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        基于逆轉(zhuǎn)錄重組酶聚合酶擴(kuò)增技術(shù)的蘋果病毒新型快速檢測方法

        2022-01-21 06:10:10焦健夏炎武雪莉王苗苗宋春暉龐宏光白團(tuán)輝宋尚偉黃松鄭先波
        關(guān)鍵詞:檢測

        焦健,夏炎,武雪莉,王苗苗,宋春暉,龐宏光,白團(tuán)輝,宋尚偉,黃松,2,鄭先波

        (1.河南農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院,河南 鄭州,450002; 2.信陽農(nóng)林學(xué)院,河南 信陽,464006)

        蘋果(Malusdomestica)是中國種植面積最大,產(chǎn)量最高的果樹樹種之一,具有較高的經(jīng)濟(jì)價(jià)值[1-2],但蘋果生長中很容易發(fā)生由病毒和類病毒引起的病害[3]。目前世界上報(bào)道的蘋果病毒病有39種,包括非潛隱性病毒25種,潛隱性病毒14種[4-5],其中蘋果壞死花葉病毒(apple mosaic virus,ApNMV)、蘋果褪綠葉斑病毒(apple chlorotic leaf spot virus,ACLSV)、蘋果莖痘病毒(apple stem pitting virus,ASPV)、蘋果莖溝病毒(apple stem grooving virus,ASGV)、蘋果銹果類病毒(apple scar skin viroid,ASSVd)在中國發(fā)生較為普遍[6]。蘋果病毒病已成為制約蘋果產(chǎn)業(yè)健康發(fā)展的重要生物因素,病毒侵入樹體后會在樹體內(nèi)迅速增殖,使其終生帶毒,不僅影響果樹正常的生理代謝和生長,而且會導(dǎo)致果實(shí)品質(zhì)和產(chǎn)量的下降[7]。

        蘋果樹主要通過無性繁殖,樹體一旦感病,將終生帶毒[8],因此要想盡可能降低、避免病毒病造成的損失,只能通過繁殖無病毒種植材料以及在植物生長階段的早期進(jìn)行病毒檢測并及時(shí)處理感病植株,以避免產(chǎn)量的損失,防止病毒病的進(jìn)一步傳播[9]。因此,特異性強(qiáng)、靈敏度高、準(zhǔn)確快速的蘋果病毒檢測體系十分重要。隨著分子病毒學(xué)和生物技術(shù)的進(jìn)步,如今有許多方法已應(yīng)用于植物病毒的檢測:指示植物法、酶聯(lián)免疫法、電鏡觀測法、核酸分子雜交法[10-13]、聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)和新一代測序技術(shù)(next generation sequencing,NGS)[14-16],但大多數(shù)分子檢測方法都存在操作復(fù)雜、設(shè)備要求高、檢測時(shí)間過長等缺陷。

        重組酶聚合酶擴(kuò)增(recombinase polymerase amplification,RPA)是一種新型的等溫核酸擴(kuò)增和檢測技術(shù),由英國TwistDx Inc公司于2006年成功開發(fā)[17]。其主要依賴于重組酶(recombinase)、鏈置換DNA聚合酶(polymerase)和單鏈DNA結(jié)合蛋白(single-stranded DNA-binding protein)的酶促反應(yīng)[18]:首先兩條引物先與重組酶蛋白形成穩(wěn)定的復(fù)合物;該復(fù)合物能夠侵入靶標(biāo)dsDNA,并將引物導(dǎo)向同源序列;隨后在37~42 ℃的條件下通過DNA聚合酶催化鏈置換、合成、連續(xù)擴(kuò)增[19]。與PCR熱變性不同的是,RPA利用酶促混合物進(jìn)行DNA變性,因此在等溫條件下即可完成擴(kuò)增反應(yīng)。此外,在常規(guī)RPA體系中可加入逆轉(zhuǎn)錄酶,開發(fā)出逆轉(zhuǎn)錄重組酶聚合酶擴(kuò)增技術(shù)(reverse transcription-recombinase polymerase amplification,RT-RPA)。RT-RPA以RNA為檢測底物,逆轉(zhuǎn)錄為cDNA后再進(jìn)行擴(kuò)增,就可實(shí)現(xiàn)RNA的一步法擴(kuò)增,從而能夠更加方便快捷的進(jìn)行RNA病毒檢測。

