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        Cry1B抗獨(dú)特型單鏈抗體的定點(diǎn)突變及生物活性分析

        2021-11-19 03:07:34仲建鋒李興奎徐重新張霄劉賢金
        生物技術(shù)通報(bào) 2021年10期
        關(guān)鍵詞:單鏈卷葉螟噬菌體

        仲建鋒 李興奎 徐重新 張霄 劉賢金

        (1. 江蘇省食品質(zhì)量安全重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室—省部共建國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室培育基地 農(nóng)業(yè)農(nóng)村部農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量安全控制技術(shù)與標(biāo)準(zhǔn)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量安全與營(yíng)養(yǎng)研究所,南京 210014;2. 鄭州職業(yè)技術(shù)學(xué)院,鄭州 450121)

        蘇云金芽孢桿菌(Bacillus thuringiensis,Bt)是一種廣泛存在于各類環(huán)境中的昆蟲(chóng)病原菌,對(duì)多種農(nóng)業(yè)害蟲(chóng)具有殺蟲(chóng)活性[1]。Cry1B是Bt Cry毒素的一種,其對(duì)鱗翅目昆蟲(chóng)的靶標(biāo)位點(diǎn)包括中腸刷狀緣膜囊泡(brush border membrane vesicles,BBMV)上的氨肽酶N(aminopeptidase N,APN)、鈣粘蛋白(cadherin)[2-3], 以 及 ABC 轉(zhuǎn) 運(yùn) 蛋 白[4]等。APN屬于鋅結(jié)合金屬蛋白酶家族蛋白,它的碳端結(jié)合部位富含N-乙酰氨半乳糖胺(N-acetylgalactosamine,GalNAc),這些區(qū)域是Cry毒素的結(jié)合位點(diǎn)[5]。煙芽夜蛾(Heliothis virescens)的170 kD的APN可與Cry1Aa、Cry1Ab 和 Cry1Ac結(jié)合[6]。卷葉蛾(Epiphyas postvittana)BBMV上的120 kD的APN可與Cry1Ac和Cry1Ba結(jié)合[7]。我們前期研究發(fā)現(xiàn)Cry1B抗獨(dú)特型(anti-idiotypic,anti-Id)單鏈抗體(single chain fragment variable,scFv)C7可以模擬Cry1B的結(jié)構(gòu)和功能[8],因此推測(cè)C7與昆蟲(chóng)BBMV上的APN可能存在結(jié)合關(guān)系。但是C7的結(jié)合和生物活性跟原毒素Cry1B相比有差距,需要改進(jìn)提升。

        單鏈抗體由重鏈可變區(qū)(heavy chain variable,VH)和輕鏈可變區(qū)(light chain variable,VL)通過(guò)一條單一肽鏈(linker)組成,大小為完整抗體分子的1/6,制備流程較簡(jiǎn)單,易進(jìn)行分子改造[9-10]。然而,基因工程抗體一般存在親和力低等問(wèn)題,以計(jì)算機(jī)模擬為基礎(chǔ)的定點(diǎn)突變可以預(yù)測(cè)分子間結(jié)合區(qū)域并確定關(guān)鍵氨基酸殘基[11],關(guān)鍵氨基酸的有利突變可以提高抗體的親和力,在體外通過(guò)定點(diǎn)突變等基因工程手段可以構(gòu)建限定性突變抗體庫(kù),進(jìn)而篩選到高親和力抗體[12]。Barderas等[13]在研究人類抗胃泌素TA4 scFv親和力成熟的過(guò)程中,在限定性突變的基礎(chǔ)上采取定點(diǎn)突變等方法,最終得到將TA4的親和力提高了454倍的突變scFv。Zhang等[14]在構(gòu)建了抗成纖維細(xì)胞活化蛋白scFv E3突變庫(kù)的前提下,對(duì)CDR區(qū)進(jìn)行了定點(diǎn)突變,其中重鏈33位氨基酸Asp變?yōu)镚ly,107位Tyr變?yōu)镠is效果最好,此E3 Mut2親和力提高了4倍。此方法目的明確,避免了隨機(jī)突變編碼可變區(qū)基因片段法隨意性大的缺點(diǎn)。

