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        基于導向分離的杜仲葉抗氧化活性成分研究

        2022-05-27 09:05:46賈羲朱春勝
        中醫(yī)藥信息 2022年5期
        關鍵詞:杜仲兒茶素綠原

        賈羲,朱春勝

        (鄭州大學第一附屬醫(yī)院,河南 鄭州 450000)

        杜仲葉為杜仲科植物杜仲(Eucommia ulmoidesOliv.)的干燥葉,具有補肝腎、強筋骨之功,臨床常用于治療肝腎不足、頭暈目眩、腰膝酸軟、筋骨痿軟等[1]。杜仲葉中主要含苯丙素類、黃酮類和木脂素類等化學成分[2-4]?,F(xiàn)代藥理學研究表明,杜仲葉具有降血壓、降血脂、降血糖、抗炎和抗氧化等功效[5-7]。此外,有研究表明抗氧化作用可能是杜仲葉發(fā)揮補肝腎、強筋骨、抗衰老功效密切相關的藥理活性[8-9]。因此,進一步明確杜仲葉抗氧化活性成分對深入詮釋杜仲葉發(fā)揮補肝腎功效的活性成分及其在臨床中進一步深入開發(fā)具有重要意義。

        氧化損傷是許多疾病和衰老的特征,包括與年齡相關的疾病,如糖尿病、癌癥、免疫性疾病和心血管疾病等[10-11]。大量研究表明,抗氧化劑可延緩氧化應激反應,而部分文獻報道了中藥具有較好的抗氧化、抗衰老活性,因此,從中藥中分離抗氧化劑是發(fā)現(xiàn)和創(chuàng)制抗氧化新藥的重要途徑,同時也是闡明中藥抗衰老作用機制的關鍵。1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)自由基作為常用的抗氧化篩查劑,一旦與抗氧化劑接觸,便可接收抗氧化劑中的電子和質(zhì)子,進而引起DPPH 自由基紫色消退,導致其在特定波長處吸收減?。?2]。基于此,本研究將建立HPLC-DPPH 在線篩選系統(tǒng),快速篩選杜仲葉提取物中的抗氧化活性成分;結(jié)合HPLC-DPPH 在線檢測及制備高效液相色譜純化技術(shù)開展杜仲葉抗氧化活性成分導向分離,同時在此基礎上結(jié)合分子對接技術(shù)和DPPH 體外實驗進一步驗證上述成分抗氧化活性,為杜仲葉的深入研究和開發(fā)提供依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 儀器與材料

        安捷倫1200 型液相色譜(Agilent Technologies);艾杰爾P2010 型液相色譜(博納艾杰爾科技);制備型高效液相色譜(江蘇漢邦科技);色譜柱ODS C18(江蘇漢邦科技);AV Ⅲ-600 核磁共振儀(Bruker,Rheinstetten);甲醇、石油醚(分析純,天津市科密歐化學試劑有限公司);DPPH(Sigma-Aldrich)。

        杜仲葉購自于安徽省亳州藥材市場,經(jīng)河南省鄭州市鄭州大學第一附屬醫(yī)院中醫(yī)藥學部王娟主任藥師鑒定為杜仲葉。

        1.2 提取與分離

        杜仲葉用70%乙醇,在70 ℃條件下回流提取3次,每次提取2 h。將提取液經(jīng)減壓濃縮至浸膏,冷凍干燥得到杜仲葉提取物。之后,將杜仲葉提取物進一步使用AB-8 大孔樹脂色譜進行分離,依次使用水、20%乙醇、40%乙醇、60%乙醇和95%乙醇洗脫,收集水組分并進一步分離其中的抗氧化成分。

        1.3 HPLC-DPPH篩選

        應用在線HPLC-DPPH 結(jié)合二維液相色譜篩選杜仲葉提取物經(jīng)AB-8 分離后所得水組分中的抗氧化成分。實驗中應用DPPH 濃度為50 μg/mL,DPPH 流速為0.5 mL/min,反應線圈長度為15.0 m。樣品用ODS C18 反相色譜柱(4.6 mm×250 mm,10 μm)進行分析,流動相為甲醇-水體系,30%~70%甲醇梯度洗脫30 min。根據(jù)樣品與DPPH 反應后吸收變化,檢測到了5個主要倒峰,見圖1。之后通過制備型高效液相色譜分離得到5個倒峰所對應的組分1~5。