        RT-RPA操作簡單、靈敏度高、擴(kuò)增效率高、在相對較低的恒溫(25~43 ℃)下持續(xù)5~20 min即可完成擴(kuò)增反應(yīng)[20],近兩年備受關(guān)注。目前關(guān)于植物病毒的RPA檢測方法在黃瓜綠斑駁花葉病毒、黃瓜花葉病毒、玉米褪綠斑駁病毒、山藥花葉病毒、番茄斑駁病毒、馬鈴薯Y病毒、番茄黃葉卷曲病毒和玫瑰花環(huán)病毒等[21-26]已有報(bào)道。KIM等[27]也根據(jù)蘋果莖溝病毒的CP基因高保守區(qū)域設(shè)計(jì)出了能夠靈敏快速檢測該病毒的RPA引物,但是,此引物是以梨中分離出ASGV病毒進(jìn)行設(shè)計(jì)的。此外,蘋果其他的病毒病如ASPV、ACLSV以及近年來最新報(bào)道的蘋果花葉病的主要病原物ApNMV,還未建立其RT-RPA檢測體系。

        本研究以蘋果病毒ASGV、ASPV、ACLSV和ApNMV為主要研究對象,利用逆轉(zhuǎn)錄重組酶聚合酶擴(kuò)增技術(shù),建立RT-RPA新型快速檢測方法,為蘋果病毒病的早期快速診斷提供技術(shù)支持。

        1 材料與方法

        1.1 試驗(yàn)材料

        試驗(yàn)在河南農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院河南省果樹瓜類分子生物學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室完成。試驗(yàn)材料采集地點(diǎn)為河南農(nóng)業(yè)大學(xué)毛莊科教園區(qū)果樹實(shí)驗(yàn)站蘋果資源圃,從不同品種的蘋果樹上采集20份葉片有明顯病癥的蘋果葉片樣品,采集時(shí)間為2020年8月。采集后的樣品帶回實(shí)驗(yàn)室后放于-80 ℃冰箱貯藏用于后續(xù)試驗(yàn)。

        1.2 引物設(shè)計(jì)

        下載NCBI數(shù)據(jù)庫中病毒全長序列,利用MEGA-X軟件[28]進(jìn)行比對分析,找尋病毒保守區(qū)域。隨后參照RPA等溫?cái)U(kuò)增試劑盒TwistAmpbasic kit(Twist DX,United Kingdom)的要求,采用NCBI在線引物設(shè)計(jì)工具Primer-BLAST,設(shè)計(jì)檢測ASGV、ASPV、ApNMV和ACLSV的引物(表1),并由生工生物(上海,中國)合成。RPA引物設(shè)計(jì)原則如下:(1)在保守區(qū)域設(shè)計(jì)引物,長度30~35 bp,GC含量20%~70%,單堿基重復(fù)序列<5;(2)RPA擴(kuò)增產(chǎn)物長度為100~200 bp;(3)引物序列與NCBI數(shù)據(jù)庫(nr/nt)進(jìn)行Blast比對,確保其種內(nèi)保守性和種間特異性。

        1.3 RNA提取與RT-RPA反應(yīng)

        將采集的蘋果葉片置于液氮中冷凍后研磨成粉末,使用植物總RNA提取試劑盒DP432(北京,天根)提取總RNA,隨后使用瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計(jì)Nanodrop 2000(Thermo,USA)分別檢驗(yàn)RNA的完整性和質(zhì)量濃度(ng·μL-1)。

        RT-RPA反應(yīng)體系參照TwistAmp?basic試劑盒(Twist DX,United Kingdom)說明書,按照上下游引物各2.5 μL、2.5 μL HiScript III reverse Transcriptase(200 U·μL-1),2.5 μL RNase inhibitor(40 U·μL-1),rehydration buffer 29.5 μL、RNase-free水7 μL、總RNA 1.0 μL配置RT-RPA反應(yīng)預(yù)混液,將47.5 μL預(yù)混液轉(zhuǎn)移至反應(yīng)沉淀中。通過上下移液混合,直到整個(gè)顆粒重新懸浮,37 ℃孵育5 min進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng);隨后在反應(yīng)管蓋子上加入2.5 μL醋酸鎂,渦旋后離心;42 ℃溫育20~30 min。反應(yīng)產(chǎn)物使用質(zhì)量濃度為1%的瓊脂糖凝膠電泳分析。

