肝硬化是各種慢性肝病逐漸發(fā)展演變?yōu)楦闻K彌漫性纖維化、假小葉形成為主要特征的病理階段。肝硬化與發(fā)生原發(fā)性肝細(xì)胞癌的風(fēng)險(xiǎn)相關(guān),晚期肝硬化是一種危及生命的疾病且治療選擇有限。因此,肝硬化造成了很大的公共衛(wèi)生負(fù)擔(dān)
。2014年全球肝硬化疾病新負(fù)擔(dān)估算研究表明
,肝硬化在2010年造成超過(guò)100萬(wàn)人死亡。
采用單因素變量法考察了稱樣量對(duì)測(cè)定的影響。分別選用稱樣量為0.5、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0g進(jìn)行試驗(yàn),結(jié)果見表3。由表3可見:當(dāng)稱樣量不大于1.0g時(shí),測(cè)定結(jié)果的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)較大,這可能是因?yàn)榉Q樣量太小,樣品代表性較差;當(dāng)稱樣量大于1.0g時(shí),測(cè)量結(jié)果的RSD較小??紤]到稱樣量大于3.0g時(shí),消耗的硝酸-酒石酸混酸和滴定液體積會(huì)相應(yīng)增多,最終實(shí)驗(yàn)選擇稱樣量為2.0g。
本研究采集80例就診于福建省立醫(yī)院消化內(nèi)科的肝硬化患者及40名福建省立醫(yī)院體檢中心健康志愿者的糞便標(biāo)本,通過(guò)16s rDNA測(cè)序技術(shù)檢測(cè)糞便腸道菌群。首先,分析比較肝硬化組與健康對(duì)照組腸道菌群多樣性及組成的差異;其次,比較肝硬化代償期組與肝硬化失代償期組、不同Child-Pugh分級(jí)肝硬化組、肝硬化無(wú)合并腹水組與肝硬化合并腹水組腸道菌群的變化;再通過(guò)腸型分析,預(yù)測(cè)肝硬化腸型對(duì)于疾病及嚴(yán)重程度的判斷,旨在初步分析肝硬化患者腸道菌群的變化,為臨床輔助評(píng)估肝硬化病情提供多一個(gè)無(wú)創(chuàng)的新指標(biāo),也為從微生態(tài)角度治療肝硬化提供多一些臨床證據(jù)。
選取2019年1月至2019年12月就診于福建省立醫(yī)院消化內(nèi)科的肝硬化患者80例,同期選取福建省立醫(yī)院體檢中心健康志愿者40名。肝硬化患者的納入標(biāo)準(zhǔn):組織學(xué)或影像學(xué)符合肝硬化者可診斷為代償期肝硬化;在診斷肝硬化基礎(chǔ)上,出現(xiàn)門靜脈高壓相關(guān)并發(fā)癥如腹水、食管胃底靜脈曲張破裂出血、膿毒癥、肝性腦病、肝腎綜合征等者可診斷為失代償期肝硬化。肝硬化患者的排除標(biāo)準(zhǔn):(1)合并嚴(yán)重心、腦、肺、腎等臟器功能不全者(不包括肝性腦病、肝肺綜合征、肝腎綜合征);(2)既往有胃腸道手術(shù)病史及消化道腫瘤、腸易激綜合征、炎癥性腸病、感染性腹瀉等其他消化道疾??;(3)孕期、哺乳期婦女及兒童;(4)采集糞便標(biāo)本前4周內(nèi)應(yīng)用過(guò)抗生素及微生態(tài)制劑。健康志愿者的排除標(biāo)準(zhǔn):(1)呼吸系統(tǒng)、消化系統(tǒng)、血液系統(tǒng)、內(nèi)分泌系統(tǒng)、心腦血管系統(tǒng)、泌尿系統(tǒng)、神經(jīng)精神系統(tǒng)等慢性疾病者;(2)脂肪肝、糖尿病等代謝性疾病者;(3)BMI≥24 kg/m
;(4)酗酒者;(5)孕期、哺乳期婦女及兒童;(6)采集糞便標(biāo)本前4周內(nèi)應(yīng)用過(guò)抗生素及微生態(tài)制劑。本研究經(jīng)福建省立醫(yī)院醫(yī)學(xué)倫理委員會(huì)審批通過(guò)[倫審科研第(K2018-09-010)號(hào)],研究對(duì)象均簽署知情同意書。
