鄧小鋒 潘敏娜 鄭常祥
(貴州省農(nóng)業(yè)科學院旱糧研究所,貴州 貴陽 550006)
高粱是世界第5大作物,是糧食、釀造食品、飼料、生物能源的主要原料之一[1]。糯高梁作為釀造型白酒和醋生產(chǎn)的原料,很早被人們使用。此外,許多傳統(tǒng)的糕點食品,也由糯高梁加工而來。作物籽粒糯質性狀的形成是由于其Wx基因(即GBSSI基因)突變后,籽粒中支鏈淀粉合成增加,而直鏈淀粉合成減少[2]。常規(guī)高梁籽粒胚乳中直鏈淀粉占總淀粉的含量約為22%~24%[3,4],而典型糯高梁中的直鏈淀粉含量小于2%,幾乎全部為支鏈淀粉。西南地區(qū)是傳統(tǒng)的白酒釀造區(qū),使用當?shù)氐呐促|高粱作為白酒釀造的原料。已有研究發(fā)現(xiàn)了高粱糯質性狀的4種基因型,分別命名為wxa、wxb和 wxc、wxd[5,6]。本實驗是通過標記檢測和核苷酸直接測序,對高粱Wx的新基因型開展研究,為新基因型的進一步研究與應用提供依據(jù)。
實驗中使用67份貴州省地方高粱材料。對材料籽粒縱切剖面胚乳區(qū)的蠟質情況進行調查,判斷其是否為糯質材料。糯質材料籽粒的剖面胚乳區(qū)呈現(xiàn)像蠟燭一樣的灰白質感,而非糯質籽粒剖面胚乳區(qū)中間區(qū)域呈現(xiàn)白色粉質狀。每份材料取7~8顆完好籽粒,縱剖后觀察蠟質情況。
1.2.1 高粱材料DNA提取
每份材料在育苗盤中發(fā)苗。3葉期時取材料葉片提取DNA,每份材料取5~8個單株的葉片混合。提取DNA為改良的CTAB法:約0.2g混合葉片,放入1.5mL PE離心管,加入液氮研磨成粉末;每管加入預熱的提取緩沖液500μL,在65℃溫浴1h,每間隔10min溫和混勻1次;離心機中10000r·min-1離心5min,轉移上清液至新離心管;每管加入8μL的RNAse A(10mg·mL-1),37℃溫浴20min。短暫離心,加入500μL氯仿∶異戊醇(24∶1)混合液,輕輕顛倒混勻10~15min,直到混液呈白色乳濁狀;12000r·min-1離心10min,轉移上清液至新離心管,再加入500μL的氯仿∶異戊醇混合液,重復以上操作1次;沉淀DNA時,加入適量5mol·L-1NaAc溶液,混勻后加入2倍體積4℃預冷的95%乙醇溶液,-20℃放置1h,于低溫10000r·min-1離心10min,吸出上液,加入預冷的75%乙醇洗滌,10000r·min-1離心5min,吸出上液;再重復洗滌1次;10000r·min-1離心1min后,吸出殘留乙醇,敞開管蓋置于干凈環(huán)境10~15min,隨后每管加入100μL ddH2O,DNA充分溶解后,用微量分光光度計和瓊脂糖電泳檢測DNA的濃度和質量。提取緩沖液:100mmol Tris-HCL(pH 7.5),25mmol EDTA,1.5mol NaCl,2%(w/v)CTAB;0.3%(v/v)β-mercaptoethanol,在緩沖液預熱前加入。
1.2.2 對材料wxa基因型的檢測
對67份材料進行wxa基因型的檢測。因為wxa基因型的核苷酸序列3號外顯子中插入了1段4000bp的外源序列,對其無法直接測序。根據(jù)Sattler等的方法,其特異引物序列如下:Wxa-F(5′→3′),CGTGGCGAGATCAAACTCTA;Wx-R(5′→3′),CTGGTTGTCCTTGTAGTCCGTT;Wx-F(5′→3′),GGCCTGGATTCAATGTTCTT。PCR擴增體系如表1所示。PCR擴增程序:98℃,60s;98℃,30s;48℃,30s;72℃,62s;共35個循環(huán);4℃;PCR產(chǎn)物在2%的瓊脂糖凝膠上電泳,Marker為Marker J;612bp的條帶為wxa基因型,523的條帶為非wxa基因型。
表1 PCR擴增體系
1.2.3 對材料wx基因核苷酸序列的保守擴增和測序
除wxa基因型材料外,其它高粱材料的wx基因測序范圍從2號外顯子到14外顯子外,包含了從2-14號外顯子的編碼閱讀框核苷酸序列。序列分段設計引物保守擴增,PCR產(chǎn)物由上海生工有限公司測序。測序的序列拼接后進行分析比較。PCR分段擴增的引物和程序:12-14外顯子區(qū)間,12-14for(5′→3′):TCGACACCATCATCGAAGGC,12-14rev(5′→3′):CCACTGGCCACCACTACATT。PCR擴增體系如表2所示。PCR程序:98℃,60s;98℃,30s;53℃,30s;72℃,66s;共35個循環(huán);4℃;7-13外顯子區(qū)間,7-13for(5′→3′):ACTGGTTGCCACTTTCACATAC,7-13rev(5′→3′):GGAGAGGAAGAGAGGACGAAAC。PCR擴增體系如表2所示。PCR程序:98℃,60s;98℃,30s;51℃,30s;72℃,132s;共35個循環(huán);4℃。
