馮晉 徐婭玲 孟慶婷 顏漢文 何芳雁
摘 要 目的:研究原兒茶醛對(duì)大鼠腦缺血再灌注損傷(CIRI)后神經(jīng)血管單元(NVU)穩(wěn)態(tài)破壞的保護(hù)作用。方法:將SD大鼠隨機(jī)分為假手術(shù)組、模型組和原兒茶醛高、低劑量組(10、20 mg/kg),每組11只。給藥組大鼠灌胃相應(yīng)藥物,假手術(shù)組和模型組大鼠灌胃等體積水,灌胃體積均為10 mL/kg,每日1次,連續(xù)5? d。末次給藥后,采用線(xiàn)栓法復(fù)制大鼠CIRI模型,采用透射電鏡觀察大鼠腦組織中NVU超微結(jié)構(gòu)的變化;采用Western blot法檢測(cè)大鼠腦組織中NVU相關(guān)蛋白[神經(jīng)元標(biāo)志蛋白(MAP-2)、膠質(zhì)纖維酸性蛋白(GFAP)、水通道蛋白(AQP-4)]的表達(dá)水平;采用免疫熒光染色法檢測(cè)大鼠大腦皮層中上述蛋白的陽(yáng)性表達(dá)水平。結(jié)果:與假手術(shù)組比較,模型組大鼠血腦屏障(BBB)結(jié)構(gòu)被嚴(yán)重破壞,血管腔變窄,內(nèi)皮細(xì)胞外側(cè)嚴(yán)重水腫,基底膜厚薄不一;神經(jīng)元核固縮,周?chē)M織存在大面積水腫;膠質(zhì)細(xì)胞結(jié)構(gòu)嚴(yán)重破壞,胞體皺縮、細(xì)胞器損失;腦組織(或大腦皮層)中MAP-2蛋白表達(dá)水平(或陽(yáng)性表達(dá)水平)均顯著降低(P<0.05或P<0.01),GFAP、AQP-4蛋白表達(dá)水平(或陽(yáng)性表達(dá)水平)均顯著升高(P<0.01)。經(jīng)原兒茶醛干預(yù)后,大鼠BBB損傷減輕,血管腔和基底膜形態(tài)未完全被破壞;神經(jīng)元損傷減輕,神經(jīng)元核固縮減少,染色質(zhì)均勻、異染色質(zhì)減少;膠質(zhì)細(xì)胞結(jié)構(gòu)破壞減輕,腦組織中GFAP、AQP-4(低劑量組除外)蛋白表達(dá)水平以及大腦皮層中MAP-2、GFAP蛋白陽(yáng)性表達(dá)水平均顯著逆轉(zhuǎn)(P<0.05或P<0.01)。結(jié)論:原兒茶醛可保護(hù)CIRI模型大鼠的NVU穩(wěn)態(tài)免受破壞;其作用機(jī)制可能與上調(diào)大鼠大腦皮層中MAP-2蛋白表達(dá),下調(diào)腦組織中GFAP、AQP-4蛋白表達(dá)有關(guān)。
關(guān)鍵詞 原兒茶醛;腦缺血再灌注損傷;神經(jīng)血管單元;大腦皮層;大鼠
ABSTRACT? ?OBJECTIVE: To observe the protective effect of protocatechuic aldehyde (PAL) on neurovascular unit (NVU) homeostasis damage in rats after cerebral ischemia-reperfusion injury (CIRI). METHODS: SD rats were randomly divided into sham operation group, model group, PAL high-dose and low-dose groups (10, 20 mg/kg), with 11 rats in each group. Administration groups were given relevant medicine intragastrically. Sham operation group and model group were given the same volume of normal saline intragastrically, 10 mL/kg once a day, for 5 days. After last administration, CIRI model was induced by suture method; the ultrastructural changes of NVU were observed by transmission electron microscope. Western blot assay was used