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        巴戟天醇提物通過MAPK/ERK信號通路對腦缺血再灌注模型大鼠的保護作用

        2021-09-27 04:33:40
        關(guān)鍵詞:劑量手術(shù)模型

        龔 鳴

        腦卒中是威脅中國居民身體健康和生命安全的重大疾病之一,其中約70%腦卒中患者為腦缺血再灌注損傷(cerebral ischemia reperfusiorc injury,CIRI),死亡率約10%,致殘率高達50%以上[1]。CIRI 指腦缺血一定時間恢復血液供應后,腦功能并未好轉(zhuǎn),反而出現(xiàn)更嚴重功能障礙的現(xiàn)象[2]。CIRI 是缺血性腦血管病的主要病理過程,可通過炎癥反應、凋亡激活、細胞氧化、線粒體損傷等引起神經(jīng)細胞死亡[3]。巴戟天醇提物(radix Morindae officinalis-ethanolic extract,RMOEE)來源于雙子葉植物茜草科植物巴戟天,已有研究表明,其對心臟、腎臟的缺血再灌注損傷具有一定的保護作用[4-5]。本研究通過構(gòu)建腦缺血再灌注大鼠模型,探究RMOEE 對CIRI 的保護機制。

        1 實驗材料

        1.1 動物 健康清潔級雄性SD 大鼠40 只,體質(zhì)量200~240g,購自上海斯萊克實驗動物有限責任公司,動物生產(chǎn)許可證號為SCXK(滬)2013-0018,動物使用許可證號為SYXK(浙)2018-0012。飼養(yǎng)于浙江中醫(yī)藥大學實驗動物研究中心,室溫(25±2)℃,相對濕度60%~70%。

        1.2 藥物 中藥巴戟天購自安徽亳州中藥材市場。參考文獻[6]的方法進行提取,巴戟天干燥后反復粉碎,得到的粉狀物過100 目篩,與70%乙醇按體積比1∶10 混合,采用熱回流法將上清液過濾,旋蒸去除乙醇得到浸膏狀物。分別加入蒸餾水和正丁醇萃取3次后,得到醇提物正丁醇萃取部分和醇提物水溶部分,再次旋蒸得到各部分濃縮物,將RMOEE 水溶部分配成濃度為2g/mL 的母液備用。

        1.3 試劑和儀器 水合氯醛購自美國Sigma 公司(批號為A5462),大鼠炎癥因子[腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、白介素-1β(IL-1β)、細胞間黏附分子-1(ICAM-1)、血管細胞黏附分子-1(VCAM-1)]檢測試劑盒購自上海信帆生物科技有限公司(批號分別為201604、201803、201612、201701、201608),2,3,5-氯化三苯基四氮唑(TTC)、蘇木素-伊紅(HE)染色試劑盒購自北京索萊寶科技有限公司(批號分別為10110034、0321A23),原位末端轉(zhuǎn)移酶標記(TUNEL)染色試劑盒購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司(批號為P0173),抗體[絲裂原活化蛋白激酶1/2(MEK1/2)、激活型MEK1/2(p-MEK1/2)、細胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶1/2(ERK1/2)、激活型ERK1/2(p-ERK1/2)、B 淋巴細胞瘤-2(Bcl-2)、Bcl-2 關(guān)聯(lián)X 蛋白(Bax)、半胱氨酸蛋白酶-3(Caspase-3)、半胱氨酸蛋白酶-9(Caspase-9)、甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)]為兔抗,均購自美國CST 公司(批號分別為4694、2338、4695、9101、3498、14796、9662、9502、2858),Infinite M200 PRO 型多功能酶標儀購自奧地利TECAN 公司,轉(zhuǎn)移脫色搖床購自姜堰市普康醫(yī)療機械廠,PowerPac Basic 電泳儀購自美國BIO-RAD 公司,3300 Mini 化學發(fā)光成像系統(tǒng)購自中國CLinX 公司。

        2 實驗方法

        2.1 分組、造模及給藥 40 只SD 大鼠按照隨機數(shù)字表法分為假手術(shù)組、模型組及RMOEE 低、中、高(3、6、12g/kg)劑量組,每組8 只。參考文獻[7]線栓法制備腦缺血再灌注大鼠模型。由尾部將大鼠提起,保持懸空,左前肢屈曲內(nèi)收,活動時呈典型追尾征為造模成功。假手術(shù)組除不插線外,其余步驟同模型組和RMOEE 低、中、高劑量組。另外,RMOEE 低、中、高劑量組按照3、6、12g/kg 的藥物劑量,于每天上午8:30進行灌胃給藥,持續(xù)21 天,假手術(shù)組與模型組給予等體積5g/L 羧甲基纖維素鈉溶液。

