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        非洲菊菌核病病原菌的分離鑒定及抑菌藥劑篩選

        2022-01-07 02:26:58曹奕鴦夏朝水陳昌銘陳瑋婷甘瑋欣林輝鋒林發(fā)壯莫智龍
        福建農業(yè)學報 2021年10期
        關鍵詞:盤菌子囊菌核

        曹奕鴦,夏朝水,陳昌銘,陳瑋婷,甘瑋欣,林輝鋒,林發(fā)壯,莫智龍

        (三明市農業(yè)科學研究院花卉研究所,福建 三明 365051)

        0 引言

        【研究意義】非洲菊Gerbera jamesoniiBolus是菊科大丁草屬多年生宿根草本花卉,原產于南非,是世界五大切花之一。因其具有花色豐富、花枝挺拔、花朵碩大、切花率高、在保護地栽培下可周年產花的優(yōu)點,故被廣泛種植[1]。近年來,隨著種植面積的擴大以及設施栽培帶來良好的病害繁殖環(huán)境,非洲菊病害日趨嚴重,其中菌核病是易誘發(fā)的病害之一[2]。國外的美國、阿根廷、匈牙利、以色列[3-6],國內的上海市、浙江溫嶺、江蘇淮安及河南淮陽等非洲菊產區(qū)均有非洲菊菌核病的報道[7-10]。福建省是非洲菊的主要產區(qū)之一,近年來種植規(guī)模已超過一萬畝[11],其中清流縣是福建省最早規(guī)模化種植非洲菊的地區(qū),也是種植面積最大的地區(qū)。經筆者調查發(fā)現(xiàn),當?shù)胤侵蘧站瞬“l(fā)病率較高,連作地塊發(fā)病嚴重,發(fā)病率最高可達30%,菌核病已成為該地區(qū)非洲菊生產上亟需解決的問題,但是迄今為止,當?shù)刂饕姆乐畏椒ㄟ€是用石灰、敵克松等土壤消毒的方式進行預防,采用多菌靈等常規(guī)藥劑進行治療,均未能有效控制。同時國內在非洲菊菌核病病原菌形態(tài)學、分子鑒定、藥劑篩選方面的研究較少,影響了非洲菊菌核病的識別及有效防治。現(xiàn)階段在生產上迫切需要分離病害病原,并進行防治藥劑篩選,才能有針對性地進行防控,進一步提高防控效果。【前人研究進展】目前國內外關于非洲菊菌核病的報道較少,主要介紹發(fā)病癥狀[3-4,7,9-10]、發(fā)生情況[7,10]及防治措施[9],僅有周韋成[7]通過形態(tài)學鑒定方式,鑒定出非洲菊的菌核病病原為核盤菌Sclerotinia sclerotiorum。【本研究切入點】菌核病已成為福建省清流縣非洲菊生產上亟需解決的問題,有關非洲菊菌核病分子鑒定及防治藥劑篩選有待深入研究?!緮M解決的關鍵問題】采用組織分離法分離菌核病病原菌,利用形態(tài)學和ITS分子鑒定方式鑒定病害病原,并利用室內毒力測定法進行防治藥劑的篩選研究,以明確病原菌種類,篩選出有效殺菌劑,以期為防治非洲菊菌核病提供科學依據,為進一步進行非洲菊抗病性育種等提供重要材料。

        1 材料與方法

        1.1 病原菌菌株的分離與致病力測定

        1.1.1 病原菌菌株的分離 非洲菊菌核病病株樣品采集于福建省清流縣美豐花卉苗木農民專業(yè)合作社非洲菊種植基地,采用組織分離法[12]分離純化病原菌:病葉或病枝用自來水洗凈,在無菌操作臺上取病部的組織,浸入75%酒精3 s后,用無菌水沖洗3次并用無菌吸水紙吸干水分;接著置于0.1%升汞中消毒1 min,再用無菌水沖洗3次并吸干水分;最后取0.5 cm大小的病健交接處組織轉移至PDA培養(yǎng)基中央,置于25 ℃恒溫、黑暗條件下培養(yǎng)。采用菌絲尖端純化法逐步純化分離菌株,純化后的菌株置于4 ℃條件下保存。

