邢逸,竇一鳴,王敏,徐海楠,楊強(qiáng),孫遜,趙艷紅△
顳下頜關(guān)節(jié)骨關(guān)節(jié)炎(temporomandibular joint osteoarthritis,TMJ-OA)是臨床中常見的頜面部關(guān)節(jié)疾病,發(fā)病率高。顳下頜關(guān)節(jié)軟骨無血管,無神經(jīng),骨關(guān)節(jié)炎所致軟骨缺損難以自我修復(fù)[1],亟需更有效的治療手段來解決這一臨床難題。骨軟骨組織工程技術(shù)的發(fā)展為TMJ-OA提供了新的治療策略。骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cells,BMSCs)已廣泛應(yīng)用于骨軟骨組織工程領(lǐng)域[2]。已有研究證明間充質(zhì)干細(xì)胞(MSCs)的治療作用主要通過旁分泌外泌體(exosomes,Exo)實現(xiàn)[3]。Exo是細(xì)胞分泌到胞外的直徑為40~160 nm的雙層脂質(zhì)囊泡,可將蛋白質(zhì)、微小RNA(miRNA)等運(yùn)輸?shù)桨屑?xì)胞,實現(xiàn)細(xì)胞間通訊[4]。由于Exo較細(xì)胞療法具有更低的免疫原性,已作為細(xì)胞治療的替代療法應(yīng)用在多種疾病的研究中。巨噬細(xì)胞(Mφ)是滑膜組織中參與骨關(guān)節(jié)炎(OA)炎癥和組織損傷修復(fù)過程的主要免疫細(xì)胞[5],可分為經(jīng)典激活M1 巨噬細(xì)胞(M1Mφ)和交替激活M2 巨噬細(xì)胞(M2Mφ)。M1Mφ釋放炎性因子促進(jìn)炎癥微環(huán)境發(fā)展,M2Mφ 則產(chǎn)生抗炎因子抑制炎癥發(fā)展[6]。M1Mφ/M2Mφ 比例的不同導(dǎo)致了炎癥微環(huán)境中促炎/抗炎的平衡改變[7]。因而,M1Mφ和M2Mφ在TMJ-OA的發(fā)展過程中起到了關(guān)鍵作用,為TMJ-OA的防治提供了新的研究方向。轉(zhuǎn)化生長因子(TGF)-β1是一種軟骨形成誘導(dǎo)因子,可調(diào)控軟骨細(xì)胞增殖及軟骨細(xì)胞外基質(zhì)的合成代謝,在OA的發(fā)病機(jī)制中起重要作用。相關(guān)研究已證實,抑制軟骨中的TGF-β1 信號傳導(dǎo)可導(dǎo)致關(guān)節(jié)軟骨退化[8]。因此,TGF-β1是維持軟骨完整性的重要靶點。本研究收集BMSCs 來源的Exo(BMSCs-Exo),旨在探討B(tài)MSCs-Exo 在炎癥微環(huán)境中對Mφ極化及促骨修復(fù)的調(diào)控作用,為治療TMJ-OA 提供具有潛在臨床應(yīng)用價值的方向與方法。
1.1 主要材料 BMSCs、小鼠單核巨噬細(xì)胞白血病細(xì)胞RAW264.7細(xì)胞系、原代軟骨細(xì)胞購自武漢普諾賽生物公司;DMEM 培養(yǎng)基、青霉素-鏈霉素雙抗、胎牛血清(FBS)、0.25%胰蛋白酶購自Gibco公司;ALG2相互作用蛋白X(Alix)抗體、腫瘤易感基因101蛋白(TSG101)抗體、一氧化氮合酶(iNOS)抗體、精氨酸酶-1(Arg-1)抗體、基質(zhì)金屬蛋白酶(MMP)-13抗體購自Abcam公司;β-actin抗體、Ⅱ型膠原(COLⅡ)抗體、TGF-β1 抗體購自 Bioss 公司;白細(xì)胞介素(IL)-1β 購自Preprotech公司,干擾素(IFN)-γ購自R&D公司;RNA提取試劑盒購自福際生物公司;反轉(zhuǎn)錄試劑盒購自Takara 公司;qPCR SYBR?Green Master 試劑盒購自 Yeasen 公司;CCK-8試劑盒購自Biosharp 公司;GAPDH、iNOS、Arg-1、IL-1β、IL-6、COL2a1、TGF-β1 引物購自北京擎科生物科技有限公司;IL-1β、IL-6 酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)試劑盒購自索萊寶公司。
1.2 研究方法
