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        脊尾白蝦響應(yīng)環(huán)境脅迫的轉(zhuǎn)錄組學(xué)分析

        2022-03-03 13:38:42王興強(qiáng)盧雪旎韋壽永李慶國茆丹婷秦傳新
        江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2022年3期
        關(guān)鍵詞:差異

        王興強(qiáng), 盧雪旎, 沈 曄, 曹 梅, 韋壽永, 李慶國, 茆丹婷, 秦傳新

        (1.江蘇海洋大學(xué)海洋科學(xué)與水產(chǎn)學(xué)院,江蘇連云港 222005; 2.連云港旺島旅游開發(fā)有限公司,江蘇連云港 222000;3. 中國水產(chǎn)科學(xué)研究院南海水產(chǎn)研究所,廣東廣州 510300)

        溫度、鹽度和溶解氧均是甲殼類生活環(huán)境中重要的環(huán)境因子。脊尾白蝦()具有耐低溫、低鹽和低氧等特點(diǎn),可以在溫度2~35 ℃和鹽度4~35的環(huán)境條件下生存,時(shí)刻關(guān)注這些環(huán)境因子的變化在白蝦養(yǎng)殖中非常重要。低溫脅迫可使凡納濱對蝦()血淋巴溶菌和抗菌能力顯著降低,而低鹽和低氧脅迫會降低其抗氧化能力和免疫酶活性。斑節(jié)對蝦()體內(nèi)酚氧化酶活性在低溫脅迫下顯著下降,而C型凝集素表達(dá)量在低鹽脅迫下顯著上升。低氧脅迫時(shí)日本沼蝦()需要消耗大量糖原和磷酸精氨酸來維持能量需要,而高溫時(shí)其幼體也會產(chǎn)生明顯的應(yīng)激反應(yīng)。環(huán)境脅迫后的物種均可通過高通量轉(zhuǎn)錄組測序,經(jīng)生物信息學(xué)分析來發(fā)掘其響應(yīng)環(huán)境變化的調(diào)控基因。運(yùn)用轉(zhuǎn)錄組測序技術(shù),孫政等發(fā)現(xiàn),脊尾白蝦體內(nèi)各種免疫相關(guān)基因表達(dá)上調(diào)以響應(yīng)各種病原刺激。梅園通過尼羅羅非魚()轉(zhuǎn)錄組測序,在溫度脅迫產(chǎn)生的差異表達(dá)基因中發(fā)現(xiàn)一種共有結(jié)構(gòu)域。本研究通過Illumina測序得到脊尾白蝦低溫、低鹽和低氧脅迫下的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù),統(tǒng)一組裝,然后對不同脅迫條件下的差異表達(dá)基因進(jìn)行注釋和富集分析,以期闡明脊尾白蝦在環(huán)境脅迫下的生理調(diào)控機(jī)制。

        1 材料與方法

        1.1 低鹽試驗(yàn)

        試驗(yàn)所用脊尾白蝦購自連云港南極路水產(chǎn)品市場,在實(shí)驗(yàn)室暫養(yǎng)7 d以適應(yīng)環(huán)境,暫養(yǎng)期間水體溫度24~26 ℃、鹽度31、pH值8.25以及水中溶解氧含量為7.6~8.1 mg/L。在低鹽試驗(yàn)開始之際,隨機(jī)挑選出120尾脊尾白蝦[平均濕體質(zhì)量(4.12±0.56) g]用于試驗(yàn),設(shè)低鹽脅迫(鹽度0.2)、自然海水(鹽度31)2個(gè)處理,每個(gè)處理3個(gè)重復(fù),共6個(gè)水族箱(水體約30 L),每個(gè)水族箱分別投放脊尾白蝦20尾,然后對水體進(jìn)行人工增氧。在進(jìn)行低鹽脅迫之后,水族箱中的白蝦約在5.5 h之后蝦體顏色變化大致可描述為從尾部逐漸變白,在6 h之后蝦體整體呈現(xiàn)側(cè)臥狀,在這種狀態(tài)下根據(jù)經(jīng)驗(yàn)預(yù)測被低鹽脅迫的脊尾白蝦已處于昏厥狀態(tài)。因此為了保證脊尾白蝦的取樣效果,對于低鹽脅迫組的脊尾白蝦,當(dāng)其整體處于側(cè)臥狀態(tài)下5 min左右時(shí)開始進(jìn)行取樣操作,分別在低鹽脅迫組與自然海水組的每個(gè)水族箱中隨機(jī)選取脊尾白蝦5尾,并使用液氮將整蝦快速冷凍,轉(zhuǎn)錄組測序備用。

        1.2 低溫試驗(yàn)

