康宗利,劉爽,楊建,王新宇,靳雨松,楊玉紅
(沈陽(yáng)農(nóng)業(yè)大學(xué) 生物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,遼寧 沈陽(yáng) 110866)
四環(huán)素是使用最廣泛的抗生素之一[1],不僅大量用于人和動(dòng)物的疾病治療,也作為飼料添加劑在畜禽養(yǎng)殖中廣泛應(yīng)用[2-3]。四環(huán)素類抗生素在畜禽養(yǎng)殖業(yè)中廣泛使用會(huì)引起藥物殘留,殘留的四環(huán)素在環(huán)境中降解、遷移,最終會(huì)造成水資源和環(huán)境的污染,對(duì)人類健康帶來(lái)影響[4]。清除土壤和水體中四環(huán)素類抗生素污染,減少其對(duì)生態(tài)環(huán)境和人體健康造成的危害,已成為目前迫切需要解決的問(wèn)題之一[5]。生物修復(fù)技術(shù)的出現(xiàn),為治理環(huán)境污染帶來(lái)了希望[6]。微生物修復(fù)技術(shù)具有條件簡(jiǎn)單、容易控制、成本較低、專一性較強(qiáng)、降解徹底、無(wú)二次污染等特點(diǎn),因此成為了現(xiàn)階段處理抗生素污染的最理想的方法[7]。從90年代開(kāi)始,微生物降解作為處理環(huán)境污染的一種新技術(shù)、新方向,在國(guó)內(nèi)得到很好的發(fā)展,同時(shí)也取得了一些成果[8]。司美茹等[9]在油田的土壤中篩選出一株高效降解原油的菌株,在液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)降解率可達(dá)到72.6%。李明石等[10]在長(zhǎng)期受多菌靈農(nóng)藥污染的土壤中,以不同環(huán)境為介質(zhì)富集篩選,獲得1 株耐冷多菌靈高效降解菌,獲得的降解菌可在100 mg·L-1的多菌靈中生長(zhǎng)。陶美[11]從活性污泥中篩選分離得到了1 株對(duì)四環(huán)素具有降解能力的克雷伯氏菌(Klebsiella pneumoniae)。趙晨光[12]從新鮮豬糞及堆肥堆體中篩選出4 株四環(huán)素類抗生素降解菌:鶉雞腸球菌、糞腸球菌、庫(kù)特氏菌、屎腸球菌。從目前的研究成果可以看出,已報(bào)道的四環(huán)素降解菌種類較少,函需補(bǔ)充新的菌種資源。因此,開(kāi)展四環(huán)素類抗生素污染的微生物修復(fù)技術(shù)研究,篩選不同類型的四環(huán)素類抗生素的高效降解菌株,擴(kuò)大抗生素降解微生物菌種庫(kù)是非常必要的。本試驗(yàn)將從長(zhǎng)期受四環(huán)素類抗生素污染的土壤中,篩選分離出能夠以四環(huán)素為唯一碳源的降解菌株,并對(duì)其生長(zhǎng)和降解特性做全面的研究,為處理環(huán)境中四環(huán)素類抗生素污染的生物方法提供理論和實(shí)踐依據(jù)。
采自本溪市某制藥廠附近污染場(chǎng)地,采用多點(diǎn)隨機(jī)采樣法取表層土(0~20 cm),采用四分法分別取1000 g 左右的污染土,用無(wú)菌袋盛裝帶回試驗(yàn)室,自然風(fēng)干,去除土壤中水分,攤開(kāi)壓碎,剔除雜物,過(guò)20 目尼龍篩。
1.2.1 四環(huán)素抗性菌株的篩選培養(yǎng)基
無(wú)機(jī)鹽培養(yǎng)基:KH2PO4NaCl 0.2 g、(NH4)2SO42.0 g、MgSO4·7H2O 0.2 g、CaCl20.1 g、K2HPO40.5 g、MnSO4·H2O 0.01 g、FeSO4·7H2O 0.01 g、水1000 mL、pH 7.0。
富集培養(yǎng)基:配制四環(huán)素終濃度為20、40、60、80、100 mg·L-1的培養(yǎng)基。
篩選培養(yǎng)基:在滅菌無(wú)機(jī)鹽培養(yǎng)基和LB 中加入四素類抗生素、使其抗生素濃度為20、40、80、100 mg·L-1的培養(yǎng)基。