1.2.1 BMSCs、RAW264.7、原代軟骨細(xì)胞培養(yǎng) 將BMSCs、RAW264.7、原代軟骨細(xì)胞以4.0×104個/mL 的密度接種于培養(yǎng)瓶中,加入適量含有10%FBS和1%青霉素-鏈霉素雙抗的DMEM 完全培養(yǎng)基,置于5%CO2,飽和濕度的37 ℃培養(yǎng)箱中常規(guī)培養(yǎng)。細(xì)胞融合度為80%~90%時,0.25%胰蛋白酶消化2~3 min,使用完全培養(yǎng)基終止消化,1 000 r/min 離心5 min,以 1∶3 的比例傳代。取 P2-P9 的 BMSCs、P2-P5 的原代軟骨細(xì)胞及對數(shù)生長期的RAW264.7用于后續(xù)實驗。
1.2.2 BMSCs-Exo 的提取及觀察 BMSCs 傳代后細(xì)胞培養(yǎng)過夜,更換為不含外泌體血清的培養(yǎng)基培養(yǎng)48 h,收集細(xì)胞培養(yǎng)上清液,置于-80 ℃保存。將收集的上清液通過以下差速離心步驟收集BMSCs-Exo:300 ×g,10 min;2 000 ×g,10 min;10 000 ×g,30 min;120 000 ×g,90 min。超速離心后,棄去上清液,沉淀即主要為BMSCs-Exo,用1 mL PBS 重懸,0.22μm濾膜過濾,-80 ℃保存。將20μL BMSCs-Exo 懸液滴加在銅網(wǎng)上,室溫1 min后滴加20μL磷鎢酸溶液,1 min后吸去磷鎢酸溶液,紅外燈下烘烤10 min,吸去多余液體,透射電鏡(TEM)下觀察Exo結(jié)構(gòu)。
1.2.3 BMSCs-Exo促巨噬細(xì)胞、軟骨細(xì)胞增殖能力檢測 將RAW264.7 以 2×103個/孔的密度接種于 96 孔板中,實驗分為對照組(0 mg/L Exo)、10 mg/L Exo組、50 mg/L Exo組。將軟骨細(xì)胞以2×103個/孔的密度接種于96 孔板中,實驗分為對照組、模型組(10 mg/L IL-1β 組)、治療組(IL-1β+10 mg/L Exo組、IL-1β+50 mg/L Exo 組)。細(xì)胞培養(yǎng)24 h 后分別在各組孔中加入100μL 含不同劑量BMSCs-Exo 的完全培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)24、48 h。在相應(yīng)的時間點,每孔加入10μL CCK-8 反應(yīng)液,置于37 ℃培養(yǎng)箱中反應(yīng)2 h后,酶標(biāo)儀檢測各孔450 nm處的光密度(OD)值,每組均重復(fù)4次。
1.2.4 BMSCs-Exo 對巨噬細(xì)胞極化表型的影響及對炎癥的調(diào)控 實驗分組同1.2.3。將RAW264.7 以1×104個/孔的密度接種于6 孔板中,細(xì)胞貼壁后,使用20 μg/L 的IFN-γ 刺激RAW264.7 細(xì)胞24 h,使其極化為M1Mφ 后,棄去培養(yǎng)基,分別更換為含0、10、50 mg/L BMSCs-Exo 的完全培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)24 h 后收集蛋白樣本及總RNA 樣本,以用于后續(xù)實驗。
1.2.5 BMSCs-Exo 對炎癥軟骨細(xì)胞的調(diào)控作用 實驗分組同1.2.3。將原代軟骨細(xì)胞以1×104個/孔的密度接種于6孔板中,細(xì)胞貼壁后,使用10μg/L 的IL-1β刺激模型組和治療組24 h;棄去培養(yǎng)基,在對照組和模型組中加入不含BMSCs-Exo的完全培養(yǎng)基,在治療組中分別加入含10 mg/L 和50 mg/L BMSCs-Exo的完全培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)24 h后收集蛋白樣本及總RNA樣本,以用于后續(xù)實驗。
