沈龍仙,張 晨,汪 涵,袁瓊雨,楊松柏,周曉龍,趙阿勇
(浙江農(nóng)林大學動物科技學院·動物醫(yī)學院,浙江臨安 311300)
光作為一種非生物因素,會影響動物的生長速率、代謝活動、性成熟和繁殖等,對大多數(shù)生物的生命有重要作用。延長日照時間可以增加魚類的生長速度[1]、影響肉雞的采食量和生長率,也會影響骨骼系統(tǒng)疾病的發(fā)生率[2]。肌肉的生長發(fā)育受一系列生肌決定因子時空上的精密調(diào)控,根據(jù)這些因子的結(jié)構(gòu)和作用模式可以分為相對獨立的家族,如生肌調(diào)控因子家族(MRFs)、肌細胞特異性增強因子2 家族(MEF2)、轉(zhuǎn)化因子β超家族(TGF-β)、配對框家族(Pax)等。然而,關(guān)于光照管理技術(shù)對肌肉生長發(fā)育的影響少有報道,其相關(guān)的作用機制還需要進一步研究。
鵝屬于季節(jié)性繁殖動物,光照對其影響很大。合適的光照程序可以通過延長產(chǎn)蛋期和縮短休產(chǎn)期來提高鵝的產(chǎn)蛋性能[3]。研究發(fā)現(xiàn),不同光照組之間的肌肉特異性基因表達會發(fā)生變化,表明魚類肌肉生長過程的調(diào)控機制依賴于光周期的持續(xù)時間[1]。因此,推測光照可能會影響浙東白鵝肌肉的生長發(fā)育。MLT 是一種由松果體分泌的多功能吲哚類激素,其分泌具有晝夜節(jié)律和季節(jié)性節(jié)律,并且對光照非常敏感。本試驗檢測了浙東白鵝在不同光照模式下的血清MLT 含量,通過實時熒光定量PCR 技術(shù)分析肌肉特異性基因表達的變化,發(fā)現(xiàn)MLT 含量發(fā)生了顯著變化,因此在C2C12 細胞上開展了一系列初步實驗驗證MLT 對肌肉特異性基因的作用,為進一步提高家禽生長性能和促進肌肉生長發(fā)育提供參考資料。
1.1 實驗材料 總RNA 提取試劑Trizol(北京康為世紀生物科技有限公司);反轉(zhuǎn)錄試劑盒 5X All-In-One RT Master Mix(南京曼夫特生物科技有限公司);SYBR?Premix Ex TaqTM II 試劑盒(新貝生物科技有限公司);C2C12 細胞(浙江農(nóng)林大學動物遺傳育種與繁殖實驗室);磷酸鹽緩沖液(PBS)、胎牛血清(FBS)、DMEM 培養(yǎng)基(HyClone 公司);胰酶(0.25%Trypsin-EDTA 1X,Thermo Fisher 公司);12 孔板和細胞培養(yǎng)皿(杭州昊鑫生物科技有限公司)。
1.2 動物試驗 試驗持續(xù)時間為2 個月,選取32 周齡體型大小相似、體況良好的浙東白鵝母鵝16 只,隨機分成2 組,每組8 只。2 個試驗組分別接受長光照(15L:9D)和短光照(9L:15D)。按正常的飼養(yǎng)管理模式進行,內(nèi)設(shè)飲水器,每天喂料2 次(07:00 和17:00)。盡量保持舍內(nèi)衛(wèi)生、干燥。自由采食、自由飲水。在40 周齡對其進行屠宰,每組隨機抽取4 只鵝,取靜脈血5 mL用于后續(xù)各項指標的檢測。同時取所有鵝的同側(cè)腿肌組織部位,置于液氮速凍,-80℃保存。
1.3 細胞培養(yǎng)實驗
1.3.1 C2C12 細胞復(fù)蘇及培養(yǎng) 細胞復(fù)蘇:從液氮中迅速取出凍存的C2C12 細胞,放入提前預(yù)熱至37℃的水浴鍋中,不斷搖晃凍存管,在快要融化的時候取出,將細胞轉(zhuǎn)移至15 mL 離心管內(nèi),加入生長培養(yǎng)基吹打均勻,1 000 r/min 離心5 min。棄去上清液,加入1 mL含10%胎牛血清的DMEM 高糖培養(yǎng)基重懸細胞。將其轉(zhuǎn)移至10 cm 細胞培養(yǎng)皿中,置于含5% CO2、37℃的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