        分子模擬技術(shù)在抗體結(jié)構(gòu)與功能關(guān)系分析、蛋白質(zhì)分子設(shè)計(jì)與改造等過(guò)程中得到了廣泛開(kāi)發(fā)與應(yīng)用。本研究通過(guò)計(jì)算機(jī)輔助設(shè)計(jì)指導(dǎo)抗體親和力成熟,借助分子模擬技術(shù)獲得對(duì)接復(fù)合物的關(guān)鍵結(jié)合區(qū)域并預(yù)測(cè)熱點(diǎn),利用熱點(diǎn)構(gòu)建飽和突變抗體庫(kù),篩選出親和力和生物活性提高的突變體。以期進(jìn)一步對(duì)基因工程抗體結(jié)合區(qū)域改造指明方向。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        抗Cry1B毒素Ab2β 型scFv-C7來(lái)源于本實(shí)驗(yàn)室,使用噬菌體展示技術(shù)從Tomlinson I+J庫(kù)中篩選獲得,具殺蟲(chóng)活性[10],還得到了與C7結(jié)構(gòu)相似的scFv-D5,但無(wú)殺蟲(chóng)活性(圖1)。CrylB購(gòu)于上海佑隆生物科技有限公司;大腸桿菌(Escherichia coli)TG1購(gòu)自英國(guó)劍橋MRC實(shí)驗(yàn)室;輔助噬菌體M13K07、Nco I酶、Not I酶、T4 DNA連接酶和Dpn I酶均購(gòu)于NEB公司;使用的其余試劑均為分析純。

        圖1 CrylB毒素的anti-Id scFv C7和D5的氨基酸序列分析Fig. 1 Amino acid sequence alignment of anti-Id scFv C7 and D5 against Cry1B toxin

        稻 縱 卷 葉 螟(Cnaphalocrocis medinalis) 源自揚(yáng)州綠源生物化工有限公司。試蟲(chóng)飼養(yǎng)溫度為(27±1)℃,相對(duì)濕度80%±5%,光照時(shí)間14 h,以水稻(Oryza sativa)葉片續(xù)代飼養(yǎng)。

        1.2 方法

        1.2.1 ScFv-C7與稻縱卷葉螟APN的同源建模和分子對(duì)接 ScFv-C7的同源建模從Protein Data Bank(PDB)數(shù)據(jù)庫(kù)分別搜索VH、VL的同源序列,根據(jù)一致性確定模板。在分別構(gòu)建VH和VL的同源模型后,通過(guò)最小二乘法對(duì)蛋白質(zhì)主鏈結(jié)構(gòu)重疊以構(gòu)建C7三維結(jié)構(gòu)。稻縱卷葉螟APN(CmAPN,NCBI登錄號(hào):ADZ05466.1)的建模則從PDB數(shù)據(jù)庫(kù)搜索一致性較高的模板即可。采用Ramachandran plot對(duì)C7和APN三維結(jié)構(gòu)進(jìn)行評(píng)估,評(píng)價(jià)其合理性。建模采用的Modeller程序由EasyModeller 4.0軟件[15]完成,Ramachandran plot分析由PROCHECK模塊評(píng)估(https://saves.mbi.ucla.edu)完成,蛋白三維結(jié)構(gòu)輸出使用 PyMOL 1.3 軟件[16]。

        使用ZDOCK在線程序(http://zdock.umassmed.edu/)對(duì)scFv-C7和CmAPN進(jìn)行蛋白對(duì)接。采用KFC熱點(diǎn)預(yù)測(cè)(http://kfc.mitchell-lab.org/)計(jì)算分析scFv-C7和CmAPN對(duì)接復(fù)合物,獲得二者接觸界面上互作的熱點(diǎn)殘基。

        1.2.2 ScFv-C7定點(diǎn)突變抗體庫(kù)的構(gòu)建 采用大引物PCR法(megaprimer PCR)[17-18]進(jìn)行飽和突變,分析scFv-C7位于對(duì)接界面上的熱點(diǎn)殘基,選擇了scFv- C7的 H-CDR3區(qū) A123、Y124和 L-CDR2區(qū)S204、S207作為突變位點(diǎn)。LMB3和pHENseq是用來(lái)擴(kuò)增全長(zhǎng)序列的引物;NNK_VH是引入H-CDR3區(qū)A123、Y124飽和突變的引物;NNK_VL是引入L-CDR2區(qū)S204、S207飽和突變的引物(表1)。所有引物均由上海生工生物合成。

        表1 飽和突變抗體庫(kù)構(gòu)建使用的引物序列Table 1 Primer sequences for the construction of sitedirected mutagenesis library