1.2.6 實時熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(qRT-PCR)檢測巨噬細(xì)胞極化表型、炎性因子表達(dá)及軟骨細(xì)胞表型 使用RNA提取試劑盒提取總RNA,Nanodrop 檢測所提RNA 濃度及純度。按照試劑盒說明加入反轉(zhuǎn)錄酶反轉(zhuǎn)錄及合成cDNA,-20 ℃保存。按照2×qPCR SYBR?Green Master的試劑盒說明配制反應(yīng)體系,并上機(jī)檢測。反應(yīng)體系為:qPCR SYBR Green Master Mix 10μL,上、下游引物(10μmol/L)各0.4μL,cDNA 2μL,ddH2O 7.2 μL。反應(yīng)條件為:95 ℃預(yù)變性5 min;95 ℃變性10 s,56 ℃退火20 s,72 ℃延伸20 s,共50 個循環(huán);熔解曲線 95 ℃ 15 s,60 ℃ 1 min,95 ℃ 1 s。每組均重復(fù) 3 次。以GAPDH為內(nèi)參基因,使用2-ΔΔCt法測定mRNA相對表達(dá)水平。相關(guān)基因引物序列見表1。
Tab.1 qRT-PCR primer sequence information表1 qRT-PCR引物序列信息
1.2.7 Western blot 檢測巨噬細(xì)胞極化表型及軟骨細(xì)胞表型 在蛋白樣本中加入含有PMSF 和磷酸酶抑制劑的RIPA裂解液,置于冰上裂解 1 h,4 ℃ 12 000 r/min 離心20 min,取上清液,并用BCA試劑盒進(jìn)行蛋白定量。在上清液中加入適量5×SDS 蛋白上樣緩沖液,95 ℃金屬浴煮沸蛋白10 min。配制PAGE 凝膠,在濃縮膠中上樣蛋白30 μg,80 V 電壓30 min,120 V電壓60 min進(jìn)行蛋白電泳,待溴酚藍(lán)跑出分離膠底部即可停止電泳。將PAGE 凝膠轉(zhuǎn)移到PVDF 膜中,轉(zhuǎn)膜220 mA 90 min。5%脫脂奶粉室溫封閉1 h 后,按蛋白marker 裁剪 PVDF 膜條帶,在 Alix、TSG101、iNOS、Arg-1、MMP-13、β-actin、COLⅡ、TGF-β1 一抗中 4 ℃孵育過夜。TBST洗膜10 min 3次,辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗室溫孵育1 h,TBST再次洗膜10 min 3次。加入ECL發(fā)光液,于化學(xué)發(fā)光顯影系統(tǒng)中觀察。
1.2.8 ELISA 檢測巨噬細(xì)胞炎性因子蛋白表達(dá)水平 實驗分組同1.2.3。將RAW264.7以1×104個/孔的密度接種于6孔板中,細(xì)胞貼壁后,使用20 μg/L 的IFN-γ 刺激RAW264.7 細(xì)胞24 h,使其極化為M1Mφ后,棄去培養(yǎng)基,分別更換為含0、10、50 mg/L BMSCs-Exo的完全培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)24 h后收集細(xì)胞培養(yǎng)上清液,1 000 r/min 離心 10 min,取上清液,-80 ℃保存。配制蛋白標(biāo)準(zhǔn)品,將樣本和標(biāo)準(zhǔn)品分別加入IL-1β及IL-6 抗體預(yù)包被酶標(biāo)板反應(yīng)孔中,37 ℃培養(yǎng)箱中孵育90 min,洗板4 次;加入生物素化抗體工作液至反應(yīng)孔中,孵育60 min后洗板4次;加入酶結(jié)合物工作液至反應(yīng)孔中,孵育30 min后洗板4次;加入顯色液至反應(yīng)孔中,避光孵育30 min后加入終止液,酶標(biāo)儀檢測各孔450 nm 處的OD 值,計算出細(xì)胞上清中的IL-1β 及IL-6 蛋白表達(dá)水平。每組均重復(fù)3次。