表2 7-14外顯子區(qū)間PCR擴增體系
4-8外顯子區(qū)間,4-8for(5′→3′):CAGATCAAGATGGGAGACGGGTACGA,4-8rev(5′→3′):GGTTGGGTTACGATTCATGTCACCTTATGT。PCR擴增體系如表3所示。PCR程序:98℃,60s;98℃,30s;56℃,30s;72℃,117s;共35個循環(huán);4℃。2-4外顯子區(qū)間,對非wxa基因型的材料,直接擴增2-4外顯子區(qū)間序列。2-4for(5′→3′):CGTCGCAGCTCGTCGCCACGCAC,2-4rev(5′→3′):CTCACCGTCTCGTACCCGTCTCCCATCTTG。PCR擴增體系如表4所示。PCR程序:98℃,60s;98℃,30s;63℃,30s;72℃,76s;共35個循環(huán);4℃。對wxa基因型的材料,使用檢測wxa的引物擴增3號外顯子中外源插入序列右側的區(qū)間序列。Wxa-F(5′→3′):CGTGGCGAGATCAAACTCTA,Wx-R(5′→3′):CTGGTTGTCCTTGTAGTCCGTT。PCR擴增體系如表4所示。PCR程序:98℃,60s;98℃,30s;48℃,30s;72℃,62s;共35個循環(huán);4℃。
表3 4-8外顯子區(qū)間PCR擴增體系
表4 2-4外顯子區(qū)間PCR擴增體系
1.2.4 序列拼接和比對分析
各材料測定的wx基因核苷酸序列用ClustalX軟件比對后,進行人工拼接,對材料間的序列進行比對分析,使用高粱材料BTX623的wx基因序列作為參考序列。彩圖文件的輸出使用Bioedit軟件和Foxit PDF reader。
67份材料中,籽粒剖面為蠟質的有18份,其余49份為非蠟質,如表5所示。
表5 67份高粱地方材料的籽粒剖面蠟質情況
提取的67份材料的DNA,用瓊脂糖凝膠電泳檢測質量,部分材料如圖1所示。DNA質量較好,可用于后續(xù)的分子標記檢測和測序。
圖1 提取的材料的DNA(部分材料的照片)
對67份材料的wxa基因型的分子標記鑒定結果如圖2及表6所示。
表6 57份材料中鑒定的wxa基因型材料
圖2 對67份高粱材料wxa基因型的鑒定結果
67份材料的2-14號外顯子區(qū)間核苷酸序列拼接及比對后,鑒定出含wxc、wxd基因型的材料及2種新的wx基因型。
2.4.1 測序鑒定的含有wxc基因型的高粱材料
各材料各區(qū)段核苷酸序列通過拼接和比對后,鑒定出6份高粱材料的wx基因型為wxc,如圖3所示。D29為雜合材料,除wxc基因型外部分D29材料Wx基因2926處核苷酸堿基由G顛換為C,該位置與wxc基因型突變位置相同,因此是一種新的wx基因型。D29中此位置新突變是否也會導致蠟質性狀,還有待進一步研究。此外,C28也是雜合材料,同時含有wxc和野生型。
圖3 測序鑒定的6份高粱材料的wxc基因型
2.4.2 測序鑒定的含有wxd基因型的高粱材料
各材料比對后,鑒定出B20的wx基因型為wxd,如圖4所示。
圖4 測序鑒定的材料B20的wxd基因型
2.4.3 其它材料中wx基因的突變
在12份高粱材料中發(fā)現(xiàn)另一種新的wx基因型,比較于野生型,該基因有13處突變位于編碼框內(nèi)。此外,部分D21材料在2號外顯子1286-1287號核苷酸堿基處還有突變,如圖5所示。
圖5 測序鑒定的12份材料中一種新的wx基因型
這12份材料B3、C22、C34、D7、D15、D21、D36、D40、D49、D59、D70、D79的縱切籽粒剖面顯示其不是蠟質型,因此雖然是一種新的wx基因型,但是該基因型沒有導致Wx蛋白功能喪失。
研究通過分子標記檢測與直接測序分析,從67份材料中鑒定出11份含wxa基因型、6份含wxc基因型、1份含wxd基因型的高粱地方材料。此外還發(fā)現(xiàn)2種新的wx基因型,直接從籽??v切剖面表型判斷,1種不會導致糯質性狀,位于基因位置2926處堿基由G顛換為C的突變是否會導致糯質性狀或者其它性狀,還有待從雜合材料中分離混合材料后,進一步研究確定。研究為后續(xù)2種新wx基因型的應用與研究提供了科學依據(jù)。