        普通 PCR 擴(kuò)增條件:95℃ 5 min,94℃ 45 s,56℃ 45 s,72℃ 1 min,共30個(gè)循環(huán),72oC 延伸10 min?!按笠铩盤(pán)CR 擴(kuò)增條件:95℃ 5 min,94℃ 45 s,58℃ 45 s,72℃ 1 min,共35個(gè)循環(huán),72℃ 延伸10 min。為去除PCR產(chǎn)物中未突變的的模板質(zhì)粒,使用Dpn I酶消解處理。

        分別將載體pIT2質(zhì)粒與定點(diǎn)飽和突變產(chǎn)物使用Nco I、Not I雙酶切處理,再用T4 DNA連接酶連接。使用BTX ECM 830電轉(zhuǎn)儀(Harvard Apparatus公司)將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化至TG1感受態(tài)細(xì)胞中,電轉(zhuǎn)產(chǎn)物快速加入1 mL 2×TY培養(yǎng)基,37℃,200 r/min復(fù)蘇1 h;10倍梯度稀釋后涂布于TYE-AG平板,置于37℃過(guò)夜培養(yǎng),計(jì)算庫(kù)容;然后將剩余復(fù)蘇產(chǎn)物離心后用100 μL 2×TY重懸沉淀,并均勻涂布于TYE-AG平板,37℃過(guò)夜培養(yǎng)。次日,隨機(jī)挑取10個(gè)單克隆,并用菌落PCR驗(yàn)證突變庫(kù)的準(zhǔn)確性,然后向TYEAG平板中加入1 mL 2×TY,用涂布棒刮起平板上的菌體細(xì)胞,并徹底混勻,所得即為定點(diǎn)飽和突變抗體庫(kù)。

        1.2.3 定點(diǎn)飽和突變抗體庫(kù)的篩選

        1.2.3.1 突變抗體庫(kù)的擴(kuò)增 取500 μL飽和突變庫(kù)加入到200 mL 2×TY-AG培養(yǎng)基中,37℃、250 r/min培養(yǎng)至對(duì)數(shù)期(OD600=0.4),將2×1011PFU M13KO7輔助噬菌體加入到上述50 mL培養(yǎng)液中,37℃孵育30 min。剩余的150 mL培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)2 h,10 800× g離心10 min,去上清,并重懸至10 mL的2×TY(含15%甘油)中,最后分裝保存至超低溫冰箱。含輔助噬菌體的飽和突變庫(kù)菌液孵育后,3 000 × g離心10 min,棄上清,再用100 mL 2×TY-AKG將菌體沉淀重懸,30℃過(guò)夜培養(yǎng)。次日,3 300 × g離心30 min,上清加入1/4體積的PEG/NaCl并充分混勻,冰浴1 h。3 300× g離心30 min,再用4 mL PBS重懸沉淀,最后11 600× g離心10 min,上清即為擴(kuò)增好的飽和突變抗體庫(kù),可用于后續(xù)篩選。

        1.2.3.2 稻縱卷葉螟B(niǎo)BMV對(duì)突變抗體庫(kù)的富集和篩選 使用稻縱卷葉螟4齡末期幼蟲(chóng)的中腸提取BBMV,采用Mg-EGTA沉降法制備[19]。篩選策略參考課題組前期方法[20],略有改動(dòng)。采用逐漸降低包被濃度的固相篩選方法對(duì)擴(kuò)增好的飽和突變抗體庫(kù)進(jìn)行3輪篩選,稻縱卷葉螟B(niǎo)BMV(CmBBMV)的濃度分別是 100 μg/mL、50 μg/mL 和 25 μg/mL,以每孔4 mL包被6孔板。經(jīng)過(guò)3輪“吸附-洗脫-擴(kuò)增”的篩選,使特異性結(jié)合的噬菌體得到有效富集。