to detect the expression of NUV related proteins (MAP-2, GFAP, AQP-4) in cerebral tissue. Immunofluorescence staining was used to observe the positive expression of above proteins in cerebral cortex. RESULTS: Compared with sham operation group, blood-brain barrier (BBB) structure of model group was destroyed severely, the vascular lumen became narrower, lateral edema of endothelial cells was severe, and the thickness of basement membrane varied; the nuclei of neurons were pyknosis and there was a large area of edema in the surrounding tissues; the structure of glial cells was seriously damaged, the cell body was shrunk and organelles were lost; protein expression (or positive expression) of MAP-2 in brain tissue (or cerebral cortex) were significantly decreased (P<0.05 or P<0.01), while protein expression (or positive expression) of GFAP and AQP-4 were increased significantly (P<0.01). After PAL intervention, the rats had less BBB damage, and the morphology of vascular lumen and basement membrane were not completely destroyed; the damage of neurons was alleviated, the pyknosis of neurons was decreased, the chromatin was homogeneous and the heterochromatin was decreased; the damage of glial cell structure was alleviated; protein expression of GFAP and AQP-4 (except for low-dose group) in cerebral tissue and positive expression of MAP-2 and GFAP protein in cerebral cortex were reversed significantly (P<0.05 or P<0.01). CONCLUSIONS: PAL can protect the stability of NVU from damage in CIRI model rats; the mechanism may be related to up-regulating the expression of MAP-2 protein in cerebral cortex and down-regulating the expression of GFAP and AQP-4 protein in brain tissue.
KEYWORDS? ?Protocatechuic aldehyde; Cerebral ischemia-reperfusion injury; Neurovascular unit; Cerebral cortex; Rats