細胞傳代:培養(yǎng)瓶中的C2C12 細胞貼壁面積達到80%左右時,吸棄舊培養(yǎng)液,用磷酸鹽緩沖液PBS 清洗棄去,加入1 mL 0.25%胰蛋白酶消化細胞5 min 左右,加入1 mL 細胞終止液終止消化。吹打混勻后轉(zhuǎn)移至15 mL離心管內(nèi),1 000 r/min 離心5 min。吸棄上清液,加入生長培養(yǎng)基,將細胞吹打混勻,分裝至2 個10 cm 培養(yǎng)皿中,繼續(xù)培養(yǎng)。
細胞鋪板:待細胞融合率達到80%時,吸棄舊培養(yǎng)液,用磷酸鹽緩沖液PBS 清洗棄去,加入1 mL 0.25%胰蛋白酶消化細胞5 min 左右,加入1 mL 細胞終止液終止消化。吹打混勻后轉(zhuǎn)移至15 mL 離心管內(nèi),1 000 r/min離心5 min。吸棄上清液,加入生長培養(yǎng)基,將細胞吹打混勻,用12 孔板進行細胞鋪板,將細胞分組培養(yǎng)在含添加不同MLT 濃度(0、0.1、1.0、10 ng/mL)的DMEM 高糖培養(yǎng)基中。
1.3.2 體外培養(yǎng)C2C12 細胞不同時期的RNA 提取 細胞鋪板24 h 后收集提取各組細胞RNA,反轉(zhuǎn)錄后置于-20℃凍存。以GAPDH為內(nèi)參基因,對肌肉發(fā)育相關(guān)基因進行熒光定量PCR 檢測分析。
選擇適宜的褪黑素濃度進行C2C12 細胞培養(yǎng),將細胞分組培養(yǎng)在該濃度下的DMEM 高糖培養(yǎng)基中,同時設(shè)置對照組培養(yǎng)在無褪黑素處理的DMEM 高糖培養(yǎng)基中,收集提取30%、50%、70%、90%細胞融合度的細胞RNA,對其進行反轉(zhuǎn)錄和熒光定量PCR 操作。
1.4 總RNA 的提取和cDNA 的合成 利用Trizol 法(Trizol Reagent,Invitrogen)提取實驗鵝腿肌組織的總RNA。以1% 瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度儀檢測RNA 的純度和濃度,-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>
cDNA 的合成利用5X All-In-One RT MasterMix 反轉(zhuǎn)錄試劑盒(Abm,Canada)。配制反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)體系20 μL:5X All-In-One RT MasterMix 4 μL,RNA 1 ng,Nuclease-free H2O 加到20 μL。反應(yīng)條件為25℃10 min,42℃ 15 min,85℃ 5 min,4℃ 保存。反應(yīng)完成后取出加40 μL dd H2O 稀釋,-20℃保存。
1.5 引物設(shè)計與合成 根據(jù)NCBI 公布的mRNA 序列,采用Primer Premier 5.0 軟件對肌肉特異性相關(guān)基因以及內(nèi)參基因GAPDH進行引物設(shè)計(表1、2)。引物由北京擎科新業(yè)生物技術(shù)有限公司合成。
表1 鵝肌肉特異性基因PCR 擴增引物
1.6 實時熒光定量PCR 將反轉(zhuǎn)錄合成的 cDNA 模板,加入已驗證好的引物,根據(jù)SYBR?Premix Ex TaqTMII 試劑盒說明書進行實時熒光定量PCR 檢測,每個樣本重復(fù)3 次。反應(yīng)體系10 μL:2×S6 Universal SYBR qPCR Mix5 μL,F(xiàn)orward Primer 0.25 μL,Reverse Primer 0.25 μL,cDNA 1 μL,ddH2O 3.5 μL;qPCR 程序:95℃ 2 min,95℃ 15 s,60℃ 1 min,進行 40 個循環(huán),擴增結(jié)束后分析熔解曲線。每個樣本進行3 次實時PCR 檢測,取平均值。
表2 鼠肌肉特異性基因PCR 擴增引物
