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        桑枝低聚糖抑制變異鏈球菌工藝優(yōu)化及其抗氧化活性

        2022-06-14 08:21:16朱巧玲鄒宇曉廖森泰孫遠(yuǎn)明黎爾納
        食品研究與開發(fā) 2022年10期
        關(guān)鍵詞:桑枝低聚糖葡聚糖

        朱巧玲,鄒宇曉,廖森泰,孫遠(yuǎn)明,黎爾納*

        (1.華南農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,廣東 廣州 510642;2.廣東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院蠶業(yè)與農(nóng)產(chǎn)品加工研究所,農(nóng)業(yè)農(nóng)村部功能食品重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣東省農(nóng)產(chǎn)品加工重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣東 廣州 510610)

        桑枝是桑樹的枝條,作為傳統(tǒng)中藥,含有黃酮、多糖、生物堿和氨基酸等活性成分[1]。多糖是桑枝的主要活性物質(zhì),由甘露糖、鼠李糖、葡萄糖醛酸、葡萄糖、木糖、半乳糖、阿拉伯糖等單糖組成,其摩爾比為1.36∶2.68∶0.46∶328.17∶1.53∶21.80∶6.16[2],具有緩解糖尿病、保護(hù)肝臟、提高免疫等藥理功效[3-5]。

        多糖的活性與其分子量密切相關(guān),降低分子量可提高其生理活性[6]。酶降解法采用特定酶斷裂分子內(nèi)部的糖苷鍵,從而降低聚合度及其分子量。與物理降解、化學(xué)降解相比,酶降解法反應(yīng)條件溫和、專一性強(qiáng)、反應(yīng)迅速、無污染。采用酶法降解多糖可降低多糖的分子量,進(jìn)一步提高其生理活性,使其應(yīng)用范圍更加廣泛[7-9]。將大分子多糖酶解為小分子低聚糖已經(jīng)成為多糖開發(fā)利用的熱點(diǎn),吳婷等[10]將葫蘆巴多糖酶解得到低聚糖片段,抑菌活性增強(qiáng);燕麥β-葡聚糖、殼聚糖的抗菌活性同樣隨著分子量的降低逐漸增強(qiáng)[11-13]。

        齲病的發(fā)生是由于變異鏈球菌利用蔗糖等產(chǎn)生不溶性葡聚糖,在牙齒表面形成齒垢,在齒垢中使糖發(fā)酵產(chǎn)酸,腐蝕牙齒,形成齲齒[14-17]。尋找無毒副作用又具備防齲性能的天然藥物已經(jīng)成為近年來的研究熱點(diǎn)。研究表明,低聚糖對(duì)病原微生物的生長(zhǎng)具有較好的抑制作用[18],高濃度的低聚木糖可以抑制變異鏈球菌生長(zhǎng)[19],殼寡聚糖抑制變異鏈球菌產(chǎn)酸、產(chǎn)糖和黏附[20]。低聚異麥芽糖無法被變異鏈球菌利用,降低產(chǎn)酸,且其中的潘糖可有效抑制齒垢的形成[21]。機(jī)體在新陳代謝的過程中產(chǎn)生自由基,自由基在口腔內(nèi)的大量存在會(huì)增加口腔疾病(齲齒、牙周病等)發(fā)生的風(fēng)險(xiǎn),并且在疾病發(fā)生過程中也起到關(guān)鍵作用[22],添加外源性抗氧化劑可以起到預(yù)防口腔疾病的效果[23]。

