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        糖皮質(zhì)激素對視神經(jīng)脫髓鞘大鼠S1PR1、S1PR3表達及視覺功能的影響①

        2021-11-25 09:22:20王繼光衡水市人民醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)二科衡水053000
        中國免疫學(xué)雜志 2021年19期
        關(guān)鍵詞:脫髓鞘視神經(jīng)瞳孔

        王 智 李 靜 王繼光 高 倩 魏 琰 (衡水市人民醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)二科,衡水053000)

        視神經(jīng)脊髓炎(neuromyelitis optica,NMO)為脊髓和視神經(jīng)相繼或同時損傷的一種中樞神經(jīng)系統(tǒng)自身免疫性疾病,疾病早期多表現(xiàn)為視神經(jīng)脫髓鞘等病變,患者多伴隨視力變差、意識障礙、眼球顫動等,嚴(yán)重可導(dǎo)致失明,若受損神經(jīng)持續(xù)缺血變性可進展為多發(fā)性硬化癥(multiple sclerosis,MS),威脅患者生命[1-2]。糖皮質(zhì)激素具有免疫抑制和抵抗炎癥等功能,為臨床治療NMO等自身免疫性疾病的首選藥物,國內(nèi)外研究發(fā)現(xiàn),高劑量糖皮質(zhì)激素沖擊療法可有效改善NMO患者臨床癥狀,但作用機制尚未闡明[3-4]。既往研究認為,NMO與機體免疫失調(diào)相關(guān),但免疫失調(diào)如何導(dǎo)致神經(jīng)病變尚未明確。近年研究發(fā)現(xiàn),1-磷酸鞘氨醇(sphingosine 1-phosphate,S1P)可結(jié)合其受體(S1P receptor,S1PR),激活的S1P-S1PR 信號系統(tǒng)在淋巴細胞轉(zhuǎn)運和維持血管完整性方面發(fā)揮重要作用,從而參與復(fù)雜炎癥過程調(diào)節(jié)[5]。另有研究發(fā)現(xiàn),星形膠質(zhì)細胞(astrocytes,AST)表面 S1PR1、S1PR3 與 S1P 結(jié)合是其激活的關(guān)鍵,而 NMO 發(fā)病與 AST 細胞激活密切相關(guān)[6-7]。本研究推測S1PR1、S1PR3 可能是NMO 所致視神經(jīng)脫髓鞘的治療靶標(biāo),通過建立NMO視神經(jīng)脫髓鞘大鼠模型,觀察糖皮質(zhì)激素對NMO大鼠視神經(jīng)脫髓鞘及視覺功能的改善作用,并分析其對視神經(jīng)組織S1PR1、S1PR3 蛋白表達的影響,以初步探究其治療NMO的作用機制。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 實驗動物 6 周齡雄性健康SD 大鼠45 只,體重(220±5)g,許可證號:SCXK(粵)2018-0002,購自廣東省醫(yī)學(xué)實驗動物中心,常規(guī)飼養(yǎng)于我院動物房,實驗設(shè)計經(jīng)我院動物倫理委員會批準(zhǔn),遵守動物保護3R原則。

        1.1.2 主要試劑及儀器 注射用甲潑尼龍琥珀酸鈉(40 mg/支)購自常州四藥制藥有限公司;S1PR1、S1PR3、β-actin、鈣結(jié)合適配器分子1(Iba-1)、膠質(zhì)纖維酸性蛋白(GFAP)、POU 4級同源框1(POU4F1,又稱Brn3a)、巨噬細胞標(biāo)記物ED-1 兔源抗體(貨號:ab77076、ab108370、ab8227、ab178847、ab4674、ab273099、ab31630)、驢抗兔IgG Alexa Fluor?647 抗體(貨號:ab150075)、羊抗兔IgG Alexa Fluor?488 抗體、DAPI 溶液(貨號:ab150077、ab104139)購自美國Abcam 公司;Tunel細胞凋亡綠色熒光試劑盒(貨號:C1088)購自上海碧云天有限公司;透射電子顯微鏡(型號:109T)購自美國Carl Zeiss Microscopy 公司;熒光顯微鏡(型號:BX50)、光學(xué)顯微鏡(型號:BX63)購自日本奧林巴斯公司。