《中國(guó)腦卒中防治報(bào)告(2018)》顯示,腦卒中居我國(guó)死亡原因之首[1]。其中,缺血性腦卒中(ischemic stroke,IS)是腦卒中發(fā)病率最高的病種,其是由于腦血流的突然中斷導(dǎo)致腦細(xì)胞死亡和神經(jīng)缺陷的一類(lèi)疾病[2]。在IS的病理發(fā)展過(guò)程中,血栓脫落、血栓自溶以及缺血區(qū)側(cè)支循環(huán)的建立與開(kāi)放等均會(huì)引起缺血區(qū)的血流重建,從而造成腦缺血再灌注損傷(CIRI),進(jìn)而導(dǎo)致IS惡化[3]。IS的發(fā)生不僅影響神經(jīng)元,還影響位于“膠質(zhì)細(xì)胞-神經(jīng)細(xì)胞-血管小生態(tài)環(huán)境”中的所有腦細(xì)胞、細(xì)胞外基質(zhì)和機(jī)體免疫系統(tǒng)。基于此,美國(guó)國(guó)家神經(jīng)疾病和中風(fēng)學(xué)會(huì)提出了“腦神經(jīng)血管單元(neurovascular unit,NVU)”的概念[4],為臨床治療IS提供了新的策略——NVU穩(wěn)態(tài)的治療,強(qiáng)調(diào)從整體研究腦神經(jīng)血管系統(tǒng)的損傷及其機(jī)制,對(duì)IS的治療從單一環(huán)節(jié)擴(kuò)展為對(duì) NVU 各細(xì)胞成分的全面保護(hù),以維持腦微環(huán)境的整體穩(wěn)定,促進(jìn)神經(jīng)元存活和神經(jīng)功能的恢復(fù),以期達(dá)到降低IS致殘率和病死率的目標(biāo)[5-7]。
NVU由神經(jīng)元、星形膠質(zhì)細(xì)胞(Ast)、小膠質(zhì)細(xì)胞、血腦屏障(BBB)等成分組成[8-10];當(dāng)腦缺血再灌注后,部分神經(jīng)元變性壞死、Ast足突水腫、小膠質(zhì)細(xì)胞被大量激活,使得NVU的完整性被破壞,從而導(dǎo)致腦組織內(nèi)環(huán)境的穩(wěn)態(tài)失調(diào)[11-12]。
原兒茶醛為天麻的酚類(lèi)成分(結(jié)構(gòu)式見(jiàn)圖1),具有保護(hù)BBB、抗血小板聚集和抗神經(jīng)炎癥等作用;且經(jīng)本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),其對(duì)IS后的CIRI具有保護(hù)作用[13-14]。但是,原兒茶醛是否可通過(guò)作用于NVU發(fā)揮其保護(hù)CIRI的作用尚不明確?;诖?,本研究建立大鼠腦缺血再損傷模型,采用透射電鏡觀察NVU各組成成分(BBB、神經(jīng)元、膠質(zhì)細(xì)胞)的結(jié)構(gòu)變化,采用Western blot法和免疫熒光染色法,研究原兒茶醛干預(yù)后對(duì)NVU相關(guān)蛋白[微管相關(guān)蛋白2(MAP-2)、膠質(zhì)纖維酸性蛋白(GFAP)、水通道蛋白(AQP-4)][15-17]表達(dá)水平的影響,以期為探討原兒茶醛對(duì)CIRI后NVU穩(wěn)態(tài)破壞的保護(hù)作用提供參考。
Fig 1 Chemical structure of PAL
1 材料
1.1 主要儀器
本研究所用主要儀器有:Secura2250型分析天平(瑞士Precisa公司)、CF16RXⅡ型低溫高速離心機(jī)(日本Hitachi Koki公司)、UVP型顯色系統(tǒng)(美國(guó)Spectrum公司)、Cryo Star 型冰凍切片機(jī)(德國(guó)Leica公司)、JEM- 1400Flash型透射電鏡(日本電子株式會(huì)社)。
1.2 主要藥品與試劑
本研究所用主要藥品與試劑有:原兒茶醛(北京百靈威科技有限公司,批號(hào)P13N,純度98%),TTC試劑(上?;菔郎噭┯邢薰荆?hào)120808),多聚甲醛(天津化學(xué)試劑研究所,批號(hào)20100525),水合氯醛(廣東光華化學(xué)廠有限公司,批號(hào)20100926),兔抗MAP-2多克隆抗體(美國(guó)Abcam公司,批號(hào)GR288637-1),鼠抗AQP-4多克隆抗體、兔抗GFAP多克隆抗體、兔抗β-actin單克隆抗體、異硫氰酸熒光素(FITC)標(biāo)記的免疫球蛋白G(IgG)二抗、化學(xué)發(fā)光顯影劑(美國(guó)Proteintech公司,批號(hào)分別為C520BA0013、00023078、10004157、20000003、B2202003),二喹啉甲酸(BCA)蛋白濃度測(cè)定試劑盒(上海碧云天生物技術(shù)有限公司,批號(hào)090119191205);其余試劑為實(shí)驗(yàn)室常用規(guī)格,水為純凈水。