1.2.2 四環(huán)素母液配制
在100 mL 滅菌的水中加入四環(huán)素藥品1 g 溶解,得到濃度10 g·L-1的母液。
1.2.3 菌種的富集培養(yǎng)
稱取10 g 土壤,添加到250 mL 的錐形瓶中,加入無(wú)菌水100 mL,制成土壤懸液,搖床轉(zhuǎn)速100 r·min-1震蕩培養(yǎng)1~2 d。
1.2.4 四環(huán)素降解菌的篩選馴化
取5mL 富集培養(yǎng)后的菌懸液接種到100 mL四環(huán)素為20 mg·L-1的LB 培養(yǎng)基中,搖床培養(yǎng)5 d,馴化,再取馴化后的菌液5 mL 于100 mL 四環(huán)素濃度為40 mg·L-1的LB 培養(yǎng)基中進(jìn)行5 d 的馴化培養(yǎng),以此類推直至四環(huán)素類抗生素濃度為80 mg·L-1。
1.2.5 四環(huán)素降解菌的分離純化
取1 mL 四環(huán)素濃度80 mg·L-1的菌群培養(yǎng)液,加入到9 mL 的無(wú)菌水中,采用系列稀釋倒平板法,培養(yǎng)、觀察、純化,最后用平板劃線法在篩選培養(yǎng)基上進(jìn)行分離,挑取平板上的純菌落保存。
1.2.6 降解菌的復(fù)篩
分離純化的單菌落起初是有可能不完全具備四環(huán)素的降解能力的,仍然需要進(jìn)行檢測(cè)菌株對(duì)四環(huán)的降解能力,再進(jìn)一步的進(jìn)行篩選從而選取最佳的高效的降解菌株,便于進(jìn)行下一步的研究。在四環(huán)素濃度為60 mg·L-1的無(wú)機(jī)鹽培養(yǎng)基中馴化培養(yǎng),每天取樣1次測(cè)OD365,并計(jì)算其降解率,其降解率按下式計(jì)算。
1.2.7 降解菌的四環(huán)素耐受能力檢測(cè)
將菌懸液于離心后,用無(wú)菌水稀釋104倍,得到最低濃度菌液。吸取降解菌菌懸液各300 μL 涂布 到 四 環(huán) 素 濃 度為20、50、100、150、200、250 mg·L-1的固體LB 培養(yǎng)板上,觀察培養(yǎng)過(guò)程中的菌落情況。
1.2.8 抗性菌株對(duì)四環(huán)素降解的動(dòng)力學(xué)曲線比較
將四環(huán)素抗性菌株分別接種于10 mL 80 mg·L-1的無(wú)機(jī)鹽培養(yǎng)基中,培養(yǎng)后的第1 天開(kāi)始取樣,每天同時(shí)間同地點(diǎn)取4 mL 的培養(yǎng)液,測(cè)其OD365,計(jì)算降解率,其縱坐標(biāo)為抗性菌株的降解率,取樣時(shí)間為橫坐標(biāo),繪制四環(huán)素的動(dòng)力曲線,確定抗性菌株對(duì)四環(huán)素的最佳降解時(shí)間,同時(shí)設(shè)置空白對(duì)照組。
1.2.9 降解菌的形態(tài)觀察
通過(guò)復(fù)篩得到具有最佳降解能力的四環(huán)素菌株,觀察菌落形態(tài),并參照《微生物實(shí)驗(yàn)技術(shù)》進(jìn)行革蘭氏染色,通過(guò)顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài)等。
1.2.10 降解菌株的分子鑒定
細(xì)菌基因組DNA 的提?。翰捎肧DS-CTAB改良法。
細(xì)菌基因組PCR 反應(yīng)條件如表1。
表1 PCR 擴(kuò)增反應(yīng)體系Table 1 PCR amplification reaction system
PCR 產(chǎn)物經(jīng)電泳后,送樣測(cè)序,測(cè)序由北京諾賽基因組研究中心有限公司完成。所得測(cè)序結(jié)果進(jìn)行Blast 比對(duì)分析,構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)。
1.2.11 菌株干重標(biāo)準(zhǔn)曲線制作
