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        WP1130通過抑制NLRP3炎癥小體活化緩解小鼠的感染性休克

        2022-02-03 03:00:42劉迪迪楊燕青王鳳超
        南方醫(yī)科大學學報 2022年12期
        關(guān)鍵詞:結(jié)果顯示感染性線粒體

        陸 莉,劉迪迪,楊燕青,王鳳超

        1蚌埠醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院檢驗科,安徽 蚌埠 233004;2蚌埠醫(yī)學院慢性疾病免疫學基礎(chǔ)與臨床安徽省重點實驗室,安徽 蚌埠 233030

        核苷酸結(jié)合寡聚化結(jié)構(gòu)域受體蛋白3(NLRP3)炎癥小體是一類大的多聚蛋白復(fù)合物,由模式識別受體NLRP3蛋白、接頭蛋白凋亡相關(guān)斑點樣蛋白(ASC)以及效應(yīng)蛋白pro-caspase-1 組成。其功能主要是通過活化caspase-1促進白細胞介素1β(IL-1β)、白細胞介素18(IL-18)的成熟與分泌從而介導(dǎo)炎癥反應(yīng),維持機體免疫穩(wěn)態(tài)[1]。適度的炎癥反應(yīng)有助于減輕感染,清除受損細胞,但當炎癥反應(yīng)持續(xù)發(fā)生或NLRP3炎癥小體活化異常時則會引發(fā)多種炎癥性疾病和自身免疫病,如二型糖尿病、動脈粥樣硬化、帕金森病[2,3]等疾病。目前治療NLRP3炎癥小體相關(guān)疾病的方法主要是針對其活化產(chǎn)物IL-1β,但此方法與靶向NLRP3的抑制劑相比還存在非特異性、易影響其他細胞功能等局限性[4]。近年來,多種小分子化合物被報道對NLRP3炎癥小體表現(xiàn)出良好的抑制效果[5,7],但仍未有一種化合物能夠直接應(yīng)用于臨床。因此,尋找一種高效且特異的NLRP3炎癥小體活化抑制劑對治療NLRP3炎癥小體相關(guān)炎性疾病尤為重要。

        外源小分子化合物WP1130是一種針對USP9x[8]、USP24[9]、USP5[10]的部分選擇性去泛素化酶抑制劑[11],能夠增加巨噬細胞的抗感染能力[12],增強了對金黃色葡萄球菌[13]和單核細胞增生李斯特菌的殺滅[14],抑制一些細菌和病毒病原體的細胞內(nèi)復(fù)制,如WP1130顯著降低了鼠巨噬細胞樣細胞系中鼠諾如病毒和其他RNA病毒的復(fù)制[15,16]。WP1130也具有強大的抗腫瘤活性,為胰腺癌[17]、T細胞急性淋巴細胞白血病[9]胰腺導(dǎo)管腺癌[10]、B細胞淋巴瘤[18]和非小細胞肺癌[19]的治療提供了新策略,然而其抗感染功能是否與NLRP3炎癥小體相關(guān)尚不明確。本研究擬通過在細胞水平和動物水平探究WP1130 對NLRP3 炎癥小體活化的作用,以期為NLRP3炎癥小體相關(guān)疾病的治療提供新的思路。

        1 材料和方法

        1.1 實驗動物及細胞

        6~10周齡,體質(zhì)量18~24g的SPF級C57BL/6雄性小鼠,購自江蘇集萃藥康生物科技股份有限公司,生產(chǎn)許可證號:SCXK(蘇)2018-0008,小鼠飼養(yǎng)于無特定病原體(SPF)環(huán)境,溫度21~25 ℃,濕度50%~60%,保持12 h/12 h光照黑暗周期,給予輻照滅菌墊料、飼料和高壓滅菌水,保證小鼠自由飲水和攝食,動物實驗嚴格按照實驗動物管理規(guī)范進行。人急性單核細胞白血病THP-1細胞系,受贈于蚌埠醫(yī)學院汪洪濤教授課題組。本研究經(jīng)蚌埠醫(yī)學院倫理委員會審核批準(倫動科批字[2020]第057號)。

