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        基于高通量測(cè)序與UPLC-Q-TOF/MS技術(shù)的不同產(chǎn)地銀杏葉內(nèi)生菌與其主要化學(xué)成分相關(guān)性探究△

        2022-01-28 13:28:54陳冉張艷欣王丹丹
        中國(guó)現(xiàn)代中藥 2021年12期
        關(guān)鍵詞:銀杏葉內(nèi)生內(nèi)酯

        陳冉,張艷欣,王丹丹

        上海上藥杏靈科技藥業(yè)股份有限公司,上海 201203

        銀杏Ginkgo bilobaL.是一種藥食同源的植物,其葉片可以產(chǎn)生黃酮、內(nèi)酯等次生代謝物,這些化合物具有增加腦血流量、降低腦血管阻力、改善腦血管循環(huán)功能、擴(kuò)張冠狀動(dòng)脈、增加冠狀動(dòng)脈血流量、改善心臟供血、防止心絞痛及心肌梗死形成的功能[1]。生長(zhǎng)環(huán)境及土壤營(yíng)養(yǎng)通常被認(rèn)為是影響藥材質(zhì)量的主要因素,近年來,人們逐漸認(rèn)識(shí)到內(nèi)生菌對(duì)于植物藥用成分的合成與積累起著非常重要的作用[2]。研究人員發(fā)現(xiàn),與植物共生的某些內(nèi)生菌可促進(jìn)宿主植物次生代謝產(chǎn)物的合成與積累,甚至產(chǎn)生與宿主相同或相似的活性次生代謝產(chǎn)物[3],也通過培養(yǎng)篩選出能產(chǎn)生活性次生代謝物的內(nèi)生菌[4]。然而,在自然界中,大部分內(nèi)生菌都是不可培養(yǎng)的,難以從植物組織中分離。因此,植物體內(nèi)生菌與植物次生代謝物之間相關(guān)性尚不明確。本研究運(yùn)用高通量測(cè)序技術(shù)和超高效液相色譜-四級(jí)桿-飛行時(shí)間質(zhì)譜法(UPLC-Q-TOF/MS)檢測(cè),分別對(duì)都江堰、平邑、崇明3個(gè)產(chǎn)地的銀杏葉內(nèi)生細(xì)菌和真菌進(jìn)行多樣性分析,比較不同產(chǎn)地銀杏葉片內(nèi)生菌群落多樣性及群落結(jié)構(gòu),分析銀杏葉內(nèi)生菌多樣性與其主要化學(xué)成分含量的相關(guān)性,通過生物信息學(xué)分析技術(shù)預(yù)測(cè)化學(xué)成分與菌群之間的互作關(guān)系,從而指導(dǎo)可協(xié)作產(chǎn)生藥用成分菌株的篩選,利用內(nèi)生菌促進(jìn)藥用成分的代謝累積,可為異源獲得銀杏藥效成分提供參考。

        1 材料

        1.1 試藥

        選取四川省都江堰市(DY)、上海市崇明島(CY)、山東省平邑縣(PY)3 個(gè)銀杏生產(chǎn)基地作為采樣區(qū)。銀杏樹于4月初開始萌發(fā)初芽,直至7月開始采收,本研究所有樣品均采于2019年4—7月的每月中旬,為較完整的銀杏生長(zhǎng)-采收期,采樣地點(diǎn)均選取遠(yuǎn)離道路的種植區(qū),以避免汽車尾氣等其他生產(chǎn)生活因素對(duì)實(shí)驗(yàn)的影響。采集樣品時(shí),每個(gè)產(chǎn)地隨機(jī)選取3~4個(gè)5 m×5 m的樣方作為采樣點(diǎn)(A、B、C、D),每個(gè)樣方內(nèi)按5 點(diǎn)取樣法采集銀杏葉片,將5點(diǎn)的葉片樣品充分混合形成1個(gè)樣品,裝入無菌的自封袋中,做好標(biāo)記,儲(chǔ)存于干冰/冰袋中帶回實(shí)驗(yàn)室,并保存于-80 ℃冰箱用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)分析。樣品采收時(shí)間和編號(hào)見表1。