1.3 統(tǒng)計學(xué)方法 采用SPSS 22.0 軟件對實驗數(shù)據(jù)進(jìn)行分析。符合正態(tài)分布的計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差()表示,2組間均數(shù)比較采用獨立樣本t檢驗,多組間比較采用單因素方差分析(ANOVA),組間多重比較時方差齊行LSD-t法,方差不齊行Dunnett’s T3檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 BMSCs-Exo 的提取與表征 透射電鏡觀察到BMSCs-Exo 為圓形囊泡,呈杯狀,為雙層膜結(jié)構(gòu),粒徑大小約為100 nm,與外泌體結(jié)構(gòu)一致(圖1A)。Western blot 結(jié)果示,該囊泡表達(dá)外泌體特征蛋白Alix、TSG101,進(jìn)一步證明收集到的囊泡為BMSCs-Exo(圖1B)。
Fig.1 Identification of BMSCs-Exo圖1 BMSCs-Exo的鑒定
2.2 BMSCs-Exo 對巨噬細(xì)胞及軟骨細(xì)胞增殖的影響 與24 h 相比,巨噬細(xì)胞培養(yǎng)48 h 后細(xì)胞數(shù)目增加,且50 mg/L Exo 組細(xì)胞數(shù)目最多,見表2。模型組中的IL-1β 明顯抑制了軟骨細(xì)胞的增殖,而加入50 mg/L Exo處理后,IL-1β的抑制作用減輕,細(xì)胞增殖較模型組明顯,見表3。以上結(jié)果證明BMSCs-Exo具有良好的生物相容性,能促進(jìn)細(xì)胞增殖。
Tab.2 Comparison of the proliferation promoting effects of BMSC-Exos on macrophages for 24 h and 48 h表2 BMSC-Exos對巨噬細(xì)胞作用24 h和48 h的促增殖效果比較 (n=4,OD值,)
Tab.2 Comparison of the proliferation promoting effects of BMSC-Exos on macrophages for 24 h and 48 h表2 BMSC-Exos對巨噬細(xì)胞作用24 h和48 h的促增殖效果比較 (n=4,OD值,)
*P<0.05,**P<0.01;a 與對照組比較,b 與 10 mg/L Exo 組比較,P<0.05。
組別對照組10 mg/L Exo組50 mg/L Exo組F 24 h 1.15±0.13 1.21±0.09 1.58±0.07ab 21.660**1.40±0.06 1.42±0.08 2.77±0.10ab 385.945**48 h t 3.528*3.684*19.358**
Tab.3 Comparison of the proliferation promoting effects of BMSC-Exos on chondrocytes for 24 h and 48 h表3 BMSC-Exos對軟骨細(xì)胞作用24 h和48 h的促增殖效果比較 (n=4,OD值,)
Tab.3 Comparison of the proliferation promoting effects of BMSC-Exos on chondrocytes for 24 h and 48 h表3 BMSC-Exos對軟骨細(xì)胞作用24 h和48 h的促增殖效果比較 (n=4,OD值,)
*P<0.05,**P<0.01;a與對照組比較,b與模型組比較,c與IL-1β+10 mg/L Exo組比較,P<0.05。
組別對照組模型組IL-1β+10 mg/L Exo組IL-1β+50 mg/L Exo組F 24 h 1.63±0.07 0.30±0.04a 0.49±0.07ab 1.42±0.06abc 504.518**48 h 3.01±0.12 0.40±0.15a 0.52±0.11a 1.77±0.16abc 324.883**t 20.173**1.306 0.494 3.958**
2.3 BMSCs-Exo 對巨噬細(xì)胞形態(tài)的影響 未對巨噬細(xì)胞進(jìn)行干預(yù)時,細(xì)胞形態(tài)較圓,生長狀態(tài)良好,呈團(tuán)狀聚集(圖2A)。使用20μg/L IFN-γ 刺激24 h后,iNOS 表達(dá)水平升高,Arg-1 表達(dá)水平降低,證明巨噬細(xì)胞細(xì)胞極化為M1Mφ,見表4,且細(xì)胞呈不規(guī)則形態(tài),可見偽足(圖2B)。Mφ在極化為M1Mφ后,使用不同劑量的BMSCs-Exo 對M1型巨噬細(xì)胞進(jìn)行干預(yù)。BMSCs-Exo 為10 mg/L 時,細(xì)胞形態(tài)發(fā)生改變,細(xì)胞變圓,但仍可見部分有偽足細(xì)胞(圖2C);50 mg/L時,基本無分化細(xì)胞,細(xì)胞形態(tài)較圓,細(xì)胞密集(圖2D)。
