沈沐瑤,李佳洋,孫菁,王婧螢,王馨詣,郭海英*,徐道明,朱媛媛
(1.南京中醫(yī)藥大學,江蘇 南京 210033;2.鹽城市第一人民醫(yī)院,江蘇 鹽城 224041;3.江蘇省中醫(yī)院,江蘇 南京 210029;4.南通市第六人民醫(yī)院,江蘇 南通 226001)
絕經(jīng)后骨質疏松癥(Postmenopausal osteoporosis,PMOP)是一種全身性的慢性骨骼疾病,對患者有巨大的負面影響。該病所用治療藥物主要分為抑制骨吸收劑與促進骨形成劑[1],目前臨床治療與科學研究主要集中于減少骨破壞,市面上大多藥物也屬于骨吸收抑制劑[2],而對于促進骨形成的相關研究較少[3-7]。大量臨床試驗證明,中醫(yī)藥治療PMOP 具有較好的應用前景,因此研究其治療PMOP 的機制,尤其是通過促進骨形成治療PMOP的作用機制有重大意義。
絲氨酸/蘇氨酸激酶(serine/threonine kinase,Akt)是一種主要表達在細胞質內的蛋白激酶。目前Akt 的研究重點主要在于脂肪形成,另有研究證實,Akt 亦可以通過影響下游因子PPARγ 的表達,進而調控骨髓間充質干細胞(BMSCs)成脂作用以促進成骨。因而研究Akt 及其下游關鍵因子PPARγ,對于研究PMOP 的治療,尤其是通過促成骨治療PMOP有重要意義。
本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),培本固疏方(PBGSF)可以調控破骨細胞,本實驗著重研究PBGSF 通過促進成骨干預PMOP 的具體作用機制,以期進一步探索完善PBGSF防治PMOP的有效途徑,從促成骨角度為PMOP的防治提供新思路。
1.1.1 實驗動物
6月齡SPF 級(300 ± 30)g 健康雌性未孕大鼠36 只(上海西普爾-必凱實驗動物有限公司),許可證號:SCXK(滬)2018-0006。飼養(yǎng)于南京中醫(yī)藥大學動物實驗中心,室溫(22± 2)℃,濕度40%~60%。本實驗過程由南京中醫(yī)藥大學動物實驗倫理委員會監(jiān)督(倫理號:201905A022)。
1.1.2 實驗藥物
培本固疏方由龜甲、鹿角片、人參、仙桃草按2∶2∶3∶4 配伍(所有藥材購于南京中醫(yī)藥大學百草堂藥房),龜甲打碎先煎30 min,加入鹿角片、仙桃草煎煮20 min,過濾煎液,人參單煎30 min 后取汁與前煎液混合,分別濃縮為低、中、高劑量(生藥含量分別為1、2、4 g/mL)冷藏備用。
1.1.3 實驗試劑與設備
1.1.3.1 主要試劑
活性氧(ROS)ELISA 試劑盒(南京翼飛雪生物科技,YFXER00746);堿性磷酸酶(ALP)ELISA 試劑盒(南京翼飛雪生物科技,YFXER00084-1);無水乙醇(上海中試化工總公司,2010072312);二甲苯(濟南匯豐達化工有限公司,9024300);二抗(Broad Spectrum,85-9043);DAB 試劑盒(上海生工生物工程有限公司,PW017);鹽酸(國藥集團化學試劑有限公司,2016082214);氨水(國藥集團化學試劑有限公司,2016093226);中性樹膠(國藥集團化學試劑有限公司,2016073021)。
1.1.3.2 主要設備與儀器
脫水機(武漢俊杰電子有限公司,JJ-12J);包埋機(武漢俊杰電子有限公司,JB-P5);病理切片機(上海徠卡儀器有限公司,RM2016);凍臺(武漢俊杰電子有限公司,JB-L5);組織攤片機(浙江省金華市科迪儀器設備有限公司,KD-P);烤箱(上?;厶﹥x器制造有限公司,DHG-9140A);載玻片及蓋玻片(江蘇世泰實驗器材有限公司,10212432C);正置光學顯微鏡(日本尼康,NIKONECLIPSE CI);成像系統(tǒng)(日本尼康,NIKON DS-U3)。