        表1 不同產(chǎn)地銀杏葉藥材來源信息

        對(duì)照品銀杏內(nèi)酯A(批號(hào):W25A7K13730)、銀杏內(nèi)酯B(批號(hào):D15D8G50608)、銀杏內(nèi)酯C(批號(hào):C28S6G3986)、白果內(nèi)酯(批號(hào):P08J9F52398)、銀杏內(nèi)酯J(批號(hào):D29J9G53845)、蘆?。ㄅ?hào):Y16M9S61523)、山柰酚-3-O-蕓香糖苷(批號(hào):Y15N8H48277)、碟豆素(批號(hào):M13J10S90494)、槲皮素3-O-葡萄糖基(1→2)鼠李糖苷(批號(hào):M13J10S90493)、水仙苷(批號(hào):S08A8D33447)、3-O-(2-O-[6-O-(β-羥基-反-香豆酰)-葡萄糖基]-鼠李糖基)山柰酚(批號(hào):M13J10S90492)、3-O(2-O-[6-O(β-羥基-反-香豆酰)-葡萄糖基]-鼠李糖基)槲皮素(批號(hào):M13J10S90491)、銀杏雙黃酮(批號(hào):GR-133-150405)、金松雙黃酮(批號(hào):P03M9F55041)、白果雙黃酮(批號(hào):Y15J9L63710)、銀杏酸(C17∶1)(批號(hào):Y18J10H73680)、銀杏酸(C13∶0)(批號(hào):P11D8F50448)、D-(-)奎寧酸(批號(hào):A06N11L130218)均購(gòu)于上海源葉生物科技有限公司;穗花杉雙黃酮(批號(hào):10412)、銀杏酸(C15∶1)(批號(hào):1130)、原兒茶酸(批號(hào):5668)、莽草酸(批號(hào):863)均購(gòu)于上海詩(shī)丹徳生物技術(shù)有限公司;所有對(duì)照品純度均≥98%;DNeasy?Plant Mini Kit(50)試劑盒(德國(guó)Qiagen公司);瓊脂糖(Sigma 公司);三(羥甲基)氨基甲烷鹽酸鹽(Tris-HCl)、TAE電泳緩沖液[生工生物工程(上海)股份有限公司];DNA 凝膠回收試劑盒(美國(guó)Axygen Biosciences 公司);三氯甲烷、異戊醇、無水乙醇(分析純,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);液氮(上海氯閔氣體有限公司);超純水;植物內(nèi)生細(xì)菌引物(上海美吉生物醫(yī)藥科技有限公司)。

        1.2 儀器

        Waters Xevo G2-XS 型Q-TOF 飛行時(shí)間質(zhì)譜儀,配有電噴霧離子源(ESI);Waters ACQUITY UPLC型超高效液相色譜儀,含二元梯度泵、自動(dòng)進(jìn)樣器、柱溫箱、二極管陣列(DAD)檢測(cè)器、Masslynx 4.1 軟件;Proflex base 型聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)儀、NanoDrop2000 型紫外-可見分光光度計(jì)、Sorvall Legend Micro 17R 型離心機(jī)(美國(guó)Thermo Fisher Scientific 公司);Mini-Sub Cell GT 型電泳儀(美國(guó)Bio-Rad 公司);QuantiFluor?-ST 型微型熒光計(jì)(美國(guó)Promega 公司);5200 multi 型凝膠成像儀(上海天能科技有限公司);KQ5200DE 型數(shù)控超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);Direct-Q 3UV 型超純水機(jī)(美國(guó)Millipore 公司);Illumina MiSeq型高通量測(cè)序平臺(tái)(美國(guó)Illumina公司)。