Fig.2 Macrophage cell morphology of different treatment groups(Scale bar represents 100μm)圖2 不同處理組巨噬細(xì)胞形態(tài)(標(biāo)尺=100μm)
Tab.4 Comparison of mRNA levels of M1/M2 macrophage-related markers after IFN-γ stimulation表4 IFN-γ刺激后M1/M2巨噬細(xì)胞相關(guān)標(biāo)志物的mRNA水平比較 (n=3,)
Tab.4 Comparison of mRNA levels of M1/M2 macrophage-related markers after IFN-γ stimulation表4 IFN-γ刺激后M1/M2巨噬細(xì)胞相關(guān)標(biāo)志物的mRNA水平比較 (n=3,)
*P<0.05,**P<0.01。
組別對照組20μg/L IFN-γ組t mRNA水平iNOS 1.02±0.09 2.48±0.74 3.368*Arg-1 1.00±0.09 0.27±0.05 11.778**
2.4 BMSCs-Exo 對巨噬細(xì)胞表型極化的調(diào)控作用 與對照組相比,10 mg/L 和50 mg/L BMSCs-Exo處理組的M1表型相關(guān)蛋白iNOS的表達(dá)降低;而M2表型相關(guān)蛋白Arg-1 表達(dá)增多,50 mg/L Exo 組的Arg-1表達(dá)量顯著增多,見圖3、表5。mRNA 檢測結(jié)果顯示,與對照組相比,BMSCs-Exo 的處理可降低M1表型相關(guān)基因iNOS的表達(dá),升高M(jìn)2表型相關(guān)基因Arg-1 的表達(dá)水平,與Western blot 的結(jié)果趨勢一致,見表5。BMSCs-Exo 具有調(diào)控巨噬細(xì)胞表型極化的作用,可促M1向M2表型極化。
Fig.3 Macrophage phenotypic polarization圖3 巨噬細(xì)胞表型極化
Tab.5 Comparison of the regulatory effects of different doses of BMSCs-Exo on expression levels of phenotypeassociated markers in M1/M2 macrophages表5 不同劑量BMSCs-Exo對M1/M2巨噬細(xì)胞表型相關(guān)標(biāo)志物表達(dá)水平的調(diào)控作用比較(n=3,)
Tab.5 Comparison of the regulatory effects of different doses of BMSCs-Exo on expression levels of phenotypeassociated markers in M1/M2 macrophages表5 不同劑量BMSCs-Exo對M1/M2巨噬細(xì)胞表型相關(guān)標(biāo)志物表達(dá)水平的調(diào)控作用比較(n=3,)
**P<0.01;a與對照組比較,b與10 mg/L Exo組比較,P<0.05。
組別對照組10 mg/L Exo組50 mg/L Exo組F mRNA水平Arg-1 1.03±0.29 1.24±0.28 3.24±0.35ab 46.755**iNOS 1.00±0.12 0.46±0.02a 0.26±0.03ab 87.323**蛋白水平Arg-1 0.18±0.02 0.30±0.04a 0.88±0.04ab 382.243**iNOS 1.05±0.08 0.54±0.03a 0.47±0.07a 75.789**