        1.2 藥品與試劑

        WP1130(上海陶素生化,純度>99%);巨噬細胞集落刺激因子(M-CSF)(Novoprotein);尼日利亞菌素(nigericin)、三磷酸腺苷(ATP)、尿酸單鈉晶體(MSU)、佛波酯(PMA)(Sigma);脂多糖(LPS)、聚脫氧腺苷酸(poly A: T)、Pam3CSK4(Invivogen);Lipofectamine2000(Invitrogen);RPMI 1640培養(yǎng)基、高糖DMEM 培養(yǎng)基、OPTI-MEM 培養(yǎng)基、胎牛血清(Gibco);ELISA 試劑盒(Mouse IL-1β、IL-6、TNF-α,Human IL-1β、TNF-α ELISA kit)(R&D);人caspase-1(p20)、pro-caspase-1 抗 體(Human caspase-1)(Cell SignalingTechnology);鼠caspase-1(p20)、pro-caspase-1抗體(Mouse caspase-1)(AdipoGen);β-actin 抗體(Abmart);辣根過氧化物酶(HRP)標記的山羊抗鼠IgG和山羊 抗 兔IgG(Jackson IR);Mitotracker、DAPI(Thermo Fisher)。

        1.3 動物分組及處理

        SPF 級雄性C57BL/6 小鼠隨機分成空白對照組(Control組)、感染性休克組(LPS組)和WP1130治療組(WP1130+LPS組),每組6只,空白對照組不給予LPS造模,WP1130 治療組小鼠腹腔注射WP1130 溶液(10 mg/kg)1 h后,LPS組和治療組小鼠同時腹腔注射等劑量的LPS溶液(20 mg/kg),空白對照組腹腔注射等體積的PBS溶液。4 h后,眼球取血,頸椎脫臼法處死小鼠并收集小鼠腹腔液。

        1.4 細胞刺激分化

        BMDM細胞誘導(dǎo)分化:頸椎脫臼法處死小鼠,剝離出小鼠的脛骨和股骨,無菌條件下用20 mL注射器吸取20 mL DMEM細胞培養(yǎng)基沖洗小鼠骨髓細胞,離心,加入2~3 mL 紅細胞裂解液吹打,用含有M-CSF 的DMEM完全培養(yǎng)基重懸細胞,5%CO2、37 ℃條件下分化4~6 d可獲得貼壁生長的BMDM細胞。分化后的細胞呈細長梭形,通過流式細胞術(shù)鑒定巨噬細胞表面標志物(F4/80+CD11b+細胞亞群)。人THP-1細胞誘導(dǎo)分化:1×106/mL THP-1細胞中加入含有400 ng/mL PMA的RPMI 1640完全培養(yǎng)基刺激過夜,細胞貼壁分化成梭形并用流式細胞術(shù)鑒定。

        1.5 炎癥小體活化刺激

        分化完成的小鼠BMDM和人THP-1細胞按每孔5×105個細胞分別接種于12孔板中培養(yǎng)過夜,加入LPS(100 ng/mL)預(yù)刺激4 h后,分別加入多種經(jīng)典的NLRP3炎癥小體活化劑,其中nigericin、ATP活化細胞30 min,MSU活化細胞3 h。加入Pam3CSK4(200 ng/mL)預(yù)刺激4 h后,胞內(nèi)轉(zhuǎn)染LPS活化非經(jīng)典NLRP3炎癥小體。加入LPS(100 ng/mL)預(yù)刺激4 h后,轉(zhuǎn)染poly A:T(1 μg/mL)刺激4 h,活化黑色素瘤缺乏因子2(AIM2)炎癥小體。

        1.6 蛋白免疫印跡實驗(Western blotting)

        檢測caspase-1(p20)、pro-caspase-1(Pro-casp1)蛋白表達。收集細胞培養(yǎng)上清,利用甲醇氯仿法提取上清中的蛋白,加入裂解液;12孔板中直接加入裂解液裂解細胞,轉(zhuǎn)至1.5 mL EP管中,與上清蛋白裂解液一同金屬浴100 ℃煮10 min。將收集的蛋白樣品進行SDS-PAGE電泳,恒壓90V轉(zhuǎn)膜1 h,5%BSA室溫封閉2 h,加入一抗抗體,4 ℃搖床上孵育過夜,PBST洗膜3次,10 min/次,隨后加入二抗抗體(1∶10 000)室溫孵育1 h 30 min,PBST洗膜3次后凝膠成像儀顯影。

        1.7 酶聯(lián)免疫吸附測定(ELISA)

        收集細胞培養(yǎng)上清及小鼠血清和腹腔液,離心去沉淀,按照ELISA試劑盒說明書檢測IL-1β、白細胞介素6(IL-6)、腫瘤壞死因子α(TNF-α)的分泌水平,主要步驟包括稀釋捕獲抗體包被至96孔酶標板,室溫靜置過夜,10%FBS封閉30 min,加入標準品和樣本2 h,加入檢測抗體1 h,加入HRP孵育20 min,加入底物TMB顯色5~10 min,1 mol/L H2SO4終止反應(yīng),酶標儀450 nm測定吸光度值,繪制標準曲線計算樣品濃度。