        圖1 杜仲葉HPLC-DPPH篩選

        1.4 色譜分離

        應用制備型液相色譜,使用ODS C18 反相色譜柱(20 mm×250 mm,10 μm)純化,流動相為甲醇-水體系,梯度洗脫:10%~60%甲醇,100 min,收集Fr1~Fr5共5 個組分。分別經(jīng)制備型液相色譜進一步純化,純化條件為Fr1∶25 %甲醇等度洗脫30 min;Fr2∶25%甲醇等度洗脫30 min;Fr3∶35%甲醇等度洗脫30 min;Fr4∶35%甲醇等度洗脫30 min;Fr5∶55%甲醇等度洗脫30 min。最終從杜仲葉粗提物經(jīng)AB-8大孔樹脂色譜分離所得水組分中得到5個抗氧化活性化合物。

        1.5 分子對接實驗

        從RCSB 蛋白數(shù)據(jù)庫獲得超氧化物歧化酶SOD(PDB,ID:3RE0)三維結(jié)構(gòu),應用Autodock vina 1.1.2進行分子對接,根據(jù)文獻[13]選取酶活性位點,設置Spacing(angstrom)為1.000,坐標為size_x=14,size_y=14,size_z=14;center_x=1.346,center_y=-3.077,center_z=30.651;exhaustiveness 為20;其他參數(shù)均為默認值。

        1.6 DPPH體外實驗

        參考文獻[14],配制不同質(zhì)量濃度的待測樣本溶液(5 種單體),取2 mmol/L 的DPPH 溶液2 mL 為實驗組,對照組選用2 mL 無水乙醇代替DPPH 溶液,空白組選用2 mL 無水乙醇和2 mL 待測樣本,充分振蕩混勻,避光反應30 min,517 nm 處測其吸光度值,以上實驗重復3 次。計算抑制率分析各單體抗氧化活性。

        抑制率(%)=[1-(D實驗-D空白)/D對照]×100%

        2 結(jié)果

        2.1 結(jié)構(gòu)鑒定

        通過1H-NMR 和13C-NMR 闡明了這5 種化合物的化學結(jié)構(gòu),分別鑒定為兒茶素(1)、綠原酸(2)、咖啡酸(3)、山柰酚-3-O-β-D-葡萄糖苷(4)和槲皮素(5),各化合物結(jié)構(gòu)見圖2。

        圖2 杜仲葉中抗氧化成分結(jié)構(gòu)

        2.1.1 化合物1

        分子式:C15H14O6,白色粉末,1H-NMR(600 MHz,DMSO-d6,δ,ppm,J/Hz)δ:6.86(1H,s,H-2′),6.81(1H,d,J=8.0 Hz,H-6′),6.73(1H,d,J=8.0 Hz,H-5′),6.03(1H,d,J=2.0 Hz,H-6),5.87(1H,d,J=2.0 Hz,H-8),4.58(1H,d,J=7.6 Hz,H-2),4.00(1H,m,H-3),2.84(1H,dd,J=16.4,5.6 Hz,H-4a),2.50(1H,dd,J=16.4,8.4 Hz,H-4b);13C-NMR(150 MHz,DMSO-d6,ppm)δ:82.8(C-2),68.8(C-3),28.5(C-4),157.1(C-5),95.8(C-6),157.2(C-7),96.0(C-8),156.9(C-9),100.5(C-10),132.2(C-1′),115.5(C-2′),146.0(C-3′),146.0(C-4′),115.8(C-5′),120.5(C-6′)。以上化合物信息與文獻[15]報道較一致,鑒定為兒茶素。

        2.1.2 化合物2

        分子式:C16H18O9,白色粉末,1H-NMR(600 MHz,DMSO-d6,δ,ppm,J/Hz)δ:1.90-2.10(4H,m,H-2a,2b,6a,6b),3.61(1H,dd,J=3.0,8.4 Hz,H-4),4.15(1H,m,H-3),5.05(1H,ddd,J=4.4,8.2,9.8 Hz,H-5),6.23(1H,d,J=16.0 Hz,H-8′),6.76(1H,d,J=8.2 Hz,H-5′),6.96(1H,dd,J=8.2,2.0 Hz,H-2′),7.03(1H,d,J=2.0 Hz,H-6′),7.45(1H,d,J=16.0 Hz,H-7′);13C-NMR(150 MHz,DMSO-d6,ppm)δ:75.5(C-1),37.8(C-2),72.0(C-3),70.3(C-4),67.5(C-5),37.5(C-6),177.0(C-7),127.5(C-1′),115.7(C-2′),145.8(C-3′),148.8(C-4′),115.9(C-5′),123.1(C-6′),147.0(C-7′),115.0(C-8′),168.0(C-9′)。以上化合物信息與文獻[16]報道較一致,鑒定為綠原酸。

