唐文秀，王學明，郭亮，季立豪，高聰，陳修來，劉立明

（1 江南大學食品科學與技術(shù)國家重點實驗室，江蘇 無錫 214122；2 江南大學國際食品安全聯(lián)合實驗室，江蘇 無錫 214122）

琥珀酸作為一種重要的四碳二羧酸，被廣泛應(yīng)用于食品、化學、制藥以及農(nóng)業(yè)領(lǐng)域。由于其廣泛的應(yīng)用價值，2002 年被美國能源部列為12 種大宗化學品之首。由于化學合成法生產(chǎn)琥珀酸存在反應(yīng)條件苛刻、原料不可再生以及環(huán)境污染等弊端，近年來以微生物細胞工廠利用可再生資源生產(chǎn)琥珀酸受到了越來越多的關(guān)注。產(chǎn)琥珀酸放線桿菌、產(chǎn)琥珀酸曼氏桿菌、釀酒酵母和大腸桿菌等都被經(jīng)過代謝工程改造生產(chǎn)琥珀酸。其中，由于大腸桿菌遺傳背景清晰、基因改造工具成熟以及營養(yǎng)需求簡單等優(yōu)點，受到了廣泛關(guān)注。

在大腸桿菌中，存在三種琥珀酸生物合成途徑：還原性三羧酸途徑（reductive tricarboxylic acid pathway，r-TCA）、三羧酸途徑（tricarboxylic acid pathway，TCA）和乙醛酸途徑。r-TCA是合成琥珀酸的主要途徑，由于受到胞內(nèi)煙酰胺腺嘌呤二核苷酸（NADH）的限制，琥珀酸的產(chǎn)率僅為1mol/mol葡萄糖。在乙醛酸循環(huán)中，由乙酰CoA和草酰乙酸轉(zhuǎn)化為琥珀酸和蘋果酸，琥珀酸的產(chǎn)率為1.25mol/mol葡萄糖。有研究表明，在厭氧條件下，激活r-TCA途徑和乙醛酸途徑，并保持胞內(nèi)氧化還原電位平衡，琥珀酸的最大理論得率為1.12g/g 葡萄糖（1.71mol/mol葡萄糖）；在有氧條件下，琥珀酸的最大理論得率為1.0mol/mol葡萄糖。

目前，代謝工程改造大腸桿菌提高琥珀酸得率的策略主要包括以下四種。①阻斷冗余代謝支路。Jantama 等通過阻斷副產(chǎn)物路徑并結(jié)合適應(yīng)性進化，獲得工程菌KJ134，可以產(chǎn)71.5g/L琥珀酸，得率為1.53mol/mol 葡萄糖。②強化C～C的羧化過程。在琥珀酸生物合成過程中，C中間體（磷酸烯醇丙酮酸或丙酮酸）通過固定一分子CO到C中間體（草酰乙酸或蘋果酸），是琥珀酸生物合成的關(guān)鍵步驟。加強羧化反應(yīng)主要包括過表達本源羧化酶（包括磷酸烯醇丙酮酸羧化酶和蘋果酸酶）或過表達異源羧化酶（包括磷酸烯醇丙酮酸羧激酶或丙酮酸羧化酶）等。例如，通過在AFP111中過表達丙酮酸羧化酶可使琥珀酸產(chǎn)量提高到99.2g/L。優(yōu)化和基因的表達，Tang1683 的琥珀酸產(chǎn)量提高到92.7g/L。③提供充足的還原力和能量。增加還原力NADH的供給主要策略為：表達丙酮酸脫氫酶（FDH）和改造戊糖磷酸途徑，提高能量的供給策略主要為：過表達磷酸烯醇式丙酮酸羧激酶，將磷酸烯醇式丙酮酸羧化為草酰乙酸的同時生成一分子ATP。④控制氧化還原的平衡。由于菌株NZN111（ΔA，ΔB）的NADH/NAD比例失衡，在厭氧條件不能有效利用葡萄糖，梁麗亞等過表達蘋果酸脫氫酶，降低胞內(nèi)NADH/NAD比例，提高了細胞在厭氧條件下代謝葡萄糖的能力與琥珀酸的合成能力。