1.2.1 實驗分組
將全部大鼠隨機分為假手術組、模型組、PBGSF低劑量組(低劑量組)、PBGSF 中劑量組(中劑量組)、PBGSF高劑量組(高劑量組)和西藥組。在自然光條件下分籠飼養(yǎng),控制室溫(22 ± 2)℃,相對濕度40%~60%。
1.2.2 模型建立
進行1 周的適應性飼養(yǎng)后,采用摘除雙側性腺(卵巢)的方法建立絕經(jīng)后骨質疏松大鼠模型。造模前禁食1 d,飲水正常,術前采用腹腔注射10%水合氯醛溶液(300 mg/kg)對大鼠進行麻醉。造模后7 d 內,各組大鼠均經(jīng)后肢肌注青霉素8 萬U/d 防感染,4 周后經(jīng)骨密度檢測驗證造模是否成功。
1.2.3 給藥
各組大鼠自由飲食、自然光照,每周稱重1 次。造模1 個月后。按等效劑量比率計算各治療組大鼠的給藥劑量并開始灌胃給藥,每日1次,持續(xù)8周,給藥容積0.5 mL/100 g,給藥前將藥劑隔水加熱。低、中、高劑量組分別給予相應生藥含量的培本固疏方;西藥組給予阿侖膦酸鈉0.1 mg/100 g;模型組和假手術組給予生理鹽水0.5 mL/100 g。
大鼠末次給藥結束禁食1 d 后取材,使用10%水合氯醛溶液經(jīng)腹腔注射(300 mg/kg)對大鼠進行麻醉,后右心室抽血處死。取適量試管并標記組別,仔細快速分離大鼠雙后肢脛骨,置于-80 ℃的冰箱保存,用于Western Blot 檢測;取大鼠股骨組織固定于甲醛溶液,用于骨應力檢測和茜素紅染色;采集大鼠血液保存,用于ELISA檢測。
將待測大鼠脛骨置于MEDIX-90 雙能X 線骨密度儀中,掃描得到高分辨率的圖像,經(jīng)軟件分析測定獲得大鼠脛骨骨密度值(BMD)。用生物力學測試儀進行試驗,檢測骨應力:將取得的股骨標本置于儀器測試口,調整支點使得壓力錘停留于骨標本正中,調整跨距以及加載速度至骨標本斷裂,記錄彈性位移、極限位移和脆性。
采用SPSS 22.0 統(tǒng)計軟件對實驗結果進行分析,實驗數(shù)據(jù)用均數(shù)±標準差(±s)表示,組間比較采用單因素方差分析,P<0.05代表差異具有統(tǒng)計學意義。
與假手術組比較,模型組脛骨BMD 顯著降低(P<0.01)。與模型組相比,低劑量組BMD上升,但結果不具有統(tǒng)計學意義;中劑量組BMD顯著增高(P<0.05),高劑量組、西藥組BMD 增高十分顯著(P<0.01)。見表1。
表1 各組大鼠脛骨BMD情況比較(±s)
表1 各組大鼠脛骨BMD情況比較(±s)
注:與假手術組比較,##P <0.01;與模型組比較,*P <0.05,**P <0.01。
骨密度(g/cm2)0.162±0.037 0.096±0.013##0.125±0.023 0.130±0.018*0.142±0.023**0.149±0.029**組別假手術組模型組低劑量組中劑量組高劑量組西藥組n6 6 6 6 6 6
與假手術組相比,模型組大鼠股骨組織彈性位移、極限位移明顯低于假手術組(P<0.01),股骨組織脆性升高(P<0.05)。與模型組比較,低劑量組極限位移顯著增高,脆性顯著降低(P<0.01),彈性位移有所增高,但結果不具有統(tǒng)計學意義;中劑量組極限位移顯著增高,脆性顯著降低(P<0.01),彈性位移結果不具有統(tǒng)計學意義;高劑量組、西藥組彈性位移、極限位移增高均十分顯著(P<0.01),西藥組脆性降低(P<0.05),而高劑量組脆性降低更明顯(P<0.01)。見表2。
表2 各組大鼠骨生物力學指標的比較(±s,n=6)
表2 各組大鼠骨生物力學指標的比較(±s,n=6)
注:與假手術組比較,#P <0.05,##P <0.01;與模型組比較,*P <0.05,**P <0.01。