        2 方法

        2.1 銀杏葉片表面無菌處理

        將銀杏葉表面用雙蒸水(ddH2O2)清洗,用濾紙吸干表面水分。將樣品放入超凈操作臺(tái)中,在培養(yǎng)皿中用75%的乙醇浸泡1~2 min,ddH2O2清洗后放入0.1 mol·L-1的磷酸鹽緩沖液(PBS)中,超聲清洗1 min,渦旋10 s,重復(fù)2 次,最后用無菌水沖洗2 次,用無菌濾紙吸干表面水分。

        2.2 銀杏葉片內(nèi)生菌基因組提取及測(cè)序

        將無菌處理后的葉片放入研缽,加液氮研磨至粉碎,采用DNeasy?Plant Mini Kit(50)試劑盒提取內(nèi)生菌DNA。使用NanoDrop 2000 紫外-可見分光光度計(jì)和1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)DNA 濃度、純度與完整性。將獲得的DNA 進(jìn)行擴(kuò)增,引物見表2,該引物通過巢式PCR 方法,極大降低宿主污染比例。內(nèi)生真菌引物選擇ITS1F_ITS2R。

        表2 銀杏葉內(nèi)生菌引物

        使用2%瓊脂糖凝膠回收PCR 產(chǎn)物,利用DNA凝膠回收試劑盒進(jìn)行純化,Tris-HCl 洗脫,2%瓊脂糖電泳檢測(cè)。利用微型熒光計(jì)進(jìn)行檢測(cè)定量。根據(jù)Illumina MiSeq高通量測(cè)序平臺(tái)標(biāo)準(zhǔn)操作規(guī)程將純化后的擴(kuò)增片段構(gòu)建PE 2×300 的文庫(kù)。使用Illumina MiSeq測(cè)序平臺(tái)進(jìn)行測(cè)序,R 3.3.1軟件作圖。

        2.3 銀杏葉主要化學(xué)成分檢測(cè)

        2.3.1 供試品溶液制備 將葉片洗干凈后,60 ℃烘干,研磨過篩后干燥,儲(chǔ)存?zhèn)溆谩cy杏葉雙黃酮和烷基酚類成分檢測(cè)樣品處理如下:稱取銀杏葉中粉粉末約0.1 g,用乙醇5 mL 超聲提取10 min,3000 r·min-1(離心半徑為16 cm)離心10 min,吸取上清液,重復(fù)超聲提取3 次,合并上清液,加入10.189 μg·mL-1格列本脲內(nèi)標(biāo)乙醇中間液500 μL 并定容至25 mL 量瓶中。其他成分檢測(cè)樣品處理如下:稱取銀杏葉中粉粉末0.1 g,用50%甲醇5 mL 超聲提取10 min,3000 r·min-1(離心半徑為16 cm)離心10 min,吸取上清液,重復(fù)超聲提取3次,合并上清液,加入內(nèi)標(biāo)50%甲醇中間液(10.189 μg·mL-1)500 μL 并定容至25 mL量瓶中。

        2.3.2 對(duì)照品溶液制備 精密稱取干燥至恒重的編號(hào)為1~22的對(duì)照品(表3),加入50%甲醇制成質(zhì)量濃度分別為9.89、14.46、9.28、4.71、21.19、8.91、5.89、6.21、5.91、6.85、15.90、16.34、9.84、4.07、8.04、9.51、179.68、90.97、16.11、41.10、2.02、97.50 μg·mL-1的儲(chǔ)備液,逐級(jí)稀釋得不同質(zhì)量濃度的對(duì)照品溶液。

        2.3.3 色譜條件 色譜柱Waters ACQUITY UPLC C18(50 mm×2.1 mm,1.7 μm);流動(dòng)相為含0.05%甲酸的甲醇溶液(A)-0.05%甲酸水溶液(B);梯度洗脫(0~1 min,98%A;1.0~13.5 min,98%~2%A;13.5~16.5 min,2%A;16.5~20.0 min,2%~98%A);檢測(cè)波長(zhǎng)為360 nm;流速為0.4 mL·min-1;柱溫為40 ℃;進(jìn)樣量為5 μL。