取活化后的菌懸液離心、洗滌3次后,在紫外分光光度計(jì)測(cè)定其吸光度,配制得到OD600為0.4、0.6、0.8、1.0、1.2 的菌株懸液,取每種OD 值分別對(duì)應(yīng)的菌株懸液各100 mL,4000 r·min-1離心沉淀后放入烘箱,60 ℃、24 h 烘干后稱重,測(cè)得OD 值與對(duì)應(yīng)的菌體干重建立坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.2.12 菌株在四環(huán)素培養(yǎng)基上生長(zhǎng)曲線的測(cè)定
在四環(huán)素濃度為80 mg·L-1的無(wú)機(jī)鹽培養(yǎng)基中,接種腸桿菌種子液,放入恒溫振蕩培養(yǎng)箱中培養(yǎng),轉(zhuǎn)速180 r·min-1,觀察其生長(zhǎng)情況。每天取5 mL 的培養(yǎng)液,以無(wú)菌水為參比,在OD600下測(cè)定吸光度。
1.2.13 不同條件對(duì)陰溝腸桿菌去除四環(huán)素作用的影響
以基礎(chǔ)培養(yǎng)基為對(duì)照,對(duì)影響發(fā)酵的各個(gè)條件進(jìn)行優(yōu)化,優(yōu)化每個(gè)成分時(shí),將其設(shè)成幾個(gè)濃度,其他成分不變,接種后搖床培養(yǎng),取未加入陰溝腸桿菌的培養(yǎng)基為空白對(duì)照,每24 h 取4 mL 的培養(yǎng)液分別在OD365和OD600測(cè)定四環(huán)素濃度及細(xì)菌生長(zhǎng)量。
基 礎(chǔ) 培 養(yǎng) 基:(NH4)2SO42.0 g、K2HPO40.5 g、KH2PO4NaCl 0.2 g、MgSO4·7H2O 0.2 g、CaCl20.1 g、MnSO·H2O 0.01 g、FeSO4·7H2O 0.01g、四環(huán) 素80 mg,水1000 mL。 不 同 因 素、水 平 見(jiàn)下表。
1.2.14 掃描電鏡觀察
參考黎昀昀[13]的方法,樣品經(jīng)洗滌、固定、脫水、置換、干燥,于電子顯微鏡下觀察。
經(jīng)過(guò)幾周的富集培養(yǎng)、篩選和馴化,可以明顯觀察到富集液中菌株的生長(zhǎng)(圖1)。4種菌對(duì)四環(huán)素表現(xiàn)出很好的抗性,在四環(huán)素濃度為80 mg·L-1的培養(yǎng)基上生長(zhǎng)良好。
圖1 4 株四環(huán)素抗性菌株的菌落形態(tài)Fig.1 Colony morphology of 4 tetracycline resistant strains
對(duì)初篩得到的4個(gè)菌株進(jìn)行復(fù)篩(圖2),可以看出Ly-1507 和Ly-2507 菌株對(duì)四環(huán)素的去除效果 好 于Ly-3507 和Ly-4507;菌 株Ly-1507、Ly-2507 在以四環(huán)素做唯一碳源時(shí)去除率分別從最開(kāi)始 的29.60%、27.35% 到 第7 天 的73.59%、67.47%,降解效果明顯。Ly-3507、Ly-4507 的去除率只有53.26、48.64%。說(shuō)明菌株Ly-1507 和Ly-2507 具有更好的四環(huán)素去除能力。
圖2 4 株菌株對(duì)四環(huán)素的去除結(jié)果Fig.2 Removal results of tetracycline by 4 strains
所篩菌株在四環(huán)素濃度分別為20、50、100、150、200,250 mg·L-1的LB 培養(yǎng)基平板上檢測(cè)菌株完全被抑制的濃度經(jīng)2 d 培養(yǎng)觀察,結(jié)果如表2所示,菌株Ly-1507 在四環(huán)素20、50、100、150 mg·L-1濃度下菌落生長(zhǎng)快速旺盛,在四環(huán)素濃度為250 mg·L-1時(shí)才被抑制生長(zhǎng),出現(xiàn)較為明顯的菌落數(shù)量削減。說(shuō)明菌株Ly-1507 具有更強(qiáng)的四環(huán)素耐受能力,因此本文選擇菌株Ly-1507 進(jìn)行后續(xù)研究。