        1.8 線粒體損傷檢測

        將細胞按2×105/mL接種于提前放置了細胞爬片的12孔細胞培養(yǎng)板中,置于37 ℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)過夜;LPS(100 ng/mL)預(yù)刺激4 h 后,加入WP1130 處理細胞30 min 后,加入Nigericin 活化細胞,細胞活化結(jié)束前30 min各組加入線粒體染料Mitotracker(200 nmol/L);孵育結(jié)束后,棄去上清,加入PBS洗3次,4%多聚甲醛室溫固定15 min;隨后PBST洗3次,10 min/次;DAPI染色并封片,室溫避光過夜;利用激光共聚焦顯微鏡觀察并拍照。

        1.9 統(tǒng)計學分析

        采用GraphPad Prism 8軟件進行數(shù)據(jù)的統(tǒng)計學分析,所用數(shù)據(jù)用均數(shù)±標準差表示。兩組之間的比較采用獨立樣本t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

        2 結(jié)果

        2.1 WP1130 抑制Nigericin 誘導(dǎo)的NLRP3 炎癥小體活化

        Western blot 檢測結(jié)果顯示,WP1130 劑量依賴性地抑制了caspase-1 的分泌(P<0.05,圖1A、B),對pro-caspase-1(Pro-casp1)的表達無顯著抑制(P>0.05,圖1A、C)。ELISA檢測結(jié)果顯示,WP1130劑量依賴性地抑制了細胞培養(yǎng)上清液中IL-1β的分泌水平(P<0.001,圖1D),對核轉(zhuǎn)錄因子κB(NF-κB)信號通路活化產(chǎn)生的非炎癥體依賴性細胞因子TNF-α、IL-6的分泌無明顯影響(P>0.05,圖1E、F)。

        圖1 WP1130抑制nigericin誘導(dǎo)的NLRP3炎癥小體活化Fig.1 WP1130 suppresses Nigericin-induced NLRP3 inflammasome activation in mouse bone marrow-derived macrophages(BMDM).A:Western blotting of cleaved caspase-1(p20)in the culture supernatants(SN)and pro-caspase-1(Pro-casp1)in the cell lysate(Input)of BMDM.B,C:Quantitative analysis of the expressions of p20 and Pro-casp1 in BMDM.D-F:ELISAof IL-1β,TNF-α and IL-6 in cell culture supernatants,respectively.**P<0.01,***P<0.001.

        2.2 WP1130 抑制其他活化劑誘導(dǎo)的NLRP3 炎癥小體活化

        Western blot檢測結(jié)果顯示,WP1130劑量依賴性地抑制了ATP 和MSU 活化NLRP3 炎癥小體誘導(dǎo)的caspase-1的表達(P<0.05,圖2A、B),但對pro-caspase-1的蛋白表達無顯著影響(P>0.05,圖2A、B)。ELISA檢測結(jié)果顯示,WP1130劑量依賴性地抑制了細胞培養(yǎng)上清液中IL-1β的分泌水平(P<0.001,圖2C、D)。

        圖2 WP1130抑制ATP和MSU誘導(dǎo)的NLRP3炎癥小體活化Fig.2 WP1130 inhibits NLRP3 inflammasome activation in BMDM induced by other agonists.A,B:Western blotting of p20 in supernatants (SN) and Pro-casp1 in cell lysates (Input) of BMDM.C,D: ELISA of mature IL-1β in the culture supernatant of BMDM.*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001.

        2.3 WP1130抑制非經(jīng)典NLRP3炎癥小體活化

        Western blot檢測結(jié)果顯示,WP1130劑量依賴性地抑制了非經(jīng)典NLRP3炎癥小體活化產(chǎn)物caspase-1的產(chǎn)生(P<0.05,圖3A、B),但對pro-caspase-1的表達無顯著影響(P>0.05,圖3A、C)。ELISA檢測結(jié)果顯示,WP1130劑量依賴性地抑制了細胞培養(yǎng)上清液中IL-1β的水平(P<0.001,圖3D)。

        圖3 WP1130抑制非經(jīng)典NLRP3炎癥小體活化Fig.3 WP1130 inhibits non-canonical NLRP3 inflammasome activation in BMDM.A:Western blotting of p20 in culture supernatants(SN)and Pro-casp1 in lysates(Input)of BMDM.B,C:Quantitative analysis of the expressions of p20 and Pro-casp1 in BMDM.D:ELISAof mature IL-1β in the culture supernatant of BMDM.*P<0.05,***P<0.001.