        2.2 神經(jīng)功能缺失評分 給藥結(jié)束后,采用Zea Longa 評分標準[8]對大鼠神經(jīng)功能進行評分。無神經(jīng)功能缺損癥狀計0 分;癱瘓側(cè)屈曲、內(nèi)收,不能自主伸展計1 分;行走時向癱瘓側(cè)轉(zhuǎn)圈計2 分;行走時向癱瘓側(cè)傾倒計3 分;嚴重神經(jīng)功能缺損,如行走障礙等計4 分。得分越高表明神經(jīng)功能缺失越嚴重。

        2.3 腦含水量檢測 采用腦組織干濕重法檢測各組大鼠腦含水量,將各組大鼠麻醉后斷頭、取腦,去除小腦和低位腦干后稱重大腦組織重量,即為腦濕重;110℃恒溫烘烤48h 后稱重為腦干重,計算腦含水量:腦含水量(%)=(腦濕重-腦干重)/腦濕重×100%。

        2.4 腦梗死體積百分比測定 采用TTC 染色法檢測腦梗死體積,取腦后于-20℃放置30min,除去小腦和嗅球,冠狀切片,從大腦的額葉至枕葉連續(xù)切5片。隨后將腦片放入1%的TTC 磷酸緩沖液中,37℃避光孵育5min,待顏色分明后取出(梗死區(qū)呈白色),用10%甲醛固定。采用Image Pro-Plus 測量梗死面積和整個大腦面積,體積=面積×厚度。腦梗死體積百分比=(梗死體積/整個大腦體積)×100%。

        2.5 炎癥因子表達情況檢測 各組大鼠斷頭后,取缺血側(cè)腦組織,研磨勻漿,4℃下離心(3500r/min)5min,取上清液,按照ELISA 試劑盒說明書進行操作,通過酶標儀測定大鼠缺血側(cè)腦組織中TNF-α、IL-1β、ICAM-1 及VCAM-1 的含量。

        2.6 HE 染色及TUNEL 染色 于冰上取腦后部分組織,利用10%多聚甲醛固定,經(jīng)過脫水浸蠟包埋后制備石蠟切片,連續(xù)切片后進行脫蠟水化處理,切片厚度為4μm。然后進行脫蠟、二甲苯浸泡,降梯度乙醇溶液脫水處理,隨后按照HE 染色試劑盒說明書進行操作,采用中性樹膠封片后通過顯微鏡觀察腦組織海馬CA1 區(qū)神經(jīng)元病變;切片后采用4%多聚甲醛,PBS 清洗,Triton X-100通透,按照TUNEL 試劑盒說明書步驟進行染色,檢測凋亡情況,胞漿中呈現(xiàn)有棕黃色底物的細胞視作陽性凋亡細胞,利用Image Pro-Plus 分析軟件統(tǒng)計其中TUNEL 陽性細胞個數(shù),取其平均值作為該樣本的陽性細胞數(shù),凋亡細胞百分率(%)=陽性凋亡細胞數(shù)/(陽性凋亡細胞數(shù)+陰性凋亡細胞數(shù))×100%。

        2.7 Western blot 檢測相關(guān)蛋白表達 取大鼠患側(cè)腦皮質(zhì)組織,加入適量液氮,用研缽研磨后加入Lysis Buffer,組織勻漿機中進行勻漿,使組織盡量碾碎,冰上靜置裂解15~30min。將勻漿液放入離心管中離心5min,取上清轉(zhuǎn)移至新的預冷的離心管中,采用BCA試劑盒測定蛋白濃度,處理蛋白隨后上樣。用SDSPAGE 分離總蛋白,隨后用濕轉(zhuǎn)法轉(zhuǎn)移至PVDF 膜上,一抗4℃過夜,二抗室溫孵育2h 后采用ECL 顯色液顯影,化學發(fā)光成像系統(tǒng)上進行曝光拍照后,采用Image J 軟件進行灰度值分析。

        2.8 統(tǒng)計學方法 應用SPSS 22.0 統(tǒng)計軟件進行數(shù)據(jù)分析,數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準差(±s)表示,不同組間兩兩比較采用單因素方差分析;組間兩兩比較,方差齊性者采用兩獨立樣本t 檢驗,方差不齊者采用Kruskal-Wallis H 檢驗,以P<0.05 為差異有統(tǒng)計學意義。

        3 實驗結(jié)果

        3.1 各組大鼠神經(jīng)功能缺失評分及腦含水量比較與假手術(shù)組比較,模型組大鼠神經(jīng)功能評分顯著升高(P<0.01);與模型組比較,RMOEE 低、中、高劑量組均有不同程度地降低(P<0.05 或P<0.01)。與假手術(shù)組比較,模型組大鼠腦含水量顯著增加(P<0.01);與模型組比較,RMOEE 中、高劑量組腦含水量顯著降低(P<0.05)。見表1。