        目前,關(guān)于桑枝多糖的功能性研究主要有降血糖、降血脂和抗腫瘤等,而對(duì)桑枝低聚糖微生態(tài)產(chǎn)品研究較少。本試驗(yàn)以桑枝多糖為原材料,采用β-葡聚糖酶制備桑枝低聚糖,考察桑枝低聚糖對(duì)變異鏈球菌抑制的效果,并用響應(yīng)面法優(yōu)化酶法制備低聚糖工藝,研究桑枝低聚糖的抗氧化活性,為桑枝低聚糖在口腔保健類產(chǎn)品中的應(yīng)用提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        桑枝多糖(桑枝經(jīng)80℃水浸提3次每次2 h,減壓抽濾,濃縮,4倍體積無水乙醇醇沉,4℃靜置過夜,離心分離所得粗多糖,苯酚硫酸法檢測(cè)多糖含量約為70%);腦-心浸萃液態(tài)培養(yǎng)基(brain heart infusion,BHI):廣東環(huán)凱微生物科技有限公司;果膠酶(1 000 U/mg)、纖維素酶(400 U/mg)、β-葡聚糖酶(50 U/mg)、β-甘露聚糖酶(50U/mg)、木聚糖酶(6000U/mg)、糖化酶(100U/mg):廣州市齊云生物技術(shù)有限公司;變異鏈球菌ATCC25175:廣東省微生物研究所菌種保藏中心;總抗氧化能力檢測(cè)試劑盒 [2,2′-連氮基-雙-(3-乙基苯并噻唑-6-磺酸)(2,2′-azino-bis-(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid,ABTS)法]、總抗氧化能力檢測(cè)試劑盒[鐵離子還原抗氧化力(ferric reducing antioxidant power,F(xiàn)RAP)法]:上海碧云天生物技術(shù)有限公司;1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl radical,DPPH)自由基清除能力試劑盒:蘇州格銳思生物科技有限公司;試驗(yàn)試劑均為分析純。

        1.2 儀器與設(shè)備

        BP211D型電子分析天平:德國(guó)賽多利斯公司;THZ-D臺(tái)式恒溫振蕩器:江蘇省華美生化儀器廠;HWS26型電熱恒溫水浴鍋、DHP-9082電熱恒溫培養(yǎng)箱:上海一恒科學(xué)儀器有限公司;SW-CJ-2FD潔凈工作臺(tái):蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司;synergyH1型酶標(biāo)儀:美國(guó)Biotek公司;YQX-II厭氧培養(yǎng)箱:海南雋譽(yù)科技有限公司。

        1.3 試驗(yàn)方法

        1.3.1 變異鏈球菌菌液的制備

        取-80℃保存的變異鏈球菌ATCC25175接種于BHI液體培養(yǎng)基中,37 ℃厭氧(80% N2、10% CO2、10% H2)培養(yǎng)24 h,經(jīng)鑒定及涂片檢查為純培養(yǎng)后,挑取單菌落接種于BHI液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)24 h,調(diào)整菌懸液濃度約107CFU/mL,備用。

        1.3.2 活菌總數(shù)與抑菌率測(cè)定

        變異鏈球菌活菌數(shù)量的測(cè)定:稀釋倒平板法,參考GB4789.2—2016《食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)食品微生物學(xué)檢驗(yàn)菌落總數(shù)測(cè)定》[24]。接種1%菌液,37℃厭氧培養(yǎng)24h,以BHI液體培養(yǎng)基為陰性對(duì)照組,將陰性對(duì)照組活菌總數(shù)設(shè)置為100%,變異鏈球菌抑菌率計(jì)算公式如下。

        1.3.3 不同酶制備桑枝低聚糖抑制變異鏈球菌生長(zhǎng)的影響

        參考賈俊強(qiáng)等[25]對(duì)蛹蟲草多糖的酶解工藝并加以適當(dāng)修改,分別添加不同種類的酶(果膠酶、纖維素酶、β-葡聚糖酶、β-甘露聚糖酶、木聚糖酶、糖化酶)到桑枝多糖溶液中,調(diào)節(jié)至酶添加量為1 000 U/mL,50℃水浴加熱3 h,沸水浴10 min滅酶,冷卻離心(4 000 r/min,10 min)后取上清液即為桑枝低聚糖樣品,121℃高壓滅菌20 min,4℃儲(chǔ)存?zhèn)溆?。預(yù)試驗(yàn)結(jié)果表明3 mg/mL桑枝多糖對(duì)變異鏈球菌的抑菌率接近半數(shù)抑菌率,因此選擇質(zhì)量濃度為3 mg/mL進(jìn)行后續(xù)酶解工藝優(yōu)化研究。分別添加不同酶酶解后的桑枝低聚糖、商品化低聚糖(低聚半乳糖、低聚異麥芽糖)、桑枝多糖至BHI液體培養(yǎng)基中,使其終質(zhì)量濃度為3 mg/mL。接種1%菌液,37℃厭氧培養(yǎng)24 h,計(jì)算抑菌率。

        1.3.4 單因素試驗(yàn)

        1.3.4.1 酶添加量對(duì)抑菌率的影響

        在桑枝低聚糖終質(zhì)量濃度為3.00 mg/mL的條件下,分別添加β-葡聚糖酶使酶添加量至200、400、600、800、1 000 U/mL,50℃水浴加熱3 h。考察酶添加量影響抑菌率的程度。