盡管上述策略可以提高琥珀酸的得率，但是在琥珀酸發(fā)酵過程中仍存在乙酸、乙醇、乳酸和丙酮酸等副產(chǎn)物積累，抑制細胞生長，降低琥珀酸的得率，同時增加了琥珀酸下游提取的成本。為此，本研究通過復(fù)合誘變篩選一株能夠耐受0.9mol/L NaCl 的突變菌株FMME-N-2，隨后采用基因敲除、輔因子調(diào)控、發(fā)酵優(yōu)化等策略降低了副產(chǎn)物的積累，最后在30L 發(fā)酵罐中菌株FMME-N-26 生產(chǎn)111.9g/L 琥珀酸，得率為1.11g/g葡萄糖（理論得率的99%），為琥珀酸的工業(yè)化生產(chǎn)奠定了基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 菌種和質(zhì)粒

本研究使用的大腸桿菌JM109 和FMME-N分別用于表達載體的構(gòu)建和生產(chǎn)菌株，F(xiàn)MME-N 從駱駝瘤胃中分離，經(jīng)4 輪ARTP 誘變所得，本實驗室篩選與保藏，保藏編號CCTCC M2018568。其中本研究所使用的基因工程菌和重組質(zhì)粒如表1所示。

表1 本研究所使用的菌種和質(zhì)粒

1.1.2 主要儀器和試劑

PCR儀、全自動凝膠成像系統(tǒng)、電轉(zhuǎn)儀、核酸電泳儀；紫外可見分光光度計；M-100 生物傳感器；高效液相色譜儀；厭氧培養(yǎng)箱；滲透壓儀。

限制性內(nèi)切酶、Prime Star高保真酶、Taq DNA聚合酶、TDNA連接酶、DNA marker，大連寶生物工程公司；一步同源重組酶，南京諾唯贊生物科技有限公司；細菌基因組提取試劑盒、質(zhì)粒提取試劑盒、膠回收試劑盒、產(chǎn)物純化試劑盒、氨芐青霉素、硫酸卡那霉素、氯霉素、阿拉伯糖、異丙基硫代半乳糖苷（IPTG），生工生物工程（上海）公司；琥珀酸、乳酸、乙酸、甲酸，Sigma 公司；碘化丙啶（PI）、溴甲酚紫，上海阿拉丁生化科技股份有限公司；PCR引物由蘇州金唯智生物科技有限公司合成；其他試劑來自國藥集團化學試劑有限公司。

1.1.3 培養(yǎng)基

本研究所用培養(yǎng)基及其抗生素如表2所示。

表2 本研究所用的培養(yǎng)基及其抗生素

1.2 實驗方法

1.2.1 培養(yǎng)條件

（1）平板培養(yǎng) 取保存于-80℃裝有菌液的甘油管三區(qū)劃線于LB 固體培養(yǎng)基中，在培養(yǎng)箱中37℃倒置培養(yǎng)16h，得到大小均勻的單菌落。

（2）種子培養(yǎng)方法 一級種子培養(yǎng)，挑取平板上大小均勻的單菌落，接種于25mL/100mL 的液體LB 培養(yǎng)基中，37℃、200r/min 培養(yǎng)9h；二級種子培養(yǎng)，將一級種子液轉(zhuǎn)接100μL 至裝有50mL/500mL的LB培養(yǎng)基中，37℃、200r/min培養(yǎng)7h。