1.3 動(dòng)物
本研究所用動(dòng)物為SPF級(jí)SD大鼠,雄性,體質(zhì)量240~270 g,購(gòu)自成都達(dá)碩實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限公司,動(dòng)物生產(chǎn)許可證號(hào)為SCXK(川)2020-020。大鼠每天定時(shí)供應(yīng)食水,并定期更換墊料,飼養(yǎng)環(huán)境溫度為18~24 ℃、相對(duì)濕度為40%~60%,適應(yīng)性喂養(yǎng)7 d后進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
2 方法
2.1 造模、分組與給藥
將48只大鼠隨機(jī)分為假手術(shù)組、模型組和原兒茶醛低、高劑量組(10、20 mg/kg,劑量根據(jù)前期研究結(jié)果和參考文獻(xiàn)[13]設(shè)置),每組11只。給藥組大鼠灌胃相應(yīng)藥物(臨用時(shí)以水進(jìn)行溶解),假手術(shù)組和模型組大鼠灌胃等體積水,灌胃體積均為10 mL/kg,每天1次,連續(xù)5 d。末次給藥后,對(duì)大鼠腹腔注射10%水合氯醛(3 mL/kg)進(jìn)行麻醉,并以仰臥位固定于37 ℃恒溫加熱鼠板上;參考文獻(xiàn)[18-20]中的線(xiàn)栓法,取大鼠頸正中偏右切口,暴露右側(cè)頸總動(dòng)脈(CCA)和迷走神經(jīng)并進(jìn)行鈍性分離。將CCA遠(yuǎn)心端打一活結(jié),近心端結(jié)扎,并在結(jié)扎上部剪一“V”型小口,將栓線(xiàn)沿“V”型小口插入,直至尼龍線(xiàn)前端到達(dá)大鼠大腦中動(dòng)脈(MCA)起始處(線(xiàn)栓插入長(zhǎng)度大約為18~20 mm);栓塞2 h后,緩慢輕拉尼龍栓線(xiàn),以復(fù)制CIRI模型大鼠。假手術(shù)組大鼠同法分離血管后,不插入拴線(xiàn)。造模后,參考文獻(xiàn)[21-22]方法,對(duì)大鼠進(jìn)行神經(jīng)學(xué)評(píng)分:0分為無(wú)神經(jīng)功能缺損癥狀,1分為輕度局灶性神經(jīng)功能缺損(即提尾懸空不能伸展左側(cè)前爪),2分為中度局灶性神經(jīng)功能缺損(即行走時(shí)向左側(cè)轉(zhuǎn)圈),3分為中度局灶性神經(jīng)功能缺損(即行走困難,并向左側(cè)傾倒),4分為重度局灶性神經(jīng)功能缺損(即不能自發(fā)行走、意識(shí)水平下降);并以激光多普勒檢測(cè)大鼠腦血流量。當(dāng)大鼠神經(jīng)學(xué)評(píng)分為1~3分且腦血流量降至其基礎(chǔ)值的20%左右,并在再灌注2 h后腦血流量恢復(fù)至其基礎(chǔ)值的50%以上,則表明造模成功。
2.2 大鼠腦組織中NVU超微結(jié)構(gòu)的觀察
造模成功后,各組取2只大鼠,腹腔注射10%水合氯醛進(jìn)行麻醉,并以生理鹽水和4%多聚甲醛進(jìn)行心臟灌流;灌流后,斷頭取大鼠額頂區(qū)腦組織,將其切成5片厚度為1 mm的切片,以雙醛固定液浸泡3次,每次10 min;以2.5%戊二醛和2%四氧化鋨固定,梯度乙醇脫水,環(huán)氧樹(shù)脂包埋;再以醋酸鈾、枸椽酸鉛雙重染色,然后采用透射電鏡觀察大鼠腦組織中NVU超微結(jié)構(gòu)的變化。
2.3 大鼠腦組織中NVU相關(guān)蛋白表達(dá)的檢測(cè)