        1.2 方法

        1.2.1 模型制備及分組 參照文獻[8-9]并稍加改動,采用視神經(jīng)鞘內(nèi)注射人NMO-IgG(1 μl,20 mg/μl)法制備NMO大鼠,即為視神經(jīng)脫髓鞘大鼠,術(shù)后14 d瞳孔收縮度明顯降低表明模型制備成功。造模過程中3 只大鼠未觀察到瞳孔收縮度明顯改變,共造模成功42 只,隨機分為:NMO 組、糖皮質(zhì)激素組,每組14 只,另取14 只健康大鼠作為對照組。造模成功后14 d,糖皮質(zhì)激素組大鼠尾靜脈輸注0.5 g/ml甲潑尼龍溶液(生理鹽水溶解),0.1 m/lmin,60 min,1 次/d,對照組、NMO 組輸注等量生理鹽水,連續(xù)給藥3 d。

        1.2.2 視動實驗及瞳孔反射實驗評估大鼠視覺功能 末次給藥后12 h,隨機取10 只大鼠,參考WANG 等[10]方法進行視動實驗,將大鼠放在四面各有1臺顯示器的平臺上,黑暗環(huán)境中進行測試,顯示器上顯示垂直正弦波光柵(100%對比度),空間頻率依次為0.05、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 和0.6 周/度(cpd),恒定速度為12 度/s。紅外敏感相機監(jiān)測頭部運動圖像,大鼠頭部無明顯跟蹤運動時的最高空間頻率即為大鼠視銳度值。瞳孔反射實驗參考FERNANDEZ 等[11]方法,將大鼠置于黑暗中,采用高強度光刺激瞳孔30 s,紅外敏感相機采集眼睛瞳孔圖像(30幀/s),瞳孔收縮度(%)=(刺激前瞳孔直徑-刺激后瞳孔直徑)/刺激前瞳孔直徑×100%。

        1.2.3 大鼠視網(wǎng)膜及視神經(jīng)組織樣本采集及HE染色觀察 1.2.2 結(jié)束后,100 mg/kg 戊巴比妥鈉腹腔注射麻醉處死大鼠,各組隨機取11 只,于眼科顯微鏡下取眼球(保留較長視神經(jīng)),分離視網(wǎng)膜和視神經(jīng),含4%甲醛的PBS固定,制備石蠟切片(5 μm),部分切片采用HE 試劑盒染色,選取較完整切片置于光學(xué)顯微鏡下觀察視網(wǎng)膜及視神經(jīng),剩余切片用于Tunel、免疫熒光及免疫組化實驗;-80℃保存?zhèn)溆玫囊暽窠?jīng)用于提取RNA 和蛋白。各組剩余3 只大鼠取眼球(保留較長視神經(jīng))后,分離視神經(jīng),含2%戊二醛和4%甲醛的PBS 中固定,制備超薄切片(70 nm)用于電鏡觀察。

        1.2.4 透射電鏡檢測大鼠視神經(jīng)脫髓鞘情況 取1.2.3 中超薄切片,70%乙醇溶液(含2%乙酸鈾酯)和檸檬酸鉛溶液染色,銅網(wǎng)固定,透射電鏡下觀察。

        1.2.5 Tunel 法檢測視網(wǎng)膜RGC 細胞凋亡情況 取1.2.3中視網(wǎng)膜石蠟切片,按照Tunel試劑盒說明書依次處理切片,采用Brn3a 標(biāo)記凋亡視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細胞(retinal ganglion cell,RGC),DAPI 復(fù)染,熒光顯微鏡下觀察,計算凋亡RGC 細胞比例。其中Brn3a 陽性(紅色熒光)為RGC 細胞;Tunel 陽性(綠色)為凋亡細胞;DAPI 陽性(藍色)為細胞核,Merge中呈黃色為凋亡RGC 細胞,每組10 片視網(wǎng)膜,每片視網(wǎng)膜取5個視野計算平均值。