（3）厭氧搖瓶發(fā)酵 按照1%（體積比）的接種量將一級種子培養(yǎng)液接種于裝有80mL 發(fā)酵培養(yǎng)基的500mL 三角瓶中。有氧階段：37℃、200r/min培養(yǎng)12h，迅速倒入100mL無菌厭氧瓶中，同時加入10g/L KHCO和4g MgCO用于控制pH，發(fā)酵條件為38℃、200r/min。在厭氧階段發(fā)酵過程中，每隔12h添加800g/L的葡萄糖維持發(fā)酵液的葡萄糖濃度在10～20g/L，同時添加碳酸鎂維持發(fā)酵液的pH在6.2以上，發(fā)酵至72h結(jié)束。

（4）兩階段發(fā)酵培養(yǎng)方法 采用3.6L發(fā)酵罐進行兩階段補料分批發(fā)酵。發(fā)酵罐初始裝液量為2L。將二級種子液按總體積10%（體積比）的接種量接種至發(fā)酵培養(yǎng)基中，開始有氧發(fā)酵。有氧階段：初始轉(zhuǎn)速為400r/min，通氣量為1.5vvm（vvm 表示每分鐘通氣量與罐體實際料液體積的比值），溫度37℃，pH 為7.0。發(fā)酵過程中流加氨水控制pH 至7.0；培養(yǎng)8h 左右，溶氧（dissolved oxygen，DO）上升，20g/L 的初始葡萄糖消耗完全，啟動自動補料模式；約8.5h，停止通氣，降低轉(zhuǎn)速至200r/min，補加10g/L KHCO使其短時間內(nèi)產(chǎn)生大量CO轉(zhuǎn)為厭氧發(fā)酵，同時降低葡萄糖補料速率；厭氧階段發(fā)酵條件：發(fā)酵溫度38℃，轉(zhuǎn)速200r/min，自動控制優(yōu)化不同的補料速率，并利用2mol/L NaCO+0.5mol/L NaOH控制發(fā)酵pH=6.5，發(fā)酵至72h結(jié)束。

1.2.2 ARTP（atmospheric and room temperature plasma）與Co-γ射線復(fù)合誘變及菌株篩選

吸取10μL 菌懸液滴在無菌金屬載片中央，置于ARTP 育種機，處理條件詳見表3。將誘變處理后的載片放入裝有990μL無菌生理鹽水的1.5mL離心管中，渦旋振蕩儀振蕩菌體2～3min，徹底洗脫菌體，轉(zhuǎn)接入裝有50mL 種子培養(yǎng)基的500mL 三角瓶中，37℃、200r/min 培養(yǎng)9h，適當稀釋后取100μL 涂布于固體篩選培養(yǎng)基，置于充滿CO氣體的厭氧培養(yǎng)箱中37℃培養(yǎng)24～36h。

表3 ARTP處理條件

將由ARTP誘變后篩選得到的突變株制備菌懸液分置于4 個10mL 離心管中，每管8mL，直接進行γ 射線處理，輻照劑量分別為0、0.2kGy、0.4kGy 和0.6kGy，適當稀釋輻照后的菌懸液，取100μL 涂布于固體篩選培養(yǎng)基，置于充滿CO氣體的厭氧培養(yǎng)箱中37℃恒溫培養(yǎng)24～36h。以值為指標[值=變色圈直徑（mm）/菌落直徑（mm）×菌 落 培 養(yǎng) 時 間（h）]， 從 含 有0.9mol/L NaCl（2191mOsmol/L）的高滲固體篩選平板上挑選具有較高值的單菌落于裝有80mL 種子培養(yǎng)基的100mL厭氧瓶中，搖瓶發(fā)酵驗證篩選出琥珀酸生產(chǎn)能力較出發(fā)菌株優(yōu)良的突變株重復(fù)進行厭氧搖瓶發(fā)酵驗證3次，所得發(fā)酵液進行琥珀酸產(chǎn)量的分析檢測，生產(chǎn)能力最優(yōu)的菌株即為篩選得到的最佳突變株。將經(jīng)過復(fù)合誘變篩選得到的最優(yōu)突變株進行4～20代傳代培養(yǎng)，分析琥珀酸的產(chǎn)量變化。