        1.2.3.3 單克隆ELISA鑒定 參考劍橋MRC和課題組前期的方法[20],稍有改動(dòng),從第3輪篩選后的平板中隨機(jī)挑取單菌落轉(zhuǎn)接至96孔板中培養(yǎng);次日,從中取2 mL菌液轉(zhuǎn)移至新的96孔板中,培養(yǎng)2 h后,每孔加入25 mL滴度為109的輔助噬菌體M13KO7,培養(yǎng)、離心、去上清,每孔加入200 mL 2×TY-AKG重懸細(xì)胞,培養(yǎng)過(guò)夜;次日離心,取上清液備用。取30 mg/mL CmBBMV包被96孔板,每孔100 mL。次日封閉后加入每孔100 mL單克隆表達(dá)上清。其余均為ELISA標(biāo)準(zhǔn)操作步驟,使用酶標(biāo)儀(Thermo)測(cè)定OD450值,陽(yáng)性/陰性值大于2.1,即可判斷為陽(yáng)性克隆。

        1.2.4 突變抗體基因的測(cè)序與分析 選取在上述單克隆噬菌體ELISA分析中OD450值高于野生型scFv-C7的突變單克隆,按標(biāo)準(zhǔn)流程培養(yǎng)后提取質(zhì)粒、酶切、PCR鑒定和測(cè)序。序列比對(duì)分析使用ClustralW 2.0.10程序,圖像輸出使用Jalview 2.11軟件。

        1.2.5 突變單鏈抗體與CmBBMV的結(jié)合能力分析 表面等離子體子共振(surface plasmon resonance,SPR)技術(shù)是一種快速監(jiān)測(cè)生物分子互作的方法。各樣品菌液的制備方法同抗體庫(kù)擴(kuò)增方法一致,使用20 mL 2×TY-AG培養(yǎng)體系,次日PEG/NaCl充分混勻后冰浴、離心后棄上清,再用10 mL PBS重懸沉淀,最后11 600 × g離心10 min,上清即為待測(cè)樣品,滴度為3.2×107CFU/mL。陽(yáng)性對(duì)照Cry1B毒素濃度20 μg/mL。

        使用BIAcore X100 實(shí)驗(yàn)平臺(tái)(GE Healthcare),所用材料購(gòu)自GE公司。CmBBMV先用PBS稀釋至500 mg/L待用,進(jìn)樣反應(yīng)再用NaAc稀釋到50 mg/L。各待測(cè)樣品均使用HBS-EP稀釋到指定濃度。

        CmBBMV作為受體蛋白,通過(guò)氨基偶聯(lián)法固定到CM5傳感芯片上。將CM5傳感芯片F(xiàn)C1通道設(shè)為對(duì)照通道,F(xiàn)C2通道設(shè)為反應(yīng)通道?;罨疐C2通道待基線平穩(wěn)封閉,確定固定CmBBMV至芯片上的蛋白量。然后確定芯片再生反應(yīng)所需再生緩沖液Glycine-HCl的最適pH值。所有待測(cè)樣品勻速連續(xù)流過(guò)芯片表面,最后的傳感圖顯示FC2-FC1的響應(yīng)值(RU)。

        1.2.6 突變單鏈抗體對(duì)稻縱卷葉螟的殺蟲(chóng)活性 采用浸葉法,生測(cè)樣品的制備同SPR分析一致,最終得到PEG/NaCl沉淀的上清(滴度3.2×107CFU/mL),Cry1B濃度也是20 μg/mL。將新鮮水稻葉片分別放入各種生測(cè)材料中浸漬后取出晾干,用于實(shí)驗(yàn)。將處理后的水稻葉片分別放入培養(yǎng)皿,每皿接入20頭3齡幼蟲(chóng),24、48、72 h后分別記錄試蟲(chóng)狀態(tài),每處理3次重復(fù)。試蟲(chóng)死亡率采用Abbott公式進(jìn)行校正,并以平均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)誤表示。各處理時(shí)間樣品間采用單因素方差分析和Tukey顯著性比較,使用SPSS 17.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理。

        2 結(jié)果

        2.1 ScFv-C7與CmAPN三維結(jié)構(gòu)的同源建模及合理性評(píng)估

        CrylB毒素anti-Id scFv C7的VH選取人類生殖細(xì)胞抗體3-23/B3(PDB:3QOS)作為同源建模的模板[21],序列一致性為89%。C7的VL模板選取人類抗體Vκ域(PDB:2BX5)[22],序列一致性達(dá)到了98%。分別構(gòu)建VH和VL的同源模型后,通過(guò)蛋白質(zhì)主鏈結(jié)構(gòu)重疊獲得C7的結(jié)構(gòu)模型(圖2-A)。CmAPN的模板選擇人類 APN Cd13(PDB:4FYQ)[23],序列一致性為31%,CmAPN的三維結(jié)構(gòu)模型則如圖2-B所示。