采用Western blot法進(jìn)行檢測(cè)。各組取6只大鼠,腹腔注射10%水合氯醛進(jìn)行麻醉,以生理鹽水進(jìn)行心臟灌流后,迅速取出腦組織,置于冰上分離出缺血側(cè)(右側(cè))大腦皮層和海馬組織,加入蛋白裂解液提取蛋白;以14 000 r/min離心10 min,分離上層蛋白液,采用BCA法檢測(cè)蛋白濃度。蛋白經(jīng)變性后進(jìn)行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺電泳(SDS-PAGE),轉(zhuǎn)膜,以5%脫脂奶粉封閉1.5 h;以TBST緩沖液清洗5 min×3次,加入MAP-2、GFAP、AQP-4、β-actin一抗(稀釋度均為1 ∶ 1 000),于4 ℃條件下孵育過(guò)夜;以TBST緩沖液清洗5 min×3次,加入二抗(稀釋度為1 ∶ 1 000),室溫下孵育2 h;以TBST緩沖液清洗5 min×3次,加入化學(xué)發(fā)光顯影劑,采用顯色系統(tǒng)成像。采用Image J v1.8.0軟件進(jìn)行分析,以目的蛋白與內(nèi)參蛋白(β-actin)的灰度值比值表示目的蛋白的表達(dá)水平。
2.4 大鼠大腦皮層中NVU相關(guān)蛋白陽(yáng)性表達(dá)的檢測(cè)
采用免疫熒光染色法進(jìn)行檢測(cè)。取對(duì)照組、模型組和原兒茶醛高劑量組大鼠各3只(因本課題組實(shí)驗(yàn)經(jīng)費(fèi)有限,故僅選擇了原兒茶醛高劑量組大鼠進(jìn)行免疫熒光染色實(shí)驗(yàn)),以生理鹽水和4%多聚甲醛進(jìn)行心臟灌流后,斷頭取大鼠腦組織,將腦組織于20%蔗糖溶液和30%蔗糖溶液中脫水過(guò)夜;取出腦組織,進(jìn)行包埋、冰凍切片。切片晾干后,以0.01 mol/L PBST緩沖液沖洗3次×5 min,然后滴加MAP-2、GFAP、AQP-4一抗(稀釋度分別為1 ∶ 100、1 ∶ 50、1 ∶ 500),于4 ℃條件下孵育過(guò)夜;以0.01 mol/L PBST緩沖液沖洗5 min×3次,加入二抗(稀釋度為1 ∶ 1 000),室溫下孵育40 min;以0.01 mol/L PBST緩沖液沖洗5 min×3次,封片。采用顯微鏡觀察切片中大鼠缺血側(cè)(右側(cè))大腦皮層中MAP-2、GFAP和AQP-4的陽(yáng)性表達(dá)情況。采用Image J v1.8.0軟件計(jì)算各目的蛋白陽(yáng)性染色面積百分比,其值越大,則表示目的蛋白陽(yáng)性表達(dá)水平越高。
2.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
采用SPSS 26.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。若數(shù)據(jù)符合正態(tài)分布且方差齊,則以x±s表示,多組間比較時(shí)采用單因素方差分析,組間兩兩比較時(shí)采用LSD檢驗(yàn);若不符合正態(tài)分布則以中位數(shù)表示,采用非參數(shù)檢驗(yàn)。檢驗(yàn)水準(zhǔn)α=0.05。
3 結(jié)果
3.1 原兒茶醛對(duì)大鼠腦組織中NVU超微結(jié)構(gòu)的影響
假手術(shù)組大鼠BBB結(jié)構(gòu)完整,血管內(nèi)皮細(xì)胞正常,基底膜厚薄均一;神經(jīng)元結(jié)構(gòu)正常、無(wú)明顯變化,染色質(zhì)分布均勻;膠質(zhì)細(xì)胞結(jié)構(gòu)完好,細(xì)胞核、細(xì)胞器完整,周?chē)M織無(wú)水腫。模型組大鼠BBB結(jié)構(gòu)被嚴(yán)重破壞,血管腔變窄,內(nèi)皮細(xì)胞外側(cè)嚴(yán)重水腫,基底膜厚薄不一;神經(jīng)元核固縮,周?chē)M織存在大面積嚴(yán)重水腫;膠質(zhì)細(xì)胞結(jié)構(gòu)嚴(yán)重破壞,胞體皺縮、細(xì)胞器損失。原兒茶醛各劑量組大鼠與模型組比較,其BBB損傷減輕,血管腔和基底膜形態(tài)未完全被破壞;神經(jīng)元損傷減輕,神經(jīng)元核固縮減少,染色質(zhì)均勻、異染色質(zhì)減少;膠質(zhì)細(xì)胞結(jié)構(gòu)破壞減輕,詳見(jiàn)圖2。
3.2 原兒茶醛對(duì)CIRI模型大鼠腦組織中NVU相關(guān)蛋白表達(dá)的影響