        1.2.6 免疫熒光法觀察視神經(jīng)中巨噬細胞、小膠質(zhì)細胞和AST 細胞 取1.2.3 中視神經(jīng)石蠟切片,脫蠟,檸檬酸鹽緩沖液修復(fù)抗原,固定,含0.1%Triton X-100 PBS 溶液通透,2%山羊血清封閉,分別加入 Iba-1、GFAP 及 ED1 一抗 4℃ 孵育過夜,洗片,加入熒光標(biāo)記二抗室溫避光孵育50 min,洗片,加入DAPI室溫避光孵育5 min,含抗熒光猝滅劑封片,熒光顯微鏡下拍照并用ImagePro Plus 分析熒光強度,ED1 陽性(綠色熒光)為巨噬細胞;Iba1 陽性(紅色)為小膠質(zhì)細胞;GFAP 陽性(紅色)為AST 細胞,每組10根視神經(jīng),每根取5個視野計算平均值。

        1.2.7 免疫組化法檢測視神經(jīng)中S1PR1、S1PR3、IL-17 表達 取1.2.3 中視神經(jīng)石蠟切片,脫蠟,檸檬酸鹽緩沖液修復(fù)抗原,過氧化氫封閉,加入S1PR1、S1PR3及IL-17一抗室溫孵育1.5 h,洗片,加入HRP 標(biāo)記二抗室溫避光孵育30 min,洗片,加入DAB 混合液室溫避光孵育5 min,蘇木精復(fù)染,光學(xué)顯微鏡拍照。

        1.2.8 RT-qPCR 和Western blot 法檢測視神經(jīng)中S1PR1、S1PR3 mRNA 和蛋白表達 取 1.2.3 中視神經(jīng)冷凍樣品,液氮研磨,提取RNA 和蛋白。RNA 經(jīng)反轉(zhuǎn)錄后作為RT-qPCR 反應(yīng)模板,以β-actin 作為內(nèi)參進行RT-qPCR 擴增反應(yīng),檢測S1PR1、S1PR3 mRNA 表達,引物序列見表1。各組蛋白樣品采用BCA 法測定濃度,分別取15 g 上樣,依次進行SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳、轉(zhuǎn)印記、5%牛奶封閉,加入一抗 S1PR1、S1PR3 和 β-actin 抗體 4℃ 孵育過夜,加入二抗室溫孵育1.5 h,增強化學(xué)發(fā)光液顯影,TANON成像系統(tǒng)拍照并分析條帶灰度。

        表1 引物序列Tab.1 Primer sequences

        1.3 統(tǒng)計學(xué)分析 采用SPSS25.00 軟件進行統(tǒng)計學(xué)分析,計量數(shù)據(jù)采用表示,多組間比較采用單因素方差分析,進一步比較采用SNK-q檢驗。P<0.05表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 糖皮質(zhì)激素對NMO大鼠視覺功能的影響 與對照組相比,NMO 組及糖皮質(zhì)激素組大鼠視銳度、瞳孔收縮度降低(P<0.05);與NMO 組相比,糖皮質(zhì)激素組大鼠視銳度、瞳孔收縮度增高(P<0.05,表2)。

        表2 3組大鼠視銳度、瞳孔收縮度比較(,n=10)Tab.2 Comparison of visual acuity and pupil contraction of rats in three groups(,n=10)

        表2 3組大鼠視銳度、瞳孔收縮度比較(,n=10)Tab.2 Comparison of visual acuity and pupil contraction of rats in three groups(,n=10)

        Note:1)P<0.05 vs Control;2)P<0.05 vs NMO.

        Pupil contraction(%)78.09±3.61 36.21±3.341)69.43±4.231)2)Groups Control NMO Glucocorticoid Visual acuity(cpd)0.57±0.06 0.17±0.051)0.34±0.021)2)

        2.2 糖皮質(zhì)激素對NMO大鼠視神經(jīng)組織的影響 對照組大鼠視神經(jīng)結(jié)構(gòu)正常,軸索纖維及神經(jīng)元均勻著色,排列整齊;NMO 組大鼠視神經(jīng)可見神經(jīng)元體積變大、排列混亂、核染色較深,軸索纖維中呈空泡及炎癥細胞浸潤病變;糖皮質(zhì)激素組上述病變明顯緩解,形態(tài)接近對照組(圖1)。