表2 不同條件的因素和水平Tab.2 Factors and levels of different conditions
表3 菌株對(duì)不同濃度四環(huán)素的耐受結(jié)果Table 3 Tolerance results of strains to tetracycline at different concentrations
如圖3所示,在試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng),四環(huán)素抗性菌株對(duì)四環(huán)素的去除率出現(xiàn)先增大后平穩(wěn)的趨勢(shì)。當(dāng)達(dá)到第7 天時(shí),菌株Ly-1507對(duì)四環(huán)素的降解率為75.85%,7 d 后增長(zhǎng)的趨勢(shì)相對(duì)平緩,因此,菌株Ly-1507 的最佳降解時(shí)間是為7 d。
圖3 抗性菌株對(duì)四環(huán)素降解的動(dòng)力學(xué)曲線Fig.3 Kinetic curve of tetracycline degradation by resistant strains
2.5.1 菌株Ly-1507 的電泳檢測(cè)結(jié)果
以菌株的基因組DNA為模板,經(jīng)PCR 擴(kuò)增后,進(jìn)行電泳,結(jié)果如圖5所示,可以看出提取的菌株DNA 的特異性條帶,得到1 條1400 bp 左右的基因片段,說(shuō)明核苷酸序列約為1400 bp。
圖4 Ly-1507 菌株電泳圖Fig.4 Electrophoretic map of Ly-1507 strain
2.5.2 構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)和種屬分析
經(jīng)測(cè)定所獲得的目的片斷長(zhǎng)1400 bp,序列如圖5。
圖5 Ly-1507 目的片斷基因序列Fig.5 Ly-1507 objective fragment gene sequence
測(cè)序后序列在Genbank 中,進(jìn)行BLAST 程序比對(duì),采用MEGA 軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)(圖6)。由圖6可以看出,菌株Ly-1507 與陰溝腸桿菌(登錄號(hào):KX233847.1)相似度達(dá)98%,鑒定菌株Ly-1507為陰溝腸桿菌,命名為陰溝腸桿菌(Entero?bacter cloacae)Ly-1057。
圖6 菌株Ly-1507 系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)Fig.6 phylogenetic tree of strain Ly-1507
2.6.1 菌株干重的標(biāo)準(zhǔn)曲線
以吸光度為縱坐標(biāo),菌株干重為橫坐標(biāo)繪制菌株干重標(biāo)準(zhǔn)曲線如圖所示,菌株Ly-1057 的回歸方程為y=8.893 9x+0.009 2,相關(guān)系數(shù)R2=0.999 3;
2.6.2 菌株Ly-1057 在四環(huán)素培養(yǎng)基中生長(zhǎng)曲線的測(cè)定
當(dāng)四環(huán)素作為唯一的碳源時(shí),陰溝腸桿菌Ly-1057 隨時(shí)間的生長(zhǎng)情況如圖8所示。當(dāng)接種后的第1 天內(nèi)腸桿菌Ly-1057 生長(zhǎng)速率較緩慢,造成這一原因可能是菌株對(duì)新的生長(zhǎng)環(huán)境需要一定的時(shí)間去適應(yīng)。在完成適應(yīng)周期后,2~7 d 便開(kāi)始大量代謝繁殖且菌株干重增長(zhǎng)較為迅速,處于對(duì)數(shù)期,當(dāng)?shù)? 天菌體進(jìn)入穩(wěn)定期,生物量趨于平緩;8 d后,生物量基本保持不變,進(jìn)入衰亡期。可以認(rèn)為前7 d 是四環(huán)素的最佳降解時(shí)間和菌株生長(zhǎng)的最佳時(shí)間。
