Fig.5 Effect of Lactobacillus casei SB27 on reducing the toxic of NPYR to IEC-6 cells
2.3.4 干酪乳桿菌SB27降低NPIP毒性的作用
由圖6可知,當(dāng)干酪乳桿菌SB27添加量為103、104、105CFU/mL時,NPIP劑量為80 μg/mL時的IEC-6細胞存活率顯著高于空白對照組(P<0.05),NPIP劑量為0~40 μg/mL時的IEC-6細胞存活率與空白對照組差異不顯著(P>0.05),以上各組與陽性對照組差異均不顯著(P>0.05)。當(dāng)干酪乳桿菌SB27添加量為106CFU/mL時,NPIP各劑量組(0~80 μg/mL)的IEC-6細胞存活率與空白對照組差異不顯著(P>0.05)。
圖6 干酪乳桿菌SB27降低NPIP對IEC-6細胞毒性的作用Fig.6 Effect of Lactobacillus casei SB27 on reducing the toxic of NPIP to IEC-6 cells
由于NPIP是食品中普遍存在的致癌物[27],而乳酸菌可降低食品中NPIP的含量,如彎曲乳桿菌(Lactobacillus curvatus)可顯著降低哈爾濱紅腸中NPIP的含量達14.6%[28]。本研究結(jié)果顯示,干酪乳桿菌SB27可在腸道內(nèi)發(fā)揮亞硝化阻斷的作用,抑制NPIP誘發(fā)腸道黏膜細胞的損傷。
本研究分析了四類N-亞硝胺(NDMA、NDEA、NPYR和NPIP)對干酪乳桿菌SB27生長影響及干酪乳桿菌SB27降低N-亞硝胺對大鼠腸道黏膜細胞IEC-6毒性的作用。結(jié)果顯示,N-亞硝胺在MRS培養(yǎng)基中對干酪乳桿菌SB27的生長無顯著影響(P>0.05),干酪乳桿菌SB27可降低N-亞硝胺對大鼠腸道黏膜細胞IEC-6的毒性作用。