        1.3.4.2 酶解溫度對(duì)抑菌率的影響

        在桑枝低聚糖終質(zhì)量濃度為3.00 mg/mL的條件下,添加β-葡聚糖酶至400 U/mL,分別置于溫度為30、40、50、60、70 ℃水浴加熱 3 h。考察酶解溫度影響抑菌率的程度。

        1.3.4.3 酶解時(shí)間對(duì)抑菌率的影響

        在桑枝低聚糖終質(zhì)量濃度為3.00 mg/mL的條件下,添加β-葡聚糖酶至400 U/mL,40℃分別水浴加熱1、2、3、4、5、6 h。考察酶解時(shí)間影響抑菌率的程度。

        1.3.5 響應(yīng)面試驗(yàn)

        綜合單因素試驗(yàn)的結(jié)果,以酶添加量(A)、酶解溫度(B)、酶解時(shí)間(C)為自變量,以變異鏈球菌抑菌率為響應(yīng)值,采用Box-Behnken響應(yīng)面設(shè)計(jì)法對(duì)酶解條件在三因素三水平上進(jìn)行工藝參數(shù)的優(yōu)化。試驗(yàn)因素與水平設(shè)計(jì)見表1。

        表1 響應(yīng)面分析因素與水平Table 1 Factors and levels of response surface methodology

        1.3.6 不同質(zhì)量濃度對(duì)桑枝低聚糖抑菌率的影響

        將桑枝多糖、桑枝低聚糖分別添加到BHI液體培養(yǎng)基中,采用二倍稀釋法稀釋為6個(gè)濃度梯度,使質(zhì)量終濃度分別達(dá)到 0.75、1.50、3.00、6.00、12.00、24.00 mg/mL。接種1%菌液,37℃厭氧培養(yǎng)24 h,計(jì)算抑菌率。

        1.3.7 桑枝低聚糖的抗氧化活性的測(cè)定

        1.3.7.1 DPPH法

        DPPH自由基有單電子,在517 nm處有強(qiáng)吸收,醇溶液呈紫色,當(dāng)自由基清除劑存在時(shí),與單電子配對(duì)使其吸收逐漸消失,呈現(xiàn)顏色較淺,吸光值越低。按照DPPH自由基清除能力試劑盒說明,將150 μL的樣品溶液加入到150 μL工作液中避光30 min,12 000 r/min離心5min,測(cè)定517nm處吸光度,記為A測(cè)定,以150μL 80%甲醇溶液和150 μL樣品溶液反應(yīng),測(cè)吸光度,記為A對(duì)照,以150μL80%甲醇溶液和150μL工作液反應(yīng),測(cè)吸光度,記為A空白。按下式計(jì)算DPPH自由基清除率和清除能力。以同濃度的VC和低聚異麥芽糖溶液作為陽(yáng)性對(duì)照。

        1.3.7.2 ABTS法

        ABTS在氧化劑的作用下會(huì)氧化成綠色的ABTS+自由基,在抗氧化物存在時(shí)ABTS+自由基的形成受到抑制,測(cè)定其在734 nm的吸光度即可測(cè)定并計(jì)算出樣品的總抗氧化能力。按照總抗氧化能力檢測(cè)試劑盒(ABTS法)測(cè)定,將 10 μL 樣品溶液加入到 200 μL ABTS 工作液中,室溫孵育6 min后測(cè)定A734,以0.15 mmol/L~1.5 mmol/L Trolox標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度為縱坐標(biāo),反應(yīng)后溶液的A734為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出樣品的總抗氧化能力,總抗氧化能力用Trolox當(dāng)量表示。以同濃度的VC和低聚異麥芽糖溶液作為陽(yáng)性對(duì)照。

        1.3.7.3 FRAP法

        酸性條件下抗氧化物可以還原Fe3+-三吡啶三吖嗪(ferric-tripyridy ltriazine,F(xiàn)e3+-TPTZ) 產(chǎn)生藍(lán)色的Fe2+-TPTZ,在593 nm測(cè)定藍(lán)色的Fe2+-TPTZ的吸光值即可獲得樣品中的總抗氧化能力。按照總抗氧化能力檢測(cè)試劑盒(FRAP)測(cè)定,將5 μL樣品溶液加入到180 μL FRAP工作液中,37℃孵育5 min后測(cè)定 A593,以0.15 mmol/L~1.5 mmol/L FeSO4標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度為縱坐標(biāo),反應(yīng)后溶液的A793為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出樣品的總抗氧化能力,總抗氧化能力用FeSO4當(dāng)量表示。以同濃度的VC和低聚異麥芽糖溶液作為陽(yáng)性對(duì)照。