1.7 統(tǒng)計分析 本次實驗以GAPDH 基因作為內(nèi)參基因?qū)z測的目的基因進行歸一化,采用 2-ΔΔCt法得出不同光照時間下浙東白鵝肌肉特異性基因的相對表達量,實驗數(shù)據(jù)用SPSS 20.0 軟件進行單因素方差分析,使用LSD 法進行差異顯著性檢驗。差異顯著水平設(shè)為P<0.05。
2.1 不同光照對體重和褪黑素含量的影響 如圖1 所示,長光照組的平均體重為3.86 kg,較短光照組下降了14.41%(P<0.05)。短光照組體內(nèi)血清的褪黑素含量(431.29 ng/L)較長光照組(377.94 ng/L)顯著提高。
圖1 2 種光照制度下浙東白鵝的平均體重和血清內(nèi)的褪黑素含量
2.2 光照對鵝肌肉特異性基因表達的影響 RT-qPCR 結(jié)果顯示,在實驗期間,所有基因的表達水平都發(fā)生了變化。由圖2 可知,短光照組中Pax7、Pax3、Myf6、MSTN基因表達高于長光照組(P>0.05),其中Myf5基因的表達高于長光照組(P<0.05)。而長光照組中MyoG、MyoD基因的表達高于短光照組(P>0.05)。
圖2 2 種光照制度下浙東白鵝肌肉特異性基因mRNA 的表達
2.3 不同MLT 濃度處理C2C12 細胞后肌肉特異性基因的表達 圖3 結(jié)果顯示,Myf5基因在10 ng/mL MLT 處理組的表達低于0 ng/mL 組(P<0.01),而且Myf6基因在10 ng/mL MLT 處理組的表達低于0 ng/mL 組(P<0.05),其他基因在10 ng/mL MLT 處理組的表達雖然沒有顯著差異,但都呈下降趨勢。相反,各個基因在0.1、1 ng/mL 處理組的表達與0 ng/mL 組均無顯著變化。2.4 C2C12 細胞的培養(yǎng) 圖4 顯示的是細胞融合度達到30%、50%、70%、90%的10 ng/mL MLT 處理組和0 ng/mL MLT 處理組的細胞形態(tài)。圖中可以看出,當細胞融合度達到70% 或90% 時,10 ng/mL MLT 處理組的細胞形態(tài)比0 ng/mL MLT 處理組的更為纖長。
圖3 不同濃度處理下小鼠成肌細胞C2C12 中特異性基因的表達
圖4 C2C12 細胞的增殖過程
2.5 10 ng/mL MLT 處理C2C12 細胞后肌肉特異性基因的表達譜 從圖5 可以看出,細胞融合度達到30%、50%、70%、90% 時肌肉發(fā)育基因在10 ng/mL MLT 處理組的表達都低于0 ng/mL MLT 處理組(P>0.05),結(jié)果表明在一定條件下,10 ng/mL MLT 處理對C2C12細胞中的肌肉特異性基因有抑制作用。
圖5 10 ng/mL MLT 處理C2C12 細胞后肌肉特異性基因的表達譜
3.1 光照對浙東白鵝體重的影響 家禽的眼睛對光非常敏感,光照是影響家禽生產(chǎn)力表現(xiàn)的主要環(huán)境因素之一,而體增重是評定家禽生產(chǎn)性能的一項重要指標。本試驗中短光照組的平均體重顯著高于長光照組,與前人的試驗結(jié)果不同。如王秋菊等[4]試驗表明,長日照對東北白鵝公鵝總增重沒有顯著影響,但對東北白鵝和浙東白鵝的總增重有顯著的促進增長作用。Schwean-Lardner 等[5]研究發(fā)現(xiàn),23 h 光照飼養(yǎng)下肉雞的體增重小于17 h 光照飼養(yǎng)下的肉雞體增重,說明延長光照時間不一定促進家禽生長。也有研究發(fā)現(xiàn)不同光照時間不會影響家禽體重。石雷等[6]研究證實,4 種光照節(jié)律下的肉雞平均體增重無顯著差異,可能是因為長時間的光照使肉雞興奮性增強,加大活動力度,從而導致體增重的差異。另外,不同的研究學者采取的試驗條件不同,包括品種、光照時間和恒定光強度的選擇,以及季節(jié)導致的溫度差異均會影響試驗結(jié)果。研究表明,不同雞種體重存在顯著差異,其肌肉中骨骼肌衛(wèi)星細胞的數(shù)量及細胞大小也有顯著差異,且骨骼肌衛(wèi)星細胞分化也有顯著差異[7]。