        通過(guò)Ramachandran 圖對(duì)C7和CmAPN結(jié)構(gòu)模型主鏈構(gòu)型的Φ-Ψ二面角的分布進(jìn)行檢查。結(jié)果C7的98.5% 殘基落在最佳區(qū)域(圖2-C);CmAPN中97.3%殘基落在最佳區(qū)域(圖2-D),說(shuō)明模型結(jié)構(gòu)合理可信。

        圖2 ScFv-C7和CmAPN三維結(jié)構(gòu)的同源建模Fig. 2 Three-dimensional structure models of scFv-C7 and CmAPN

        2.2 ScFv-C7與CmAPN的分子對(duì)接及熱點(diǎn)預(yù)測(cè)

        ScFv-C7和CmAPN對(duì)接后的空間結(jié)構(gòu)如圖3-A所示,使用KFC2熱點(diǎn)預(yù)測(cè)系統(tǒng)分析得到scFv-C7上 的 熱 點(diǎn) 有 :Y54、A123、Y124、Y186、Y203、S204、S207。一般來(lái)說(shuō),單鏈抗體氨基酸序列變化主要發(fā)生在VH和VL的CDR2、CDR3區(qū),按照Kabat規(guī)則,上述預(yù)測(cè)的熱點(diǎn)殘基位于H-CDR3區(qū)(A123、Y124)和 L-CDR2 區(qū)(S204、S207)(圖 3-B),可以選擇這兩個(gè)區(qū)域進(jìn)行飽和突變。

        圖3 scFv-C7和CmAPN的分子對(duì)接及互作熱點(diǎn)分析Fig. 3 Molecular docking and the interaction hot spot analysis between scFv-C7 and CmAPN

        2.3 ScFv-C7飽和突變抗體庫(kù)的構(gòu)建

        使用大引物PCR法對(duì)scFv-C7模板進(jìn)行突變,以LMB3和NNK_VH為引物擴(kuò)增引入H-CDR3區(qū)A123、Y124的飽和突變(圖4-A),并當(dāng)做下一輪PCR的上游引物(大引物1),加下游引物pHENseq擴(kuò)增即為帶有H-CDR3飽和突變位點(diǎn)的PCR產(chǎn)物(圖4-B)。再以scFv-C7作為模板,NNK_VL和pHENseq為引物,引入VL區(qū)S204、S207的飽和突變(圖4-C),作為下一輪的PCR下游引物(大引物2),與上游引物L(fēng)MB3和模板(H-CDR3區(qū)突變位點(diǎn)的PCR產(chǎn)物)進(jìn)行擴(kuò)增,本次擴(kuò)增的PCR產(chǎn)物即為引入H-CDR3和L-CDR2的飽和突變區(qū)域(圖4-D)。

        圖4 基于scFv-C7對(duì)接界面熱點(diǎn)氨基酸的飽和突變Fig. 4 Saturation mutagenesis of hot spot amino acids on docking interface based on scFv-C7

        將scFv-C7飽和突變的PCR產(chǎn)物純化后克隆至pIT2噬菌粒載體,隨后電轉(zhuǎn)化至大腸桿菌TG1感受態(tài)細(xì)胞,再將轉(zhuǎn)化產(chǎn)物涂布于TYE-AG平板,構(gòu)建定點(diǎn)飽和突變抗體庫(kù),經(jīng)菌落計(jì)數(shù)法計(jì)算庫(kù)容為2×103。

        為了驗(yàn)證突變抗體庫(kù)所含基因是否正確,隨機(jī)挑取10個(gè)單克隆并利用噬菌體載體pIT2自帶引物L(fēng)MB3和pHENseq進(jìn)行PCR驗(yàn)證,結(jié)果發(fā)現(xiàn)9個(gè)克隆在950 bp左右有目的條帶(圖5),符合噬菌粒基因大小,只有1個(gè)突變克隆PCR未成功。構(gòu)建的飽和突變抗體庫(kù)基因正確率90%,可見(jiàn)適合后續(xù)篩選工作。

        圖5 構(gòu)建的飽和突變抗體庫(kù)正確性驗(yàn)證Fig.5 Verification of correction from constructed saturation mutant antibody library