        1.4 數(shù)據(jù)處理

        試驗(yàn)數(shù)據(jù)為3次重復(fù)平均值。采用GraphPadPrism7、Design Expert12.0和SPSS 22.0進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)處理。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 不同種類酶對(duì)變異鏈球菌抑菌率的影響

        采用不同酶制得的桑枝低聚糖、商品化低聚糖(低聚異麥芽糖和低聚半乳糖)、桑枝多糖對(duì)變異鏈球菌抑菌率的影響如圖1所示。

        圖1 不同種類酶對(duì)桑枝低聚糖抑制變異鏈球菌的影響Fig.1 The effect of different enzymes on the inhibition rate of Streptococcus mutans

        不同酶制備的低聚糖抑菌率從高到低排序?yàn)棣?葡聚糖酶酶解產(chǎn)物>低聚異麥芽糖>低聚半乳糖>木聚糖酶酶解產(chǎn)物>桑枝多糖>果膠酶酶解產(chǎn)物>糖化酶酶解產(chǎn)物>纖維素酶酶解產(chǎn)物>甘露聚糖酶酶解產(chǎn)物。結(jié)果表明β-葡聚糖酶的酶解產(chǎn)物對(duì)變異鏈球菌的抑制效果較好,其對(duì)變異鏈球菌的抑菌率為(49.06±3.81)%,和其他酶解產(chǎn)物(除低聚半乳糖外)相比,抑菌率顯著提升(P<0.05),與低聚半乳糖的抑菌率相比無顯著性差異(P>0.05)。不同酶的作用位點(diǎn)有所不同,酶解獲得的產(chǎn)物存在差異??赡苁且?yàn)棣?葡聚糖酶特異性地切斷桑枝多糖的 β-1,3-糖苷鍵、β-1,4-糖苷鍵,得到分子量較小的低聚糖片段,可以更快穿透菌體的細(xì)胞膜,增大細(xì)胞內(nèi)部滲透壓導(dǎo)致細(xì)菌死亡[29],從而具有更高的抑菌活性。因此選擇β-葡聚糖酶進(jìn)行后續(xù)酶解研究。

        2.2 單因素試驗(yàn)結(jié)果

        2.2.1 酶添加量對(duì)抑菌率的影響

        β-葡聚糖酶添加量制備桑枝低聚糖對(duì)變異鏈球菌抑菌率的影響見圖2。

        圖2 酶添加量對(duì)變異鏈球菌抑菌率的影響Fig.2 The effect of enzyme addition on the inhibition rate of Streptococcus mutans

        桑枝低聚糖的抑菌率隨酶添加量的增加呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢(shì),在酶添加量為400 U/mL時(shí)抑菌率達(dá)到最大值(53.40±4.16)%,當(dāng)酶添加量大于400 U/mL時(shí)抑菌率隨之降低。在一定的底物濃度下,酶添加量較少時(shí),酶尚未被飽和,酶添加量增加,酶解效率隨之升高[30],生成的低聚糖增加,抑菌率隨之升高。酶添加量逐漸增加至一定程度,過量的酶將多糖水解為更小的片段,使其抑菌活性降低。因此選擇400U/mL為酶添加量最佳值。

        2.2.2 酶解溫度對(duì)抑菌率的影響

        不同酶解溫度制備的桑枝低聚糖對(duì)變異鏈球菌抑菌率的影響如圖3所示。

        圖3 酶解溫度對(duì)變異鏈球菌抑菌率的影響Fig.3 The effect of enzymolysis temperature on the inhibition rate of Streptococcus mutans

        溫度從30℃升到40℃,抑菌率增加;溫度高于40℃后,抑菌率降低。在40℃時(shí)抑菌率最高,為(61.34±3.05)%。由于酶的活性與反應(yīng)溫度有關(guān),酶在最適溫度發(fā)揮最大活性,超過其最適溫度,結(jié)構(gòu)變性,酶活力減弱,酶解程度降低。β-葡聚糖酶的最適溫度范圍為40℃~62℃[31],因此選擇40℃為酶解溫度最佳值。