1.2.3 基因敲除與菌株構(gòu)建

采用同源重組技術(shù)對FMME-N-2進行基因敲除。采用酶切連接及同源重組方式構(gòu)建所有載體。為了構(gòu)建輔因子循環(huán)路徑，采用PCR 擴增方式克隆PCK和PCK。本研究所用引物如表4所示。

表4 本研究所使用的引物

1.2.4 分析檢測方法

（1）細胞濃度測定 取發(fā)酵液適當稀釋，使用紫外分光光度計在波長600nm的條件下測定OD。大腸桿菌細胞干重（dry cell weight, DCW）=0.41×吸光值×（為樣品的稀釋倍數(shù)），最后計算細胞的生物量。

（2）葡萄糖濃度測定 取發(fā)酵液12000r/min離心8min，收集上清液進行適當稀釋，使用M-100生物傳感器測定葡萄糖濃度（準確測量范圍0～2g/L）。

（3）滲透壓濃度測定 將發(fā)酵液12000r/min離心8min 收集上清液，利用SMC-30D 滲透壓儀進行測定。測量范圍0～3000mOsmol/L。

（4）輔因子（ATP、NAD和NADH 總量）測定 取不同時間的發(fā)酵液，用PBS 溶液洗滌三次，都稀釋至OD=1.0 左右，使用ATP 檢測試劑盒S0027以及NADH檢測試劑盒（WST-8法）進行測定（上海碧云天生物科技有限公司）。

（5）細胞死亡率測定 取1mL發(fā)酵液用PBS溶液洗滌2次后，然后用1mL PBS溶液重懸并且稀釋至OD=0.6 左右，加入3μL/mL 的碘化丙啶溶液（PI），室溫下避光反應(yīng)15min，用流式細胞儀（BD FACS Aria Ⅲ）進行檢測。檢測通道：PerCP-Cy5.5（488nm激發(fā)激光EL,695/40nm檢測濾波器EF）。

（6）有機酸濃度測定 取發(fā)酵液12000r/min離心8min，收集上清液，高效液相色譜（HPLC）測定琥珀酸、乳酸、甲酸和乙酸的含量。HPLC檢測條件為，色譜分離柱為Aminex HPX-87H（300×7.8mm），流動相為5mmol/L 稀硫酸，柱溫52℃，檢測器為紫外檢測器，進樣量10μL，流速0.6mL/min。

2 結(jié)果與討論

2.1 耐高滲突變株的篩選

為了研究出發(fā)菌株FMME-N的琥珀酸生產(chǎn)性能，在3.6L發(fā)酵罐中進行發(fā)酵實驗，發(fā)現(xiàn)琥珀酸產(chǎn)量為35.6g/L，得率為0.62g/g葡萄糖。同時，發(fā)酵液的滲透壓增加到1932mOsmol/L，琥珀酸生產(chǎn)強度降低至0.56g/(L·h)（圖1）。為了評價滲透壓對菌株FMME-N生長能力和生產(chǎn)能力的影響，不同滲透壓條件下，測試了細胞生長和琥珀酸生產(chǎn)的情況[ 圖 2(a)]。 結(jié) 果 表 明， 在 0.9mol/L NaCl（2191mOsmol/L）下，細胞生長受到了顯著抑制。在不添加NaCl 的情況下，琥珀酸的最高產(chǎn)量為22.7g/L，隨著培養(yǎng)基中滲透壓的增加，琥珀酸產(chǎn)量逐漸降低，當添加滲透壓為2192mOsmol/L時，琥珀酸產(chǎn)量降至3.1g/L。因此，高滲透壓會抑制FMMEN的生長和琥珀酸的合成，提高菌株FMME-N對滲透壓的耐受性可能會提高琥珀酸的產(chǎn)量。