        2.4 ScFv-C7定點(diǎn)突變抗體庫(kù)的篩選

        分析每輪篩選之后整體次級(jí)庫(kù)的親和力變化趨勢(shì),結(jié)果發(fā)現(xiàn)產(chǎn)出/投入隨著篩選輪數(shù)而增高,第3輪比第1輪的產(chǎn)出/投入提高了12倍(表2),可見(jiàn)篩選3輪后特異性突變株得到了有效富集。

        表2 scFv-C7突變抗體庫(kù)的富集和篩選Table 2 Enrichment and screening of scFv-C7 mutant antibody library

        2.5 單克隆ELISA篩選陽(yáng)性重組噬菌體

        隨機(jī)挑取第3輪篩選的單菌落用于單克隆噬菌體ELISA鑒定,從OD450值大于C7的陽(yáng)性克隆中選取了3個(gè)最高的單克?。?A5、3G2和2F7(圖6),用于進(jìn)一步序列比對(duì)分析。

        圖6 突變抗體的單克隆噬菌體ELISA分析Fig. 6 ELISA analysis of monoclonal phage for mutant antibodies

        2.6 篩選獲得突變基因的序列分析

        使用pIT2載體引物對(duì)3A5、3G2和2F7進(jìn)行PCR檢測(cè),條帶在950 bp左右(圖7-A),匹配噬菌體完整外源基因大小,可用于進(jìn)一步的測(cè)序分析。

        多重序列比對(duì)顯示3A5的H-CDR3區(qū)124位發(fā)生了突變,Tyr變成了Gly(Y124G);而3G2則無(wú)變化,跟C7序列完全一致,2F7序列的H-CDR2區(qū)76位出現(xiàn)了終止子(圖7-B)。最終選擇3A5即Y124G作進(jìn)一步分析。

        圖7 突變單鏈抗體的基因克?。ˋ)與氨基酸序列比對(duì)(B)Fig.7 Gene cloning(A)and amino acid sequence alignment(B)of mutant scFv antibodies

        2.7 突變單鏈抗體與CmBBMV的結(jié)合能力

        SPR檢測(cè)單鏈抗體與CmBBMV的結(jié)合過(guò)程,上 樣 緩 沖 液 選 擇 pH 4.0的 NaAc(10 mmol/L),CmBBMV偶聯(lián)到芯片上的量為1 267 RU,再生反應(yīng)選擇pH 2.5的Glycine-HCl(10 mmol/L)和5 mmol/L NaOH。

        各待測(cè)樣品分別通過(guò)CM5芯片,它們同CmBBMV的結(jié)合是動(dòng)態(tài)過(guò)程,先結(jié)合再解離。ScFv-D5同 CmBBMV基 本 沒(méi) 有 結(jié) 合(3.57 RU),Cry1B的結(jié)合能力最強(qiáng)(197.39 RU),突變型Y124G的結(jié)合能力(155.49 RU)將野生型scFv-C7的結(jié)合能力(72.77 RU)提高了2.1倍(圖8)。

        圖8 SPR分析突變單鏈抗體與CmBBMV的結(jié)合Fig. 8 SPR analysis of mutant scFv antibodies binding to CmBBMV

        2.8 突變單鏈抗體對(duì)稻縱卷葉螟的生物活性

        稻縱卷葉螟幼蟲(chóng)經(jīng)過(guò)24 h處理,Y124G與scFv-C7殺蟲(chóng)效果無(wú)明顯差異,但是48 h后,特別是經(jīng)過(guò)72 h處理,Y124G將scFv-C7的死亡率從42.22%提高到56.67%,雖然突變型將殺蟲(chóng)活性提高,但是顯著低于陽(yáng)性對(duì)照Cry1B的76.67%(表3),還需進(jìn)一步改造以達(dá)到更佳效果。

        表3 突變單鏈抗體對(duì)稻縱卷葉螟的生物測(cè)定Table 3 Bioassay of mutant scFv antibodies against C. medinalis larvae

        3 討論

        定點(diǎn)突變的改造方法與傳統(tǒng)抗體改造方法相比,避免了盲目性,成功率較高,而且以分子模擬為基礎(chǔ)的定點(diǎn)突變,在已知蛋白三維結(jié)構(gòu)及功能等方面信息的基礎(chǔ)上,預(yù)測(cè)分子間結(jié)合區(qū)域并確定關(guān)鍵氨基酸殘基,更加準(zhǔn)確的反應(yīng)了抗體蛋白作用界面的特征,大大提高了預(yù)測(cè)準(zhǔn)確度[13,24-25]。本文利用分子對(duì)接、預(yù)測(cè)熱點(diǎn)的理論知識(shí),構(gòu)建飽和突變抗體庫(kù),經(jīng)過(guò)固相篩選,準(zhǔn)確發(fā)現(xiàn)了一株提高功能活性的突變株。