收集研究對(duì)象基本臨床資料及留取當(dāng)天第1次新鮮糞便標(biāo)本0.3~0.5 ml(1 h內(nèi)保存至標(biāo)本盒)。樣本送至杭州晶佰生物科技有限公司,該公司采用天根生化科技(北京)有限公司的糞便基因組DNA提取試劑盒(DP328)提取樣品DNA,進(jìn)行V3-V4 rDNA擴(kuò)增子文庫(kù)構(gòu)建(擴(kuò)增引物:5′-CCTACGGGNGGCWGCAG-3′和5′-GACTACHVGGGTATCTAATCC-3′)。每個(gè)樣品文庫(kù)質(zhì)控合格后,進(jìn)行文庫(kù)Pooling及上機(jī)測(cè)序。使用軟件cutadapt(v1.18)將原始數(shù)據(jù)PE(paired-end)去引物,以確保數(shù)據(jù)是目標(biāo)片段;使用軟件pandaseq(v2.11)將不含引物PE(paired-end)序列拼接成長(zhǎng)tags;使用軟件python3對(duì)拼接長(zhǎng)tags進(jìn)行質(zhì)控;采用軟件vsearch對(duì)高質(zhì)量長(zhǎng)序列進(jìn)行去嵌合體;對(duì)去除嵌合體的高質(zhì)量數(shù)據(jù)按相似度97%進(jìn)行操作分類單元(operational taxonomic unit,OTU)聚類,挑選代表序列;使用rdp-classifier(v2.12)對(duì)代表序列進(jìn)行物種注釋(數(shù)據(jù)庫(kù)為rdp-classifier);使用Qiime流程得到OTU豐度表和物種豐度表,使用軟件R(v3.5.2)語(yǔ)言統(tǒng)計(jì)繪制物種組成柱狀圖、差異物種圖、主坐標(biāo)分析(Principal Coordinats Analysis, PCoA)、腸型等圖表。
姜超,男,1978年10月生,陜西長(zhǎng)安人,高級(jí)工程師,主要從事土地綜合開發(fā)和交通項(xiàng)目建設(shè)管理,E-mail:16361273@qq.com
該研究共納入肝硬化患者80例,男50例,女30例,年齡(57.0±13.6)歲;健康志愿者40名,男20名,女20名,年齡(57.7±13.5)歲。兩組的性別、年齡比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(
>0.05)。在肝硬化患者中,肝硬化代償期34例,肝硬化失代償期46例;Child-Pugh A級(jí)組45例,Child-Pugh B級(jí)組24例,Child-Pugh C級(jí)組11例。
2.4.1 差異物種比較:Child-Pugh A級(jí)組中主要有
__
、
、
,Child-Pugh B級(jí)組中主要有
、
、
,Child-Pugh C級(jí)組中主要有
(見圖5)。
2.3.2 腸型分析:腸道菌群以
(埃希氏菌屬)為主的肝硬化患者發(fā)展為失代償期肝硬化的風(fēng)險(xiǎn)是腸道菌群以
(普氏菌屬)為主的3.64倍(
<0.05,見圖4、表2)。因此可以推測(cè),腸型Ⅰ(
)是肝硬化發(fā)展為失代償期的危險(xiǎn)因素。
2.4.2 Child-Pugh評(píng)分與腸道菌群主要物種相關(guān)性分:
、
、
平均相對(duì)豐度百分比與Child-Pugh評(píng)分呈正相關(guān),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(
<0.05);
、
、
平均相對(duì)豐度百分比與Child-Pugh評(píng)分呈負(fù)相關(guān),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(
<0.05)(見表3)。
2.3.1 差異物種比較:在屬水平,肝硬化失代償期組
__
、
、
平均相對(duì)豐度百分比小于肝硬化代償期組(
=0.004、0.029、0.004),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;
、
平均相對(duì)豐度百分比大于肝硬化代償期組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(
=0.003、0.001)(見圖3)。
2.2.2 腸型分析:腸道菌群以
(埃希氏菌屬)為主的人群罹患肝硬化的風(fēng)險(xiǎn)是腸道菌群以
(普氏菌屬)為主的人群的5.28倍(
<0.05)(見圖2、表1)。因此可以推測(cè),腸型Ⅰ(
)是罹患肝硬化的危險(xiǎn)因素。
在屬水平,肝硬化并發(fā)腹水組