        2.3.4 質(zhì)譜條件 負(fù)離子條件下,采用Sensitivity模式,掃描時(shí)間為20 min;毛細(xì)管電壓為2.5 kV;離子源溫度為120 ℃;脫溶劑氣流速為800 L·h-1;脫溶劑氣溫度為400 ℃;樣品錐孔電壓為35 V;萃取錐孔電壓為4.0 V。

        2.4 方法學(xué)考察

        2.4.1 線性關(guān)系考察 精密吸取不同質(zhì)量濃度的對(duì)照品溶液,重復(fù)進(jìn)樣2 次,以質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(X)、峰面積為縱坐標(biāo)(Y),得到不同對(duì)照品線性方程,結(jié)果見表3。

        表3 銀杏葉成分的標(biāo)準(zhǔn)曲線和線性范圍

        2.4.2 精密度試驗(yàn) 取山東省平邑縣PY4A樣品,按2.3.1項(xiàng)下方法制備供試品溶液,按2.3.3項(xiàng)下色譜條件重復(fù)進(jìn)樣6次,計(jì)算各成分色譜峰出峰時(shí)間和峰面積的RSD,結(jié)果均小于3%,表明儀器精密度良好。

        2.4.3 穩(wěn)定性試驗(yàn) 取山東省平邑縣PY4A 樣品,按2.3.1項(xiàng)下方法制備供試品溶液,按2.3.3項(xiàng)下色譜條件分別在0、2、4、6、8、12、24 h進(jìn)樣,計(jì)算各個(gè)成分色譜峰出峰時(shí)間和峰面積的RSD,結(jié)果均小于3%,表明該方法在24 h內(nèi)穩(wěn)定性良好。

        2.4.4 重復(fù)性試驗(yàn) 取山東省平邑縣PY4A 樣品,按2.3.1項(xiàng)下方法制備供試品溶液,按2.3.3項(xiàng)下色譜條件重復(fù)進(jìn)樣6 次,計(jì)算各成分含量的RSD,結(jié)果均小于3%,表明該方法重復(fù)性良好。

        2.4.5 加樣回收率試驗(yàn) 分別精密稱取已測(cè)含量的銀杏樣品粉末0.05 g,共6 份,分別按含量的50%、100%和150%量加入對(duì)應(yīng)量的22 個(gè)對(duì)照品,按2.3.1 項(xiàng)下供試品制備方法制備,每個(gè)加入量平行制備2 份供試品溶液。計(jì)算得到22 個(gè)化合物的回收率為90%~105%,RSD均小于3%。

        2.4.6 樣品測(cè)定 取2.3.1項(xiàng)下供試品溶液1.0 mL,12 000 r·min-1(離心半徑為7 cm)離心10 min,吸取上清液進(jìn)樣分析。

        3 結(jié)果與分析

        3.1 不同產(chǎn)地銀杏葉內(nèi)生細(xì)菌、真菌群落多樣性分析

        選擇97%相似度的分類單元(OTU),利用mothur 計(jì)算不同隨機(jī)抽樣下的α多樣性指數(shù),利用R 語(yǔ)言工具制作曲線圖。Shannon曲線趨向平坦,說明測(cè)序數(shù)據(jù)量足夠大,可以反映樣本中絕大多數(shù)的微生物多樣性信息,該測(cè)序結(jié)果中包含了大多數(shù)微生物類群,能夠真實(shí)地反映3 個(gè)產(chǎn)區(qū)葉片樣品中微生物的群落組成,見圖1。