        脊尾白蝦來源和暫養(yǎng)同“1.1”節(jié),試驗(yàn)開始時(shí)隨機(jī)挑選180尾脊尾白蝦,平均濕體質(zhì)量(1.27±0.15) g,設(shè)低溫脅迫(0 ℃)、自然水溫(25 ℃)2個(gè)溫度梯度處理,2個(gè)處理各設(shè)置3個(gè)重復(fù),總計(jì)水族箱6個(gè)(水體30 L左右),其中每個(gè)水族箱分別放置脊尾白蝦30尾,人工增氧,低溫驟變處理4 h。對照組、低溫脅迫組同時(shí)整蝦取樣,速凍于液氮中,轉(zhuǎn)錄組測序備用。

        1.3 低氧試驗(yàn)

        脊尾白蝦來源和暫養(yǎng)同“1.1”節(jié),試驗(yàn)開始時(shí)隨機(jī)挑選60尾脊尾白蝦,平均濕體質(zhì)量(3.15±0.26) g,設(shè)低氧脅迫、自然溶解氧[溶解氧(7.59±0.66) mg/L]2個(gè)溶解氧梯度處理,2個(gè)處理各設(shè)置3個(gè)重復(fù),總計(jì)水族箱6個(gè)(水體30 L左右),每個(gè)水族箱分別放置脊尾白蝦10尾。用2 mm厚液體石蠟封閉低氧脅迫組水族箱,脅迫約4 h后白蝦處于昏厥狀態(tài),溶解氧降低到(1.13±0.26) mg/L,整蝦取樣,速凍于液氮中,對照組同樣取樣保存,轉(zhuǎn)錄組測序備用。

        1.4 RNA提取與文庫構(gòu)建

        用液氮將凍存的樣品進(jìn)行研磨,采取常規(guī)Trizol試劑法來提取總RNA,同時(shí)對它的純度、濃度和完整性進(jìn)行檢測。樣品達(dá)到要求后,富集mRNA并以其為模板合成雙鏈cDNA鏈,最后進(jìn)行PCR擴(kuò)增,構(gòu)建測序文庫。

        1.5 轉(zhuǎn)錄組測序與生物信息學(xué)分析

        將樣品數(shù)據(jù)送至上海元莘生物醫(yī)藥科技有限公司進(jìn)行高通量測序,評估原始測序數(shù)據(jù)和文庫構(gòu)建質(zhì)量,通過去除接頭序列、剪切低質(zhì)量讀段、舍棄N率(測序中識別不出的堿基率)達(dá)到10%讀數(shù)及長度小于25 bp片段的數(shù)據(jù),最終得到高質(zhì)量測序數(shù)據(jù)(Clean data)。通過Trinity對所有高質(zhì)量數(shù)據(jù)進(jìn)行從頭組裝,最終得到轉(zhuǎn)錄本和unigene。緊接著進(jìn)行功能注釋,運(yùn)用BlastX分別與NR、STRING、Swiss-Prot和KEGG數(shù)據(jù)庫進(jìn)行比對,對基因的生物學(xué)功能進(jìn)行進(jìn)一步的探究。通過RSEM軟件對基因的表達(dá)量進(jìn)行評估,通過FPKM表示基因的表達(dá)水平,并運(yùn)用edgeR軟件進(jìn)行基因的差異表達(dá)分析,主要富集到的功能和通路通過差異表達(dá)基因的GO富集分析和KEGG富集分析得到。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 測序數(shù)據(jù)質(zhì)量分析

        經(jīng)過濾后得到高質(zhì)量測序數(shù)據(jù),低鹽、低溫和溶解氧處理組和對照組均產(chǎn)出>35M條高質(zhì)量序列,堿基數(shù)均>4 Gb,GC含量均>43%。測序質(zhì)量的好壞是用質(zhì)量值(Q,quality value)來評估的,Q30表示堿基測序出錯的概率為0.001,值越高出錯率越低。本次測序樣品的Q30堿基百分比均大于92%(表1)。

        表1 不同處理數(shù)據(jù)評估統(tǒng)計(jì)

        使用Trinity對高質(zhì)量數(shù)據(jù)進(jìn)行序列組裝,將Contigs合并分組生成Graph后得到轉(zhuǎn)錄本,最終組裝得到轉(zhuǎn)錄本436 023條和unigene 305 682條,轉(zhuǎn)錄本和unigene的N50分別為814 bp和552 bp,其中序列長度為200~400 bp的unigene最多,占總數(shù)的67.79%,長度在1 kb以上的占8.11%(表2)。

        表2 組裝結(jié)果統(tǒng)計(jì)

        2.2 unigene功能注釋

        unigene序列是通過BLAST在NR、Swiss-Prot、GO、COG、KEGG各大數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行比對的,大部分unigene(56 898條)注釋到NR數(shù)據(jù)庫,31 695條注釋到KEGG數(shù)據(jù)庫, 28919 條注釋到GO數(shù)據(jù)庫。