圖1 E.coli FMME-N在3.6L發(fā)酵罐中的發(fā)酵曲線變化

為了提高菌株FMME-N 對滲透壓的耐受性，選用ARTP 和Co-γ復(fù)合誘變策略進行誘變處理并在含有0.9mol/L NaCl 的平板上篩選（滲透壓為2219mOsmol/L）。首先，經(jīng)過ARTP誘變，從400多個菌落中篩選出40 株值較高的菌株。經(jīng)發(fā)酵驗證，突變菌株FMME-N-1 的琥珀酸產(chǎn)量提高至27.3g/L。隨后，利用Co-γ 射線對FMME-N-1 處理，從300 多個菌落中選擇值較高的27 個菌落。經(jīng)發(fā)酵驗證，突變菌株FMME-N-2 可產(chǎn)生32.4g/L琥珀酸，較出發(fā)菌株FMME-N 提高了48.6%[圖2(b)]。最終，以琥珀酸產(chǎn)量為指標，對菌株FMME-N-2進行4-20代遺傳穩(wěn)定性檢驗。搖瓶結(jié)果顯示：菌株FMME-N-2的琥珀酸產(chǎn)量不僅優(yōu)于出發(fā)菌株FMME-N，并且琥珀酸產(chǎn)量變化幅度?。ū?），說明菌株FMME-N-2具有良好的遺傳穩(wěn)定性，因此，被選作下一步基因操作的菌株。

表5 FMME-N-2突變株的遺傳穩(wěn)定性

為了驗證突變菌株FMME-N-2 的耐高滲透壓能力是否提高，從生長、菌體死亡率、細胞形態(tài)以及發(fā)酵性能4 個方面進行了比較分析。①在不含NaCl時，F(xiàn)MME-N-2的最終細胞濃度（OD=13.5）較 出 發(fā) 菌 株FMME-N （OD=12.2） 提 高10.7%[圖2(c)]；在0.9mol/L NaCl 下，F(xiàn)MME-N 菌株的生物量（OD）下降至1.5，然而菌株FMME-N-2 的生長情況基本保持不變[圖2(c)、(d)]。②菌株FMME-N在發(fā)酵結(jié)束時（滲透壓為2232mOsmol/L），約有79.3%的細胞死亡，然而FMME-N-2的死亡率為45.3%[圖2(e)]。③發(fā)酵結(jié)束時，菌株FMME-N-2的細胞表面比FMME-N 更完整[圖2(f)]。④菌株FMME-N-2 的生物量、琥珀酸產(chǎn)量、得率和生產(chǎn)強度分別為40.5、51.8g/L、0.70g/g 葡萄糖和0.81g/(L·h)，與 菌 株FMME-N 相 比 分 別 提 高 了14.7%、45.5%、12.9%和51.7%[圖2(g)]。上述結(jié)果表明，增強菌株FMME-N-2 的滲透壓耐受性，提高了琥珀酸的產(chǎn)量。

圖2 耐高滲琥珀酸生產(chǎn)菌株的篩選與表征

2.2 阻斷冗余代謝支路提高琥珀酸得率

在厭氧條件下，葡萄糖經(jīng)糖酵解途徑生成的磷酸烯醇丙酮酸（PEP）是琥珀酸合成的關(guān)鍵節(jié)點，PEP不僅能通過r-TCA路徑轉(zhuǎn)化為琥珀酸，同時也可以轉(zhuǎn)化為乳酸、甲酸、乙酸和乙醇等副產(chǎn)物[圖3(a)]。在研究中發(fā)現(xiàn)，菌株FMME-N-2 經(jīng)72h發(fā)酵積累18.8g/L 乳酸、7.6g/L 甲酸和17.3g/L 乙酸[圖3(g)]，導(dǎo)致琥珀酸得率為0.70g/g 葡萄糖（占琥珀酸理論得率的64.3%）。為了提高琥珀酸得率，單獨或組合敲除A、BA、、A基因，獲得10 株基因工程菌株[圖3(b)]。其中，菌株FMME-N-10（FMME-N-2ΔBAΔAΔ）的生物量降低了14.1%[圖3(c)]，但琥珀酸產(chǎn)量提高至52.6g/L，得率提高到0.87g/g 葡萄糖。與此同時，乳酸和甲酸的積累量分別降低至1.5g/L和3.4g/L[圖3(d)、(e)]。但是，副產(chǎn)物乙酸的濃度增加至18.2g/L[圖3(e)]。