與假手術(shù)組比較,模型組大鼠腦組織中MAP-2蛋白表達(dá)水平顯著降低(P<0.05),GFAP、AQP-4蛋白表達(dá)水平均顯著升高(P<0.01);與模型組比較,原兒茶醛各劑量組大鼠腦組織中MAP-2蛋白表達(dá)水平有所升高,但差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),而GFAP、AQP-4(原兒茶醛低劑量組除外)蛋白表達(dá)水平均顯著降低(P<0.05),詳見(jiàn)表1、圖3。
注:與假手術(shù)組比較,*P<0.05,**P<0.01;與模型組比較,#P<0.05
Note:vs. sham operation group,*P<0.05,**P<0.01; vs. model group,#P<0.05
3.3 原兒茶醛對(duì)CIRI模型大鼠大腦皮層中NVU相關(guān)蛋白陽(yáng)性表達(dá)的影響
與假手術(shù)組比較,模型組大鼠大腦皮層中MAP-2蛋白的陽(yáng)性表達(dá)水平顯著降低(P<0.01),GFAP、AQP-4蛋白的陽(yáng)性表達(dá)水平均顯著升高(P<0.01);與模型組比較,原兒茶醛高劑量組大鼠大腦皮層中MAP-2蛋白的陽(yáng)性表達(dá)水平顯著升高(P<0.01),GFAP蛋白的陽(yáng)性表達(dá)水平顯著降低(P<0.01),AQP-4蛋白的陽(yáng)性表達(dá)水平差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),詳見(jiàn)表2、圖4。
注:與假手術(shù)組比較,**P<0.01;與模型組比較,##P<0.01
Note:vs. sham operation group,**P<0.01; vs. model group,##P<0.01
4 討論
CIRI是一個(gè)復(fù)雜的病理生理過(guò)程,涉及能量代謝障礙、興奮性氨基酸過(guò)度釋放、炎癥反應(yīng)、自由基堆積、細(xì)胞凋亡等多個(gè)病理環(huán)節(jié)[23]。NVU是由BBB、神經(jīng)元、Ast、小膠質(zhì)細(xì)胞等支持細(xì)胞組成的功能性結(jié)構(gòu),各細(xì)胞之間相互協(xié)調(diào)、共同維持腦組織內(nèi)環(huán)境的整體穩(wěn)態(tài);其對(duì)腦缺血早期的炎癥反應(yīng)以及后期的血管新生進(jìn)程具有重要的作用[11-12]。當(dāng)發(fā)生局灶性腦缺血時(shí),NVU中BBB、神經(jīng)元、膠質(zhì)細(xì)胞均受到不同程度的損害,從而使得NVU的完整性被破壞[24]。本研究發(fā)現(xiàn),大鼠CIRI后其BBB結(jié)構(gòu)被嚴(yán)重破壞;神經(jīng)元核固縮,周?chē)M織存在大面積嚴(yán)重水腫;膠質(zhì)細(xì)胞結(jié)構(gòu)嚴(yán)重破壞。經(jīng)原兒茶醛干預(yù)后,大鼠BBB、神經(jīng)元損傷減輕,膠質(zhì)細(xì)胞結(jié)構(gòu)破壞減輕。這表明原兒茶醛能保護(hù)大鼠CIRI后NVU超微結(jié)構(gòu)的完整性。
MAP-2是神經(jīng)元細(xì)胞骨架的重要組成部分,其表達(dá)水平能反映神經(jīng)元樹(shù)突的破壞情況[6];GFAP是Ast的骨架蛋白,其表達(dá)水平能反映Ast的活化情況[25]; AQP-4是腦內(nèi)主要的水通道蛋白,在BBB和腦-腦脊液屏障的Ast中高度表達(dá),其表達(dá)水平可反映腦內(nèi)水平衡和組成BBB完整性結(jié)構(gòu)的緊密連接蛋白的損傷情況[26]。本研究的Western blot法檢測(cè)結(jié)果顯示,經(jīng)低、高劑量原兒茶醛干預(yù)后,CIRI模型大鼠腦組織中GFAP、AQP-4(低劑量組除外)蛋白表達(dá)水平均顯著降低,而MAP-2蛋白表達(dá)水平的變化無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);免疫熒光染色法結(jié)果顯示,經(jīng)高劑量原兒茶醛干預(yù)后,CIRI模型大鼠大腦皮層中MAP-2蛋白的陽(yáng)性表達(dá)水平顯著升高,GFAP的陽(yáng)性表達(dá)水平顯著降低,而AQP-4蛋白的陽(yáng)性表達(dá)水平的變化無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。這提示原兒茶醛對(duì)MAP-2、GFAP蛋白的影響主要在大鼠大腦皮層區(qū),對(duì)AQP-4蛋白的影響可能不在大腦皮層區(qū)。