脆性(mm)0.293±0.079 0.168±0.061#0.287±0.071**0.292±0.077**0.227±0.060*0.270±0.042*組別假手術組模型組低劑量組中劑量組高劑量組西藥組彈性位移(mm)0.737±0.120 0.337±0.074##0.304±0.072 0.391±0.079 0.533±0.073**0.571±0.046**極限位移(mm)1.030±0.087 0.505±0.047##0.591±0.035**0.683±0.013**0.760±0.017**0.841±0.015**
用茜素紅(ARS)染色評估OB 礦化程度。與假手術組比較,模型組骨組織未出現(xiàn)鈣化現(xiàn)象。與模型組比較,低、中、高劑量組骨組織鈣化結節(jié)數(shù)量及鈣沉積現(xiàn)象與濃度正相關,西藥組亦可見大量鈣化結節(jié)和鈣沉積。見圖1。
圖1 大鼠股骨組織的形態(tài)學觀察
與假手術組相比,模型組大鼠血清ALP 顯著升高(P<0.01);與模型組比較,低、中、高劑量組與西藥組大鼠血清ALP 均明顯降低(P<0.01),其中中藥組效應具有濃度依賴性。見表3、圖2。
表3 各組大鼠ALP水平比較(±s)
表3 各組大鼠ALP水平比較(±s)
注:與假手術組比較,##P <0.01;與模型組比較,**P <0.01。
組別假手術組模型組低劑量組中劑量組高劑量組西藥組ALP(ng/L)33.797±8.170 135.557±11.510##84.677±6.722**71.726±13.135**49.523±13.135**32.872±9.288**n6 6 6 6 6 6
圖2 各組大鼠ALP水平比較
與假手術組相比,模型組大鼠ROS 顯著升高(P<0.01)。與模型組比較,低、中、高劑量組與西藥組大鼠ROS 均明顯降低(P<0.01),且中藥組效應具有濃度依賴性。見表4、圖3。
表4 各組大鼠氧化應激指標ROS情況比較(±s)
表4 各組大鼠氧化應激指標ROS情況比較(±s)
注:與假手術組比較,##P <0.01;與模型組比較,**P <0.01。
ROS(IU/mL)51.536±4.403 185.322±8.309##104.763±15.154**66.162±5.434**50.817±2.972**48.180±2.118**組別假手術組模型組低劑量組中劑量組高劑量組西藥組n6 6 6 6 6 6
圖3 各組大鼠ROS水平比較
與假手術組相比,模型組大鼠Akt 蛋白表達水平顯著降低,PPARγ 蛋白的表達水平顯著升高(P<0.01)。與模型組比較,低劑量組PPARγ 蛋白的表達水平明顯降低(P<0.01),Akt 蛋白表達水平增高,但結果不具有統(tǒng)計學意義;中劑量組Akt 蛋白表達水平增高(P<0.05),PPARγ 蛋白的表達水平降低(P<0.01);高劑量組、西藥組Akt 蛋白表達水平顯著增高,PPARγ蛋白的表達水平顯著降低(P<0.01)。見圖4、圖5、圖6。
圖4 各組大鼠骨組織中堿性磷酸化的Akt蛋白表達情況比較
圖5 各組大鼠骨組織中PPAR-γ蛋白表達情況比較
圖6 各組大鼠骨組織Akt/PPARγ蛋白表達量比較
文獻表明,卵巢摘除法是目前普遍用于構建絕經(jīng)后骨質疏松大鼠模型的造模方法,Sprague-Dawley 和Wistar 大鼠是最常用的品系[8]。骨質疏松研究的大鼠最小年齡應為6 個月,故本次實驗選用6 個月大小的SPF 級健康、雌性未孕大鼠,造模結束4 周后經(jīng)骨密度檢測驗證造模成功,后持續(xù)干預給藥8周。