為了進一步減少副產(chǎn)物乙酸的積累，敲除乙酸合成路徑的相關(guān)基因D（編碼丙酸激酶）和E（a-酮丁酸甲酸酯裂解酶），構(gòu)建了菌株FMME-N-13（FMME-N-10ΔDE）。在搖瓶條件下，琥珀酸產(chǎn)量為61.1g/L，乙酸降低了22.1%；在3.6L發(fā)酵罐中，發(fā)現(xiàn)副產(chǎn)物大大降低，僅有0.6g/L乳酸、3.6g/L甲酸和12.3g/L乙酸積累[圖3(f)]，而琥珀酸的產(chǎn)量、得率和生產(chǎn)強度分別提高了72.9% （89.6g/L），31.4%（0.92g/g 葡萄糖）和72.8%[1.40g/(L·h)]。上述結(jié)果表明，阻斷副產(chǎn)物的積累對提高琥珀酸的產(chǎn)量和得率至關(guān)重要。

圖3 基因敲除菌株的構(gòu)建與評估

2.3 輔因子工程提高琥珀酸的得率

盡管通過阻斷冗余代謝支路提高了琥珀酸得率，但琥珀酸的實際得率（0.92g/g葡萄糖）與琥珀酸理論得率（1.12g/g葡萄糖）相比，仍有很大的提升空間。分析發(fā)現(xiàn)，可能是由于：①胞內(nèi)NADH的缺乏，導(dǎo)致琥珀酸得率低；②胞內(nèi)能量供應(yīng)不足，乙酸合成途徑與ATP 合成途徑偶聯(lián)，導(dǎo)致乙酸積累。為此，測定了菌株FMME-N-13在發(fā)酵過程中胞內(nèi)ATP、NADH和NADH/NAD的變化情況。結(jié)果表明，胞內(nèi)的ATP、NADH和NADH/NAD含量分別降 低 至1.22μmol/gDCW、20.2μmol/gDCW 和0.23[圖4(a)]。

為了增強ATP和NADH的供給，構(gòu)建了輔因子再生系統(tǒng)，以提高胞內(nèi)ATP 和NADH 的濃度。在FMME-N-13菌株中單獨或組合過表達產(chǎn)琥珀酸放線桿菌的ADP 依賴型PEP 羧激酶（PCK）和博伊丁假絲酵母的NAD依賴型的甲酸脫氫酶（FDH）[圖4(b)]。在搖瓶條件下：①過表達PCK，使菌株FMME-N-14 的琥珀酸產(chǎn)量和得率分別提高到67.9g/L 和1.01g/g 葡萄糖，同時胞內(nèi)ATP的濃度提高至1.53μmol/gDCW，乙酸濃度降低至9.6g/L；②過表達FDH，使菌株FMME-N-15的琥珀酸產(chǎn)量和得率也有所提高，同時胞內(nèi)NADH的濃度提高了27.0%，且?guī)缀鯖]有甲酸積累；③同時過表達PCK和FDH，使胞內(nèi)的ATP和NADH濃度均有所提高，但是琥珀酸的產(chǎn)量和得率都沒有明顯提高，可能是菌株FMME-N-16 中NADH/NAD過高（0.47），導(dǎo)致氧化還原失衡限制了菌株代謝和琥珀酸生產(chǎn)[圖4(d)、(e)、(f)]。