        表1 各組大鼠神經(jīng)功能缺失評分及腦含水量比較(±s)

        表1 各組大鼠神經(jīng)功能缺失評分及腦含水量比較(±s)

        注:假手術(shù)組和模型組予5g/L 羧甲基纖維素鈉溶液灌胃;RMOEE 低、中、高劑量組分別按照3、6、12g/kg 的劑量予RMOEE 溶液灌胃;Zea Longa 為神經(jīng)功能缺失評分;RMOEE 為巴戟天醇提物;與假手術(shù)組比較,aP<0.01;與模型組比較,bP<0.05,bbP<0.01

        3.2 各組大鼠腦梗死體積百分比比較 假手術(shù)組無明顯白色梗死灶出現(xiàn),模型組可見明顯的白色梗死灶,各RMOEE 加藥組中白色梗死灶大小均有不同程度的減?。ㄒ妶D1)。與假手術(shù)組比較,模型組大鼠腦梗死體積百分比顯著增加(P<0.01);與模型組比較,RMOEE 中、高劑量組腦梗死體積百分比顯著降低(P<0.05 或P<0.01)。見表2。

        圖1 各組大鼠腦組織TTC 染色情況

        表2 各組大鼠大腦梗死體積百分比比較(%,±s)

        表2 各組大鼠大腦梗死體積百分比比較(%,±s)

        注:假手術(shù)組和模型組予5g/L 羧甲基纖維素鈉溶液灌胃;RMOEE 低、中、高劑量組分別按照3、6、12g/kg 的劑量予RMOEE 溶液灌胃;RMOEE 為巴戟天醇提物;與假手術(shù)組比較,aP<0.01;與模型組比較,bP<0.05,bbP<0.01

        3.3 各組大鼠腦組織炎癥因子表達比較與假手術(shù)組比較,模型組大鼠腦組織TNF-α、IL-1β、ICAM-1及VCAM-1 的表達量顯著升高(P<0.01);與模型組比較,RMOEE 中、高劑量組能夠顯著降低大鼠腦組織TNF-α、IL-1β、ICAM-1 及VCAM-1表達(P<0.05)。見表3。

        表3 各組大鼠腦組織炎癥因子表達比較(±s)

        表3 各組大鼠腦組織炎癥因子表達比較(±s)

        注:假手術(shù)組和模型組予5g/L 羧甲基纖維素鈉溶液灌胃;RMOEE 低、中、高劑量組分別按照3、6、12g/kg 的劑量予RMOEE 溶液灌胃;RMOEE為巴戟天醇提物;TNF-α 為腫瘤壞死因子-α;IL-1β 為白細胞介素-1β;ICAM-1 為細胞間黏附分子-1;VCAM-1 為血管細胞黏附分子-1;與假手術(shù)組比較,aP<0.01;與模型組比較,bP<0.05

        3.4 各組大鼠海馬CA1 區(qū)神經(jīng)元病理學形態(tài)變化HE 染色結(jié)果顯示,假手術(shù)組大鼠腦組織海馬CA1區(qū)神經(jīng)元結(jié)構(gòu)層次清晰,排列整齊,結(jié)構(gòu)完整,胞質(zhì)染色均勻,無異?,F(xiàn)象。而模型組神經(jīng)元結(jié)構(gòu)明顯異常,排列紊亂,神經(jīng)元數(shù)量減少,間隙增大,胞體腫脹變形,核仁變淺或消失。相比于模型組,RMOEE 各劑量組能夠有效改善海馬CA1 區(qū)神經(jīng)元的病理學改變,且隨著劑量的增大,改善效果逐漸明顯。見圖2。

        圖2 各組大鼠海馬CA1 區(qū)神經(jīng)元病理學形態(tài)變化(HE 染色×200)

        3.5 各組大鼠腦組織細胞凋亡率比較與假手術(shù)組比較,模型組大鼠腦組織細胞凋亡率顯著增高(P<0.01);相對于模型組,RMOEE 低、中、高劑量組細胞凋亡率均顯著降低(P<0.05)。見表4,圖3。

        表4 各組大鼠腦組織細胞凋亡率比較(%,±s)

        表4 各組大鼠腦組織細胞凋亡率比較(%,±s)

        注:假手術(shù)組和模型組予5g/L 羧甲基纖維素鈉溶液灌胃;RMOEE 低、中、高劑量組分別按照3、6、12g/kg 的劑量予RMOEE 溶液灌胃;RMOEE 為巴戟天醇提物;與假手術(shù)組比較,aP<0.01;與模型組比較,bP<0.05

        圖3 各組大鼠腦組織細胞凋亡情況(TUNEL 染色×400)