骨密度為目前公認的診斷絕經(jīng)后骨質疏松癥的金指標[9],而雙能X 線骨密度檢測(DEXA)更是臨床用于評判骨質疏松程度及療效的金指標[10]?,F(xiàn)代研究表明,骨質疏松常伴有明顯骨生物力學改變[11],因此通過研究骨應力變化,可以在一定程度上反應骨質疏松水平。骨代謝指標的變化先于骨密度,對于骨量的丟失可以起到一定的預測作用,相比較于單獨測定骨密度,進一步測定骨代謝的生化指標可以更為及時地反映骨重建的動態(tài)。
PMOP 是由于激素水平下降等因素,導致絕經(jīng)后婦女骨重塑破壞所形成的疾?。?2-13]。骨形成減少的具體原因在于骨髓間充質干細胞(BMSCs)成骨分化減少以致成骨細胞生成減少,以及氧化應激反應等各種原因導致的成骨細胞凋亡加劇。為了評估培本固疏方對成骨細胞的影響,應當從骨細胞生成的細胞增殖、基質成熟和礦化三個階段分析[14-15]?,F(xiàn)代研究表明,茜素紅(ARS)染色陽性提示成骨細胞礦化成功,各治療組和假手術組ARS 染色均呈陽性,可見大量密集的鈣化結節(jié)和鈣沉積,且低、中、高劑量組骨組織鈣化結節(jié)數(shù)量及鈣沉積現(xiàn)象與濃度正相關,提示培本固疏方可以以劑量依賴的方式促進成骨細胞礦化成熟。此外,堿性磷酸酶(ALP)在骨形成中也起著重要的作用[16-17],模型組血清中ALP 含量上升,各治療組經(jīng)治療后ALP含量下降,提示培本固疏方可以通過調整血清中ALP水平介導PMOP的治療。
絲氨酸/蘇氨酸激酶(serine/threonine kinase,Akt)又稱蛋白激酶B,是一種主要表達在細胞質內的蛋白激酶[18],與骨形成密切相關,具體表現(xiàn)為誘導BMSCs成骨、促進成骨細胞成熟以及抑制骨細胞凋亡三個方面。PPARγ 是Akt 信號通路下游的關鍵影響因子,由細胞內脂質激活,是脂肪細胞分化的重要轉錄因子,對維持脂質穩(wěn)態(tài)和抗氧化/抗炎反應至關重要[19]。PPARγ可以上調BMSCs 成脂作用[20],進而抑制BMSCs 成骨作用,間接調控成骨細胞的分化和骨形成。Akt/PPARγ通路是調控成骨細胞增殖分化凋亡的關鍵通路,這一途徑可被生長因子和其他細胞外信號激活。在成骨細胞分化和發(fā)揮功能的所有階段都需要Akt 活性[21],但可能在成骨分化細胞的過程中存在包括PPARγ 在內的幾個不同的Akt 靶標,這些靶標控制著成骨細胞發(fā)育和功能的不同方面[22],具體如下:
1)Akt/PPARγ 信號通路可以誘導BMSCs 成骨。Akt 本身關系到脂肪形成[23],有研究表明,在不存在Akt的情況下,脂肪細胞分化受到抑制[24]。當Akt通路受到抑制時,通路下游關鍵因子GSK-3β 和βcatenin 表達上調。現(xiàn)代研究表明,β-catenin 的高表達可以提高BMSCs 成骨分化,而β-catenin 的失活則會導致體內外成骨分化的降低[25]。GSK-3β 失活可以誘導細胞溶質積累,使得β-catenin 易位至細胞核,激活靶基因PPARγ 致其表達上調[26-28],從而導致脂肪細胞分化,并通過調控BMSCs 成脂作用間接調節(jié)成骨細胞分化,影響骨形成。因此,通過Akt通路調控下游關鍵因子GSK-3β和β-catenin,抑制下游PPARγ表達對于增加BMSC 成骨分化是本課題組自擬方干預PMOP的可能機制。
2)激活Akt/PPARγ 信號通路亦可以促進成骨細胞成熟,機制與Akt 信號通路及其下游關鍵因子Forkhead 轉錄因子(FoxO)有關[29]。FoxO3 為FoxO 家族的主要分子,在軟骨細胞和成骨細胞中高度表達,是Akt信號通路的重要底物[30]。研究表明,F(xiàn)oxO3的缺失會強烈影響成骨細胞的功能[31-34]?;罨腁kt 可以磷酸化FoxO,通過保持其在細胞質中的停留來控制其轉錄活性,通過調節(jié)FoxO3 來影響骨形成和成骨細胞存活,同時可以與骨形態(tài)發(fā)生蛋白2(BMP2)協(xié)同介導BMSCs的成骨細胞分化[35]。