為了進一步提高琥珀酸的產(chǎn)量和得率，以綠色熒光蛋白為報告基因，將RBS10、RBS09和RBS03分為高、中和低三個水平。借助不同的RBS 將PCK 和FDH 表達水平控制在高（H）、中（M）和低（L）三個水平，構(gòu)建了9 株基因工程菌[圖4(c)]。經(jīng)發(fā)酵測試，當PCK 和FDH 都低水平表達 時，菌 株FMME-N-24 （L-PCK-L-FDH）能獲得最高的琥珀酸產(chǎn)量（74.2g/L），得率為1.04g/g葡萄糖，較出發(fā)菌株FMME-N-13分別提高了21.4%和13.0%[圖4(d)]。同時，胞內(nèi)的ATP、NADH 和NADH/NAD分別提高了26.4%、49.2%和47.8%[圖4(f)]。此外，乙酸濃度降低至8.4g/L，且?guī)缀鯖]有乳酸和甲酸積累[圖4(e)]。為了提高重組菌株在工業(yè)發(fā)酵中的穩(wěn)定性，通過同源重組將片段L-PCK-L-FDH 整 合 至 菌 株FMME-N-13 基 因組的PCK 基因處，構(gòu)建菌株FMME-N-26。最終，菌株FMME-N-26的琥珀酸產(chǎn)量為73.9g/L，得率為1.04g/g 葡萄糖。上述結(jié)果表明，優(yōu)化PCK和FDH 的表達能提高胞內(nèi)輔因子的供應(yīng)量，進而提高琥珀酸產(chǎn)量。

圖4 調(diào)控AsPCK與CbFDH的表達優(yōu)化輔因子含量

2.4 發(fā)酵條件優(yōu)化提高琥珀酸的產(chǎn)量

為了驗證最優(yōu)菌株FMME-N-26 的生產(chǎn)潛力，在3.6L發(fā)酵罐中發(fā)酵72h，琥珀酸產(chǎn)量為101.4g/L，得率和生產(chǎn)強度分別為1.05g/g葡萄糖和1.58g/(L·h)。與菌株FMME-N-13 相比分別提高了13.2%、14.1%和12.9%。但是，仍然有5.5g/L 乙酸積累[圖5(a)、(e)]。

為了進一步降低乙酸的濃度，利用限制性補糖策略對發(fā)酵液中葡萄糖濃度進行了控制與優(yōu)化。結(jié)果表明：①副產(chǎn)物乙酸濃度隨著葡萄糖濃度的增加而增加，當發(fā)酵液中葡萄糖濃度從10～15g/L 增加到20g/L時，乙酸濃度從5.5g/L增加到9.7g/L，琥珀酸得率降低至0.98g/g 葡萄糖[圖5(b)、(d)、(e)]；②通過恒pH策略控制發(fā)酵液的葡萄糖濃度處于0，雖然乙酸濃度降低至2.4g/L，但是琥珀酸產(chǎn)量也降低至92.1g/L[圖5(b)、(d)、(e)]，說明較低的葡萄糖濃度不能滿足細胞的代謝需求；③通過自動補料將厭氧階段發(fā)酵液葡萄糖濃度維持在0～5g/L，使琥珀酸的產(chǎn)量、產(chǎn)率和生產(chǎn)強度分別達到112.5g/L、1.11g/g葡萄糖和1.76g/(L·h)，相較于控制發(fā)酵液葡萄糖濃度10～15g/L 分別提高了10.9%、5.7%和11.4%。同時，副產(chǎn)物乙酸濃度降低至2.8g/L[圖5(b)、(d)、(e)]。最后，在最優(yōu)發(fā)酵條件下，放大至30L發(fā)酵罐進行琥珀酸生產(chǎn)，最終琥珀酸的濃度、得率和生產(chǎn)強度分別為111.9g/L、1.11g/g葡萄糖和1.75g/(L·h)，副產(chǎn)物乙酸降低至1.6g/L，同時幾乎沒有甲酸或乳酸積累[圖5(c)、(e)]。上述結(jié)果表明，通過發(fā)酵條件優(yōu)化，有助于降低乙酸的積累，進而提高琥珀酸的產(chǎn)量和得率，同時減少琥珀酸下游分離提取成本，具有良好的工業(yè)化潛力。