        1.4 反應(yīng)體系優(yōu)化

        以10 ng·μL-1植物總RNA為模板,反應(yīng)體系及步驟參照1.3中RT-RPA反應(yīng)體系,反應(yīng)溫度分別設(shè)定為20、25、30、35、37、39、42、45及50 ℃進(jìn)行RT-RPA擴(kuò)增以確定RT-RPA最佳反應(yīng)溫度,在最佳溫度下將反應(yīng)時(shí)間分別設(shè)定為1、5、10、15、20、25及30 min進(jìn)行RT-RPA擴(kuò)增以確定RT-RPA最佳反應(yīng)時(shí)間。反應(yīng)結(jié)束后將5 μL擴(kuò)增產(chǎn)物加入10 μL SDS loading buffer(5%甘油,10 mmol·μL-1EDTA,0.01%溴酚藍(lán)和0.25% SDS)中,在質(zhì)量分?jǐn)?shù)為2%瓊脂糖凝膠上進(jìn)行電泳并觀察結(jié)果。

        1.5 RNA轉(zhuǎn)錄本制備與靈敏度檢測

        以感病蘋果葉片的cDNA為模板,利用表1中的RPA特異性引物,進(jìn)行PCR擴(kuò)增。將4種蘋果病毒的擴(kuò)增產(chǎn)物純化后,克隆到pGEM-T質(zhì)粒(Promega)并進(jìn)行測序驗(yàn)證。隨后使用pUC/M13通用引物(M13pUC-Fwd,5′-CCCAGTCACGACGTTGTAAAACG-3′;M13pUC-Rev,5′-AGCGGATAACAATTTCACACAGG-3′)擴(kuò)增出包含T7啟動子序列的病毒dsDNA片段。將上述PCR產(chǎn)物稀釋至100 ng·μL-1,使用HiScribe T7 Quick High Yield RNA Synthesis kit(New England Biolabs),分別合成4種病毒的RNA片段。隨后采用RNA純化試劑盒(北京,天根)對體外轉(zhuǎn)錄的RNA進(jìn)行純化,使用NanoDrop 2000分光光度計(jì)測量其濃度,并轉(zhuǎn)化為拷貝數(shù)。拷貝數(shù)的計(jì)算方法[29]:

        拷貝數(shù)(copies·μL-1)=

        以4種病毒片段的RNA轉(zhuǎn)錄本為模板,以9.63×109copies·μL-1為初始濃度,以10為倍數(shù)依次進(jìn)行稀釋,同時(shí)設(shè)置陰性對照,分別進(jìn)行RT-RPA和RT-PCR擴(kuò)增反應(yīng),RT-PCR反應(yīng)體系為2×Taq酶25 μL,RPA-F、R引物(10 μmol·L-1)各2.5 μL,cDNA 2 μL,模板2 μL,滅菌雙蒸水補(bǔ)足至50 μL,RT-RPA擴(kuò)增方法及體系參照1.3。RT-RPA和RT-PCR擴(kuò)增產(chǎn)物在質(zhì)量分?jǐn)?shù)為2 %的瓊脂糖凝膠上進(jìn)行電泳,觀察結(jié)果。

        1.6 RPA引物特異性分析

        分別挑選ASGV、ASPV、ApNMV和ACLSV復(fù)合侵染不同類型的蘋果葉片為材料,使用RT-PCR法和特異性引物(表1)對4對RPA引物進(jìn)行特異性分析,反應(yīng)體系參照1.5中RT-PCR反應(yīng)體系。此外,其他幾種蘋果中常見病毒病,如ASSVd(NCBI登錄號EU031466),ApMV(RNAs 1-3,NCBI登錄號NC003464,NC003465和NC003480)以及李壞死環(huán)斑病毒(prunus necrotic ring spot virus,PNRSV;RNAs 1-3,NCBI登錄號NC004362,NC004363和NC004364),人工合成后(南京,金斯瑞)作為底物,進(jìn)行RPA擴(kuò)增特異性分析,‘嘎啦’蘋果脫毒苗的cDNA(CK)作為陰性對照。