2.5 BMSCs-Exo 對炎性因子表達(dá)的調(diào)控 與對照組相比,BMSCs-Exo 處理組的炎性因子IL-1β、IL-6的 mRNA 表達(dá)水平顯著降低(P<0.05),見表 6。ELISA檢測結(jié)果顯示,對照組細(xì)胞培養(yǎng)上清液中IL-1β 及 IL-6 的蛋白表達(dá)水平較高,50 mg/L BMSCs-Exo 處理可降低IL-1β及IL-6的蛋白表達(dá)水平(P<0.05),見表7。
Tab.6 Comparison of the regulatory effects of different doses of BMSCs-Exo on the mRNA expression levels of inflammatory factors in macrophages表6 不同劑量BMSCs-Exo對巨噬細(xì)胞炎性因子mRNA水平的調(diào)控作用比較 (n=3,)
Tab.6 Comparison of the regulatory effects of different doses of BMSCs-Exo on the mRNA expression levels of inflammatory factors in macrophages表6 不同劑量BMSCs-Exo對巨噬細(xì)胞炎性因子mRNA水平的調(diào)控作用比較 (n=3,)
**P<0.01;a與對照組比較,P<0.05。
組別對照組10 mg/L Exo組50 mg/L Exo組F IL-1β 1.00±0.07 0.31±0.02a 0.22±0.04a 231.825**IL-6 1.00±0.04 0.45±0.10a 0.35±0.09a 60.248**
Tab.7 Comparison of the regulatory effects of different doses of BMSCs-Exo on the expression levels of inflammatory factor proteins in macrophages表7 不同劑量BMSCs-Exo對巨噬細(xì)胞炎性因子蛋白表達(dá)水平的調(diào)控作用比較 (n=3,ng/L,)
Tab.7 Comparison of the regulatory effects of different doses of BMSCs-Exo on the expression levels of inflammatory factor proteins in macrophages表7 不同劑量BMSCs-Exo對巨噬細(xì)胞炎性因子蛋白表達(dá)水平的調(diào)控作用比較 (n=3,ng/L,)
*P<0.05,**P<0.01;a 與對照組比較,b 與 10 mg/L Exo 組比較,P<0.05。
組別對照組10 mg/L Exo組50 mg/L Exo組F IL-1β 27.81±8.84 26.88±6.80 12.11±3.27ab 5.169*IL-6 7.25±1.25 2.03±1.05a 3.04±1.40a 14.877**
2.6 BMSCs-Exo 對炎癥軟骨細(xì)胞的調(diào)控 與模型組相比,BMSCs-Exo 處理組的軟骨細(xì)胞成軟骨相關(guān)蛋白COLⅡ及TGF-β1 表達(dá)明顯升高,而MMP-13表達(dá)顯著降低,見圖4、表8。mRNA 水平結(jié)果顯示,IL-1β 刺激抑制了COL2a1、TGF-β1 的mRNA 表達(dá),并升高M(jìn)MP-13 mRNA 的表達(dá)水平,而50 mg/L BMSCs-Exo 處理組的 COL2a1、TGF-β1 的 mRNA 表達(dá)水平則顯著高于模型組,見表9。
Fig.4 Expression levels of chondrogenesis-related proteins圖4 成軟骨相關(guān)蛋白的表達(dá)水平