        圖1 大鼠視神經(jīng)組織HE染色(×400)Fig.1 HE staining of optic nerve tissue in rats(×400)

        2.3 糖皮質(zhì)激素對NMO大鼠視神經(jīng)脫髓鞘程度的影響 對照組大鼠視神經(jīng)髓鞘結(jié)構(gòu)正常,均可見黑色髓鞘;NMO 組大鼠大部分視神經(jīng)可見軸突退化、脫髓鞘、板層小體等病變;糖皮質(zhì)激素組脫髓鞘程度明顯減輕,形態(tài)接近對照組(圖2)。

        圖2 大鼠視神經(jīng)組織透射電鏡圖(×100 000)Fig.2 Transmission electron microscope of optic nerve tis?sue in rats(×100 000)

        2.4 糖皮質(zhì)激素對NMO大鼠視網(wǎng)膜形態(tài)及細胞凋亡的影響 對照組大鼠視網(wǎng)膜結(jié)構(gòu)正常,凋亡RGC細胞較少;相較于對照組,NMO 組、糖皮質(zhì)激素組大鼠視網(wǎng)膜厚度降低,RGC 細胞數(shù)減少,凋亡RGC 細胞比例增高(P<0.05);相較于NMO 組,糖皮質(zhì)激素組視網(wǎng)膜厚度升高,RGC 細胞數(shù)增多,凋亡RGC 細胞比例降低(P<0.05,圖3、表3)。

        表3 大鼠視網(wǎng)膜厚度、RGC細胞數(shù)及凋亡RGC細胞比例比較(,n=10)Tab.3 Comparison of retinal thickness,number of RGC cells and proportion of apoptotic RGC cells of rats(,n=10)

        表3 大鼠視網(wǎng)膜厚度、RGC細胞數(shù)及凋亡RGC細胞比例比較(,n=10)Tab.3 Comparison of retinal thickness,number of RGC cells and proportion of apoptotic RGC cells of rats(,n=10)

        Note:1)P<0.05 vs Control;2)P<0.05 vs NMO.

        Proportion of apoptotic RGC cells(%)3.05±0.95 37.50±3.341)19.35±1.961)2)Groups Control NMO Glucocorticoid Retinal thickness(μm)263.11±7.51 159.23±6.951)196.67±8.021)2)RGC cells number(individual)91.05±6.15 45.75±4.331)71.15±4.921)2)

        圖3 大鼠視網(wǎng)膜HE染色及Tunel檢測(×400)Fig.3 HE staining and Tunel examination of rat retina(×400)

        2.5 糖皮質(zhì)激素對NMO 大鼠視神經(jīng)巨噬細胞、小膠質(zhì)細胞和AST 細胞的影響 相較于對照組,NMO組、糖皮質(zhì)激素組大鼠視神經(jīng)巨噬細胞、小膠質(zhì)細胞和AST 細胞增多(P<0.05);相較于NMO 組,糖皮質(zhì)激素組視神經(jīng)巨噬細胞、小膠質(zhì)細胞和AST 細胞減少(P<0.05,圖4、表4)。

        表4 3 組大鼠視神經(jīng)中巨噬細胞、小膠質(zhì)細胞和AST 細胞比例比較(,n=10)Tab.4 Comparison of proportions of macrophages,mi?croglia and AST cells in optic nerve of rats in three groups(,n=10)

        表4 3 組大鼠視神經(jīng)中巨噬細胞、小膠質(zhì)細胞和AST 細胞比例比較(,n=10)Tab.4 Comparison of proportions of macrophages,mi?croglia and AST cells in optic nerve of rats in three groups(,n=10)

        Note:1)P<0.05 vs Control;2)P<0.05 vs NMO.