圖7 菌株Ly-1057 生物量的標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.7 Standard curve of dry weight of myceliu
圖8 菌株Ly-1057 的生長(zhǎng)曲線Fig.8 Growth curve of strain Ly-1057
2.6.3 不同pH 條件對(duì)菌株Ly-1057 去除四環(huán)素作用的影響
pH 值是微生物降解四環(huán)素的重要環(huán)節(jié)之一,在參與降解酶的活性和菌株的穩(wěn)定性發(fā)揮著重要的作用。pH 也會(huì)影響細(xì)胞膜蛋白及胞外水解酶的活性,從而影響營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的正常吸收和運(yùn)轉(zhuǎn)[14]。由圖9可知,當(dāng)pH 值為4~7 時(shí),菌株對(duì)四環(huán)素的去除率和生物量均隨著pH 值的增加而上升,且當(dāng)培養(yǎng)基初始的pH 值為7.0 時(shí)對(duì)四環(huán)素的去除效果較好,在7 d 時(shí)達(dá)到了最大值75.53%。當(dāng)pH 值為8.0 時(shí)、生物量和四環(huán)素去除率均出現(xiàn)下降趨勢(shì)。這表明酸性和堿性條件都會(huì)影響菌株的穩(wěn)定性或者影響菌株降解酶的活性。
圖9 不同的pH 條件對(duì)菌株Ly-1057 去除四環(huán)素作用的影響Fig.9 Effects of different pH conditions on tetracycline removal by Strain Ly-1057
2.6.4 不同接種量對(duì)菌株Ly-1057 去除四環(huán)素作用的影響
由圖10可知,隨著接種量的逐漸增加,菌株干重也呈現(xiàn)增加的趨勢(shì),菌種的去除率也隨之增加。3%的接種量時(shí),四環(huán)素的去除效果最好,去除率為75.32%,生物量為1.297 g·L-1。陰溝腸桿菌Ly-1057 對(duì)四環(huán)素的去除率和生物量的增長(zhǎng)呈現(xiàn)先增大后減小的趨勢(shì),當(dāng)接種量為4%,菌株對(duì)四環(huán)素的去除率為70.07%,生物量為1.26 g·L-1。隨著接種量的增加反而生物量也是有所下降,這種情況的出現(xiàn)可能是由于培養(yǎng)基中的碳源、氮源或其它因素導(dǎo)致的,接種量取決于四環(huán)素的種類和菌體的性質(zhì),菌體的自身的能力強(qiáng),接種量就較少,最佳接種濃度為3%。
圖10 不同接種量對(duì)菌株Ly-1057 去除四環(huán)素作用的影響Fig.10 Effects of different inoculum amount on tetracycline removal by STRAIN Ly-1057
2.6.5 不同底物濃度對(duì)菌株Ly-1057 去除四環(huán)素作用的影響
由圖11可知,不同的初始底物濃度對(duì)四環(huán)素菌株生長(zhǎng)的影響,當(dāng)無(wú)機(jī)鹽培養(yǎng)基中底物濃度為80 mg·L-1時(shí),四環(huán)素降解率達(dá)到最大,7 d 后的去除率為68.63%,在80 mg·L-1的底物濃度下生物量為1.56 g·L-1。生物量與去除率存在一定的相關(guān)性。當(dāng)四環(huán)素濃度為40~60 mg·L-1時(shí),菌株生物量由1.15 上升到了1.23,只上升到0.08。造成這一現(xiàn)象的原因可能是以四環(huán)素作為唯一的碳源,沒(méi)有其它的碳源四環(huán)素對(duì)陰溝腸桿菌具有毒性,其碳源不能滿足菌株快速繁殖的需求[15]。40~100 mg·L-1的生長(zhǎng)量并不是隨著底物濃度的增加而増加的。四環(huán)素濃度對(duì)菌株的去除能力有一定的影響,但是在100 mg·L-1和120 mg·L-1的四環(huán)素初始濃度下,菌株的降解能力以及微生物的活性被明顯抑制。可見(jiàn)高濃度的四環(huán)素會(huì)導(dǎo)致菌株對(duì)四環(huán)素去除能力下降,菌株的降解特性是存在于一定的濃度限度內(nèi)的,因此故選用四環(huán)素濃度達(dá)80 mg·L-1為最佳的底物濃度。