3)Akt/PPARγ 信號通路可以控制成骨細胞凋亡,其主要機制與下游骨形成正調控因子FoxO1 有關[36]。氧化應激條件下,活性氧可以通過激活Akt/PPARγ 通路,上調下游關鍵因子Nrf-2[37]表達,以Nrf-2依賴性方式上調HO-1[38-39]表達,抑制細胞凋亡達到其促成骨作用。
以上理論研究得出,激活Akt 通路抑制下游關鍵因子PPARγ 表達,增加成骨細胞分化成熟,減少其凋亡,是本方干預PMOP 的可能機制。本試驗表明,本方可以增加Akt表達,降低PPARγ的表達,這與本方臨床有效性以及對其促成骨作用的猜想相一致。
中醫(yī)學認為,骨質疏松癥的病機多為脾腎不足,氣滯血瘀,治法上??紤]補益脾腎、活血祛瘀。培本固疏方由郭海英教授根據(jù)長期臨床經(jīng)驗擬定,藥物組成為龜甲、鹿角、人參和仙桃草。其中人參為君藥,固本培元、補脾益氣,以復血瘀日久所致的元氣虛弱,同時補益后天之本,促進水谷精微的運化,充養(yǎng)骨髓;龜甲、鹿角共為臣藥,補益先天,使腎精得復,同時又能溫補腎陽,助推氣血運行;仙桃草為使藥,借君藥人參補氣之力行活血之功,祛陳除瘀,使血瘀得復而骨骼得養(yǎng)?,F(xiàn)代研究亦證實,本方中君藥人參含有大量人參皂苷,人參皂苷Rb1 可顯著提高成骨細胞的成活率和調控ALP,抑制氧化應激,減少ROS,加強骨生成,防治骨質疏松[40];臣藥鹿角片補益腎陽,適宜濃度的鹿角多肽對BMSCs具有良好的促進作用,可以促進BMSCs 增殖;仙桃草化瘀通絡止痛,其有效成分槲皮素能夠清除體內ROS,維持骨穩(wěn)態(tài),綠葉酸亦能夠促進BMSCs 增殖和誘導其成骨。臨床癥狀方面,PMOP 常伴隨潮熱、出汗、心痛、失眠等癥狀,這與老年女性的腎陰虛癥狀相似[5]。張介賓曾云:“善補陰者,必于陽中求陰,則陰得陽升而泉源不竭”,方中龜甲亦可以發(fā)揮雌激素替代作用,防止絕經(jīng)后婦女骨質流失,治療PMOP。
通過對本實驗結果的分析,可以得出以下結論:
1)培本固疏方能提高BMD,減少骨脆性,增加骨彈性,上調血清中Akt的表達水平,降低ALP、PPARγ的表達,減少細胞氧化應激,說明該方能有效改善絕經(jīng)后骨質疏松,且療效在一定程度上具有劑量依賴性。
2)培本固疏方可以作用于成骨細胞,主要通過發(fā)揮促成骨作用、促進成骨細胞增殖分化以及抗氧化應激減少成骨細胞凋亡防治絕經(jīng)后骨質疏松癥。
3)培本固疏方能調控Akt/PPARγ 信號通路,防治絕經(jīng)后骨質疏松癥。具體機制可能為:①通過Akt 信號通路直接作用于成骨細胞,促進成骨、骨礦化以及成骨細胞增殖分化全過程;②通過調控Akt 信號通路下游關鍵因子PPARγ,降低PPARγ 的表達水平,進而抑制BMSCs 成脂分化,從而間接調節(jié)成骨細胞的增殖和促進骨形成。
本研究通過對培本固疏方干預絕經(jīng)后骨質疏松癥模型大鼠骨相關指標進行檢測,發(fā)現(xiàn)本方防治絕經(jīng)后骨質疏松癥可能與Akt/PPARγ信號通路激活影響骨形成有關。目前,中草藥作用于成骨細胞影響骨形成的研究較少,本研究限于時間和能力,雖基于前期研究結果進一步探索發(fā)現(xiàn)了培本固疏方調控骨形成可能的上游關鍵因子PPARγ 以及Akt 信號通路,但研究工作亦較為粗淺,僅為后續(xù)實驗提出可能性假說。日后若深入探究培本固疏方通過促成骨作用調控骨量這一途徑,仍需繼續(xù)探索本方是否通過其他通路影響骨形成,或本方通過調控Akt 信號通路后又影響哪些因子進而調節(jié)骨形成。且在文獻研究時發(fā)現(xiàn),本方內基本藥物作用途徑似乎與交感神經(jīng)系統(tǒng)調控骨量有關,仍有待今后進一步學習和探究。