        表1 蘋果病毒檢測所用引物Table 1 Primers used to detect apple viruses

        2 結(jié)果與分析

        2.1 RT-RPA反應(yīng)體系優(yōu)化

        首先對RT-RPA反應(yīng)的時(shí)間和溫度進(jìn)行優(yōu)化。相同反應(yīng)時(shí)間,在15~50 ℃區(qū)間進(jìn)行RT-RPA反應(yīng),擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳,結(jié)果如圖1所示。當(dāng)RPA反應(yīng)溫度高于25 ℃時(shí),開始有少量擴(kuò)增;35~43 ℃時(shí),擴(kuò)增效果無明顯差異;25 ℃以下以及50 ℃以上,無擴(kuò)增。由于要兼顧逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)時(shí)所推薦的最佳溫度(37 ℃),綜合考慮,本試驗(yàn)選擇37 ℃為RT-RPA最適反應(yīng)溫度。

        M:DNA marker(bp);A:蘋果莖溝病毒;B:蘋果壞死花葉病毒;C:蘋果褪綠葉斑病毒;D:蘋果莖痘病毒;N:陰性對照。M:DNA marker(bp);A:ASGV;B:ApNMV;C:ACLSV;D:ASPV;N:Negative control.圖1 不同反應(yīng)溫度對4種蘋果病毒RPA擴(kuò)增的影響Fig.1 Effect of different reaction temperatures on RPA amplification of four apple viruses

        隨后在37 ℃條件下,優(yōu)化RT-RPA反應(yīng)時(shí)間,擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳,結(jié)果如圖2所示。反應(yīng)在10 min后,開始有可觀測到的擴(kuò)增條帶;反應(yīng)時(shí)間在20~30 min時(shí),擴(kuò)增效果較好。因此,本試驗(yàn)將30 min作為最適宜反應(yīng)時(shí)間。綜上,最終確定在37 ℃條件下,反應(yīng)時(shí)間為30 min時(shí),RT-RPA反應(yīng)可達(dá)到有效的目標(biāo)病毒片段擴(kuò)增。

        M:DNA marker(bp);A:蘋果莖溝病毒;B:蘋果壞死花葉病毒;C:蘋果褪綠葉斑病毒;D:蘋果莖痘病毒;N:陰性對照。M:DNA marker(bp);A:ASGV;B:ApNMV;C:ACLSV;D:ASPV;N:Negative control.圖2 不同反應(yīng)時(shí)間對4種蘋果病毒RPA擴(kuò)增的影響Fig.2 Effect of different reaction time on RPA amplification of four apple viruses

        2.2 RT-RPA靈敏度檢測

        靈敏度檢測結(jié)果如圖3所示,4種蘋果病毒的RT-RPA檢測靈敏度下限均為9.63×101copies,遠(yuǎn)高于RT-PCR檢測靈敏度,其中ACLSV和ASPV的RT-RPA檢測靈敏度比RT-PCR檢測靈敏度高100倍,而ASGV、ApNMV的RT-RPA檢測靈敏度比RT-PCR檢測靈敏度高1 000倍。

        M:DNA marker(bp);N:陰性對照。M:DNA marker(bp);N:Negative control.圖3 4種蘋果病毒的RT-PCR(A)與RT-RPA(B)檢測靈敏度比對Fig.3 Comparison of detection sensitivity for four apple viruses between RT-PCR(A)and RT-RPA(B)

        2.3 RT-RPA引物特異性分析

        由于自然樣本中,蘋果病毒多為復(fù)合侵染,在使用RT-RPA檢測病毒之前,事先采用RT-PCR技術(shù)對田間樣本的病毒進(jìn)行檢測,挑選出不同的病毒復(fù)合感染類型葉片。隨后以不同病毒感染類型的蘋果葉片cDNA以及人工合成的ASSVd、ApMV和PNRSV病毒為模板,對ASGV、ASPV、ApNMV和ACLSV 4種蘋果病毒的RT-RPA引物特異性進(jìn)行檢測。結(jié)果顯示,4對蘋果病毒的RPA引物均能夠準(zhǔn)確檢測出該病毒,與RT-PCR檢測結(jié)果一致,未出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增(圖4)。證明所設(shè)計(jì)的RPA引物特異性良好,能夠?qū)R徊《具M(jìn)行檢測。