        Groups Control NMO Glucocorticoid ED1+region 0.00±0.00 12 752.42±296.481)Iba1+region 3 091.05±126.15 10 745.75±144.321)GFAP+region 9 823.05±150.72 19 643.50±183.391)5 194.67±108.021)2)5 671.15±114.811)2)11 079.35±1.751)2)

        圖4 大鼠視神經(jīng)組織免疫熒光圖(×400)Fig.4 Immunofluorescence of rat optic nerve tissue(×400)

        2.6 糖皮質(zhì)激素對NMO 大鼠視神經(jīng)中S1PR1、S1PR3、IL-17表達的影響 相較于對照組,NMO 組、糖皮質(zhì)激素組大鼠視神經(jīng)中S1PR1、S1PR3、IL-17表達增多(P<0.05);相較于NMO 組,糖皮質(zhì)激素組視神經(jīng)中 S1PR1、S1PR3、IL-17 表達減少(P<0.05,圖5)。

        圖5 大鼠視神經(jīng)組織免疫組化圖(×400)Fig.5 Immunohistochemistry of optic nerve tissue in rats(×400)

        2.7 糖皮質(zhì)激素對NMO 大鼠視神經(jīng)中S1PR1、S1PR3 mRNA 及蛋白表達的影響 相較于對照組,NMO 組、糖皮質(zhì)激素組大鼠視神經(jīng)中S1PR1、S1PR3 mRNA 及蛋白表達增多(P<0.05);相較于NMO 組,糖皮質(zhì)激素組視神經(jīng)中S1PR1、S1PR3 mRNA及蛋白表達減少(P<0.05,圖6、表5)。

        表5 3 組大鼠視神經(jīng)中S1PR1、S1PR3 mRNA 及蛋白表達比較(,n=10)Tab.5 Comparison of mRNA and protein expression levels of S1PR1,S1PR3 in optic nerve of rats in three groups(,n=10)

        表5 3 組大鼠視神經(jīng)中S1PR1、S1PR3 mRNA 及蛋白表達比較(,n=10)Tab.5 Comparison of mRNA and protein expression levels of S1PR1,S1PR3 in optic nerve of rats in three groups(,n=10)

        Note:1)P<0.05 vs Control;2)P<0.05 vs NMO.

        Groups protein 0.35±0.11 1.46±0.281)1.01±0.161)2)S1PR1 mRNA 1.05±0.23 5.97±0.771)3.01±0.541)2)Control NMO Glucocorticoid protein 0.55±0.16 3.08±0.421)1.21±0.331)2)S1PR3 mRNA 0.96±0.34 4.71±0.591)2.78±0.371)2)

        圖6 Western blot檢測大鼠視神經(jīng)中S1PR1、S1PR3表達Fig.6 Western blot of S1PR1 and S1PR3 expressions in optic nerve of rats

        3 討論

        多數(shù)NMO 患者均檢測到血清自身抗體NMO 免疫球蛋白G(NMO-IgG)存在,為揭示NMO 發(fā)病機制提供了方向。由于NMO-IgG 與NMO 的相關(guān)性,NMO-IgG 被動轉(zhuǎn)移已被用于建立NMO 嚙齒動物模型[12-13]。大鼠視神經(jīng)鞘內(nèi)注射人NMO-IgG 建立的NMO 模型可直接反映視神經(jīng)病變對視覺功能的影響,有利于評估藥物對視神經(jīng)病變的治療作用[8-9]。本研究發(fā)現(xiàn),相較于對照組,NMO 組大鼠視銳度、瞳孔收縮度降低,視神經(jīng)現(xiàn)脫髓鞘、神經(jīng)元體積變大、排列混亂、軸突退化、巨噬細胞、小膠質(zhì)細胞和AST細胞增多等病變,視網(wǎng)膜厚度及RGC 細胞數(shù)減少,凋亡RGC 細胞比例增高,表明視神經(jīng)注射NMO-IgG可成功誘導(dǎo)NMO 病變,引起視神經(jīng)脫髓鞘、小膠質(zhì)細胞/巨噬細胞活化、膠質(zhì)增生、視覺功能變差,提示模型制備成功。隨著對NMO 發(fā)病機制研究的深入,對其治療藥物的研發(fā)也逐漸增多,對現(xiàn)有藥物治療機制的挖掘可能為尋找新藥物提供思路。臨床研究發(fā)現(xiàn),高劑量(500 mg/d)糖皮質(zhì)激素可加速急性期 MS 或 NMO 患者康復(fù),減輕視神經(jīng)炎癥[14]。本研究發(fā)現(xiàn),輸注糖皮質(zhì)激素后,大鼠視銳度、瞳孔收縮度均增高,視神經(jīng)脫髓鞘、神經(jīng)元體積變大、巨噬細胞、小膠質(zhì)細胞和AST 細胞增多等病變減輕,視網(wǎng)膜厚度及RGC細胞數(shù)增加,凋亡RGC細胞比例降低,表明糖皮質(zhì)激素可減輕視神經(jīng)脫髓鞘程度,抑制小膠質(zhì)細胞/巨噬細胞活化及膠質(zhì)增生,改善NMO大鼠視覺功能。