        圖1 3個(gè)產(chǎn)地不同月份銀杏葉內(nèi)生真菌、細(xì)菌的稀釋性曲線

        Chao 指數(shù)反映群落豐富度,Shannon 指數(shù)反映群落多樣性,結(jié)合2個(gè)指數(shù)分析,由圖2可知,平邑地區(qū)銀杏葉片內(nèi)生真菌的多樣性最低,都江堰相對(duì)較高;內(nèi)生真菌的豐富度也是平邑最小,都江堰相對(duì)較大;3 個(gè)產(chǎn)地內(nèi)生真菌多樣性、豐富度隨月份變化無明顯規(guī)律。

        圖2 3個(gè)產(chǎn)地不同月份銀杏葉內(nèi)生真菌α多樣性指數(shù)

        由圖3 可知,3 個(gè)產(chǎn)地的銀杏葉內(nèi)生細(xì)菌在多樣性上4、5 月份變化不大,而在采收季7 月份都江堰和崇明的多樣性最低,多樣性隨著月份的變化整體呈降低趨勢(shì);在內(nèi)生細(xì)菌豐富度上,3 產(chǎn)地銀杏葉都在6月份的時(shí)候呈最高;3個(gè)產(chǎn)地銀杏葉內(nèi)生細(xì)菌多樣性和豐富度隨月份的變化趨勢(shì)較一致。

        圖3 3個(gè)產(chǎn)地不同月份銀杏葉內(nèi)生細(xì)菌α多樣性指數(shù)

        在門水平上,3產(chǎn)地銀杏葉內(nèi)生優(yōu)勢(shì)真菌菌群為子囊菌門(Ascomycota)、擔(dān)子菌門(Basidiomycota),隨著月份的變化群落結(jié)構(gòu)較穩(wěn)定;在屬水平上對(duì)優(yōu)勢(shì)內(nèi)生真菌菌屬(將比例<5%的菌屬合并為others)進(jìn)行分析,結(jié)果表明,崇明和平邑的優(yōu)勢(shì)真菌屬為鏈格孢屬(Alternaria),但都江堰的優(yōu)勢(shì)真菌屬為烏氏霉屬(Uwebraunia);而平邑在7 月采收季出現(xiàn)了大量的Septoria。3 產(chǎn)地的銀杏葉片內(nèi)生真菌在門水平上的群落結(jié)構(gòu)非常一致,而在屬水平的真菌群落結(jié)構(gòu)在組成比例上有明顯差異(圖4)。

        在門水平上,3 產(chǎn)地銀杏葉優(yōu)勢(shì)內(nèi)生細(xì)菌菌群為變形菌門(Proteobacteria)、厚壁菌門(Firmicutes)、放線菌門(Actinobacteria)、擬桿菌門(Bacteroidetes);3個(gè)產(chǎn)地銀杏葉在7月采收季都是變形菌門的量達(dá)到最多,而厚壁菌門量均降低;在屬水平上對(duì)優(yōu)勢(shì)內(nèi)生細(xì)菌菌屬(將比例<5%的菌屬合并為others)進(jìn)行分析,結(jié)果表明,甲基桿菌屬(Methylobacterium)、鞘氨醇單胞菌(Sphingomonas)在初芽期極少,但是在采收季占比最大;3 產(chǎn)地樣品在門、屬水平的內(nèi)生細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)具有一定相似性(圖5)。

        圖5 3個(gè)產(chǎn)地不同月份銀杏葉內(nèi)生細(xì)菌群落豐度占比

        3.2 不同產(chǎn)地的銀杏葉主要化學(xué)成分含量

        采用UPLC-Q-TOF/MS 模式分析銀杏葉提取物,總離子流圖見圖6。利用UNIFI質(zhì)譜軟件,基于保留時(shí)間、精確相對(duì)分子質(zhì)量和二級(jí)碎片離子信息對(duì)色譜峰進(jìn)行指認(rèn),并通過對(duì)照品的比對(duì),確定了22 個(gè)主要化學(xué)成分(圖7)。