__
、
平均相對(duì)豐度百分比小于肝硬化未并發(fā)腹水組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(
=0.025、0.001);
、
平均相對(duì)豐度百分比大于肝硬化未并發(fā)腹水組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(
=-0.002、0.047)(見圖7)。
在此次提交的報(bào)告中,有一個(gè)來(lái)自O(shè)ECD國(guó)家和中國(guó)的稅收和轉(zhuǎn)移支付前后基尼系數(shù)變化的圖表,采用的是2000年-2010年OECD國(guó)家和中國(guó)的數(shù)據(jù)。從表中可以看出,在稅收和轉(zhuǎn)移支付之前,除希臘與德國(guó)以外,各國(guó)基尼系數(shù)都在0.4以上,超過(guò)警戒線,于是各國(guó)都采取了稅收和轉(zhuǎn)移支付政策(如補(bǔ)貼),在這10年的區(qū)間內(nèi),大部分國(guó)家通過(guò)減稅和補(bǔ)貼,基尼系數(shù)都有明顯的下降,甚至降到警戒線以下。只有中國(guó)僅從0.443降至0.41,調(diào)節(jié)作用微乎其微。
2.2.1 差異物種比較:在屬水平,肝硬化組
(普氏菌屬)、
(糞棲桿菌屬)、
(羅斯拜瑞氏菌屬)、
__
(瘤胃球菌科下的未知屬)平均相對(duì)豐度百分比小于健康對(duì)照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(
=0.042、0.000、0.000、0.013);
(埃希氏菌屬
志賀氏菌屬)、
(鏈球菌屬)平均相對(duì)豐度百分比大于健康對(duì)照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(
=0.023、1.702×10
)(見圖1)。
表2是2004—2018年國(guó)內(nèi)移動(dòng)閱讀研究排名前10位的高被引文獻(xiàn),這些文獻(xiàn)主要來(lái)自于圖書情報(bào)學(xué)科領(lǐng)域,主題涉及移動(dòng)圖書館的應(yīng)用、移動(dòng)信息服務(wù)、移動(dòng)閱讀推廣、手機(jī)移動(dòng)閱讀等方面。高產(chǎn)作者茆意宏有3篇文章位列被引頻次前十名,其3篇高被引文章重點(diǎn)關(guān)注了手機(jī)移動(dòng)閱讀的過(guò)程及影響因素、圖書館移動(dòng)信息服務(wù)的現(xiàn)狀及需求滿足對(duì)策等。
2.4.3 腸型分析:腸道菌群以
(埃希氏菌屬)為主的肝硬化患者發(fā)展為Child-Pugh C級(jí)的風(fēng)險(xiǎn)是腸道菌群以
(普氏菌屬)為主的患者的7.2倍(
<0.05)(見圖6、表4)。因此可以推測(cè),腸型Ⅰ(
)是肝硬化患者發(fā)展為Child-Pugh C級(jí)的危險(xiǎn)因素。
(2)黃土凍融循環(huán)的相關(guān)研究中仍然存在一個(gè)問(wèn)題沒有攻克,即三場(chǎng)耦合的影響,該方面的相關(guān)研究結(jié)論較少,黃土體由于受到氣候、自重、其他附加荷載等多種因素影響,因此其自身溫度場(chǎng)、水分場(chǎng)、應(yīng)力場(chǎng)均處于動(dòng)態(tài)變化的狀態(tài)。同時(shí),由于沒有現(xiàn)實(shí)成果作為支持,這一研究沒能從現(xiàn)實(shí)角度解決問(wèn)題,對(duì)于該問(wèn)題未來(lái)將仍需要進(jìn)行研究,研究成果出現(xiàn)后才能解決困擾諸多專業(yè)學(xué)者的季節(jié)性凍土地區(qū)黃土災(zāi)害問(wèn)題。
腸道有100萬(wàn)億個(gè)微生物,有1 000~1 150種微生物群
。根據(jù)其功能大致可分為三類
:共生菌或益生菌,即專性厭氧的腸道優(yōu)勢(shì)菌,如乳酸菌、雙歧桿菌、擬桿菌等;共生菌即條件致病菌,如大腸埃希菌、腸球菌和鏈球菌等,其在適合數(shù)量時(shí)具有一定的生理功能,但達(dá)到一定數(shù)量時(shí)則致?。贿^(guò)路菌,多數(shù)具有致病性,如變形菌門、綠膿桿菌等,它們?cè)谖⑸鷳B(tài)環(huán)境保持平衡的情況下數(shù)量較少不致病,但在腸道菌群失調(diào)的情況下可轉(zhuǎn)化為致病菌。