        2.2.3 酶解時(shí)間對(duì)抑菌率的影響

        不同酶解時(shí)間制備的桑枝低聚糖對(duì)變異鏈球菌抑菌率的影響見圖4。

        圖4 酶解時(shí)間對(duì)變異鏈球菌抑菌率的影響Fig.4 The effect of enzymolysis time on the inhibition rate of Streptococcus mutans

        桑枝低聚糖的抑菌率隨著酶解時(shí)間的延長(zhǎng)而呈現(xiàn)先上升后慢速下降的趨勢(shì),在3 h時(shí)達(dá)到最高值(61.85±3.39)%??赡苁请S著時(shí)間的延長(zhǎng),β-葡聚糖酶與糖鏈有更多的作用機(jī)會(huì),生成更多的桑枝低聚糖,提高抑菌率。酶解時(shí)間過長(zhǎng),過度降解,酶解產(chǎn)物結(jié)構(gòu)改變[32],抑菌活性降低,從而降低了抑菌率。因此選擇3 h為酶解時(shí)間最佳值。

        2.3 響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果

        2.3.1 試驗(yàn)設(shè)計(jì)結(jié)果

        在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,選定酶添加量400 U/mL、酶解溫度40℃、酶解時(shí)間3 h為響應(yīng)面Box-Behnken試驗(yàn)的中心點(diǎn),采用Design-Expert 12.0軟件,對(duì)Box-Behnken試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行方差分析和多元線性回歸二項(xiàng)式擬合,響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果如表2所示。

        表2 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)及響應(yīng)值Table 2 Design and response value of Box-Behnken experiment

        2.3.2 模型的建立與統(tǒng)計(jì)分析

        回歸模型方差分析見表3。

        表3 回歸模型方差分析Table 3 Variance analysis of regression model

        通過優(yōu)化得到二次回歸方程:抑菌率=62.68+2.921 25A+6.275B+5.566 25C+0.677 5AB+0.37AC+1.537 5BC-4.032 5A2-9.385B2-5.017 5C2。由表3可知,模型的P值<0.000 1,說明模型高度顯著,可信度高;模型R2=0.991 3,校正R2=0.980 0,模型可以很好地模擬和驗(yàn)證試驗(yàn)結(jié)果,失擬項(xiàng)為0.096 0>0.05,變異系數(shù)為2.32%,擬合度較好,置信度較高,模型可以預(yù)測(cè)實(shí)際試驗(yàn)值。因此可以選擇該模型來分析桑枝低聚糖對(duì)變異鏈球菌抑菌率的變化。BC對(duì)響應(yīng)值有顯著影響,A、B、C、A2、B2、C2對(duì)響應(yīng)值有極顯著影響。從 F 值可知,各因素對(duì)抑制率的影響程度:酶解溫度>酶解時(shí)間>酶添加量。

        2.3.3 響應(yīng)面分析

        β-葡聚糖酶添加量、酶解溫度、酶解時(shí)間3個(gè)因素交互作用對(duì)桑枝低聚糖抑菌率的影響見圖5~圖7。

        圖5 酶解溫度和酶添加量的交互作用對(duì)抑菌率影響的響應(yīng)面圖和等高線圖Fig.5 Response surface and contour plots of the interaction effect between enzyme addition and enzymolysis temperature on inhibition of Steptococcus mutans

        圖7 酶解時(shí)間和酶解溫度的交互作用對(duì)抑菌率影響的響應(yīng)面圖和等高線圖Fig.7 Response surface and contour plots of the interaction effect between enzymolysis time and enzymolysis temperature on inhibition of Steptococcus mutans

        響應(yīng)面圖的曲線彎曲程度說明研究因素對(duì)抑菌率的影響程度,等高線呈橢圓形說明研究因素之間的交互作用顯著。由響應(yīng)面可知,曲面的彎曲程度較大,說明酶添加量、酶解溫度和酶解時(shí)間的交互作用對(duì)抑菌率的影響較大。由圖5可知,固定酶解時(shí)間為3 h時(shí),隨著酶解溫度和酶添加量的增加,桑枝低聚糖的抑菌率逐漸升高;酶解溫度和酶添加量增加到一定值后,抑菌率呈現(xiàn)下降的趨勢(shì)。由圖6可知,固定酶解溫度為40℃時(shí),抑菌率隨著酶解時(shí)間與酶添加量的增加先升高后降低。由圖7可知,固定酶添加量為400 U/mL時(shí),酶解溫度和酶解時(shí)間增加,抑菌率隨之先升高后降低。因此,酶解溫度和酶添加量之間存在較明顯的交互作用,酶解時(shí)間與酶添加量之間的交互作用不顯著,而酶解時(shí)間與酶解溫度存在顯著的交互作用。