        1.1.2 病原菌菌株的致病力測定 將保存的菌株接種到PDA培養(yǎng)基上并繼代1次,完成菌株的活化。接種時,用直徑6 mm的打孔器取新鮮菌絲邊緣菌碟,將菌碟中菌絲面貼于100 d苗齡非洲菊杯苗的葉柄基部,在相同位置放置無菌PDA培養(yǎng)基作為對照。接種完成后,裝入透明自封袋中置于光照培養(yǎng)箱中22 ℃,12 h光暗交替條件下保濕培養(yǎng)。接種后觀察記載發(fā)病過程,顯癥后再次分離鑒定病原菌,驗證是否與接種菌株一致。

        1.2 病原菌菌株的形態(tài)學觀察

        用黃色移液槍槍頭取邊緣菌絲菌碟,將菌碟移至PDA培養(yǎng)基中央,置于22 ℃恒溫黑暗條件下培養(yǎng),觀察菌絲生長和菌核形成情況。菌核的萌發(fā)誘導參考孫敬賢等[13]的方法:收集培養(yǎng)基中的菌核,先在4 ℃的低溫黑暗條件下處理5周,后將菌核移入盛有濕潤滅菌沙子的罐頭瓶中,置于室內自然溫度及弱光下培養(yǎng),同時觀察記載菌核萌發(fā)過程。菌核萌發(fā)形成成熟子囊盤后,對子囊盤進行切片處理,并在顯微鏡下觀察子囊孢子形態(tài)和大小。

        1.3 菌株分子鑒定

        采用基于ITS序列的分子鑒定方式對非洲菊菌核病病原進行分子鑒定:利用omega D3195-02真菌DNA提取試劑盒提取菌核病病原菌DNA,以病原菌DNA為模板,以ITS1F(5′-TCCGTAGGTGAACCT GCGG-3′)和ITS4R(5′-TCCTCCGCTTATTGATA TGC-3′)為引物擴增病原菌rDNA-ITS序列。PCR反應體系為50 μL:包括正反向引物各1 μL、2×PCR Mix 25 μL、50 ng·μL-1的DNA模板1 μL,ddH2O 23 μL;PCR反應程序:95 ℃預變性3 min,95 ℃變性20 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸40 s,共40個循環(huán),最后72 ℃延伸7 min。PCR擴增產物經1%瓊脂糖凝膠電泳檢測后,送至鉑尚生物技術(上海)有限公司福州測序部進行測序,測序得到的序列提交至GenBank數(shù)據庫,同時,將測序結果在GenBank數(shù)據庫中進行比對,比對后下載同源序列,利用MEGA6.06軟件,選擇鄰接法(Neighbor-Joining,NJ),通過自舉分析(bootstrap)進行置信度檢測(自展值為1000),并基于Kimura 2-parameter模型計算進化距離,構建系統(tǒng)進化樹。

        1.4 殺菌劑對病原菌的室內毒力的測定

        將表l中供試藥劑均用無菌水稀釋成1000 μg·mL-1質量濃度的母液,各藥劑分別用無菌水配制成使用濃度的10倍。同時,在無菌操作條件下,用移液槍取1 mL不同濃度藥劑分別注入直徑為9 cm的無菌培養(yǎng)皿,倒入冷卻至50 ℃左右的無菌PDA培養(yǎng)基9 mL,輕輕搖勻,制成系列濃度的含藥培養(yǎng)基,以注入無菌水的不含藥平板作為對照,每處理重復3次。采用菌絲生長速率法測定5種殺菌劑對供試菌核病菌株C4-1菌絲生長的抑制作用:用直徑6 mm的打孔器取新鮮病原菌菌絲邊緣菌碟,接種于含系列質量濃度殺菌劑的PDA培養(yǎng)基上,置于22 ℃黑暗條件下培養(yǎng)2 d;采用十字交叉法測量菌絲直徑,取平均值,計算菌絲生長抑制率,計算公式為:抑制率/%=[(對照菌落直徑-處理菌落直徑)/(對照菌落直徑-菌碟直徑)]×100;以藥劑質量濃度的對數(shù)值為橫坐標x,以抑制率轉換成的幾率值為縱坐標y,求出各藥劑對非洲菊菌核病菌株C4-1的毒力回歸方程和相關系數(shù),并計算出各藥劑的有效抑制中濃度EC50。