圖5 菌株FMME-N-26的兩階段發(fā)酵結(jié)果

3 結(jié)論

（1）篩選具有耐高滲的工程菌株有助于增強微生物細胞工廠的魯棒性，提高琥珀酸的產(chǎn)量。在有機酸發(fā)酵過程中，需要添加堿性物質(zhì)維持發(fā)酵液的pH 在最適范圍內(nèi)。但是，添加的堿性物質(zhì)以及積累的產(chǎn)物會導(dǎo)致發(fā)酵液的滲透壓不斷升高，導(dǎo)致大腸桿菌活力下降甚至死亡，影響琥珀酸生產(chǎn)效率。為了獲得能耐受高滲透壓的菌株，發(fā)展了多種代謝工程策略：①反向代謝工程結(jié)合適應(yīng)性進化；②添加滲透壓保護劑，如甜菜堿、海藻糖和含硫氨基酸；③對全局轉(zhuǎn)錄因子進行突變；④誘變策略等。例如，在初始高葡萄糖濃度（120g/L）所引起的高滲透條件下，外源添加滲透壓保護劑半胱氨酸可使細胞生長速度提高56%，琥珀酸產(chǎn)量提高了102%。本文采用ARTP和Co-γ 射線復(fù)合誘變策略篩選得到一株耐0.9mol/L NaCl 菌株，琥珀酸產(chǎn)量提高了45.5%達到51.8g/L，該策略改變了菌體的基因特性不需要外源添加抗生素等物質(zhì)降低了生產(chǎn)成本。

（2）副產(chǎn)物會競爭琥珀酸合成路徑的碳流，降低琥珀酸得率。阻斷副產(chǎn)物積累的方法主要是敲除副產(chǎn)物路徑的基因，這一方法已成功用于大腸桿菌（）、釀 酒 酵 母（）、谷 氨 酸棒桿菌（）和產(chǎn)琥珀酸厭氧螺菌（）等。然而，基因敲除可能會降低細胞的生長速率或改變胞內(nèi)的NADH/NAD值。例如，敲除A 和B 基因后，胞內(nèi)NADH/NAD比率升高，造成氧化還原失衡，菌株NZN111（A、B）失去了厭氧條件下代謝葡萄糖的能力。為此，常常要結(jié)合適應(yīng)性進化提高菌株生長速度，例如，KJ060 結(jié)合代謝進化，使菌體濃度升高（OD值從0 提高到5），琥珀酸產(chǎn)量提高至86.5g/L。在本研究中，通過調(diào)控PCK 和FDH 的表達水平使NADH/NAD比率維持在一個相對穩(wěn)定的狀態(tài)，與其他單獨調(diào)節(jié)氧化還原電位或能量平衡的策略相比，具有兩點優(yōu)勢：①能同時提高胞內(nèi)ATP和NADH的含量；②通過優(yōu)化PCK 和FDH 的表達，有助于促進細胞生長（ATP 供應(yīng)的增加）和琥珀酸的合成（NADH 供應(yīng)的增加）。

（3）通過優(yōu)化發(fā)酵條件，進一步提高了琥珀酸的生產(chǎn)性能。經(jīng)30L 發(fā)酵罐的生產(chǎn)，最優(yōu)菌株FMME-N-26 能產(chǎn)生111.9g/L 琥珀酸，得率為1.11g/g 葡萄糖。本研究為琥珀酸的工業(yè)化生產(chǎn)奠定了良好的基礎(chǔ)，對開發(fā)用于生產(chǎn)精細化學品的高性能大腸桿菌系細胞工廠具有重要的借鑒意義。