        2.3.4 驗(yàn)證試驗(yàn)

        經(jīng)過預(yù)測(cè)分析,得到最佳酶解工藝條件:酶添加量484.951 U/mL,酶解溫度44.011℃,酶解時(shí)間3.631 h,抑制率預(yù)測(cè)值為66.319%;結(jié)合實(shí)際條件,將酶解條件修正為酶添加量為485 U/mL、酶解溫度為44℃、酶解時(shí)間為3.6 h,試驗(yàn)驗(yàn)證得到實(shí)際抑制率為(68.30±3.96)%,與預(yù)測(cè)值相符。因此,該模型較好地預(yù)測(cè)了桑枝低聚糖對(duì)變異鏈球菌的抑菌率,可信度較高。

        2.4 質(zhì)量濃度對(duì)桑枝低聚糖抑制變異鏈球菌生長(zhǎng)的影響

        不同質(zhì)量濃度桑枝低聚糖對(duì)變異鏈球菌的抑菌率見圖8。

        圖8 不同濃度桑枝多糖對(duì)變異鏈球菌抑菌率的影響Fig.8 The effect of different concentrations of Ramulus mori polysaccharides on the inhibition rate of Streptococcus mutans

        桑枝多糖與桑枝低聚糖對(duì)變異鏈球菌均表現(xiàn)出明顯的抑制作用,且濃度與其抑菌活性呈正相關(guān),隨著濃度的升高,抑菌率也隨之升高,同質(zhì)量濃度下桑枝低聚糖的抑菌率均高于桑枝多糖。質(zhì)量濃度超過6 mg/mL后,隨著濃度的升高,抑制率趨于平緩。在適宜濃度下,多糖與低聚糖溶液濃度升高,抑菌活性物質(zhì)含量增多,對(duì)菌體細(xì)胞壁與細(xì)胞膜的破壞作用越強(qiáng),抑菌效果隨之增強(qiáng)。濃度過高,培養(yǎng)基滲透壓過高,大部分細(xì)菌均脫水死亡,抑菌率趨于100%。質(zhì)量濃度為3 mg/mL時(shí),桑枝多糖和桑枝低聚糖對(duì)變異鏈球菌的抑菌率分別為(40.52±4.38)%和(68.91±3.82)%。結(jié)果表明采用優(yōu)化后的酶解工藝制備桑枝低聚糖,對(duì)變異鏈球菌的抑菌率提高。

        2.5 桑枝低聚糖的抗氧化活性

        2.5.1 清除DPPH自由基能力

        不同濃度桑枝低聚糖、桑枝多糖、低聚異麥芽糖與VC標(biāo)準(zhǔn)品的DPPH自由基清除能力如圖9所示。

        圖9 桑枝低聚糖的清除DPPH自由基能力Fig.9 The ability of Ramulus mori oligosaccharides to scavenge DPPH free radicals

        在0.75 mg/mL~24 mg/mL的質(zhì)量濃度范圍內(nèi),桑枝低聚糖的DPPH自由基清除能力隨著低聚糖質(zhì)量濃度的升高而逐漸增強(qiáng),存在明顯的量效關(guān)系。在質(zhì)量濃度為6 mg/mL時(shí),逐漸趨于平緩。桑枝低聚糖的DPPH自由基清除能力在質(zhì)量濃度為6 mg/mL時(shí)達(dá)到(302.76±12.60)μg Trolox/mL。相同質(zhì)量濃度下DPPH自由基清除能力:VC>桑枝低聚糖>桑枝多糖>低聚異麥芽糖。

        2.5.2 清除ABTS+自由基能力

        不同濃度桑枝低聚糖、桑枝多糖、低聚異麥芽糖與VC標(biāo)準(zhǔn)品對(duì)ABTS+自由基的清除能力如圖10所示。

        圖10 桑枝低聚糖的清除ABTS+自由基能力Fig.10 The ability of Ramulus mori oligosaccharides to scavenge ABTS+free radicals