        表1 供試殺菌劑母液及使用濃度Table 1 Original and applied concentrations of fungicides under study

        2 結果與分析

        2.1 病原菌的分離與致病力測定

        采用組織分離法獲得了純化后的菌株C4-1。在光照培養(yǎng)箱中,對100 d苗齡非洲菊苗接種,結果表明菌株C4-1可以侵染非洲菊苗,接種第2 天開始發(fā)?。▓D1-A),病部首先出現(xiàn)水漬狀軟腐并逐漸向葉片和莖基部處蔓延;接種第3天可見病部表面密生白色絮狀物(圖1-B);接種10 d后在病部可見由白色菌絲團集聚形成的黑色鼠糞狀菌核(圖1-C),而對照處理的非洲菊苗生長正常,未出現(xiàn)病害(圖1-D)。此外,從植株發(fā)病部位重新分離到的病原菌與原始菌株一致,接種后病害發(fā)病癥狀與田間發(fā)病癥狀(圖1-E)一致,說明菌株C4-1即是導致非洲菊菌核病的病原。

        圖1 非洲菊苗期菌核病感病過程及田間發(fā)病癥狀Fig. 1 Development of sclerotinia stem rot in gerbera seedlings and disease symptoms in the field

        2.2 病原菌的形態(tài)觀察

        22 ℃恒溫培養(yǎng)條件下,菌株C4-1在PDA培養(yǎng)基中可迅速生長,2 d可長滿9 cm直徑的培養(yǎng)皿(圖2-A),此時菌絲為白色,氣生菌絲較少;培養(yǎng)3 d后,菌絲開始出現(xiàn)白色棉絮狀菌絲,并在培養(yǎng)皿邊緣部位集聚形成白色的菌絲團(圖2-B);5 d后菌絲團慢慢變硬,黑色素逐漸累積,菌核形成部位表面布滿小水珠(圖2-C);最后,水珠慢慢消失,并在培養(yǎng)皿邊緣形成直徑2~5 mm、堅硬、橢圓形或近球形的黑色菌核(圖2-D)。

        圖2 菌株C4-1在PDA培養(yǎng)基中的生長過程Fig. 2 Growth of C4-1 in PDA medium

        菌核經低溫處理后,在自然條件下弱光培養(yǎng),可觀察菌核萌發(fā)及子囊的形成過程:菌核萌發(fā)后首先長出淺褐色的子囊柄(圖3-A);接著子囊柄頂端膨大開始形成子實體(圖3-B);隨著子實體繼續(xù)生長,子囊柄頂端逐漸形成直徑為0.5~0.8 cm的淡黃色盤狀子囊盤(圖3-C),一個菌核可長出2~10個子囊盤(圖3-D)。將子囊盤切片處理,于顯微鏡下觀察,可見子囊棍形、無色、內含8個單行排列的子囊孢子(圖3-E),子囊孢子橢圓形,平均大小為(9~12)μm×(4~7)μm(圖3-F)。

        圖3 菌核的萌發(fā)過程及子囊和子囊孢子的形態(tài)Fig. 3 Germination process of sclerotia and the morphology of asci and ascospores

        2.3 病原菌的分子鑒定

        對病原菌C4-1 rDNA的ITS序列進行擴增和測序,得到540 bp長度的核苷酸序列,序列提交至GenBank數(shù)據庫獲得菌核病菌株C4-1的序列登錄號為MW535875.1。與GenBank中下載的菌株ITS序列進行系統(tǒng)進化分析,結果表明(圖4),分離菌株C4-1與核盤菌Sclerotinia sclerotiorum菌株CBS 499.50、ATCC MYA-4521、ATCC46762聚為一支,與核盤菌屬其他種不在同一個分支,結合菌株的形態(tài)特征,確定分離到的病原菌為核盤菌Sclerotinia sclerotiorum。

        圖4 基于ITS核苷酸序列構建的核盤菌屬系統(tǒng)發(fā)育樹Fig. 4 Phylogenetic tree of Sclerotinia based on ITS nucleotide sequence

        2.4 不同藥劑對核盤菌菌絲的室內毒力測定

        由表2可見,5種殺菌劑對非洲菊核盤菌菌絲生長的抑制效果不同。在供試的5種殺菌劑中,25%咪鮮胺對菌株C4-1的抑菌作用最強,EC50值為0.0324 μg·mL-1;其次為50%啶酰菌胺、40%菌核凈、15%三唑醇,EC50值分別為1.0337、1.8362、6.9408 μg·mL-1;50%多菌靈的抑菌作用最弱,EC50值僅為22.4349 μg·mL-1。