        計(jì)算機(jī)輔助設(shè)計(jì)所構(gòu)建的飽和突變抗體庫(kù)的庫(kù)容為2×103,庫(kù)容偏小。在設(shè)計(jì)飽和突變片段的時(shí)候,突變位點(diǎn)設(shè)計(jì)成 NNK(N為A、G、C 或T,K為G或T),這使每個(gè)位點(diǎn)能囊括全部20種氨基酸,有效減少同義密碼子的數(shù)量,并能有效減少突變抗體庫(kù)的篩選數(shù)量[26-27]。此外,為了提高轉(zhuǎn)化效率,我們使用了電轉(zhuǎn)化來(lái)構(gòu)建抗體庫(kù)。庫(kù)容偏小可能的原因是在擴(kuò)增飽和突變基因過(guò)程中得到的PCR產(chǎn)物偏少或者濃度偏低(圖4-D),這需要優(yōu)化PCR程序或設(shè)計(jì)新的引物?;蛘呖稍诩扔型蛔凅w的基礎(chǔ)上進(jìn)行多輪突變,以積累有益突變,從而獲得親和力更高的突變體。

        SPR技術(shù)是基于金屬薄膜的光學(xué)耦合作用原理建立的探測(cè)生物分子之間相互作用的新技術(shù),可簡(jiǎn)單快捷地監(jiān)測(cè)生物分子之間的相互作用[28-30]。BIAcore SPR已在許多監(jiān)測(cè)種類中應(yīng)用,包括“抗原-抗體”和“受體-配體”互作這兩種最常見(jiàn)的類型。SPR分析發(fā)現(xiàn)Anti-Id scFv與CmBBMV的結(jié)合是“結(jié)合-平衡-解離”的動(dòng)態(tài)過(guò)程,不同于ELISA結(jié)合實(shí)驗(yàn)只得到最終狀態(tài)的靜態(tài)結(jié)果。一般只有偶聯(lián)到CM5傳感芯片上蛋白是單一純化物質(zhì)才能計(jì)算動(dòng)力學(xué)常數(shù)[31-32],由于昆蟲(chóng)中腸BBMV是多種受體蛋白混合而成,所以無(wú)法算出動(dòng)力學(xué)常數(shù),但是可以計(jì)算出結(jié)合能力。SPR與ELISA結(jié)果相互印證,明確了突變株Y124G對(duì)CmBBMV的親和力比野生型scFv-C7提高(圖8)。

        雖然突變型Y124G對(duì)稻縱卷葉螟的殺蟲(chóng)活性較野生型scFv-C7提高,但還是顯著低于Cry1B毒素(表3)。隨著蛋白質(zhì)晶體結(jié)構(gòu)的增加及優(yōu)化,三維結(jié)構(gòu)數(shù)據(jù)庫(kù)的擴(kuò)充,模型評(píng)價(jià)系統(tǒng)的優(yōu)化,分子對(duì)接技術(shù)的升級(jí),從而可以獲得更準(zhǔn)確的對(duì)接模型[33]。進(jìn)而在模型結(jié)構(gòu)上可以精確分析接觸面殘基位點(diǎn),確定突變氨基酸,為得到活性提高的抗體蛋白材料奠定了堅(jiān)實(shí)的基礎(chǔ)。

        4 結(jié)論

        本研究采用計(jì)算機(jī)模擬方法構(gòu)建了scFv-C7和CmAPN的結(jié)構(gòu)模型,分子對(duì)接并預(yù)測(cè)對(duì)接復(fù)合物的關(guān)鍵結(jié)合區(qū)域,分析位于scFv-C7上的熱點(diǎn)殘基并構(gòu)建定點(diǎn)飽和突變抗體庫(kù),利用固相篩選方法包被CmBBMV,篩選出親和力和生物活性提高的突變單鏈抗體。對(duì)基因工程抗體分子對(duì)接熱點(diǎn)進(jìn)行定點(diǎn)飽和突變,是一種快速抗體分子改造的有效方法,也為蛋白農(nóng)藥制備改造提供了一個(gè)新途徑。

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