        圖6 銀杏葉主要成分總離子流圖

        圖7 銀杏葉中22種主要化學(xué)成分總離子流圖

        基于UPLC-Q-TOF/MS 技術(shù),以內(nèi)標(biāo)法(格列本脲為內(nèi)標(biāo))對(duì)銀杏葉中22 個(gè)化合物進(jìn)行含量測(cè)定,建立了22 個(gè)化合物的含量測(cè)定方法。通過標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算得到3 個(gè)產(chǎn)地不同月份銀杏葉中主要化學(xué)成分含量,并將22 個(gè)成分歸類為萜內(nèi)酯類(銀杏內(nèi)酯A、銀杏內(nèi)酯B、銀杏內(nèi)酯C、白果內(nèi)酯、銀杏內(nèi)酯J)、黃酮醇苷類{蘆丁、山柰酚-3-O-蕓香糖苷、碟豆素、槲皮素-3-O-葡萄糖基(1→2)鼠李糖苷、水仙苷、3-O-(2-O-[6-O-(β-羥基-反-香豆酰)-葡萄糖基]-鼠李糖基)山柰酚、3-O-(2-O-[6-O-(β-羥基-反-香豆酰)-葡萄糖基]-鼠李糖基)槲皮素}、有機(jī)酸類[D-(-)奎寧酸、原兒茶酸、莽草酸]、烷基酚類[銀杏酸(C17∶1)、銀杏酸(C15∶1)、銀杏酸(C13∶0)]、雙黃酮類(銀杏雙黃酮、穗花杉雙黃酮、金松雙黃酮、白果雙黃酮)5類(表4)。

        表4 3個(gè)產(chǎn)地銀杏葉不同月份的主要化學(xué)成分質(zhì)量分?jǐn)?shù)(n=3)%

        3.3 不同產(chǎn)地的銀杏葉主要化學(xué)成分與內(nèi)生菌群落的相關(guān)性分析

        通過計(jì)算銀杏葉主要化學(xué)成分含量與其內(nèi)生菌基因組高通量數(shù)據(jù)之間的相關(guān)性系數(shù)(Spearman 等級(jí)相關(guān)系數(shù)、Pearson 相關(guān)系數(shù)等),將獲得的數(shù)值矩陣通過Heatmap 直觀展示。在銀杏葉片內(nèi)生細(xì)菌中,萜內(nèi)酯與其相關(guān)性??;黃酮醇苷與其大多呈正相關(guān),如假單胞菌(Pseudomonas)、羅姆布茨菌(Romboutsia)、葡萄球菌(Staphylococcus)、unclassified_f_Burkholderiaceae等;有機(jī)酸與其也大多呈正相關(guān),如短波單胞菌(Brevundimonas)、假單胞菌、紅球菌屬(Rhodococcus)、葡萄球菌;內(nèi)生細(xì)菌與烷基酚和雙黃酮大多呈顯著負(fù)相關(guān)。銀杏葉片中內(nèi)生真菌中,萜內(nèi)酯大部分與內(nèi)生真菌呈顯著負(fù)相關(guān);黃酮醇苷與內(nèi)生真菌多數(shù)呈負(fù)相關(guān),但黃酮醇苷與鏈格孢屬(Alternaria)、枝孢屬(Cladosporium)、球腔菌屬(Mycosphaerella)呈顯著正相關(guān);有機(jī)酸與其多數(shù)呈正相關(guān),尤其與鏈格孢屬、球腔菌屬、擲孢酵母屬(Sporobolomyces)、匍柄霉屬(Stemphylium)呈顯著正相關(guān);烷基酚與內(nèi)生真菌相關(guān)性較小;雙黃酮與擔(dān)孢酵母屬(Erythrobasidium)、烏氏霉屬(Uwebraunia)呈顯著正相關(guān)(圖8)。