Tab.8 Comparison of the regulatory effects of different doses of BMSCs-Exo on the expression levels of chondrogenic-related proteins in chondrocytes表8 不同劑量BMSCs-Exo對軟骨細(xì)胞成軟骨相關(guān)蛋白表達(dá)水平的調(diào)控作用比較 (n=3,)
Tab.8 Comparison of the regulatory effects of different doses of BMSCs-Exo on the expression levels of chondrogenic-related proteins in chondrocytes表8 不同劑量BMSCs-Exo對軟骨細(xì)胞成軟骨相關(guān)蛋白表達(dá)水平的調(diào)控作用比較 (n=3,)
**P<0.01;a與對照組比較,b與模型組比較,c與IL-1β+10 mg/L Exo組比較,P<0.05。
組別對照組模型組IL-1β+10 mg/L Exo組IL-1β+50 mg/L Exo組F COLⅡ0.54±0.02 0.31±0.01a 0.75±0.02ab 0.90±0.05ab 245.833**TGF-β1 0.97±0.04 0.40±0.02a 0.60±0.03ab 0.76±0.04abc 138.065**MMP-13 0.16±0.01 0.43±0.02a 0.18±0.01b 0.16±0.01b 379.851**
Tab.9 Comparison of the regulatory effects of different doses of BMSCs-Exo on the mRNA expression levels of chondrogenesis-related genes in chondrocytes表9 不同劑量BMSCs-Exo對軟骨細(xì)胞成軟骨相關(guān)基因mRNA表達(dá)水平的調(diào)控作用比較(n=3,)
Tab.9 Comparison of the regulatory effects of different doses of BMSCs-Exo on the mRNA expression levels of chondrogenesis-related genes in chondrocytes表9 不同劑量BMSCs-Exo對軟骨細(xì)胞成軟骨相關(guān)基因mRNA表達(dá)水平的調(diào)控作用比較(n=3,)
**P<0.01;a與對照組比較,b與模型組比較,c與IL-1β+10 mg/L Exo組比較,P<0.05。
組別對照組模型組IL-1β+10 mg/L Exo組IL-1β+50 mg/L Exo組F COL2a1 1.00±0.11 0.62±0.01 1.40±0.10ab 2.15±0.30ab 45.791**TGF-β1 1.00±0.08 0.25±0.04a 0.53±0.05ab 2.11±0.31bc 74.902**MMP-13 1.00±0.02 8.24±0.15a 6.90±0.46a 3.11±0.24abc 456.037**
3.1 治療TMJ-OA 的骨軟骨組織工程策略 TMJOA 病理機(jī)制復(fù)雜,涉及軟骨退變、滑膜炎癥等[9]?,F(xiàn)階段TMJ-OA的治療方法主要分為保守治療與手術(shù)治療,但均存在局限性。保守治療僅能緩解局部癥狀,手術(shù)治療具有免疫排斥等風(fēng)險[10]。因此,開發(fā)新的治療手段是目前TMJ-OA 領(lǐng)域亟需解決的難題。