圖11 不同底物濃度對(duì)菌株Ly-1057 去除四環(huán)素作用的影響Fig.11 Effect of different substrate concentrations on the removal of tetracycline by strain Ly-1057
2.6.6 不同可溶性淀粉濃度對(duì)Ly-1057 去除四環(huán)素作用的影響
由圖12可知,當(dāng)不添加可溶性淀粉作為碳源時(shí),四環(huán)素的去除率為58.58%,當(dāng)可溶性淀粉為10、20、30、40 mg·L-1的外加碳源時(shí),去除率分別為60.38%、64.36%、74.58%、62.03%,可以看出腸桿菌在加入20 mg·L-1可溶性淀粉后菌株生長(zhǎng)最優(yōu),菌絲干重達(dá)1.61 g·L-1。產(chǎn)生降解酶的數(shù)量多,其原因可能是加入少量碳源能夠促進(jìn)降解酶的產(chǎn)生數(shù)量和菌株增長(zhǎng),因而降解率增加[15]。這一降解結(jié)果與許曉玲的四環(huán)素降解菌的選育、鑒定及其降解特性的結(jié)果一致。
圖12 不同可溶性淀粉濃度對(duì)Ly-1057 去除四環(huán)素作用的影響Fig.12 Effects of different soluble starch concentrations on the removal of tetracycline by Ly-1057
2.6.7 不同濃度酵母浸粉對(duì)Ly-1057 去除四環(huán)素作用的影響
從圖13可以看出在不同濃度酵母浸粉條件下,四環(huán)素降解菌的降解效率有明顯差異;在外加酵母浸粉濃度為20 mg·L-1時(shí),腸桿菌的生長(zhǎng)情況和對(duì)四環(huán)素的降解效率最優(yōu),對(duì)四環(huán)素的去除率達(dá)到75.09%,菌株增長(zhǎng)量為1.43 g·L-1。這表明適量的酵母浸粉作為外加氮源有助于提高Ly-1057 對(duì)四環(huán)素的去除率。添加酵母提取物后降解率的顯著提高可能是由于微生物產(chǎn)生某些有利于四環(huán)素降解的酶的存在[16]。
圖13 不同酵母浸粉濃度對(duì)Ly-1057 去除四環(huán)素作用的影響Fig.13 Effects of different yeast extract concentrations on the removal of tetracycline by Ly-1057
2.6.8 掃描電鏡結(jié)果
選擇吸附效率最高的菌株陰溝腸桿菌Ly-1057 進(jìn)行掃描電鏡觀察(圖14)。由掃描電鏡結(jié)果可看出,正常菌株菌體外形清晰,呈桿狀,排列不規(guī)則,可清晰看到菌體的皺紋,表面粗糙,有大小不一的凹陷,這可以增大了四環(huán)素與菌體的接觸面積,為四環(huán)素與菌體的結(jié)合提供更多的位點(diǎn)。在四環(huán)素濃度為80 mg·L-1的條件下,腸桿菌Ly-1057 細(xì)胞表面結(jié)構(gòu)明顯褶皺,細(xì)胞內(nèi)陷產(chǎn)生形變,說(shuō)明陰溝腸桿菌Ly-1057 吸附了一定量的四環(huán)素,且四環(huán)素對(duì)菌體表面結(jié)構(gòu)產(chǎn)生了破壞作用。
圖14 陰溝腸桿菌(Enterobacter cloacae)Ly-1057 掃描電鏡結(jié)果Fig.14 Sem results of Enterobacter Cloacae Ly-1057