        在檢測(cè)濃度范圍內(nèi),隨著濃度的增加,清除率逐漸增強(qiáng)。桑枝低聚糖的質(zhì)量濃度在12 mg/mL后清除率增加緩慢,在質(zhì)量濃度為12 mg/mL時(shí),其ABTS+自由基清除率為(5.70±0.56)mmol/L Trolox,桑枝多糖的ABTS+自由基清除率為(1.28±0.49)mmol/L Trolox,低聚異麥芽糖對(duì)ABTS+自由基的清除能力較弱,在質(zhì)量濃度為12 mg/mL時(shí),其ABTS+自由基清除率僅為(0.18±0.03)mmol/L Trolox。相同質(zhì)量濃度下 ABTS+自由基清除能力:VC>桑枝低聚糖>桑枝多糖>低聚異麥芽糖。

        2.5.3 對(duì)Fe3+的還原能力

        不同濃度桑枝低聚糖、桑枝多糖、低聚異麥芽糖與VC標(biāo)準(zhǔn)品對(duì)Fe3+的還原能力如圖11所示。

        圖11 桑枝低聚糖的Fe3+還原能力Fig.11 The ability of Ramulus mori oligosaccharides to reduce Fe3+

        在檢測(cè)濃度范圍內(nèi),隨著濃度的增加,還原能力逐漸增強(qiáng),在質(zhì)量濃度為24 mg/mL時(shí),桑枝低聚糖的Fe3+還原能力為(63.24±3.66)mmol/L FeSO4,桑枝多糖的 Fe3+還原能力為(26.34±0.43)mmol/L FeSO4,低聚異麥芽糖對(duì)Fe3+的還原能力較弱,僅為(3.34±0.50)mmol/L FeSO4。相同質(zhì)量濃度下Fe3+的還原能力:VC>桑枝低聚糖>桑枝多糖>低聚異麥芽糖。

        綜上,桑枝低聚糖對(duì)DPPH自由基、ABTS+自由基具有不同程度的清除能力,對(duì)Fe3+具有較好的還原能力。并且總抗氧化能力隨桑枝低聚糖濃度的升高而增強(qiáng),在一定濃度范圍內(nèi)呈量效關(guān)系,較桑枝多糖有明顯提升,且強(qiáng)于低聚異麥芽糖。多糖的抗氧化活性與糖鏈上游離羥基相關(guān),酶解后的低聚糖糖鏈縮短,暴露的游離羥基增多,可結(jié)合的自由基增多,抗氧化活性增強(qiáng)[33]。人體在新陳代謝的過程中會(huì)產(chǎn)生大量自由基,對(duì)組織細(xì)胞DNA造成損傷,誘發(fā)各種慢性疾病。口腔中存在大量自由基易引發(fā)齲齒、牙周病、咀嚼肌疾病等,清除口腔內(nèi)自由基有利于預(yù)防口腔疾病,所以桑枝低聚糖有望應(yīng)用于口腔保健用品。

        3 結(jié)論

        本試驗(yàn)采用響應(yīng)面法優(yōu)化了桑枝低聚糖的酶解制備工藝。首先研究不同酶制備的桑枝低聚糖對(duì)變異鏈球菌的抑制率,再以抑菌率為指標(biāo),考察酶添加量、酶解溫度、酶解時(shí)間對(duì)桑枝低聚糖抑菌率的影響,采用Box-Behnken響應(yīng)面法優(yōu)化桑枝低聚糖的制備工藝,并且探究了桑枝低聚糖的抗氧化能力。得到最佳制備工藝:β-葡聚糖酶添加量為485 U/mL,酶解時(shí)間3.6 h,酶解溫度44℃,在此條件下變異鏈球菌的抑制率為(68.30±3.96)%。各因素對(duì)桑枝低聚糖抑菌率的影響程度:酶解溫度>酶解時(shí)間>酶添加量。

        在此制備工藝下的桑枝低聚糖對(duì)DPPH、ABTS+自由基均有清除作用,其總抗氧化能力隨著質(zhì)量濃度的升高而增強(qiáng),并且桑枝低聚糖的抗氧化活性均高于同質(zhì)量濃度的商品化低聚糖。本試驗(yàn)探究了桑枝低聚糖對(duì)變異鏈球菌的抑制效果,為進(jìn)一步提高蠶桑資源的綜合利用提供技術(shù)參考。

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