越來(lái)越多的研究表明,腸道微生態(tài)的變化與肝硬化的發(fā)生及其發(fā)展密切相關(guān)。已有研究表明,肝硬化患者在腸道菌群構(gòu)成、菌群失調(diào)指數(shù)等方面與健康人均有顯著性差異
。本研究發(fā)現(xiàn),肝硬化患者腸道菌群存在微生態(tài)的失衡,如
的減少和
、
、
、
的增多。失代償性肝硬化組腸道菌群主要表現(xiàn)為
__
、
、
的減少及
、
的增多。另外,
和
的平均相對(duì)豐度百分比與Child-Pugh評(píng)分呈顯著正相關(guān),與既往研究
大致相同。膽汁酸代謝異常、小腸細(xì)菌過(guò)度生長(zhǎng)及小腸動(dòng)力紊亂、病理性細(xì)菌移位、內(nèi)毒素血癥、免疫防御受損是腸道菌群參與肝硬化發(fā)生發(fā)展的可能機(jī)制。
可產(chǎn)生膽酸鹽水解酶,參與膽汁酸的正常代謝過(guò)程。在肝硬化患者中可以觀察到膽汁酸的減少,從而導(dǎo)致如腸桿菌科等致病菌群和促炎微生物的過(guò)度生長(zhǎng)。而
可與
協(xié)同釋放內(nèi)毒素和炎癥因子,從而破壞腸道屏障功能
。革蘭氏陰性菌(尤其是大腸埃希菌)、腸球菌和鏈球菌最易轉(zhuǎn)移至腸系膜淋巴結(jié),尤其是大腸桿菌是肝硬化患者自發(fā)性細(xì)菌感染最常見的病原菌
。某些大腸埃希菌菌株在暴露于炎癥應(yīng)激時(shí),腸黏膜移位更為嚴(yán)重
。據(jù)統(tǒng)計(jì)
,Child-C級(jí)肝硬化患者病理性細(xì)菌移位的發(fā)生率是Child-A級(jí)和Child-B級(jí)患者的4~10倍。病理性移位的細(xì)菌可通過(guò)釋放細(xì)胞因子和一氧化氮引發(fā)炎性反應(yīng),加速肝硬化的發(fā)展。同時(shí),
的增加和
的減少可以抑制肝臟TLR4,進(jìn)一步導(dǎo)致膽汁酸減少,加重了腸道菌群紊亂等惡性循環(huán)
。
這些具有裝備背景的案例加入后,明顯提高了學(xué)員學(xué)習(xí)的興趣,也使老師可以由這些案例引出機(jī)械制造工藝知識(shí)點(diǎn),分析制造過(guò)程,加工缺陷防治,使課程案例式教學(xué)能順利開展。案例庫(kù)課堂應(yīng)用結(jié)果表明,案例庫(kù)的使用明顯提高了教學(xué)效果,課程內(nèi)容有了依托,有了支撐,不再空洞難懂;老師的授課更加生動(dòng)、高效。
短鏈脂肪酸(short chain fatty acids, SCFAs)是胃腸道中發(fā)酵膳食纖維的細(xì)菌產(chǎn)生的主要代謝產(chǎn)物,包括丁酸鹽、丙酸鹽、乙酸鹽等,其在腸道的上皮屏障、炎癥抑制、能量代謝等方面發(fā)揮了重要的作用。在腸道菌群中,
、
可產(chǎn)生乙酸鹽,
、
、
可產(chǎn)生丙酸鹽,
、
、
可產(chǎn)生丁酸鹽
。而Faecalibacterium能夠分泌具有抗炎特性的蛋白質(zhì)
。在本研究中我們觀察到,在肝硬化患者腸道菌群中,能夠產(chǎn)生SCFAs或抗炎物質(zhì)的菌群如
、
、
、
、
明顯減少,與Valerio等
的研究結(jié)果相一致。
(2)突發(fā)的大量漏漿,若是由于槽壁中的先天孔洞,應(yīng)馬上停止施工,并加大孔內(nèi)送漿量,以保持孔內(nèi)泥漿面的高度;然后挖出導(dǎo)墻外側(cè)對(duì)應(yīng)位置的土體,查找漏漿源頭進(jìn)行封堵,待處理完成后才能繼續(xù)進(jìn)行。
Santiago等
研究發(fā)現(xiàn),與無(wú)腹水的患者相比,肝硬化腹水患者的血清微生物中脂多糖結(jié)合蛋白水平較高(一種微生物易位的標(biāo)志)。在本研究中,肝硬化并發(fā)腹水患者的腸道菌群主要表現(xiàn)為
__
、
的減少及
、