        S1P-S1PR 信號系統(tǒng)可啟動AST 細胞活化,與神經(jīng)組織中炎癥密切相關(guān),其中S1PR1、S1PR3 為S1PR 家族中與MS 等自身免疫病相關(guān)的2 種受體,除可通過激活A(yù)ST 細胞活化、誘導(dǎo)膠質(zhì)增生外,還可促進神經(jīng)細胞中小膠質(zhì)細胞/巨噬細胞活化,誘導(dǎo)IL-17 等炎癥介質(zhì)釋放,加速神經(jīng)損傷[15]。研究發(fā)現(xiàn),S1P-S1PR 信號系統(tǒng)可引起腦組織等中樞神經(jīng)系統(tǒng)反應(yīng)性膠質(zhì)增生,促進炎癥反應(yīng),與MS 等疾病相關(guān)[16-17]。研究報道,MS 與 AST 細胞 S1PR3 高表達有關(guān),細胞實驗亦發(fā)現(xiàn),上調(diào)S1PR3,激活S1P-S1PR信號系統(tǒng)可促進AST 細胞激活、膠質(zhì)增生及炎癥反應(yīng)[18-19]。由于 NMO 和 MS 具有廣泛相似的癥狀,且均為免疫介導(dǎo)的神經(jīng)退行性疾病,可能具有潛在分子機制,本研究對此進行初步探究,結(jié)果與MS 一致,相較于對照組,NMO 組及糖皮質(zhì)激素組大鼠視神經(jīng)中 S1PR1、S1PR3 及 IL-17 蛋白表達均增高,表明NMO 所致視神經(jīng)脫髓鞘大鼠視神經(jīng)組織中S1P-S1PR 系統(tǒng)被激活,且下游IL-17 等炎癥因子水平升高。研究發(fā)現(xiàn),小檗堿可通過降低S1P 水平抑制S1P 與S1PR 結(jié)合,降低炎癥水平,改善MS 小鼠神經(jīng)功能缺失,減輕脫髓鞘等病變[20-21]。TSAI 等[22]進一步證實,S1PR1 在中樞神經(jīng)系統(tǒng)自身免疫和神經(jīng)炎癥中起重要作用。本研究發(fā)現(xiàn),給予糖皮質(zhì)激素治療后,大鼠視神經(jīng)中 S1PR1、S1PR3 及 IL-17 蛋白表達降低,推測糖皮質(zhì)激素對NMO所致視神經(jīng)脫髓鞘大鼠視覺功能的改善作用可能與抑制S1PR1、S1PR3 表達,降低視神經(jīng)炎癥水平有關(guān),S1PR1、S1PR3 表達降低可阻斷S1P-S1PR 信號系統(tǒng),進而抑制視神經(jīng)中AST 細胞及小膠質(zhì)細胞/巨噬細胞激活,減輕視神經(jīng)炎癥,具體機制有待進一步研究。

        綜上所述,高劑量糖皮質(zhì)激素可降低視神經(jīng)中S1PR1、S1PR3 蛋白表達,抑制 IL-17 等釋放,降低視神經(jīng)中炎癥細胞比例,改善NMO所致視神經(jīng)脫髓鞘大鼠視覺功能,可能為尋找治療NMO的新藥物提供參考。另外,高劑量糖皮質(zhì)激素可能引起心動過速、代謝紊亂、電解質(zhì)失調(diào)等副作用,治療時應(yīng)密切關(guān)注患者生命體征,以確保治療效果。

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