        3.6 各組大鼠腦組織相關(guān)蛋白表達比較 Western blot 檢測結(jié)果顯示,與假手術(shù)組比較,模型組大鼠p-MEK1/2、p-ERK1/2、Bax、Caspase-3 以及Caspase-9蛋白表達量顯著增加(P<0.05 或P<0.01),Bcl-2 蛋白含量顯著降低(P<0.05);與模型組比較,RMOEE 中、高劑量組p-MEK1/2、p-ERK1/2、Bax、Caspase-3 以及Caspase-9 蛋白含量顯著下降(P<0.05 或P<0.01),Bcl-2 蛋白含量顯著增高(P<0.05 或P<0.01)。見圖4,表5。

        圖4 各組大鼠腦組織中相關(guān)蛋白表達情況

        表5 各組大鼠腦組織相關(guān)蛋白相對表達量比較(±s)

        表5 各組大鼠腦組織相關(guān)蛋白相對表達量比較(±s)

        注:假手術(shù)組和模型組予5g/L 羧甲基纖維素鈉溶液灌胃;RMOEE 低、中、高劑量組分別按照3、6、12g/kg 的劑量予RMOEE 溶液灌胃;RMOEE為巴戟天醇提物;MEK1/2 為絲裂原活化蛋白激酶1/2;p-MEK1/2 為激活型絲裂原活化蛋白激酶1/2;ERK1/2 為細胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶1/2;p-ERK1/2 為激活型細胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶1/2;Bcl-2 為B 淋巴細胞瘤-2;Bax 為Bcl-2 關(guān)聯(lián)X 蛋白;Caspase-3 為半胱氨酸蛋白酶-3;Caspase-9為半胱氨酸蛋白酶-9;GAPDH 為甘油醛-3-磷酸脫氫酶;與假手術(shù)組比較,aP<0.05,aaP<0.01;與模型組比較,bP<0.05,bbP<0.01

        4 討論

        中醫(yī)藥在治療腦缺血再灌注方面有著獨特的作用和優(yōu)勢[9-11],中藥巴戟天是茜草科巴戟天屬植物巴戟天的干燥根,味甘、辛,微溫,具有補腎陽、強筋骨、祛風濕等功效[12],其醇提物已被證實對大鼠CIRI 具有一定的保護作用[13],然而其具體的作用機制未被闡明。本研究結(jié)果表明,RMOEE 能夠顯著降低腦缺血再灌注大鼠的Zea Longa 評分,明顯減少腦含水量以及腦梗死體積百分比,提示RMOEE 能夠在一定程度上減輕腦缺血再灌注所造成的神經(jīng)功能損傷,改善腦水腫以及腦梗死情況。HE 染色結(jié)果表明,RMOEE 干預能夠改善腦缺血再灌注模型大鼠腦組織海馬CA1 區(qū)神經(jīng)元的病理學改變。

        炎癥因子的釋放加劇了血腦屏障的通透性,進而加重腦組織水腫,促使炎癥因子透過血腦屏障,加重炎癥反應和細胞凋亡[14]。細胞凋亡是CIRI 引起神經(jīng)細胞死亡的重要原因[15]。因此,炎癥反應和細胞凋亡與CIRI 密切相關(guān)。本研究檢測大鼠腦組織炎癥因子(TNF-α、IL-1β、ICAM-1 及VCAM-1)的表達變化,結(jié)果表明,模型組大鼠炎癥因子表達明顯增高,而RMOEE 干預后能夠有效降低上述炎癥因子的表達,證實RMOEE 能夠顯著抑制模型大鼠腦缺血再灌注所造成的炎癥反應。此外,TUNEL 染色結(jié)果表明RMOEE 能夠有效降低腦缺血再灌注模型大鼠的細胞凋亡率,并通過Western blot 實驗從蛋白層面驗證了RMOEE 干預能夠抑制腦缺血再灌注模型大鼠細胞凋亡。

        MAPK/ERK信號通路是由激酶級聯(lián)反應介導的信號傳導通路,能夠通過一系列的級聯(lián)反應,激活靶基因轉(zhuǎn)錄,參與細胞增殖、轉(zhuǎn)移、凋亡等過程[16]。目前已有研究證實,MAPK/ERK信號通路的異常激活與CIRI 密切相關(guān)[15]。MEK1/2和ERK1/2 是MAPK/ERK信號通路的標志性蛋白。本研究結(jié)果表明,相對于假手術(shù)組,模型組大鼠MEK1/2和ERK1/2 的磷酸化水平顯著增強,表明MAPK/ERK通路在腦缺血再灌注模型大鼠中呈異常激活狀態(tài),而RMOEE 能夠明顯降低p-MEK1/2和p-ERK1/2 的表達,證明RMOEE能夠有效抑制MAPK/ERK通路活性。

        綜上所述,RMOEE 可能通過調(diào)控MAPK/ERK信號通路,降低炎癥因子表達以及抑制凋亡,進而對大鼠CIRI 起到一定的保護作用。

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