抗生素是一類潛在的環(huán)境污染物,其殘留會(huì)造成嚴(yán)重的生態(tài)污染,其中四環(huán)素在環(huán)境中的殘留問(wèn)題一直是近幾年研究的熱點(diǎn)。研究表明,每年有大量四環(huán)素以尿液或糞便的形式釋放到水生環(huán)境中,增加了其微生物種群的抗生素耐藥性,并產(chǎn)生毒性更高的副產(chǎn)物[16]。由于傳統(tǒng)的廢水處理方法不能有效地消除四環(huán)素,先進(jìn)的氧化工藝(AOPs)已被應(yīng)用,這些AOPs 包括光化學(xué)、電化學(xué)和光催化技術(shù),然而,這些工藝流程的高成本限制了它們的使用[17]。生物處理作為廢水處理領(lǐng)域的核心技術(shù),操作簡(jiǎn)單、廢水質(zhì)量好、環(huán)境干擾低、成本低、礦化率高、對(duì)微生物適應(yīng)性強(qiáng),因而成為最適宜的處理方法。
好氧顆粒狀污泥技術(shù)是一種新開(kāi)發(fā)的生物廢水處理方法,但通過(guò)這種工藝去除四環(huán)素的效果有限[18]。因此,篩選降解四環(huán)素的特異菌株,可為四環(huán)素污染的土壤和水體的生物修復(fù)及環(huán)境治理技術(shù)的研發(fā)提供理論依據(jù)。Migliore 等利用糙皮側(cè)耳菌在實(shí)驗(yàn)室條件下實(shí)現(xiàn)了四環(huán)素類抗生素OTC 的降解,并通過(guò)質(zhì)譜分析發(fā)現(xiàn)該菌通過(guò)菌絲吸收OTC 后再進(jìn)行降解,推測(cè)OTC 中的酰胺基轉(zhuǎn)化為乙?;蔀?-乙酰基-2-去酰胺土霉素(ADOTC),該種產(chǎn)物比OTC 的抗菌性低,具有較高的親油性,毒性相對(duì)較低[19]。真菌Pleurotus os?treatusmycelium 被證實(shí)能夠?qū)⑼寥乐械耐撩顾剞D(zhuǎn)化為低毒或無(wú)毒產(chǎn)物,去酰胺土霉素可能為其主要降解產(chǎn)物[20]。除此之外,白腐真菌Trametes ver?sicolor表達(dá)的漆酶同樣也可以降解四環(huán)素,并消除其生態(tài)毒性[21]。本研究從長(zhǎng)期受四環(huán)污染的土壤中分離篩選到1 株降解四環(huán)素的菌株,結(jié)合菌落形態(tài)和分子鑒定,將菌株Ly-1507 鑒定為陰溝腸桿菌,命名為陰溝腸桿菌(Enterobacter cloacae)Ly-1057。陰溝腸桿菌應(yīng)用于污染土壤的四環(huán)素的去除還尚未有報(bào)道,陶美、趙晨光等人報(bào)道文獻(xiàn)克雷伯氏菌和大腸桿菌、變形桿菌對(duì)四環(huán)素具有較強(qiáng)的清除能力[11-12],陰溝腸桿菌與克雷伯氏菌和大腸桿菌都屬于同一菌屬。
培養(yǎng)條件對(duì)菌株的生長(zhǎng)和對(duì)四環(huán)素的降解能力有至關(guān)重要的影響[22]。適當(dāng)?shù)奶嫉词枪泊x所必需的主要能量材料,可以促進(jìn)共代謝細(xì)菌對(duì)四環(huán)素的降解。本文研究了外加碳源-可溶性淀粉和外加氮源-酵母浸粉菌株的生長(zhǎng)和四環(huán)素的降解情況。初始pH為7.0 和80 mg·L-1四環(huán)素下,添加碳、氮源后的第7 天,可溶性淀粉和酵母浸粉均為20 mg·L-1時(shí),菌株對(duì)四環(huán)素去除效果最佳,進(jìn)一步確定了菌株Ly-1057 表現(xiàn)出良好的四環(huán)素降解能力的最佳降解條件。
本文篩選出了1 株降解四環(huán)素的菌株—陰溝腸桿菌(Enterobacter cloacae),并對(duì)其培養(yǎng)條件進(jìn)行優(yōu)化,為其應(yīng)用于污染土壤的四環(huán)素去除提供了堅(jiān)實(shí)的理論基礎(chǔ)。