3.2 褪黑素、光照對浙東白鵝肌肉生長發(fā)育的影響 從上述結(jié)果可以看出,長光照組的平均體重和血清中MLT 含量均顯著低于短光照組,表明光照對浙東白鵝的體重和體內(nèi)MLT 含量有顯著影響。研究發(fā)現(xiàn)松果體能將光信號轉(zhuǎn)換為褪黑素信號,進而調(diào)節(jié)動物機體的免疫、激素的合成以及生殖等生理活動,并且光周期、光強度和光波長均能影響家禽MLT 的分泌[8]。Calvo-Guirado 等[9]研究表明,MLT 可以促進大鼠脛骨植入中新骨的生長。Natalia 等[10]研究表明,添加10~100 ng/mL MLT 可以促進雞胚原代衛(wèi)星細胞的增殖。以上數(shù)據(jù)表明,MLT 對肌肉生長發(fā)育有顯著影響。
3.3 光照對浙東白鵝肌肉特異性基因表達的影響MRFs 包 括Myf5、MyoD、Myf6或MRF4和MyoG,其中Myf5和MyoD主要參與成肌細胞的增殖;MyoG在胎兒發(fā)育中起作用,并且主要在分化末期表達;而Myf6主要在出生后表達,參與肌細胞的最終分化及肌纖維的維持。Pax3和Pax7同屬于Pax基因家族的第三亞家族,是生肌過程中主要的上游調(diào)控因子。Pax3主要調(diào)控早期胚胎的肌發(fā)生,而Pax7主要與肌肉損傷的修復(fù)有關(guān),在這兩個過程中另一方扮演輔助角色。肌肉生長抑制素(MSTN)為TGF-β超家族成員,對骨骼肌生長起負調(diào)控作用。成年家畜的肌肉生長能力在胚胎時期就已決定[11]。但這些生肌決定因子的相關(guān)機制仍未不清楚。
肌肉的生長發(fā)育受上述因子調(diào)控,同時這些因子也存在廣泛的相關(guān)性。陳禧[12]研究發(fā)現(xiàn),在出生后母鴨胸肌中,Pax3、Pax7、MyoD和Myf5具有廣泛的相關(guān)性,幾乎任意兩基因的表達水平均呈顯著或極顯著相關(guān)。Pax7基因與Pax3基因相互作用,通過誘導MyoD和Myf5基因的表達來參與骨骼肌的發(fā)育[13]。研究表明,MyoD和Myf5之間可能存在負反饋調(diào)節(jié),Myf5促進MyoD基因的表達,而MyoD又抑制Myf5基因的表達[14]。在MyoG缺失的動物肌肉中Myf6 水平顯著增加,這在一定程度上具有代償作用[15]。因此本試驗中肌肉特異性基因表達的變化結(jié)果應(yīng)該結(jié)合起來分析,長光照組中Myf5基因的表達顯著降低,而MyoD的表達在長光照組有上升趨勢但并不顯著,與前人結(jié)果類似[14]。而且Myf6基因的表達在長光照組有下降趨勢,MyoG基因在長光照組有上升趨勢,本試驗推測兩者之間可能存在代償作用。目前關(guān)于肌肉特異性基因功能的研究尚不清楚,還需要進一步探索。
骨骼肌快肌和慢肌的上游調(diào)節(jié)因子Pax7和Pax3是重要的肌源性誘導物,在骨骼肌的發(fā)展和更新過程中起重要作用。Pax7基因是一個重要的轉(zhuǎn)錄因子,可調(diào)控骨骼肌衛(wèi)星細胞的增殖和分化。Pax7與肌肉的生長和修復(fù)密切相關(guān),在衛(wèi)星細胞的特化、增殖和激活過程中都有表達[16]。研究證實Pax3的持續(xù)表達可以抑制肌細胞分化,表明Pax3表達下降是成肌過程持續(xù)進行的必要步驟[12]。Pax3對胚胎期動物四肢的正常生長和發(fā)育至關(guān)重要,而Pax7更傾向于參與骨骼肌損傷修復(fù)的過程[17]??赡苁且驗镻ax7、Pax3分別在骨骼肌損傷修復(fù)和胚胎發(fā)育期起作用,在生長后期兩者的表達會下調(diào),因此本試驗中Pax7、Pax3基因的表達并沒有受光照調(diào)控的趨勢。