的增多。這些致病菌與內(nèi)毒素血癥、病理性細(xì)菌移位有顯著相關(guān)性,其產(chǎn)生的大量?jī)?nèi)毒素通過(guò)受損的腸屏障進(jìn)入體循環(huán),激活肝臟Kupffer細(xì)胞,使之釋放大量促炎細(xì)胞因子,進(jìn)一步加重肝臟的損傷。因此,當(dāng)患者未合并明顯的自發(fā)性腹膜炎,預(yù)防性抗感染治療可能是需要的。
既往研究
根據(jù)腸道菌群相對(duì)豐度百分比的差異將人類腸道菌群類型分為三種,分別是腸型Ⅰ(
)、腸型Ⅱ(
)、腸型Ⅲ(
)。研究表明
,腸型與長(zhǎng)期飲食相關(guān),其中腸型Ⅰ富含擬桿菌屬,與蛋白與動(dòng)物脂肪為主的飲食結(jié)構(gòu)有關(guān);腸型Ⅱ中普氏菌屬豐度較高,與碳水化合物為主的飲食結(jié)構(gòu)有關(guān)。本研究通過(guò)分析發(fā)現(xiàn),肝硬化患者的腸型與健康人群不同,主要為腸型Ⅰ(
)、腸型Ⅱ(
)、腸型Ⅲ(
),并且研究發(fā)現(xiàn)腸道菌群結(jié)構(gòu)以
為主的個(gè)體更容易罹患肝硬化且更容易發(fā)展為嚴(yán)重的肝硬化,而以
為主的腸道菌群結(jié)構(gòu)似乎是肝硬化的保護(hù)因素,研究表明
,以消耗碳水化合物的偏素飲食者的腸道菌群中,
占主導(dǎo)地位。但是否能夠運(yùn)用腸型預(yù)測(cè)肝硬化的罹患風(fēng)險(xiǎn)及作為肝硬化進(jìn)展的參考生物標(biāo)志物,是否提倡肝硬化患者以碳水化合物為主食的飲食結(jié)構(gòu)需要進(jìn)一步研究證明。
在本研究中,我們通過(guò)16s rDNA測(cè)序技術(shù)對(duì)肝硬化患者腸道微生物群進(jìn)行初步分析發(fā)現(xiàn),有益菌群的減少而潛在致病菌的增加是肝硬化患者腸道菌群的特征,且此特征與肝硬化的嚴(yán)重程度呈明顯的正相關(guān)。但本研究納入的例數(shù)尚較少,肝硬化患者及健康志愿者均來(lái)自福建省立醫(yī)院,因此還需要大樣本多中心的研究。
[1] Byass P. The global burden of liver disease: a challenge for methods and for public health [J]. BMC Med, 2014, 12: 159. DOI: 10.1186/s12916-014-0159-5.
[2] Mokdad AA, Lopez AD, Shahraz S, et al. Liver cirrhosis mortality in 187 countries between 1980 and 2010: a systematic analysis [J]. BMC Med, 2014, 12: 145. DOI: 10.1186/s12916-014-0145-y.
[3] B?ckhed F, Ley RE, Sonnenburg JL, et al. Host-bacterial mutualism in the human intestine [J]. Science, 2005, 307(5717): 1915-1920. DOI: 10.1126/science.1104816.
[4] Chen DC. Gut microbiota and intestinal decolonization of pathogenic microorganisms [J]. Chin Med J (Engl), 2016, 129(14): 1639-1642. DOI: 10.4103/0366-6999.185872
[5] Santiago A, Pozuelo M, Poca M, et al. Alteration of the serum microbiome composition in cirrhotic patients with ascites [J]. Sci Rep, 2016, 6: 25001. DOI: 10.1038/srep25001.
[6] Liu Y, Jin Y, Li J, et al. Small bowel transit and altered gut microbiota in patients with liver cirrhosis [J]. Front Physiol, 2018, 9: 470. DOI: 10.3389/fphys.2018.00470.