        2.4 WP1130對AIM2炎癥小體活化無影響

        Western blot 檢測結(jié)果顯示,與WP1130 抑制nigericin活化NLRP3炎癥小體相比,加入WP1130并不抑制poly A:T 活化AIM2 炎癥小體介導(dǎo)的caspase-1的蛋白表達(P>0.05,圖4A、B),同時WP1130 對procaspase-1 的表達無顯著影響(P>0.05,圖4A、C)。ELISA 檢測結(jié)果顯示,WP1130 抑制nigericin 誘導(dǎo)的IL-1β分泌,對poly A:T誘導(dǎo)的IL-1β分泌無顯著抑制作用(P>0.05,圖4D)。

        圖4 WP1130對AIM2炎癥小體活化無影響Fig.4 WP1130 does not affect AIM2 inflammasome activation in BMDM.A:Western blotting of p20 in culture supernatants (SN) and Pro-casp1 in lysates (Input) of BMDM.B,C:Quantitative analysis of the expressions of p20 and Pro-casp1 in BMDM.D:ELISA of mature IL-1β in the culture supernatant of BMDM.***P<0.001 vs control.

        2.5 WP1130 抑制人THP-1 細胞中NLRP3 炎癥小體活化

        Western blot 檢測結(jié)果顯示,nigericin 誘導(dǎo)了人THP-1細胞中NLRP3炎癥小體活化,促進caspase-1的表達,加入WP1130可劑量依賴性地抑制細胞培養(yǎng)上清中caspase-1的表達(P<0.05,圖5A、B),但對細胞裂解液中pro-caspase-1的表達無顯著影響(P>0.05,圖5A、C)。ELISA檢測結(jié)果顯示,WP1130劑量依賴性地抑制細胞培養(yǎng)上清中IL-1β的分泌(P<0.05,圖5D),TNF-α的分泌水平各組無統(tǒng)計學差異(P>0.05,圖5E)。

        圖5 WP1130抑制人THP-1細胞中NLRP3炎癥小體活化Fig.5 WP1130 inhibits NLRP3 inflammasome activation in human THP-1 cells.A: Western blotting of p20 in culture supernatants(SN)and Pro-casp1 in lysates(Input)of human THP-1 cells.B,C:Quantitative analysis of the expressions of p20 and Pro-casp1 in human THP-1 cells.D,E: ELISA of IL-1β (D) and TNF-α (E) in the culture supernatant of THP-1 cells.**P<0.01,***P<0.001.

        2.6 WP1130不影響nigericin刺激引起的線粒體損傷

        激光共聚焦顯微鏡觀察線粒體染色結(jié)果顯示,空白對照組與單加WP1130處理組線粒體形態(tài)正常無損傷,加入nigericin 顯著誘導(dǎo)了線粒體的斷裂和聚集。與nigericin組相比,nigericin+WP1130組線粒體仍表現(xiàn)為斷裂和聚集這一損傷形態(tài)(圖6)。

        2.7 WP1130對小鼠感染性休克的影響

        ELISA 結(jié)果顯示,與空白對照組相比,腹腔注射LPS導(dǎo)致小鼠血清和腹腔液中IL-1β、TNF-α的分泌顯著增高,與感染性休克組(LPS組)相比,WP1130治療組(WP1130+LPS 組)明顯降低了小鼠血清和腹腔液中IL-1β的分泌水平(P<0.05,圖7A、C),但對NF-κB信號通路介導(dǎo)的細胞因子TNF-α的產(chǎn)生無顯著影響(P>0.05,圖7B、D)。

        圖7 WP1130緩解LPS誘導(dǎo)的小鼠感染性休克Fig.7 WP1130 alleviates LPS-induced septic shock in mice.A,B: Levels of IL-1β (A) and TNF-α (B) determined with ELISA in the serum from C57BL/6 mice in control,LPS-treated and LPS plus WP1130-treated mice.C,D:Levels of IL-1β (C) and TNF-α (D) in peritoneal lavage fluid measured by ELISA.**P<0.01,***P<0.001.