研究發(fā)現(xiàn)Myf5在脊椎動物的生肌過程中扮演重要角色[18]。其表達水平通常在孵化時最高,然后隨年齡增加而下降[19]。本試驗中,長光照組中Myf5基因的表達較短光照組顯著下調(diào),表明光照對Myf5基因的表達有顯著影響。Myf6基因主要參與出生后肌肉分化的過程,并在成肌細胞的持續(xù)分化過程中起重要的調(diào)控作用,且在整個生長過程中保持相對較高的表達水平[20]。本試驗中,Myf6基因的表達相對其他基因呈現(xiàn)出較高的表達水平,但長光照組和短光照組的Myf6基因表達沒有顯著差異,可能是因為Myf6基因的表達不受肌肉類型、年齡和品種的影響[21]。
MyoG在成肌細胞融合為肌纖維的過程中起調(diào)節(jié)作用,是肌細胞終末分化的關(guān)鍵因子。Patruno 等[22]研究了長白豬在胚胎期高表達MyoG,出生后呈低表達的穩(wěn)定趨勢。需要考慮的是,在不同種類的動物中,同種動物的不同發(fā)育時期,同種動物的不同類型的肌肉組織,同種細胞的不同狀態(tài)下MyoG基因轉(zhuǎn)錄水平的表達具有不同規(guī)律[23]。目前MyoG在禽類胚胎發(fā)育過程中肌肉組織中的發(fā)育性表達特性的研究比較少。本研究中長光照組MyoG基因的表達略高于短光照組,但沒有顯著趨勢,鑒于MyoG基因在鵝早期增重發(fā)揮調(diào)控作用[24],猜測MyoG基因在浙東白鵝產(chǎn)蛋期的表達水平可能已經(jīng)穩(wěn)定,并且不受光照影響。
MyoD能促進各種類型細胞轉(zhuǎn)化為成肌細胞,是肌肉組織形成的調(diào)節(jié)決定因子。肌肉中MyoD與Myf5表達相似,都是先升高后降低[25]。MyoD基因的過表達會抑制成肌細胞的增殖,并促進成肌細胞分化為成熟的肌纖維細胞[26]。本試驗中MyoD基因的表達在長短光照組中均不顯著,表明此試驗中MLT 對MyoD基因表達沒有影響。
MSTN是一種對骨骼肌生長具有負調(diào)控作用的細胞因子,其突變或缺失會導致肌細胞增生和肌纖維肥大[27]。研究報道,肌肉生長性狀表現(xiàn)迥異的蛋雞和肉雞MSTNmRNA 表達量并無明顯差異,表明單一個MSTN基因不足以解釋禽類機體正常生長過程中肌肉的生長情況,而應(yīng)與其他基因結(jié)合分析[28]。研究發(fā)現(xiàn),MRFs 家族不同成員在肌肉生長時先后表達,促進肌細胞增殖、分化,而MSTN可通過調(diào)控MRFs 抑制肌肉生長發(fā)育[29]。本試驗中,MSTN基因的表達水平相對較低,MRFs 家族的成員表達水平較高,表明機體可能處于促進肌肉生長發(fā)育的趨勢。王錢保[30]研究證實,淮南麻黃雞的MSTN基因表達量與體重呈顯著負相關(guān)。Zhang 等[31]研究顯示,MSTN基因的多態(tài)性對邊雞6~18 周齡的體重有顯著影響。本試驗中MSTN基因在長光照組中的表達略低于短光照組,但無顯著差異,而長光照組的體重顯著低于短光照組,說明MSTN基因的表達與體重沒有顯著關(guān)系。
3.4 褪黑素對小鼠成肌細胞發(fā)育基因表達的影響 本研究發(fā)現(xiàn)10 ng/mL MLT 對C2C12 細胞中的肌肉特異性基因有抑制作用。有研究表明在C2C12 成肌細胞系中添加1~2 mmol/L 褪黑素能誘導自噬從而降低MyoD[32]。但本試驗結(jié)果顯示,在C2C12 細胞中添加MLT 并沒有顯著降低MyoD基因的表達水平,可能是因為濃度不一,或是自噬導致的MyoD的下調(diào)所致。后續(xù)試驗將利用浙東白鵝腿肌細胞進行不同的MLT 濃度處理實驗,并且在之前細胞增殖實驗的基礎(chǔ)上再增加骨骼肌衛(wèi)星細胞的分化實驗,進一步探測各個基因的相關(guān)調(diào)控機制。
本研究發(fā)現(xiàn)Myf5基因在長光照組中呈顯著下調(diào)趨勢,其他基因沒有顯著變化;C2C12 細胞培養(yǎng)實驗中發(fā)現(xiàn)添加適宜濃度(10 ng/mL)的MLT 對肌肉特異性基因有抑制作用;Myf5基因在10 ng/mL MLT 組的表達極顯著低于0 ng/mL MLT 組,Myf5基因可能是光照通過褪黑素影響肌肉發(fā)育的一個關(guān)鍵基因,其他基因的作用需要進一步研究。