        圖8 3個(gè)產(chǎn)地銀杏葉內(nèi)生菌與其主要化學(xué)成分的相關(guān)性

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        內(nèi)生菌在植物體內(nèi)特殊的生態(tài)環(huán)境中與宿主植物長(zhǎng)期協(xié)同進(jìn)化,產(chǎn)生或者參與合成同植物次生代謝物相似的次級(jí)代謝產(chǎn)物[5-7]。因此藥用植物內(nèi)生菌也是影響中藥材品質(zhì)的重要因素,內(nèi)生菌的組成受多種因素的影響,如取樣部位不同[8]、生長(zhǎng)階段[9]及地域差異[10]等環(huán)境因素。在本研究中,隨著月份的變化,3 產(chǎn)地的銀杏葉內(nèi)生菌多樣性和豐富度都有明顯的波動(dòng)變化,表明了季節(jié)是影響銀杏葉內(nèi)生菌多樣性和豐富度的因素之一。已有文獻(xiàn)報(bào)道從銀杏中分離的內(nèi)生細(xì)菌主要有枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)、解淀粉芽胞桿菌(Bacillus amyloliquefaciens),具有抑制病原菌侵染的作用[11-12],在本研究結(jié)果中也發(fā)現(xiàn)了類似的厚壁菌門(Firmicutes)下芽孢桿菌群落,同時(shí)還發(fā)現(xiàn)了甲基桿菌屬、鞘氨醇單胞菌屬等為優(yōu)勢(shì)菌。查閱文獻(xiàn)發(fā)現(xiàn)產(chǎn)內(nèi)酯類成分的內(nèi)生真菌有毛霉屬(Mucor)、鐮孢菌屬(Fusarium);分離出產(chǎn)黃酮類化合物的內(nèi)生真菌有卷枝毛霉(Mucor circinelloides)、刺盤孢屬(Colletotrichura)、匐柄霉(Stemphylium botryosum)、交鏈孢屬(Alternaria)、赤霉屬(Gibberella)、蜜孢霉(Sphacelia)和放線菌屬(Actinomyces)[13-14],本研究豐富了銀杏葉內(nèi)生細(xì)菌和內(nèi)生真菌的種類與資源。

        本研究采用UPLC-Q-TOF/MS 建立了快速靈敏測(cè)定銀杏葉中的萜內(nèi)酯類、黃酮醇類、雙黃酮類、有機(jī)酸類、烷基酚等類化合物含量的方法,并對(duì)都江堰、崇明、平邑3 個(gè)不同地區(qū)銀杏葉內(nèi)生真菌、細(xì)菌多樣性與其主要化學(xué)成分進(jìn)行了相關(guān)性分析,期望找到與銀杏葉關(guān)鍵次生代謝產(chǎn)物呈正相關(guān)關(guān)系的內(nèi)生菌[15]。通過相關(guān)性分析,在銀杏葉片內(nèi)生細(xì)菌中,萜內(nèi)酯與其相關(guān)性小;黃酮醇苷與其大多呈正相關(guān),如假單胞菌、羅姆布茨菌、葡萄球菌等。銀杏葉片中內(nèi)生真菌中,萜內(nèi)酯大部分與內(nèi)生真菌呈顯著負(fù)相關(guān);黃酮醇苷與內(nèi)生真菌多數(shù)呈負(fù)相關(guān),但黃酮醇苷與鏈格孢屬、枝孢屬、球腔菌屬呈顯著正相關(guān)。這為進(jìn)一步探究該類菌對(duì)銀杏葉次生代謝產(chǎn)物影響的機(jī)制提供了研究基礎(chǔ),為提高銀杏次生代謝產(chǎn)物的含量及質(zhì)量提供了理論依據(jù)。在后續(xù)研究中,將進(jìn)一步對(duì)銀杏葉內(nèi)生菌進(jìn)行培養(yǎng)做相互驗(yàn)證,深入研究?jī)?yōu)勢(shì)菌的功能,為銀杏葉品質(zhì)形成、合理采收提供科學(xué)依據(jù)。

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