綜上所述,原兒茶醛可保護(hù)CIRI模型大鼠的NVU穩(wěn)態(tài)免受破壞;其作用機(jī)制可能與上調(diào)大鼠大腦皮層中MAP-2蛋白表達(dá),下調(diào)腦組織中GFAP、AQP-4蛋白表達(dá)有關(guān)。
參考文獻(xiàn)
[ 1 ] 王隴德,劉建民,楊弋,等. 我國(guó)腦卒中防治仍面臨巨大挑戰(zhàn):《中國(guó)腦卒中防治報(bào)告2018》概要[J]. 中國(guó)循環(huán)雜志,2019,34(2):105-119.
[ 2 ] ZHANG L,ZHANG Z G,CHOPP M. The neurovascular unit and combination treatment strategies for stroke[J]. Trends Pharmacol Sci,2012,33(8):415-422.
[ 3 ] SUAREZ J I,ZAIDAT O O,SUNSHINE J L,et al. Endovascular administration after intravenous infusion of thrombolytic agents for the treatment of patients with acute ischemic strokes[J]. Neurosurgery,2002,50(2):251-260.
[ 4 ] LECRUX C,HAMEL E. The neurovascular unit in brain function and disease[J]. Acta Physiol (Oxf),2011,203(1):47-59.
[ 5 ] GAO M,ZHU S Y,TAN C B,et al. Pinocembrin protects the neurovascular unit by reducing inflammation and extracellular proteolysis in MCAO rats[J]. J Asian Nat Prod Res,2010,12(5):407-418.
[ 6 ] ZHANG R,TANG S,HUANG W,et al. Protection of the brain following cerebral ischemia through the attenuation of PARP-1-induced neurovascular unit damage in rats[J]. Brain Res,2015,1624:9-18.
[ 7 ] MOHAMED I N,ISHRAT T,F(xiàn)AGAN S C,et al. Role of inflammasome activation in the pathophysiology of vascular diseases of the neurovascular unit[J]. Antioxid Redox Signal,2015,22(13):1188-1206.
[ 8 ] LI Y,CHOPP M,JIANG N,et al. Temporal profile of in situ DNA fragmentation after transient middle cerebral artery occlusion in the rat[J]. J Cereb Blood Flow Metab,1995,15(3):389-397.
[ 9 ] 徐芳琴,郭超,卞濤,等.丹紅注射液對(duì)大鼠腦缺血/再灌注損傷治療時(shí)間窗的影響[J].中成藥,2016,38(9):1887-1892.
[10] 肖晗.丹參酮ⅡA在不同時(shí)間點(diǎn)給藥對(duì)大鼠腦缺血模型再灌注損傷的神經(jīng)保護(hù)作用研究[D].合肥:安徽醫(yī)科大學(xué),2014.