        2.1.3 化合物3

        分子式:C9H8O4,黃色粉末,1H-NMR(600 MHz,DMSO-d6,δ,ppm,J/Hz)δ:7.50(1H,d,J=16.0 Hz,H-8),7.00(1H,d,J=2.4 Hz,H-2),7.03(1H,dd,J=2.4,8.4 Hz,H-6),6.75(1H,d,J=8.4 Hz,H-5),6.23(1H,d,J=16.0 Hz,H-7);13C-NMR(150 MHz,DMSO-d6,ppm)δ:172.0(C-9),150.0(C-4),146.5(C-3),146.1(C-7),128.0(C-1),123.2(C-5),116.5(C-2),116.8(C-6),115.3(C-8)。以上化合物信息與文獻[17]報道較一致,鑒定為咖啡酸。

        2.1.4 化合物4

        分子式:C21H20O11,黃色粉末,1H-NMR(600 MHz,DMSO-d6,δ,ppm,J/Hz)δ:12.65(1H,s,5-OH),8.00(2H,d,J=8.8 Hz,H-2′,6′),6.91(2H,dd,J=8.8 Hz,H-3′,5′),6.53(1H,d,J=2.0 Hz,H-8),6.20(1H,d,J=2.0 Hz,H-6),5.45(1H,d,J=7.4 Hz,Glc-H-1);13C-NMR(150 MHz,DMSO-d6,ppm)δ:157.1(C-2),134.2(C-3),178.2(C-4),162.1.(C-5),100.0(C-6),164.5(C-7),94.3(C-8),156.9(C-9),105.4(C-10),121.5(C-1′),131.3(C-2′,6′),115.0(C-3′,5′),160.5(C-4′),101.1(Glc-1),75.0(Glc-2),77.2(Glc-3),70.5(Glc-4),78.0(Glc-5),61.5(Glc-6)。以上化合物信息與文獻[18]報道較一致,鑒定為山柰酚-3-Oβ-D-葡萄糖苷。

        2.1.5 化合物5

        分子式:C15H10O7,黃色粉末,1H-NMR(600 MHz,DMSO-d6,δ,ppm,J/Hz)δ:12.45(1H,s,5-OH),7.65(1H,d,J=2.0 Hz,H-2′),7.55(1H,dd,J=2.0,8.5 Hz,H-6′),6.93(1H,d,J=8.5 Hz,H-5′),6.40(1H,d,J=2.0 Hz,H-8),6.15(1H,d,J=2.0 Hz,H-6);13C-NMR(150 MHz,DMSO-d6,ppm)δ:176.1(C-4),164.2(C-7),161.2(C-5),156.5(C-9),148.0(C-4′),145.5(C-2),145.0(C-3′),136.1(C-3),122.4(C-1′),120.5(C-6′),115.3(C-2′),115.0(C-5′),104.1(C-10),98.0(C-6),93.5(C-8)。以上化合物信息與文獻[19]報道較一致,鑒定為槲皮素。

        2.2 分子對接結(jié)果

        將5 個化合物對接至SOD 的疏水性腔袋。5 種化合物與SOD 的結(jié)合能分別為兒茶素:-6.3 kcal/mol、綠原酸:-5.4 kcal/mol、咖啡酸:-4.8 kcal/mol、山柰酚-3-O-β-D-葡萄糖苷:-6.4 kcal/mol、槲皮素:-5.9 kcal/mol,其中兒茶素和山柰酚-3-O-β-D-葡萄糖苷的結(jié)合能最大。見表1。