[7] Qin N, Yang F, Li A, et al. Alterations of the human gut microbiome in liver cirrhosis [J]. Nature, 2014, 513(7516): 59-64. DOI: 10.1038/nature13568.
[8] Bajaj JS, Betrapally NS, Gillevet PM. Decompensated cirrhosis and microbiome interpretation [J]. Nature, 2015, 525(7569): E1-E2. DOI: 10.1038/nature14851.
[9] Bajaj JS, Heuman DM, Hylemon PB, et al. Altered profile of human gut microbiome is associated with cirrhosis and its complications [J]. J Hepatol, 2014, 60(5): 940-947. DOI: 10.1016/j.jhep.2013.12.019.
[10] Mashima I, Nakazawa F. The influence of oral Veillonella species on biofilms formed by Streptococcus species [J]. Anaerobe, 2014, 28: 54-61. DOI: 10.1016/j.anaerobe.2014.05.003.
[11] Bert F, Johnson JR, Ouattara B, et al. Genetic diversity and virulence profiles of escherichia coli isolates causing spontaneous bacterial peritonitis and bacteremia in patients with cirrhosis [J]. J Clin Microbiol, 2010, 48(8): 2709-2714. DOI: 10.1128/JCM.00516-10.
[12] Riordan SM, Williams R. The intestinal flora and bacterial infection in cirrhosis [J]. J Hepatol, 2006, 45(5): 744-757. DOI: 10.1016/j.jhep.2006.08.001.
[13] Macutkiewicz C, Carlson G, Clark E, et al. Characterisation of Escherichia coli strains involved in transcytosis across gut epithelial cells exposed to metabolic and inflammatory stress [J]. Microbes Infect, 2008, 10(4): 424-431. DOI: 10.1016/j.micinf.2008.01.001.
[14] Ljungdahl M, Lundholm M, Katouli M, et al. Bacterial translocation in experimental shock is dependent on the strains in the intestinal flora [J]. Scand J Gastroenterol, 2000, 35(4): 389-397. DOI: 10.1080/003655200750023958.
[15] Wiest R, Lawson M, Geuking M. Pathological bacterial translocation in liver cirrhosis [J]. J Hepatol, 2014, 60(1): 197-209. DOI: 10.1016/j.jhep.2013.07.044.
[16] Acharya C, Bajaj JS. Altered microbiome in patients with cirrhosis and complications [J] .Clin Gastroenterol Hepatol, 2019, 17(2): 307-321. DOI: 10.1016/j.cgh.2018.08.008.
[17] Macfarlane GT, Macfarlane S. Bacteria, colonic fermentation, and gastrointestinal health [J]. J AOAC Int, 2012, 95(1): 50-60. DOI: 10.5740/jaoacint.sge_macfarlane.
[18] Serpa J, Caiado F, Carvalho T, et al. Butyrate-rich colonic microenvironment is a relevant selection factor for metabolically adapted tumor cells [J]. J Bio Chem, 2010, 285(50): 39211-39223. DOI: 10.1074/jbc.M110.156026.
[19] Quévrain E, Maubert MA, Michon C, et al. Identification of an anti-inflammatory protein from Faecalibacterium prausnitzii, a commensal bacterium deficient in Crohn’s disease [J]. Gut, 2016, 65(3): 415-425. DOI: 10.1136/gutjnl-2014-307649.
[20] Iebba V, Guerrieri F, Di Gregorio V, et al. Combining amplicon sequencing and metabolomics in cirrhotic patients highlights distinctive microbiota features involved in bacterial translocation, systemic inflammation and hepatic encephalopathy [J]. Sci Rep, 2018, 8(1): 8210. DOI: 10.1038/s41598-018-26509-y.
[21] Falony G, Joossens M, Vieira-Silva S, et al. Population-level analysis of gut microbiome variation [J]. Science, 2016, 352(6285): 560-564. DOI: 10.1126/science.aad3503.
[22] Sheflin AM, Melby CL, Carbonero F, et al. Linking dietary patterns with gut microbial composition and function [J]. Gut Microbes, 2017, 8(2): 113-129. DOI:10.1080/19490976.2016.1270809.
[23] Wu GD, Chen J, Hoffmann C, et al. Linking long-term dietary patterns with gut microbial enterotypes [J]. Science, 2011, 334(6052): 105-108. DOI: 10.1126/science.1208344.