        3 討論

        NLRP3炎癥小體與多種感染性疾病相關(guān),可被多種病原體激活,導(dǎo)致炎性因子的大量釋放,引發(fā)多種炎癥性疾病,如膿毒血癥[20]、炎癥性腸?。?1]、痛風[22]等,因此阻斷NLRP3炎癥小體活化成為治療NLRP3炎癥小體相關(guān)疾病的新策略[23]。已有研究表明WP1130具有抗感染作用,可抑制一些細菌和病毒病原體的細胞內(nèi)復(fù)制,其抗感染作用是否與NLRP3炎癥小體有關(guān)尚不清楚,本研究通過細胞實驗和體內(nèi)動物實驗探究小分子化合物WP1130 對NLRP3炎癥小體活化的影響。

        多種病原相關(guān)分子信號和危險相關(guān)分子信號可誘導(dǎo)NLRP3炎癥小體活化,剪切caspase-1,促進IL-1β分泌[24-26],本研究首先利用nigericin活化炎癥小體,初步證實了WP1130能夠抑制NLRP3炎癥小體活化,利用另外兩種經(jīng)典活化劑ATP和MSU,進一步證實WP1130可廣譜的抑制NLRP3炎癥小體活化,且相較于其他小分子去泛素化酶抑制劑,如P22077[27],WP1130發(fā)揮抑制作用的濃度更低,效果更好。此外,NLRP3炎癥小體存在非經(jīng)典激活途徑,caspase-11識別胞內(nèi)LPS,從而誘導(dǎo)非經(jīng)典NLRP3炎癥小體活化[28],本研究表明WP1130也抑制NLRP3炎癥小體非經(jīng)典途徑的活化。

        目前研究較多的其他經(jīng)典炎癥小體還包括AIM2炎癥小體,其激活可保護機體免受感染[29],本研究表明WP1130對AIM2炎癥小體的激活并無影響,僅特異性的抑制NLRP3 炎癥小體活化。進一步探究發(fā)現(xiàn)WP1130不僅作用于小鼠細胞,其在人THP-1細胞中對NLRP3炎癥小體活化同樣有顯著抑制效果。

        NLRP3炎癥小體的活化需要兩個關(guān)鍵信號,預(yù)刺激信號和組裝活化信號[30],本研究結(jié)果顯示,WP1130對預(yù)刺激信號介導(dǎo)的NF-κB信號通路的激活無影響,提示W(wǎng)P1130可能影響組裝活化信號階段。其中線粒體損傷被認為是NLRP3炎癥小體組裝活化的重要上游信號[31-33],NLRP3炎癥小體活化劑通過產(chǎn)生大量線粒體活性氧并將其釋放到胞質(zhì)誘導(dǎo)線粒體損傷,從而激活NLRP3炎癥小體[34],本研究中共聚焦顯微鏡結(jié)果表明WP1130并不影響線粒體損傷這一重要上游信號,提示W(wǎng)P1130可能直接影響NLRP3炎癥小體復(fù)合物的組裝過程。

        NLRP3炎癥小體的異?;罨瘯?dǎo)致大量炎性因子釋放,腹腔注射LPS誘導(dǎo)的感染性休克是一種常見的NLRP3炎癥小體相關(guān)的急性疾病模型,主要由細菌感染引起,伴有嚴重的全身性炎癥反應(yīng),感染性休克發(fā)生過程中,會導(dǎo)致血清和腹腔液中細胞因子的分泌增加,如IL-1β、TNF-α[35-37]。本研究通過腹腔注射LPS構(gòu)建小鼠感染性休克模型,結(jié)果表明WP1130可顯著抑制小鼠血清和腹腔液中IL-1β的分泌,但對非炎癥小體依賴的細胞因子TNF-α無影響。以上結(jié)果證實WP1130可在體內(nèi)外抑制NLRP3炎癥小體活化,緩解相關(guān)疾病。但WP1130抑制NLRP3炎癥小體的具體作用機制還需后續(xù)研究去闡明。

        綜上所述,本研究證實WP1130抑制多種激動劑誘導(dǎo)的NLRP3炎癥小體活化,對NLRP3炎癥小體的活化具有特異性,在鼠和人細胞中均有良好抑制效果,通過阻斷體內(nèi)NLRP3炎癥小體激活,減輕了LPS誘導(dǎo)的感染性休克。本研究的發(fā)現(xiàn)為后續(xù)深入研究WP1130抑制NLRP3炎癥小體活化可能的作用機制提供了實驗依據(jù),也為治療感染性休克以及其他NLRP3炎癥小體相關(guān)疾病提供了新的方向和策略。

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