        表2 5種殺菌劑對非洲菊核盤菌菌株C4-1的毒力Table 2 Toxicities of 5 fungicides on S. sclerotiorum C4-1

        3 討論與結論

        傳統(tǒng)植物病原菌的鑒定采用柯赫氏法則結合形態(tài)學觀察的方法,但這種方法需要豐富的植物病理學基礎[14]。近年來隨著分子生物學的發(fā)展,分子生物學技術在病害鑒定的研究中也得到了廣泛的應用,特別是真菌rDNA的ITS區(qū)段既具保守性,又在科、屬、種水平上均有特異性序列,通過對ITS區(qū)進行測序,來診斷和檢測植物病原菌已越來越被廣泛應用[15]。李克寧[16]、周韋成等[7]在非洲菊菌核病病害鑒定中采用了形態(tài)學鑒定的方法,明確非洲菊菌核病病原為核盤菌。盧燦華等[17-20]將形態(tài)學鑒定結合分子鑒定應用于香料煙、桑葚、扁豆、大白菜等植物菌核病病原菌鑒定中。本研究通過形態(tài)學和分子鑒定方法鑒定出非洲菊菌核病的病原為核盤菌Sclerotinia sclerotiorum,與前人通過形態(tài)學鑒定得出的結果一致[7,16],故非洲菊菌核病病原鑒定可以采用形態(tài)學鑒定或者分子鑒定的方式。此外,核盤菌引起的菌核病的菌核在誘導子囊和子囊孢子時,需要較長時間的低溫誘導和適溫培養(yǎng)過程[13],因此,非洲菊菌核病鑒定可優(yōu)先采用分子鑒定的方法,以提高鑒定效率。

        菌核病是一種世界性分布的土傳真菌性病害,其中核盤菌引起的菌核病就可危害約75科,278屬,408種植物[20]。本研究表明,在適宜條件下非洲菊苗可在接種第2天發(fā)病,接種第3天在病部明顯可見白色菌絲,在接種第10天形成菌核,菌核病病菌侵染速度快,病害發(fā)病嚴重。由于菌核是菌核病主要初侵染源,它萌發(fā)產生子囊孢子,通過風、水等途徑傳播[21]。因此,避免與十字花科、葫蘆科、豆科、茄科等[22]易受菌核病影響的作物輪作,病害嚴重地塊避免連作,發(fā)現(xiàn)病株及時清除病殘體,是預防非洲菊菌核病的有效措施。同時,菌核萌發(fā)與低溫處理條件及低溫處理后培養(yǎng)溫度有關[13],在福建清流,非洲菊菌核病菌核在秋冬季節(jié)經過低溫誘導,打破休眠后,在冬季至次年春季可見菌核病大范圍發(fā)生,因此,清流縣在防治該病害時,需因地制宜在冬季至次年春季期間加強預防。

        本研究通過室內毒力測定結果表明,多菌靈對非洲菊菌核病病原菌菌絲生長抑制作用最弱,EC50值為22.4349μg·mL-1,依10 μg·mL-1<EC50<100 μg·mL-1的多菌靈中抗標準[23],菌核病菌C4-1菌株對多菌靈表現(xiàn)出中抗水平。同時,已在葫蘆科、茄科、豆科、傘形科、十字花科、菊科等多種蔬菜上發(fā)現(xiàn)了對多菌靈產生抗藥性的菌核病菌株[24],因此,利用多菌靈防治非洲菊菌核病防效較差。本研究結果還表明咪鮮胺、啶酰菌胺、菌核凈對非洲菊菌核病病原菌菌絲生長抑制作用較強,EC50值分別為0.0324、1.0337、1.8362μg·mL-1,其中,咪鮮胺為咪唑類殺菌劑,啶酰菌胺為酰胺類殺菌劑,菌核凈為新亞胺類殺菌劑,因此,在防治菌核病過程中,可輪換使用咪鮮胺、啶酰菌胺、菌核凈這幾種不同類型藥劑,以提高田間防效并延緩病菌產生抗藥性。

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