        M:DNA marker(bp);A:ASPV檢測;B:ASGV檢測;C:ACLSV檢測;D:ApNMV檢測;CK:空白對照;√:陽性;×:陰性。M:DNA marker(bp);A:Detection of ASPV;B:Detection of ASGV;C:Detection of ACLSV;D:Detection of ApNMV;√:Positive;×:Negative.圖4 4種蘋果病毒RPA引物特異性檢測Fig.4 Specific detection of RPA primers of four apple viruses

        3 結(jié)論與討論

        目前,植物病毒診斷大多基于PCR法,這就需要將樣品運(yùn)送到專業(yè)機(jī)構(gòu)通過大型、昂貴的儀器進(jìn)行檢測,并且PCR技術(shù)往往依賴高質(zhì)量的核酸提取,這就使得整個(gè)檢測流程過于復(fù)雜。RPA技術(shù)不需要高質(zhì)量的模板,其反應(yīng)條件簡單,不需要復(fù)雜的變溫儀器,通過合理的特異性引物設(shè)計(jì),即可在常溫下進(jìn)行靶標(biāo)病毒檢測[34-36]。本研究針對ASGV、ASPV、ApNMV和ACLSV 這4種病毒,設(shè)計(jì)了特異性的RPA擴(kuò)增引物,通過對溫度、反應(yīng)時(shí)間以及檢測靈敏度等方面的系統(tǒng)優(yōu)化,建立了特異性強(qiáng),靈敏度高的RT-RPA新型快速檢測方法,能夠適用于在條件簡陋的情況下快速檢測蘋果病毒。

        在反應(yīng)時(shí)間上,本研究采用的RT-RPA技術(shù)比常規(guī)RT-PCR在檢測時(shí)間上縮短了1 h;在靈敏度上,RT-RPA比RT-PCR高102~103倍;在反應(yīng)溫度上,37 ℃條件下即可很好地進(jìn)行擴(kuò)增。這表明RPA擴(kuò)增技術(shù)可以很好檢測低濃度病毒載量,在病毒感染初期或者苗木病毒檢測中,具有明顯的優(yōu)勢,隨著該技術(shù)的廣泛應(yīng)用可以完美替代RT-PCR檢測。此外,RPA反應(yīng)組分以凍干粉末的形式提供,這提高了檢測試劑的穩(wěn)定性,使得該過程易于遵循,并防止檢測被污染。

        目前,采用RPA技術(shù)檢測蘋果病毒病的研究相對較少,KIM等[27]根據(jù)梨樹中ASGV病毒分離物的CP區(qū)域設(shè)計(jì)出了能夠檢測ASGV的RPA引物,但經(jīng)過序列比對分析后發(fā)現(xiàn),該引物設(shè)計(jì)區(qū)域保守性較差,可能無法滿足變異ASGV病毒的檢測。本研究針對ASGV、ASPV、ApNMV和ACLSV 4種病毒,通過不同病毒分離物的序列比對,設(shè)計(jì)出了特異性RPA引物,可以滿足這4種病毒的特異性檢測,效果顯著。雖然本研究采用的是瓊脂糖電泳檢測陽性結(jié)果,但設(shè)計(jì)的引物也可以結(jié)合側(cè)向流動試紙條或者熒光檢測技術(shù)進(jìn)行應(yīng)用。

        綜上所述,RT-RPA有可能在田間直接進(jìn)行病毒檢測,有助于及時(shí)根除感病植株,從而最大限度地降低病毒傳播相關(guān)的風(fēng)險(xiǎn)。鑒于RT-RPA檢測技術(shù)的準(zhǔn)確性和實(shí)用性,建議進(jìn)一步加大RT-RPA技術(shù)在蘋果病毒檢測方面的研發(fā)。

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