        表1 5種化合物與SOD的分子對接結(jié)果

        兒茶素與SOD 在活性口袋形成疏水性相互作用,通過分析,兒茶素與SOD 上的氨基酸殘基Ile 151、Arg 115、Ile 113、Cys 111、Leu 106、Gly 108、Ser 107、Asp109、Ala 1之間有π-陽離子相互作用;其中兒茶素上的-OH與Arg 115上的兩個氨基分別作用形成氫鍵相互作用,氫鍵鍵長分別為2.62 ?,2.04 ?。π-陽離子相互作用及氫鍵相互作用使得兒茶素與SOD的相互作用更加穩(wěn)定。山柰酚-3-O-β-D-葡萄糖苷結(jié)合至SOD 的疏水活性口袋,其于SOD 之間形成疏水相互作用。結(jié)果見圖3。山柰酚-3-O-β-D-葡萄糖苷與疏水口袋結(jié)構(gòu)的氨基酸殘基Ile 151、Ile 113、Ala 1、Leu 106、Ser 107、Asp109、Gly 108、Cys 111、Arg 115之間有π-陽離子相互作用;山柰酚-3-O-β-D-葡萄糖苷上的3個羥基分別與SOD上的氨基酸殘基GLY 108(氨基)、Gly 108(羰基)和Arg 115(氨基)形成氫鍵作用,鍵長分別為2.09 ?、2.33 ?、2.66 ?。這些相互作用使得化合物與SOD之間形成穩(wěn)定的相互作用。結(jié)果見圖4。

        圖3 兒茶素對接至SOD疏水口袋示意圖

        圖4 山柰酚-3-O-β-D-葡萄糖苷對接至SOD疏水口袋示意圖

        2.3 DPPH自由基清除率檢測

        杜仲葉中化合物1~5體外DPPH自由基清除率檢測結(jié)果見表2,5 個化合物對DPPH 自由基的清除能力由大到小依次為山柰酚-3-O-β-D-葡萄糖苷、兒茶素、槲皮素、咖啡酸和綠原酸。

        表2 化合物1~5的體外DPPH自由基清除率檢測結(jié)果

        3 討論

        中醫(yī)藥是中華民族幾千年智慧的結(jié)晶,有其獨特的理論體系,但中藥物質(zhì)基礎不清晰一直是制約中藥走向國際化的一個重要瓶頸。目前,國內(nèi)外常用的中藥物質(zhì)基礎研究方法是植化分離法,通過提取、分離及質(zhì)譜信息,明晰其結(jié)構(gòu),并在此基礎上結(jié)合藥理模型對純化后的成分進行相應的藥效驗證,該方法為闡明中藥物質(zhì)基礎起到了積極的推動作用[20-21]。然而,上述方法不能較好地反應中藥多成分共同發(fā)揮藥效的特點,難以體現(xiàn)中醫(yī)藥特色——整體觀念。而在線快速篩選為闡明中藥藥效物質(zhì)基礎提供了強有力的手段,具有縮短分析時間、減少有機溶劑消耗、體現(xiàn)中藥多成分協(xié)作等優(yōu)勢[22-23],已在基礎研究中獲得了廣泛認可。本研究應用AB-8 大孔樹脂色譜進行分離,并結(jié)合HPLC-DPPH 在線快速篩選方法,靶向分離杜仲葉中的抗氧化活性成分,水組分共分離得到5 個化合物,包括3個酚類化合物和2個黃酮類化合物,分別鑒定為兒茶素(1)、綠原酸(2)、咖啡酸(3)、山柰酚-3-O-β-D-葡萄糖苷(4)和槲皮素(5)。

        分子對接技術(shù)是評估化合物配體與蛋白質(zhì)靶標之間結(jié)合效率的強大工具,為中藥的物質(zhì)基礎篩選提供了強有力的支撐[24]。本次研究結(jié)合分子對接技術(shù)對上述分離的5 個成分與SOD 進行了篩選,發(fā)現(xiàn)兒茶素和山柰酚-3-O-β-D-葡萄糖苷的與SOD 的結(jié)合能最大,分別為-6.3、-6.4 kcal/mol,主要原因可能與二者與SOD 形成較多的氫鍵及與SOD 上氨基酸殘基形成的π-陽離子相互作用有關。分子對接結(jié)果與DPPH 自由基清除率檢測較一致,其中山柰酚-3-O-β-D-葡萄糖苷和兒茶素對DPPH 自由基清除率最強。石艷賓等[25]在研究金銀花抗氧化成分時,以DPPH 自由基清除效果為衡量指標,發(fā)現(xiàn)槲皮素清除DPPH 能力較綠原酸強,與本實驗結(jié)果一致。綜上,本研究豐富了杜仲葉抗氧化活性成分,同時亦為杜仲葉的深入開發(fā)提供了依據(jù)。

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