        COG功能分類結(jié)果見圖1,主要注釋到翻譯、核糖體結(jié)構(gòu)與生物生成(translation,ribosomal structure and biogenesis),翻譯后修飾、蛋白質(zhì)周轉(zhuǎn)與伴侶蛋白(posttranslational modification,protein turnover,chaperones),僅通用功能預(yù)測(general function prediction only)和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)機(jī)制(signal transduction mechanisms)等功能中。

        2.3 差異表達(dá)基因分析

        差異表達(dá)基因中FDR<0.05并且log|FC|≥1的為差異顯著。低溫脅迫產(chǎn)生的差異表達(dá)基因中,具有顯著性表達(dá)差異的有264條,包括215條上調(diào)基因和49條下調(diào)基因,其中159條得到注釋。低鹽脅迫產(chǎn)生差異表達(dá)顯著的基因僅有1條,為顯著下調(diào)的α-葡萄糖苷酶(α-glucosidase),低氧脅迫沒有產(chǎn)生差異表達(dá)顯著的基因。

        2.3.1 GO注釋 低溫脅迫產(chǎn)生的264條顯著差異表達(dá)基因中,共有66條受到功能分類,GO注釋結(jié)果見圖2,其中,結(jié)構(gòu)分子活性中富集到52個(gè)上調(diào)基因。

        2.3.2 GO富集分析 使用Goatools軟件對低溫脅迫產(chǎn)生的差異表達(dá)基因進(jìn)行GO功能顯著性富集分析,為控制計(jì)算的假陽性率,對值進(jìn)行校正,當(dāng)校正后的<0.05時(shí),GO功能顯著富集。<0.001的有表皮結(jié)構(gòu)組成(structural constituent of cuticle)、脂質(zhì)轉(zhuǎn)運(yùn)活性(lipid transporter activity)和結(jié)構(gòu)分子活性(structural molecule activity)等分子功能,其中表皮結(jié)構(gòu)組成的顯著性較高,所富集到的差異表達(dá)基因也較多,為51條。<0.01的有肽基二肽酶活性(peptidyl dipeptidase activity)和有機(jī)物運(yùn)輸(organic substance transport)等,<0.05的有單生物體運(yùn)輸(single organism transport)、單有機(jī)體定位(single organism localization)和底物特異性轉(zhuǎn)運(yùn)體活性(substrate specific transporter activity)等。同時(shí)對得到的功能節(jié)點(diǎn)標(biāo)出編號和功能,以值進(jìn)行顯著性排序,最顯著的10個(gè)節(jié)點(diǎn)信息見表3。

        表3 GO富集(低溫脅迫)

        2.3.3 KEGG注釋 使用KOBAS進(jìn)行KEGG通路富集分析,經(jīng)過校正的值以0.05為閾值,定義差異表達(dá)基因中顯著富集的KEGG通路。低溫脅迫產(chǎn)生的差異表達(dá)基因顯著富集到腎素-血管緊張素系統(tǒng)(renin-angiotensin system,RAS)、美國錐蟲病(american trypanosomiasis)、阿米巴原蟲病(amoebiasis)、腎素分泌(renin secretion)、肥厚性心肌病(hypertrophic cardiomyopathy)、氨基糖和核苷酸糖代謝(amino and nucleotide sugar metabolism)、霍亂弧菌感染(vibrio cholerae)和補(bǔ)體與凝血級聯(lián)(complement cascades with clotting)等通路中(表4)。

        表4 KEGG富集部分結(jié)果(低溫脅迫)

        差異表達(dá)的基因在該通路的比例與所有注釋基因在該通路的比例的比值越大,校正后的值越小,通路越具有參考價(jià)值。由腎素-血管緊張素系統(tǒng)信號通路(圖3)可以看出,綠色邊框有3個(gè),表示3個(gè)下調(diào)基因。由表5展示信息發(fā)現(xiàn),3個(gè)下調(diào)基因均為血管緊張素轉(zhuǎn)換酶(angiotensin converting enzyme,簡稱ACE)基因,差異倍數(shù)對數(shù)值logFC分別為 -8.80、-6.65和-7.81。