組織工程是一種以實現(xiàn)受損組織結(jié)構(gòu)和功能再生的新興治療技術(shù),其中,MSCs 是研究較為深入的組織工程種子細(xì)胞[11]。盡管干細(xì)胞療法在再生醫(yī)學(xué)中具有良好的前景,但目前干細(xì)胞的臨床應(yīng)用仍存有爭議[12]。BMSCs-Exo 具有與 BMSCs 相似的功能特性,與干細(xì)胞療法相比,Exo避免了干細(xì)胞應(yīng)用中的倫理及腫瘤發(fā)生等問題,更易對靶細(xì)胞進(jìn)行調(diào)控,被認(rèn)為是干細(xì)胞療法的替代[13]。MSCs 衍生的Exo可通過調(diào)節(jié)免疫系統(tǒng)、刺激細(xì)胞增殖等發(fā)揮治療作用[14]?;诖耍狙芯刻崛×薆MSCs-Exo,通過體外實驗探索了其對Mφ表型極化的影響及在炎癥微環(huán)境中發(fā)揮的免疫調(diào)控作用;結(jié)果顯示,所收集的囊泡具有雙層膜結(jié)構(gòu),表達(dá)外泌體特征性表面蛋白,并且BMSCs-Exo 具有良好的生物相容性,可促進(jìn)巨噬細(xì)胞及軟骨細(xì)胞增殖。
3.2 BMSCs-Exo可極化Mφ表型及維持軟骨細(xì)胞表型 Mφ 是骨關(guān)節(jié)滑膜液中主要的免疫細(xì)胞,在TMJ-OA 的發(fā)病機(jī)制中發(fā)揮著重要的作用[15]。Mφ易受微環(huán)境刺激,M1Mφ 可釋放高水平的促炎因子IL-1β、IL-6等,促進(jìn)炎癥的發(fā)生發(fā)展;M2Mφ可產(chǎn)生抗炎因子IL-1α、Arg-1 等,緩解炎癥反應(yīng)并促進(jìn)組織修復(fù)再生[6]。本研究結(jié)果顯示,當(dāng)巨噬細(xì)胞極化為M1Mφ,經(jīng)BMSCs-Exo 處理后,M1Mφ 中高表達(dá)的iNOS 表達(dá)水平降低,50 mg/L BMSCs-Exo 與 10 mg/L BMSCs-Exo 相比,可更明顯下調(diào)iNOS 的表達(dá),并顯著上調(diào)M2Mφ相關(guān)蛋白Arg-1的表達(dá)水平。
M1Mφ 和M2Mφ 之間的平衡與TMJ-OA 的嚴(yán)重程度相關(guān)[7]。在OA 患者的滑膜液中可檢測到高水平促炎因子和大量的M1Mφ。已有研究證明,通過改變 M1Mφ/M2Mφ 比例可有效緩解炎癥反應(yīng)[16]。Kim等[17]發(fā)現(xiàn),M2Mφ衍生的外泌體可以將M1Mφ重編程為M2Mφ,達(dá)到抗炎及促進(jìn)皮膚傷口愈合的目的。Zheng 等[18]報道了原代軟骨細(xì)胞衍生的外泌體可以增加M2Mφ 的浸潤,減少M1Mφ 的數(shù)量,抑制OA 的發(fā)展。本研究中,50 mg/L BMSCs-Exo 能顯著誘導(dǎo) M1Mφ 高表達(dá)M2Mφ 表型相關(guān)基因,BMSCs-Exo具有調(diào)控M1Mφ向M2Mφ極化的能力,與上述報道一致。
TGF-β1可促進(jìn)軟骨細(xì)胞增殖、Ⅱ型膠原聚集和蛋白聚糖的分泌[19],并導(dǎo)致Smad2磷酸化,進(jìn)而上調(diào)軟骨標(biāo)志物Col2a1、Sox9、Acan表達(dá)水平以促進(jìn)軟骨生成[20]。本研究中也發(fā)現(xiàn)了BMSCs-Exo 在炎癥軟骨細(xì)胞中具有一致的效果,進(jìn)一步證實了BMSCs-Exo 在炎癥微環(huán)境中可促進(jìn)軟骨細(xì)胞增殖,維持軟骨細(xì)胞表型,具有促進(jìn)軟骨修復(fù)的作用。筆者通過觀察BMSCs-Exo 對炎癥軟骨細(xì)胞的調(diào)控發(fā)現(xiàn),BMSCs-Exo 處理能減少IL-1β 對TGF-β1 的抑制作用,降低MMP-13 表達(dá),升高COL2a1 表達(dá)水平。本研究證明了在炎癥的免疫調(diào)節(jié)過程中,Mφ極化與炎性因子表達(dá)有關(guān),BMSCs-Exo處理后的M1Mφ中,極化表型可發(fā)生改變,IL-1β 和 IL-6 的 mRNA 表達(dá)水平下調(diào),有助于降低炎癥微環(huán)境中的炎性因子水平,同時可促進(jìn)炎癥微環(huán)境中的軟骨修復(fù)。
綜上所述,BMSCs-Exo 可通過調(diào)控Mφ 的表型極化,降低炎性因子表達(dá)水平,同時促進(jìn)炎癥微環(huán)境中的軟骨修復(fù),為探索BMSCs-Exo 緩解TMJ-OA 和參與組織再生的機(jī)制提供了新的思路與方向。BMSCs-Exo對TMJ-OA的作用及其更深入的機(jī)制還有待于更進(jìn)一步的研究發(fā)現(xiàn)。