[11] ZONTA M,ANGULO M C,GOBBO S,et al. Neuron-to- astrocyte signaling is central to the dynamic control of brain microcirculation[J]. Nat Neurosci,2003,6(1):43- 50.
[12] SAVCHENKO E S,PEVZNER I B,ZOROVA L D,et al. Changes in the number of neurons,astrocytes and micro- glia in the brain after ischemic stroke assessed by immunohistochemistry and immunoblotting[J]. Tsitologiia,2016,58(7):534-542.
[13] LI X,XIANG B,SHEN T,et al. Anti-neuroinflammatory effect of 3,4-dihydroxybenzaldehyde in ischemic stroke
[J]. Int Immunopharmacol,2020,82:106353.
[14] DUAN X,WANG W,LIU X,et al. Neuroprotective effect of ethyl acetate extract from gastrodia elata against transient focal cerebral ischemia in rats induced by middle cerebral artery occlusion[J]. J Tradit Chin Med,2015,35(6):671-678.
[15] 王慧鋼,于思淼,邱瑾,等. SUMO-2/3活化介導(dǎo)丹參對(duì)缺血神經(jīng)元的保護(hù)機(jī)制[J].天津中醫(yī)藥,2015,32(7):420- 423.
[16] HUANG W,LV B,ZENG H,et al. Paracrine factors secreted by MSCs promote astrocyte survival associated with GFAP downregulation after ischemic stroke via p38 MAPK and JNK[J]. J Cell Physiol,2015,230(10):2461- 2475.
[17] XIANG J,LAN R,TANG Y P,et al. Apocynum venetum leaf extract attenuates disruption of the blood-brain barrier and upregulation of matrix metalloproteinase-9/-2 in a rat model of cerebral ischemia-reperfusion injury[J]. Neurochem Res,2012,37(8):1820-1828.
[18] SHI Y,JIANG X,ZHANG L,et al. Endothelium-targeted overexpression of heat shock protein 27 ameliorates blood-brain barrier disruption after ischemic brain injury[J]. Proc Natl Acad Sci U S A,2017,114(7):E1243- E1252.
[19] HA P J,YOO K Y,HYE K I,et al. Hydroquinone strongly alleviates focal ischemic brain injury via blockage of blood-brain barrier disruption in rats[J]. Toxicol Sci,2016,154(2):430-441.
[20] HAGHNEJAD A A,ORYAN S,BOHLOOLI S,et al. Alpha-tocopherol reduces brain edema and protects blood- brain barrier integrity following focal cerebral ischemia in rats[J]. Med Princ Pract,2017,26(1):17-22.
[21] ENRIQUE Z L,PHILIP R W,SARA C,et al. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats[J]. Stroke,1989,20(1):84-91.
[22] 饒夢(mèng)琳,唐蜜,何錦悅,等.芍藥苷對(duì)大鼠局灶性腦缺血再灌注腦血流量及PGI2/TXA2平衡的影響[J].藥學(xué)學(xué)報(bào),2014,49(1):55-60.
[23] 李娜.紅花黃色素對(duì)控制性低血壓誘導(dǎo)的缺血缺氧性腦損傷的影響及機(jī)制研究[D].廣州:南方醫(yī)科大學(xué),2016.
[24] DIRNAGL U. Pathobiology of injury after stroke:the neurovascular unit and beyond[J]. Ann N Y Acad Sci,2012,1268:21-25.
[25] YULONG M,HANG G,LIXIA Z,et al. Estrogen replacement therapy-induced neuroprotection against brain is- chemia-reperfusion injury involves the activation of astrocytes via estrogen receptor β[J]. Sci Rep,2016,6:21467.
[26] WU C,CHEN J,CHEN C,et al. Wnt/beta-catenin coupled with HIF-1alpha/VEGF signaling pathways involved in galangin neurovascular unit protection from focal cerebral ischemia[J]. Sci Rep,2015,5:16151.
(收稿日期:2021-02-18 修回日期:2021-05-06)
(編輯:唐曉蓮)