        表5 腎素-血管緊張素系統(tǒng)信號通路包含序列

        3 討論與結(jié)論

        王余菊獲取日本蟳()鰓組織轉(zhuǎn)錄組69.22 Gb高質(zhì)量測序讀數(shù),Q30達(dá)93.46%以上,組裝得到90 973條轉(zhuǎn)錄本和52 972條unigene,N50值為2 450、1 775 bp,注釋率37.84%。董麗君等對凡納濱對蝦進(jìn)行高通量測序,獲得50 921條unigene。N50為1 589 bp,注釋率37.28%。李喜蓮等進(jìn)行紅螯螯蝦()轉(zhuǎn)錄組測序,獲得147 915 744條高質(zhì)量讀數(shù),Q30達(dá)94.76%,組裝得到67 369條unigene,N50長度為 1 376 bp,注釋率30.83%。本次測序各樣品均產(chǎn)出>35×10條序列數(shù),堿基數(shù)均>4 Gb,GC含量均>43%,Q30堿基百分比均>92%,因而測序堿基識別出錯率很低,測序質(zhì)量較好。組裝得到轉(zhuǎn)錄本436 023條和unigene 305 682 條,轉(zhuǎn)錄本和unigene的N50分別是814、552 bp。N50較短可能是本次測序數(shù)據(jù)量龐大,且200~400 bp長度范圍占比較多所導(dǎo)致。56 898條unigene注釋到NR數(shù)據(jù)庫,31 695條注釋到KEGG數(shù)據(jù)庫,28 919條注釋到GO數(shù)據(jù)庫,注釋率低的原因可能是在數(shù)據(jù)庫中近源物種基因注釋信息較少。

        -葡萄糖苷酶又稱為葡萄糖基轉(zhuǎn)移酶(EC.3.2.1.20),是糖苷水解酶家族的一員,水解碳水化合物中的-糖苷鍵生成葡萄糖。-葡萄糖苷酶具有雙重作用,即水解和轉(zhuǎn)糖苷,可以對-葡萄糖苷酶的活性進(jìn)行抑制,從而降低生物體內(nèi)葡萄糖的生成速率,同時(shí)可以對生物體內(nèi)的脂肪水平進(jìn)行調(diào)節(jié)。低鹽脅迫僅產(chǎn)生1個(gè)顯著下調(diào)的基因,為α-葡萄糖苷酶。低鹽脅迫下α-葡萄糖苷酶表達(dá)量顯著降低,可能導(dǎo)致脊尾白蝦機(jī)體難以維持正常的能量需求。

        腎素-血管緊張素系統(tǒng)(RAS)是重要的血壓和水電解質(zhì)平衡調(diào)節(jié)系統(tǒng),而血管緊張素轉(zhuǎn)移酶(ACE)是RAS中的一種重要的酶,又稱為肽酰二肽水解酶,ACE分為ACE 1(原稱ACE)和ACE 2,都是膜相關(guān)的鋅肽家族成員,可以使肽鏈的C-末端二肽殘基水解。血管緊張素Ⅱ受體1型(AT 1R)響應(yīng)循環(huán)中的肽類激素血管緊張素Ⅱ(Ang Ⅱ)的系統(tǒng)性變化,ACE負(fù)責(zé)將Ang Ⅰ轉(zhuǎn)換為AngⅡ,并通過調(diào)節(jié)血壓和電解質(zhì)穩(wěn)態(tài)來使緩激肽失活。Ang Ⅱ在RAS中起到關(guān)鍵作用,能增強(qiáng)血管平滑肌張力,升高血壓,還會造成組織損傷。AT 1R和ACE的特異性抑制劑對心血管系統(tǒng)有重要影響,血管緊張素轉(zhuǎn)換酶抑制劑(ACEⅠ)具有使血壓下降的作用。ACE 2水解AngⅡ生成血管緊張素 1-7[Ang(1-7)],有舒張血管和抗炎的作用,抵消ACE、AngⅡ和AT 1R對腦神經(jīng)元的損傷作用。低溫脅迫產(chǎn)生的差異表達(dá)基因中,具有顯著性表達(dá)差異的有264條,包括215條上調(diào)基因和49條下調(diào)基因,159條得到注釋,其中66條受到GO功能注釋,結(jié)構(gòu)分子活性中富集到52個(gè)上調(diào)基因,推測與低溫脅迫相關(guān)。GO富集分析發(fā)現(xiàn),低溫脅迫下最顯著的功能節(jié)點(diǎn)是脂質(zhì)轉(zhuǎn)運(yùn)活性和肽基二肽酶活性,而肽基二肽酶活性中包含的基因?yàn)锳CE。同樣,KEGG通路富集分析顯示,差異表達(dá)基因顯著富集到RAS中,且該通路富集顯著性最高,具有參考價(jià)值。由信號通路圖可以看出,該通路共包含3個(gè)表達(dá)下調(diào)的基因,均為ACE,推測低溫通過抑制血管緊張素轉(zhuǎn)換酶的表達(dá),降低了血管緊張素Ⅱ的生成,從而降低血管平滑肌張力,抑制血壓的升高和組織損傷;同時(shí)動員脂肪和蛋白質(zhì)等能源物質(zhì),以響應(yīng)低溫脅迫。

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